<strong>Mesoamericana</strong> 13 (1) Agosto de 2009 INTRODUCCIÓN El anostraco más utilizado como alimento vivo <strong>para</strong> <strong>la</strong>rvas de peces dulceacuíco<strong>la</strong>s y marinos es Artemia franciscana (García-Ortega, 2000; García-Ortega et al., 2000; Lavens y Sorgeloos, 2000; Sato et al., 2004; Moraiti-Loannidou et al., 2007), mientras que el camarón duende Streptocephalus mackini, es un anostraco característico de charcas temporales y una alternativa como alimento <strong>para</strong> peces (Rodríguez, 1990). La semejanza entre S. mackini y A. franciscana, que incluyen sus características nutricionales, lo convierten en una fuente potencial de alimento vivo en <strong>la</strong> acuicultura. Lo anterior adquiere mayor relevancia debido a que el punto crítico de <strong>la</strong> nutrición de <strong>la</strong>rvas de peces es el inicio de <strong>la</strong> alimentación exógena después de <strong>la</strong> absorción del saco vitelino, el cual es posible superar satisfactoriamente mediante el suministro de un buen alimento vivo (García-Ortega, 2000; Rodríguez-Canché et al., 2006). En este sentido, A. franciscana y S. mackini reúnen <strong>la</strong>s cualidades necesarias <strong>para</strong> contribuir a solventar <strong>la</strong> carencia de alimentos con alta calidad nutritiva que promuevan el crecimiento, desarrollo y sobrevivencia de <strong>la</strong>rvas de peces (Sales y Janssens, 2003; Glencross et al., 2007). Aunado a lo anterior, es primordial seña<strong>la</strong>r que A. franciscana esta ampliamente probada como alimento vivo y posee una considerable importancia <strong>para</strong> <strong>la</strong> <strong>la</strong>rvicultura de peces y camarones (Moraiti-Ioannidou et al., 2007), no así S. mackini. A pesar de esto S. mackini reúne una serie de características que lo convierten en candidato a ser utilizado como alimento vivo en <strong>la</strong> acuicultura, debido a su alto valor nutritivo, cuerpo b<strong>la</strong>ndo, fácil de digerir, ciclo de vida corto, altas densidades de cultivo y movilidad (Luna- Figueroa, 2002). Sin embargo, <strong>la</strong> calidad de los quistes de A. franciscana y S. mackini depende de un gran número de factores, tales como <strong>la</strong> calidad nutricional intrínseca, <strong>la</strong>s características de <strong>la</strong> diapausa, <strong>la</strong> tal<strong>la</strong> de los quistes y nauplios, entre otras, que influyen en el valor comercial de los mismos (Bossier et al., 2004). De acuerdo con Lavens y Sorgeloos (2000) otros criterios que definen <strong>la</strong> calidad de los quistes de este tipo de organismos como alimento en acuicultura son el porcentaje y tiempos de eclosión, tiempos de sincronía y el número de quistes por gramo. Con base en lo anterior, el objetivo de <strong>la</strong> presente investigación fue analizar <strong>la</strong> calidad de los quistes de A. franciscana y de S. mackini, a través de determinar su valor nutritivo, <strong>la</strong> tal<strong>la</strong>, el número de quistes/g, el porcentaje de eclosión y <strong>la</strong> tasa de sincronía. 