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Olfaktorische Rezeptoren mit speziellen topographischen ...

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Material und Methoden<br />

Berechnung der Schmelztemperatur von Nukleinsäure-Hybriden wurde die von<br />

Meinkoth und Wahl (1984) bestimmte Formel verwendet.<br />

Tm = 81,5°C + 16,6 log M + 0,41 (% G+C) – (500/n) - 0,61 (% Formamid)<br />

Tm = Schmelztemperatur der Hybride in C<br />

M = Molarität an NaCl<br />

G+C = Basenzusammensetzung der verwendeten RNA-Sonde<br />

n = Länge der eingesetzten RNA-Sonde<br />

Die Schmelztemperatur gibt an, bei welcher Temperatur 50% der Basenpaarungen<br />

zwischen Sonde und Zielsequenz gelöst sind. Aus der Formel wird ersichtlich, dass<br />

zum Einen durch Erhöhung des Formamid-Gehalts die Schmelztemperatur<br />

erniedrigt, zum Anderen auch durch hohe Hybridisierungs- bzw. Waschtemperaturen<br />

die Bedingungen stringenter werden. Bei den in dieser Arbeit durchgeführten in situ-<br />

Hybridisierungen wurden stets Bedingungen hoher Stringenz angewandt, d.h.<br />

hochstringente Hybridisierungsbedingungen (50% Formamid, bei 55°C) sowie<br />

hochstringente Waschbedingungen (0,1 fach SSC bei 60°C). Zur Denaturierung von<br />

Sekundärstrukturen wurden die RNA-Sonden in Hybridisierungspuffer für 10 Minuten<br />

bei 65°C erhitzt und danach sofort 5 Minuten auf Eis abgekühlt, um ein Renaturieren<br />

der RNA zu verhindern. Auf jeden Objektträger wurden etwa 3 ng DIG bzw. Biotin<br />

markierte RNA in 100 µl Hybridisierungspuffer gegeben und ein Deckglas blasenfrei<br />

aufgelegt. Die Inkubation erfolgte über Nacht bei 55°C in einer <strong>mit</strong> 50% Formamid<br />

befeuchteten Kammer.<br />

2.13.5 Waschen nach der Hybridisierung<br />

Die Schnitte wurden unter leichtem Schütteln zweimal 30 Minuten <strong>mit</strong> 0,1 fach SSC<br />

bei 60°C gewaschen.<br />

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