MESOAMERICANA - Sociedad Mesoamericana para la BiologÃa y la ...
MESOAMERICANA - Sociedad Mesoamericana para la BiologÃa y la ...
MESOAMERICANA - Sociedad Mesoamericana para la BiologÃa y la ...
You also want an ePaper? Increase the reach of your titles
YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.
<strong>Mesoamericana</strong> 13 (1) Agosto de 2009<br />
INTRODUCCIÓN<br />
El anostraco más utilizado como alimento vivo <strong>para</strong> <strong>la</strong>rvas<br />
de peces dulceacuíco<strong>la</strong>s y marinos es Artemia franciscana<br />
(García-Ortega, 2000; García-Ortega et al., 2000; Lavens y<br />
Sorgeloos, 2000; Sato et al., 2004; Moraiti-Loannidou et al.,<br />
2007), mientras que el camarón duende Streptocephalus<br />
mackini, es un anostraco característico de charcas<br />
temporales y una alternativa como alimento <strong>para</strong> peces<br />
(Rodríguez, 1990). La semejanza entre S. mackini y A.<br />
franciscana, que incluyen sus características nutricionales, lo<br />
convierten en una fuente potencial de alimento vivo en <strong>la</strong><br />
acuicultura. Lo anterior adquiere mayor relevancia debido<br />
a que el punto crítico de <strong>la</strong> nutrición de <strong>la</strong>rvas de peces es el<br />
inicio de <strong>la</strong> alimentación exógena después de <strong>la</strong> absorción<br />
del saco vitelino, el cual es posible superar<br />
satisfactoriamente mediante el suministro de un buen<br />
alimento vivo (García-Ortega, 2000; Rodríguez-Canché et<br />
al., 2006). En este sentido, A. franciscana y S. mackini reúnen<br />
<strong>la</strong>s cualidades necesarias <strong>para</strong> contribuir a solventar <strong>la</strong><br />
carencia de alimentos con alta calidad nutritiva que<br />
promuevan el crecimiento, desarrollo y sobrevivencia de<br />
<strong>la</strong>rvas de peces (Sales y Janssens, 2003; Glencross et al.,<br />
2007). Aunado a lo anterior, es primordial seña<strong>la</strong>r que A.<br />
franciscana esta ampliamente probada como alimento vivo y<br />
posee una considerable importancia <strong>para</strong> <strong>la</strong> <strong>la</strong>rvicultura de<br />
peces y camarones (Moraiti-Ioannidou et al., 2007), no así<br />
S. mackini. A pesar de esto S. mackini reúne una serie de<br />
características que lo convierten en candidato a ser<br />
utilizado como alimento vivo en <strong>la</strong> acuicultura, debido a su<br />
alto valor nutritivo, cuerpo b<strong>la</strong>ndo, fácil de digerir, ciclo de<br />
vida corto, altas densidades de cultivo y movilidad (Luna-<br />
Figueroa, 2002).<br />
Sin embargo, <strong>la</strong> calidad de los quistes de A. franciscana<br />
y S. mackini depende de un gran número de factores, tales<br />
como <strong>la</strong> calidad nutricional intrínseca, <strong>la</strong>s características de<br />
<strong>la</strong> diapausa, <strong>la</strong> tal<strong>la</strong> de los quistes y nauplios, entre otras,<br />
que influyen en el valor comercial de los mismos (Bossier<br />
et al., 2004). De acuerdo con Lavens y Sorgeloos (2000)<br />
otros criterios que definen <strong>la</strong> calidad de los quistes de este<br />
tipo de organismos como alimento en acuicultura son el<br />
porcentaje y tiempos de eclosión, tiempos de sincronía y el<br />
número de quistes por gramo. Con base en lo anterior, el<br />
objetivo de <strong>la</strong> presente investigación fue analizar <strong>la</strong> calidad<br />
de los quistes de A. franciscana y de S. mackini, a través de<br />
