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2. Material und Methoden
2. Material und Methoden
Alle Versuche unterlagen den Bestimmungen des Tierschutzes und waren vom
Regierungspräsidium Baden-Württemberg genehmigt (Tierversuch Nr. AK
1/06).
2.1. Die Versuchstiere
Als Versuchstiere wurden 38 weibliche Wildtyp Brown Norway Ratten (Fa.
Charles River, Sulzfeld, Deutschland) verwendet. Zu Beginn der Experimente
befanden sich die Tiere in einem Alter von 6 bis 8 Wochen. Ihr Gewicht betrug
im Durchschnitt 153,8 g ± 11,1 g. Im Tierstall wurden die Ratten in einem
zirkadianen Rhythmus gehalten (12 Stunden dunkel, 12 Stunden hell).
2.2. Messung des kornealen ERGs
2.2.1. Dunkeladaptation und Narkose
Die Versuchstiere wurden vor den Messungen 12 Stunden dunkel adaptiert.
Unter schwacher Rotlichtbeleuchtung (Glühbirne „dark red“ Philips, 230 V)
wurden die Tiere durch eine intraperitoneale Injektion bestehend aus
Ketaminhydrochlorid (Ketavet ® , Pfizer, Karlsruhe, Deutschland) in einer
Dosierung von 100 mg/kg Körpergewicht und Xylazinhydrochlorid 2%
(Rompun ® , Bayer Vital, Leverkusen, Deutschland) in einer Dosierung von 5
mg/kg Körpergewicht narkotisiert. Nach einer Stunde erfolgte abermals eine
anästhetische Injektion subkutan, dieses Mal aber nur ein Drittel des initialen
Volumens. Die Pupillen wurden mittels eines Tropfens Tropicamid (Mydriaticum
Stulln ® , Pharma Stulln, Stulln, Deutschland) dilatiert und die Kornea mittels
0,4% Oxybuprocainhydrochlorid (Novesine ® , Novartis, Nürnberg, Deutschland)
lokal betäubt. Um das Austrocknen der kornealen Oberfläche zu vermeiden,
wurde ein Methylcellulose-Gel (Methocel ® 2%, Novartis, Nürnberg,
Deutschland) auf diese aufgetragen.
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