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Extraktion von Lebensmitteln und Bedarfsgegenständen

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<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong><br />

mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem Kohlendioxid<br />

zur Bestimmung <strong>von</strong> Pflanzenbehandlungsmitteln<br />

<strong>und</strong> anderen Bestandteilen<br />

Abschlußbericht<br />

M. Anastassiades<br />

15. Nov. 1995 bis 15. Aug. 1998<br />

Chemisches- <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Inhaltsverzeichnis<br />

0. ZUSAMMENFASSUNG 6<br />

1. EINLEITUNG 9<br />

1.1 ZIELSETZUNG 9<br />

1.2 APPARATIVE VORAUSSETZUNGEN 9<br />

1.3 SFE ALS ALTERNATIVE ZU HERKÖMMLICHEN EXTRAKTIONSVERFAHREN 9<br />

2. DAS EXTRAKTIONSVERFAHREN 11<br />

2.1 EINFÜHRUNG IN DIE SFE 11<br />

2.2 PHYSIKALISCHE GRUNDLAGEN DES VERFAHRENS 13<br />

2.3 MÖGLICHKEITEN ZUR OPTIMIERUNG VON SFE-EXTRAKTIONEN 14<br />

2.3.1 DIE ROLLE DER TEMPERATUR 15<br />

2.3.2 DIE ROLLE DES DRUCKES 15<br />

2.3.3 DIE ROLLE DER MATRIX 15<br />

2.3.4 DIE ROLLE VON MODIFIERN 16<br />

2.4 AUFBAU EINES SFE-EXTRAKTORS 16<br />

2.5 ABLAUF EINER EXTRAKTION 17<br />

2.6 ENTWICKLUNG EINER SFE-METHODE 18<br />

2.6.1 PROBENVORBEREITUNG 18<br />

2.6.2 GERÄTEEINSTELLUNGEN - OPTIMIERUNG DER EXTRAKTIONSBEDINGUNGEN 19<br />

3. APPLIKATIONEN 20<br />

3.1 ANALYTIK VON PFLANZENSCHUTZMITTELRÜCKSTÄNDEN IN OBST UND GEMÜSE 20<br />

3.1.1 EINLEITUNG 20<br />

3.1.2 OPTIMIERUNG DER MEßBEDINGUNGEN 22<br />

3.1.2.1 Wahl des Einspritz- <strong>und</strong> Detektionsystems 22<br />

3.1.2.2 Einflüsse des Injektionssystems <strong>und</strong> „Matrixeinflüsse“ 24<br />

3.1.2.3 Berücksichtigung der „Matrixeinflüsse“ bei der Bestimmung 29<br />

3.1.3 OPTIMIERUNG DER PROBENVORBEREITUNG 32<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

2


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.3.1 Zerkleinerung (Erzeugung repräsentativer Teilproben) 32<br />

