Biochemie Praktikum I
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<strong>Praktikum</strong>sskript <strong>Biochemie</strong> für Biologen-Bachelor SS2012<br />
LDH-Test / Proteinbestimmung<br />
Bestimmung der Proteinkonzentration (Gesamtprotein) nach Bradford<br />
Neben der Proteinbestimmung nach der Biuret-, bzw. der Lowry-Methode stellt die<br />
Bestimmung der Proteinkonzentration nach Bradford eine geeignete Möglichkeit dar, auch<br />
sehr kleine Proteinkonzentrationen (10-100 µg/ml) zu ermitteln. Zur Messung der<br />
Proteinkonzentration werden Proteinlösungen mit dem blauen Farbstoff Coomassie Brillant<br />
Blue R250 versetzt. Die Farbstoffmoleküle binden adsorptiv an die Proteinmoleküle; dadurch<br />
tritt eine Verschiebung des Absorptionsmaximum nach 595 nm auf (vgl. Lottspeich,<br />
Bioanalytik). Diese wird anhand von Extinkitionsmessungen ermittelt und daraus die<br />
Proteinkonzentration bestimmt:<br />
SO 3 Na<br />
H 3 C<br />
N<br />
HN CH 3<br />
H 3 C<br />
CH 3<br />
O CH 3<br />
N +<br />
SO<br />
- 3<br />
Abb. 3: Coomassie Brillant Blue R 250<br />
Gegenüber anderen Proteinbestimmungen hat die Bradford -Methode folgende Vorteile:<br />
- hohe Empfindlichkeit Proteinkonzentration im Test 1-10 µg (Biuret ca 100 µg)<br />
- kurze Reaktionszeit (ca. 2 min)<br />
- geringe Störanfälligkeit: keine Beeinflussung des Testergebnisses durch K + -, Mg 2+ -<br />
Ionen, EDTA, TRIS, Thiolreagentien und Kohlenhydrate<br />
Versuchsdurchführung<br />
Erstellen einer Eichgerade<br />
Um die ermittelten Extinktionswerte einer Proteinkonzentration c zuweisen zu können, muß<br />
eine Eichgerade erstellt werden. Eine Verdünnungsreihe mit Rinderserumalbumin (BSA)<br />
ansteigender Konzentration (10 – 100 µg/ml) wird zur Verfügung gestellt.<br />
Von den Verdünnungen werden nun jeweils 100µl zu 1 ml Bradford-Stammlösung (vorgelegt<br />
in Küvetten) gegeben (Verdünnungsfaktor 1 : 11). Die Küvetten mit Parafilm abdichten, gut<br />
vermischen, 10 min inkubieren und anschließend messen<br />
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