18.02.2013 Views

89-91 - Polskie Stowarzyszenie Biomateriałów

89-91 - Polskie Stowarzyszenie Biomateriałów

89-91 - Polskie Stowarzyszenie Biomateriałów

SHOW MORE
SHOW LESS

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.

100 wykorzystane do badań były po 6 pasażu, co gwarantowało<br />

ich stabilność i stałe tempo proliferacji.<br />

Oceny stopnia cytotoksyczności badanego biomateriału<br />

dokonano dwoma metodami. W I metodzie wykorzystano<br />

jego ekstrakt uzyskany poprzez 8-dniową inkubację próbek<br />

badanego biomateriału umieszczonych na dnie dołków 24dołkowej<br />

płytki do hodowli komórek (Nunc A/S Roskilde,<br />

Dania) w 2ml medium hodowlanego o składzie identycznym<br />

jak medium do hodowli osteoblastów. Próbki inkubowano<br />

w temperaturze 37 0 C w atmosferze powietrza z 5% zawartością<br />

CO 2 przy 100% wilgotności względnej. Następnie<br />

objętość 0,2ml uzyskanego w ten sposób ekstraktu oraz<br />

jego kolejnych rozcieńczeń w medium hodowlanym (rozcieńczenia<br />

w postępie geometrycznym od 1:2 do 1:128) dozowano<br />

do osteoblastów hFOB 1.19 zaadherowanych do dna<br />

dołków 96-dołkowej płytki do hodowli komórkowych. Płytki<br />

inkubowano w temperaturze 37 0 C w atmosferze powietrza<br />

z 5% zawartością CO 2 przy 100% wilgotności względnej.<br />

Czas inkubacji dla dwóch równolegle prowadzonych eksperymentów<br />

wynosił: 24 godziny oraz 48 godzin. Ocenę<br />

cytotoksycznego działania kompozytu PLGA+HA na ludzkie<br />

osteoblasty dokonano poprzez pomiar aktywności dehydrogenazy<br />

mitochondrialnej (test MTT) oraz dehydrogenazy<br />

mleczanowej (test LDH) wykonując każde z oznaczeń w<br />

trzech niezależnych powtórzeniach [1,2]<br />

Przeprowadzając badania II etapu na dnie dołków<br />

4-dołkowej płytki do hodowli komórek z 1ml medium hodowlanego<br />

umieszczano próbki badanego materiałów, a<br />

następnie kontaktowano je z jednowarstwową hodowlą<br />

osteoblastów. Płytki inkubowano w temperaturze 37 o C w<br />

atmosferze powietrza z 5% zawartością CO 2 przy 100%<br />

wilgotności względnej. Czas inkubacji wynosił 24, 48 i 72<br />

godziny. Ocenę cytotoksycznego działania kompozytu na<br />

ludzkie osteoblasty dokonano poprzez pomiar aktywności<br />

dehydrogenazy mleczanowej (test LDH) wykonując każde<br />

z oznaczeń w trzech niezależnych powtórzeniach [1].<br />

aktywność dehydrogenazy mleczanowej (test ldh)<br />

Dehydrogenaza mleczanowa uwalniana jest z cytoplazmy<br />

do medium hodowlanego w wyniku uszkodzenia błony<br />

komórkowej i lizy komórek. Wzrost aktywności LDH w supernatantach<br />

hodowli komórkowych koreluje z odsetkiem<br />

martwych komórek i jest proporcjonalny do stężenia formazanu<br />

powstałego przez redukcję soli tetrazolowej. W teście<br />

cytotoksyczności (Roche Diagnostics GmbH, Mannheim,<br />

Niemcy) oznaczenia wykonano w 96 dołkowych płytkach<br />

według procedury podanej przez producenta [1]. Procent<br />

cytotoksyczności CT [%] obliczano według wzoru (1) – I<br />

etap, oraz wzoru (2) – II etap, do których wstawiano wartości<br />

poszczególnych absorbancji po uprzednim odjęciu wartości<br />

Amedium (absorbancja medium hodowlanego):<br />

gdzie A b – absorbancja próbki badanej, A wk – absorbancja<br />

kontroli wysokiej, czyli wartość całkowitego uwolnienia<br />

LDH (maksymalne uwolnienie LDH po dodaniu do hodowli<br />

komórek 1% roztworu Tritonu X-100), A nk–absorbancja<br />

kontroli niskiej, czyli wartość spontanicznego uwolnienia<br />

LDH (spontaniczne uwalnianie LDH podczas hodowli komórek<br />

natywnych), A ekstr–absorbancja kontroli badanego<br />

ekstraktu.<br />

aktywność dehydrogenazy mitochondrialnej (test<br />