3.1.3.2 Entfernung bzw. Immobilisierung <strong>von</strong> Wasser 35<br />

3.1.3.2.1 Wasserentfernung durch Gefriertrocknung 35<br />

3.1.3.2.2 Wasserbindung durch Adsorbentien 35<br />

3.1.4 SFE-MULTIMETHODEN FÜR PESTIZIDE IN OBST UND GEMÜSE 36<br />

3.1.4.1 Optimierung der <strong>Extraktion</strong>sbedingungen 36<br />

3.1.4.2 Durchführung der Multimethode 39<br />

3.1.4.3 Wiederfindungsversuche 41<br />

3.1.4.3.1 Vorgehensweise bei Dotierungen 41<br />

3.1.4.3.2 Wiederfindungen mit HP 7680T 41<br />

3.1.4.3.3 Wiederfindungen mit ISCO SFX 3560 46<br />

3.1.4.4 Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen 47<br />

3.1.4.5 Methodenvergleich 48<br />

3.1.4.6 Matrixbezogene Multimethoden 51<br />

3.1.4.6.1 Pestizide in Zitrusfrüchten 51<br />

3.1.4.6.2 Pestizide in Kernobst 54<br />

3.1.4.6.3 Pestizide in Beerenobst 55<br />

3.1.4.6.4 Pestizide in Tafeltrauben 56<br />

3.1.4.7 Einflüsse verschiedener Parameter auf die <strong>Extraktion</strong>sausbeuten 59<br />

3.1.4.7.1 Einfluß der Zerkleinerung auf die Probenhomogenität 59<br />

3.1.4.7.2 Einfluß der Polarität der Analyten auf die Extrahierbarkeit 59<br />

3.1.4.7.3 Einfluß des Wassergehaltes auf die Extrahierbarkeit unpolarer Analyten 60<br />

3.1.4.7.4 Abbau <strong>von</strong> Pestiziden während der Lagerung im Autosampler 62<br />

3.1.5 ENTWICKLUNG VON SCHNELLEN BESTIMMUNGSMETHODEN FÜR SPEZIELLE<br />

PESTIZIDKLASSEN MIT ANALYTISCHEN DEFIZITEN 64<br />

3.1.5.1. Einleitung 64<br />

3.1.5.2 Naßchemische Untersuchungen im Vorfeld 65<br />

3.1.5.2.1 Rolle des pH-Wertes bei <strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong> Flüssig-Flüssig-Verteilung 65<br />

3.1.5.2.2 Wechselwirkungen <strong>von</strong> Wirkstoffen mit Oberflächen 65<br />

3.1.5.3 Pestizide mit basischen Eigenschaften 70<br />

3.1.5.3.1 Einfluß des pH-Wertes auf die Extrahierbarkeit (vgl. Kap. 3.1.4.7.2) 70<br />

3.1.5.3.2 Carbendazim, Benomyl <strong>und</strong> Thiophanat-Methyl 73<br />

3.1.5.3.2.1 Umwandlung <strong>von</strong> Benomyl zu Carbendazim 74<br />

3.1.5.3.2.2 Thiophanat-Methyl 76<br />

3.1.5.3.2.3 Derivatisierung <strong>von</strong> Carbendazim mit PFB-Br im GC-Vial 81<br />

3.1.5.3.2.4 Bestimmung mittels GC-MSD 81<br />

3.1.5.3.2.5 Validierung 82<br />

3.1.5.3.2.6 <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> „gewachsenen“ Carbendazim-Rückständen aus<br />

Keltertrauben 83<br />

3.1.5.3.2.7: SFE- <strong>und</strong> DFG-Methode zur Bestimmung der Carbendazim-Gruppe im<br />

Kostenvergleich 84<br />

3.1.5.4 Saure Pestizide 86<br />

3.1.5.4.1 Einführung 86<br />

3.1.5.4.2 2,4-D-Rückstände in Zitrusfrüchten 86<br />

3.1.5.4.3 <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> freiem 2,4-D 87<br />

3.1.5.4.4 Freisetzung <strong>von</strong> geb<strong>und</strong>enen 2,4-D-Rückständen 87<br />

3.1.5.4.5 Derivatisierungsmöglichkeiten <strong>von</strong> Phenoxyalkancarbonsäuren 89<br />

3.1.5.4.6 Bestimmung mittels GC-MSD 92<br />

3.1.5.4.7 Validierung 93<br />

3.1.5.4.8 Behandlung <strong>von</strong> Zitronen mit 2,4-D <strong>und</strong> Lagerungsversuch 94<br />

3.1.5.4.9 Freisetzung <strong>von</strong> geb<strong>und</strong>enem 2,4-D aus Zitrusfrüchten bei simulierter<br />

Verdauung <strong>und</strong> simulierter Verarbeitung 97<br />

3.1.5.5 N-Methyl-Carbamate 100<br />

3.1.5.5.1 Einführung 100<br />

3.1.5.5.1.1 Analytik 103<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

3


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.5.5.2 Bestimmung <strong>von</strong> N-Methyl-Carbamaten nach <strong>Extraktion</strong> mittels SFE 103<br />

