Maria Kammerer - Universitätsklinikum Carl Gustav Carus

3.3.2.5.2. Fläche aller Mitralzellen pro 400µm
Wir berechneten mit Hilfe der Mitralzellanzahl für 400µm (Kapitel 3.3.2.3.) und der Fläche für
eine Mitralzelle (Kapitel 3.3.2.4.) die Gesamtfläche aller Mitralzellen über 400µm.
Dazu multiplizierten wir die Anzahl der Mitralzellen mit der Fläche, die durchschnittlich eine
Mitralzelle hat. Diese Daten wurden für jede Maus errechnet und in den Vergleichsgruppen
gemittelt.
3.3.2.6. Korrektur
Je größer die Zellen im Verhältnis zur Schnittdicke sind, umso mehr entfernt sich das
Ergebnis von der tatsächlichen Zelldichte nach oben (Schröder et al., 1975). Bei der
quantitativen Auswertung besteht daher die Gefahr, fälschlicherweise Zellen aus anderen
Schichten mitzuzählen. Deswegen korrigierten wir die morphologischen Rohdaten nach der
Abercrombieformel (Abercrombie, 1946): NC=NR x CF.
Dabei ist NC die korrigierte Zellanzahl und NR die Rohzahl (Anzahl der Mitralzellen).
CF = t/t + d, wobei t für die Schnittdicke in µm (hier 10µm) und d für den Zellkerndurchmesser
in µm (hier im Durchschnitt 6 µm) steht. Der Zellkerndurchmesser wurde pro Maus an zehn
OT, die nur mit Hämatoxylin gefärbt wurden, mit Hilfe des ANALYSIS Programms bestimmt.
Pro Maus wurden 60 bis 80 Kerndurchmesser gemessen und dann gemittelt.
3.4. Statistik
Es wurden jeweils drei Tiere einer Vergleichsgruppe zugeordnet (3 Wo KO, 3 Wo Wild, 6 Wo
KO, 6 Wo Wild, 10 Wo KO und 10 Wo Wild).
Die Ergebnisse wurden mittels SPSS-Software V. 14 (SPSS Inc, Chicago; USA)
ausgewertet. Neben der deskriptiven Statistik (Mittelwert und Standardabweichung) wurde
auch der t-Verteilungstest, mit einem Signifikanzniveau von p < 0,05 durchgeführt. In den
Diagrammen wurden neben den Mittelwerten auch die Standardabweichung T und die
Signifikanz * = p