mtt)<br />

of the examined material placed at the bottoms of the pits of<br />

a 24-pit cell cultivation plate (Nunc A/S Roskilde, Denmark)<br />

in 2ml of cultivation medium whose composition was identical<br />

as that of osteoblasts cultivation medium. The samples<br />

were incubated at 37 0 C temperature, the air containing 5%<br />

of CO 2 and having relative humidity of 100%. Next, 0.2ml<br />

of the extract thus obtained and its successive dilutions in<br />

the cultivation medium (dilutions in geometric progression<br />

from 1:2 to 1:128) were dozed to osteoblasts hFOB 1.19<br />

line adhered to the bottom of the pits of a 96-pit cell cultivation<br />

plate. The plates were incubated at the temperature<br />

of 37 0 C, the air containing 5% of CO 2 and having relative<br />

humidity of 100%. The incubation time for both simultaneously<br />

performed experiments was 24 hours and 48 hours.<br />

The assessment of cytotoxic influence of the PLGA+HA<br />

composite on human osteoblasts was performed by measuring<br />

the activity of mitochondrial dehydrogenase (MTT test)<br />

and lactate dehydrogenase (LDH test); each marking was<br />

done in three independent repetitions [1,2].<br />

While performing the second stage examinations, the<br />

samples of the examined material were placed at the bottom<br />

of pits in a 4-pit cell cultivation plate with 1ml of the<br />

cultivation medium, and then they were contacted with<br />

one-layer osteoblasts culture. The plates were incubated at<br />

the temperature of 37 o C, the air containing 5% of CO 2 and<br />

having relative humidity of 100%. The incubation time was<br />

24, 48 and 72 hours. The assessment of cytotoxic influence<br />

of the composite upon human osteoblasts was performed<br />

by measuring the activity of lactate dehydrogenase (LDH<br />

test); each marking was done in three independent repetitions<br />

[1].<br />

ldh (lactate dehydrogenase) release assay<br />

Lactate dehydrogenase is released from the cytoplasm<br />

into the culture medium as a result of damage to the cellular<br />

membrane and cellular lysis. Increased LDH activity in the<br />

supernatants of cell cultures correlates with the percentage<br />

of dead cells. LDH activity was measured using a commercial<br />

cytotoxicity assay kit (Roche Diagnostics GmbH, Mannheim,<br />

Germany), in which released LDH in culture supernatants<br />

is measured with a coupled enzymatic assay, resulting in<br />

conversion of a tetrazolium salt into red formazan product.<br />

The marking of LDH activity was done in 96-pit plates according<br />

to the procedure indicated by the manufacturer [1].<br />

The toxicity percentage CT [%] was calculated according to<br />

formula (1) – 1st method and formula (2) – 2nd method, to<br />

which the values of particular absorbances were inserted,<br />

after having subtracted the values the absorbance values<br />

of the culture medium:<br />

where A s–absorbance of the examined sample, A hc<br />

-high control absorbance, or the value of the total LDH<br />

release (maximum LDH release after adding 1% Triton X-<br />

100 solution to cell culture), A lc–low control absorbance, or<br />

the value of spontaneous LDH release (spontaneous LDH<br />

release during native cells cultivation), A extr–absorbance of<br />

the extract.<br />

mtt (mitochondrial dehydrogenase) activity assay<br />

After 24- or 48-hour incubation with the studied PLGA<br />

extract sample, the cells used in the experiment were rinsed<br />

and then the MTT solution was added, thereby obtaining the

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!