3.1.5.5.2.1 Übersicht 103<br />

3.1.5.5.2.2 <strong>Extraktion</strong> mit SFE 105<br />

3.1.5.5.2.3 Direkte Bestimmung mittels GC-MSD (KAS3-Gerstel) 105<br />

3.1.5.5.2.4 Bestimmung mittels GC-MSD nach Derivatisierung 106<br />

3.1.5.5.2.5 Bestimmung mittels LC-MSD 108<br />

3.1.5.5.2.6 Wiederfindungen 113<br />

3.1.5.5.2.7 Abbau in der <strong>Extraktion</strong>shülse 114<br />

3.1.5.6 Organozinn-Pestizide 117<br />

3.1.5.6.1 Einleitung 117<br />

3.1.5.6.2 <strong>Extraktion</strong> mit SFE 119<br />

3.1.5.6.3 Optimierung der Derivatisierung mit Grignard-Reagenz 119<br />

3.1.5.6.4 Bestimmung mittels GC-MSD 124<br />

3.1.5.6.5 Bestimmung mittels LC-MSD (API-Elektrospray) 127<br />

3.1.5.6.6 Wiederfindungsversuche 129<br />

3.1.6 BEISPIELE AUS DER PRAXIS DER LEBENSMITTELÜBERWACHUNG 131<br />

3.1.6.1 Bestimmung <strong>von</strong> Pyrimethanil <strong>und</strong> Diethofencarb in Keltertrauben 131<br />

3.1.6.2 Untersuchung <strong>von</strong> Carbendazim in Obst <strong>und</strong> Gemüse 133<br />

3.1.6.3 Untersuchung <strong>von</strong> 2,4-D in Zitrusfrüchten 136<br />

3.1.7 UNTERSUCHUNG VON RINGVERSUCHSPROBEN 137<br />

3.1.7.1 European Commission´s Proficiency Tests on Pesticide Residues in Fruit and<br />

Vegetables 1996/1997 137<br />

3.1.7.1.1 Proficiency Test I 137<br />

3.1.7.1.2 Proficiency Test II 139<br />

3.2 EINSATZ DER SFE IN DER ANALYTIK VON BEDARFSGEGENSTÄNDEN 141<br />

3.2.1 EINLEITUNG 141<br />

3.2.2 DI-ISOPROPYL-NAPHTHALIN IN PAPIER 142<br />

3.2.2.1 Einführung 142<br />

3.2.2.2 Bestimmungsverfahren 142<br />

3.2.2.2.1 naßchemisches Verfahren 142<br />

3.2.2.2.2 <strong>Extraktion</strong> mittels SFE 142<br />

3.2.2.2.3 Bestimmung mittels GC/MSD 143<br />

3.2.2.3 <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Proben aus dem Handel 146<br />

3.2.3 PCP (PENTACHLORPHENOL) AUS HOLZ UND TEXTILIEN 149<br />

3.2.3.1 Einführung 149<br />

3.2.3.2 Bestimmung <strong>von</strong> PCP 149<br />

3.2.3.2.1 naßchemisches Verfahren 149<br />

3.2.3.2.2 SFE-Methode 149<br />

3.2.3.2.2.1 Probenaufarbeitung 149<br />

3.2.3.2.2.2 <strong>Extraktion</strong> mit ISCO SFX 3560 150<br />

3.2.3.2.2.3 Derivatisierung mit PFB-Br 150<br />

3.2.3.2.3 Wiederfindungen <strong>und</strong> Untersuchung PCP-haltiger Seide 151<br />

3.2.3.2.4 Optimierung der <strong>Extraktion</strong> 151<br />

3.2.3.3 Untersuchung <strong>von</strong> Planproben 153<br />

3.2.3.4 Fazit 153<br />

3.2.4 EXTRAKTION VON ANTIOXIDANTIEN AUS KUNSTSTOFF 154<br />

3.2.4.1 Einführung 154<br />

3.2.4.2 Bestimmung <strong>von</strong> Antioxidantien 154<br />

3.2.4.2.1 naßchemisches Verfahren 154<br />

3.2.4.2.2 SFE-Methode 154<br />

3.2.4.2.2.1 Probeneinbringung in die SFE-Hülse 154<br />

3.2.4.2.2.2 <strong>Extraktion</strong> mit ISCO SFX 3560 155<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

4


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.2.4.2.3 Untersuchung <strong>von</strong> Proben mit bekannter Rezeptur 155<br />