determinar su valor nutritivo, <strong>la</strong> tal<strong>la</strong>, el número de<br />
quistes/g, el porcentaje de eclosión y <strong>la</strong> tasa de sincronía.<br />
23<br />
MATERIAL Y MÉTODOS<br />
Para el desarrollo del experimento se utilizaron quistes de<br />
artemia A. franciscana (INVE Aquaculture Nutrition) y de<br />
camarón duende S. mackini, estos últimos colectados del<br />
embalse Chalcatzingo, Morelos, México. Para se<strong>para</strong>r los<br />
quistes del sustrato se realizó <strong>la</strong> limpieza con <strong>la</strong> ayuda de<br />
salmueras utilizando <strong>la</strong> técnica <strong>para</strong> quistes de Artemia<br />
(Amat, 1985). El sustrato y los quistes se mezc<strong>la</strong>ron<br />
agitando <strong>la</strong> muestra por espacio de un minuto, <strong>la</strong> basura<br />
pesada y el suelo se sedimentaron, mientras que los quistes<br />
y <strong>la</strong> basura ligera flotaron, se retiró <strong>la</strong> salmuera y los quistes<br />
se colocaron en agua dulce, posteriormente se colocaron<br />
en un tamiz de 100 micras de abertura de mal<strong>la</strong> donde se<br />
<strong>la</strong>varon abundantemente con agua dulce hasta quedar<br />
totalmente limpios.<br />
El contenido de macronutrientes de los quistes de A.<br />
franciscana y de S. mackini se determinó mediante Análisis<br />
Químico Proximal, que se realizó en el Departamento de<br />
Nutrición Animal y Bioquímica de <strong>la</strong> Facultad de<br />
Medicina Veterinaria y Zootecnia de <strong>la</strong> Universidad<br />
Nacional Autónoma de México. Con el fin de conocer el<br />
diámetro de los quistes, se midieron 1000 de A. franciscana<br />
y 1000 de S. mackini, con ayuda de un micrómetro ocu<strong>la</strong>r<br />
adaptado a un microscopio estereoscópico Iroscope<br />
Modelo NZ-14T (Amat, 1980; Sato et al., 2004).<br />
Para <strong>la</strong> determinación del número de quistes por<br />
gramo, se pesó en una ba<strong>la</strong>nza analítica (precisión ± 0.001<br />
g), una submuestra de 25 mg de quistes secos <strong>para</strong> cada<br />
una de <strong>la</strong>s especies y se realizó el conteo con el<br />
microscopio estereoscópico (Sorgeloos et al., 1986).<br />
El porcentaje de eclosión fue evaluado mediante <strong>la</strong><br />
se<strong>para</strong>ción de grupos de 100 quistes por triplicado<br />
(Lavens y Sorgeloos, 1996), con <strong>la</strong> ayuda de un<br />
microscopio estereoscópico y una aguja de disección,<br />
estos se colocaron en cajas Petri de vidrio. En cada caja se<br />
adicionó agua, <strong>para</strong> A. franciscana agua a 35‰ de salinidad<br />
y <strong>para</strong> S. mackini agua libre de cloro y se colocaron cerca de<br />
una fuente luminosa de 60 Watts. Diariamente se contaron<br />
y se se<strong>para</strong>ron los nauplios de cada tratamiento.<br />
Con el objeto de determinar <strong>la</strong> tasa de eclosión se<br />
usaron 0.25 g de quistes de A. franciscana y de S. mackini, los<br />
cuales se colocaron en un embudo de se<strong>para</strong>ción con luz y<br />
aireación constantes, en el caso particu<strong>la</strong>r de A. franciscana<br />
el agua del embudo contenía 35‰ de salinidad. Para<br />
regu<strong>la</strong>r <strong>la</strong> temperatura del embudo a 25 ± 1 ºC, este se<br />
colocó dentro de una pecera (40 L) con agua a esta<br />
temperatura, <strong>la</strong> cual se mantuvo constante con <strong>la</strong> ayuda de<br />
un termostato sumergible regu<strong>la</strong>ble de 40 Watts. El