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Biochemie Praktikum I

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<strong>Praktikum</strong>sskript <strong>Biochemie</strong> für Biologen-Bachelor SS2012<br />

LDH-Test / Proteinbestimmung<br />

Bestimmung der Proteinkonzentration (Gesamtprotein) nach Bradford<br />

Neben der Proteinbestimmung nach der Biuret-, bzw. der Lowry-Methode stellt die<br />

Bestimmung der Proteinkonzentration nach Bradford eine geeignete Möglichkeit dar, auch<br />

sehr kleine Proteinkonzentrationen (10-100 µg/ml) zu ermitteln. Zur Messung der<br />

Proteinkonzentration werden Proteinlösungen mit dem blauen Farbstoff Coomassie Brillant<br />

Blue R250 versetzt. Die Farbstoffmoleküle binden adsorptiv an die Proteinmoleküle; dadurch<br />

tritt eine Verschiebung des Absorptionsmaximum nach 595 nm auf (vgl. Lottspeich,<br />

Bioanalytik). Diese wird anhand von Extinkitionsmessungen ermittelt und daraus die<br />

Proteinkonzentration bestimmt:<br />

SO 3 Na<br />

H 3 C<br />

N<br />

HN CH 3<br />

H 3 C<br />

CH 3<br />

O CH 3<br />

N +<br />

SO<br />

- 3<br />

Abb. 3: Coomassie Brillant Blue R 250<br />

Gegenüber anderen Proteinbestimmungen hat die Bradford -Methode folgende Vorteile:<br />

- hohe Empfindlichkeit Proteinkonzentration im Test 1-10 µg (Biuret ca 100 µg)<br />

- kurze Reaktionszeit (ca. 2 min)<br />

- geringe Störanfälligkeit: keine Beeinflussung des Testergebnisses durch K + -, Mg 2+ -<br />

Ionen, EDTA, TRIS, Thiolreagentien und Kohlenhydrate<br />

Versuchsdurchführung<br />

Erstellen einer Eichgerade<br />

Um die ermittelten Extinktionswerte einer Proteinkonzentration c zuweisen zu können, muß<br />

eine Eichgerade erstellt werden. Eine Verdünnungsreihe mit Rinderserumalbumin (BSA)<br />

ansteigender Konzentration (10 – 100 µg/ml) wird zur Verfügung gestellt.<br />

Von den Verdünnungen werden nun jeweils 100µl zu 1 ml Bradford-Stammlösung (vorgelegt<br />

in Küvetten) gegeben (Verdünnungsfaktor 1 : 11). Die Küvetten mit Parafilm abdichten, gut<br />

vermischen, 10 min inkubieren und anschließend messen<br />

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