23 MATERIAL Y MÉTODOS Para el desarrollo del experimento se utilizaron quistes de artemia A. franciscana (INVE Aquaculture Nutrition) y de camarón duende S. mackini, estos últimos colectados del embalse Chalcatzingo, Morelos, México. Para se<strong>para</strong>r los quistes del sustrato se realizó <strong>la</strong> limpieza con <strong>la</strong> ayuda de salmueras utilizando <strong>la</strong> técnica <strong>para</strong> quistes de Artemia (Amat, 1985). El sustrato y los quistes se mezc<strong>la</strong>ron agitando <strong>la</strong> muestra por espacio de un minuto, <strong>la</strong> basura pesada y el suelo se sedimentaron, mientras que los quistes y <strong>la</strong> basura ligera flotaron, se retiró <strong>la</strong> salmuera y los quistes se colocaron en agua dulce, posteriormente se colocaron en un tamiz de 100 micras de abertura de mal<strong>la</strong> donde se <strong>la</strong>varon abundantemente con agua dulce hasta quedar totalmente limpios. El contenido de macronutrientes de los quistes de A. franciscana y de S. mackini se determinó mediante Análisis Químico Proximal, que se realizó en el Departamento de Nutrición Animal y Bioquímica de <strong>la</strong> Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de <strong>la</strong> Universidad Nacional Autónoma de México. Con el fin de conocer el diámetro de los quistes, se midieron 1000 de A. franciscana y 1000 de S. mackini, con ayuda de un micrómetro ocu<strong>la</strong>r adaptado a un microscopio estereoscópico Iroscope Modelo NZ-14T (Amat, 1980; Sato et al., 2004). Para <strong>la</strong> determinación del número de quistes por gramo, se pesó en una ba<strong>la</strong>nza analítica (precisión ± 0.001 g), una submuestra de 25 mg de quistes secos <strong>para</strong> cada una de <strong>la</strong>s especies y se realizó el conteo con el microscopio estereoscópico (Sorgeloos et al., 1986). El porcentaje de eclosión fue evaluado mediante <strong>la</strong> se<strong>para</strong>ción de grupos de 100 quistes por triplicado (Lavens y Sorgeloos, 1996), con <strong>la</strong> ayuda de un microscopio estereoscópico y una aguja de disección, estos se colocaron en cajas Petri de vidrio. En cada caja se adicionó agua, <strong>para</strong> A. franciscana agua a 35‰ de salinidad y <strong>para</strong> S. mackini agua libre de cloro y se colocaron cerca de una fuente luminosa de 60 Watts. Diariamente se contaron y se se<strong>para</strong>ron los nauplios de cada tratamiento. Con el objeto de determinar <strong>la</strong> tasa de eclosión se usaron 0.25 g de quistes de A. franciscana y de S. mackini, los cuales se colocaron en un embudo de se<strong>para</strong>ción con luz y aireación constantes, en el caso particu<strong>la</strong>r de A. franciscana el agua del embudo contenía 35‰ de salinidad. Para regu<strong>la</strong>r <strong>la</strong> temperatura del embudo a 25 ± 1 ºC, este se colocó dentro de una pecera (40 L) con agua a esta temperatura, <strong>la</strong> cual se mantuvo constante con <strong>la</strong> ayuda de un termostato sumergible regu<strong>la</strong>ble de 40 Watts. El
<strong>Mesoamericana</strong> 13 (1) Agosto de 2009 fotoperiodo utilizado fue de 24 horas luz. Después de 12 h se efectuó el primer conteo tomando 10 muestras, posteriormente se hicieron conteos cada hora hasta que el 90% de los quistes eclosionó y se tomaron los siguientes datos basados en Sorgeloos et al. (1986) y Lavens y Sorgeloos (1996): T = Tiempo (h) en que eclosiona el primer nauplio 0 T = Tiempo (h) en que el 10% de <strong>la</strong> pob<strong>la</strong>ción total 10 eclosiona T = Tiempo (h) en que el 90% de <strong>la</strong> pob<strong>la</strong>ción total ha 90 eclosionado T = Tiempo de sincronía o tasa de eclosión: T =T -T s s 90 0 Los datos de diámetro, porcentaje y tasa de eclosión de los quistes de A. franciscana y S. mackini al no cumplir con los supuestos de normalidad y homocedasticidad se analizaron con <strong>la</strong> prueba estadística no <strong>para</strong>métrica de Suma de Rangos de Mann-Whitney. El nivel de significancia fue P
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