3.2.4.2.3.1 untersuchte Antioxidantien 155<br />

3.2.4.2.3.2 Probenmaterial 156<br />

3.2.4.2.3.3 Untersuchungsergebnisse 156<br />

3.2.4.2.3.4 Variation der SFE-Parameter 157<br />

3.2.4.2.4 Fazit 157<br />

4. SCHLUßFOLGERUNGEN 159<br />

4.1 BEWERTUNG DER SFE ALS EXTRAKTIONSVERFAHREN 159<br />

4.2 BEWERTUNG DER VERWENDETEN EXTRAKTIONSGERÄTE 160<br />

4.3 ALLGEMEINE ANALYTISCHE ERKENNTNISSE 161<br />

4.4 AUSBLICK 161<br />

5. ABKÜRZUNGEN 163<br />

6. LITERATUR 166<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

5


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Problemstellung<br />

0. ZUSAMMENFASSUNG<br />

Die amtliche Lebensmittelüberwachung steht ständig vor neuen analytischen Herausforderungen<br />

(neue Wirkstoffe <strong>und</strong> Kontaminanten, Monitoring-Programme). Deshalb<br />

besteht bei den Untersuchungseinrichtungen zunehmend Bedarf an schnellen,<br />

kostengünstigen <strong>und</strong> automatisierten Analysenverfahren. Aus wirtschaftlichen, ges<strong>und</strong>heitlichen<br />

<strong>und</strong> ökologischen Gründen sind die Laboratorien zudem bemüht, den<br />

Lösungsmittelverbrauch soweit wie möglich zu senken.<br />

Ziel<br />

Die Möglichkeiten <strong>und</strong> Grenzen der SFE (Supercritical Fluid Extraction) als <strong>Extraktion</strong>sverfahren<br />

im Bereich der Lebensmittelanalytik sollten untersucht werden. Dieses<br />

Verfahren, bei dem das zu untersuchende Probenmaterial, statt wie herkömmlich mit<br />

organischen Lösungsmitteln, mit überkritischem Kohlendioxid extrahiert wird, ist erst<br />

seit wenigen Jahren durch die Entwicklung entsprechender automatisierter Geräte in<br />

Laboratorien einsetzbar. Für bestimmte analytische Fragestellungen wie z.B. Pestizidrückstände<br />

in Obst <strong>und</strong> Gemüse <strong>und</strong> Additive <strong>und</strong> Verunreinigungen in <strong>Bedarfsgegenständen</strong><br />

sollten Methoden entwickelt werden, die im Vergleich zu den<br />

herkömmlichen schneller sind, einen geringeren Lösungsmittelverbrauch haben,<br />

weniger manuelle Arbeitsschritte benötigen <strong>und</strong> dadurch wirtschaftlicher sind.<br />

Vorgehensweise<br />

Zunächst wurden Versuche zur Optimierung der Probenvorbereitung durchgeführt. Da<br />

bei der SFE nur geringe Probenmengen eingesetzt werden können, ist eine gründliche<br />

aber dennoch schonende Feinzerkleinerung des Probenmaterials erforderlich. Um eine<br />

möglichst effiziente aber dennoch selektive <strong>Extraktion</strong> zu erreichen, wurden die SFE-<br />

Geräteparameter wie <strong>Extraktion</strong>szeit, -druck, -temperatur <strong>und</strong> -flußrate variiert. Um auf<br />

eine aufwendige Reinigung der Extrakte verzichten zu können, wurden selektive<br />

Meßverfahren eingesetzt <strong>und</strong> optimiert. Für bestimmte Substanzen wurden<br />

Derivatisierungsmethoden entwickelt, <strong>und</strong> so eine empfindlichere <strong>und</strong> selektivere<br />

Messung erzielt. Die entwickelten SFE-Methoden wurden validiert <strong>und</strong> die erzielten<br />

Ergebnisse mit denen herkömmlicher Methoden verglichen.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

6


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Ergebnis<br />

1. Bei <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Obst <strong>und</strong> Gemüse mittels SFE ist auf den Wassergehalt der<br />

eingesetzten Proben zu achten, da Wasser sowohl den <strong>Extraktion</strong>sprozeß positiv wie<br />

negativ beeinflussen als auch ggf. das Gerät beschädigen kann. Durch Vermengung<br />

der Proben mit speziellen Adsorbentien (z.B. auf Silikatbasis) konnte der<br />

Feuchtigkeitsgrad eingestellt werden.<br />

2. Es wurden Wiederfindungsversuche für mehr als 120 verschiedene Pestizide<br />

durchgeführt. Für fast alle der untersuchten Stoffe wurden Wiederfindungen<br />

zwischen 70 <strong>und</strong> 110 %, in der Regel zwischen 80 <strong>und</strong> 95 % erreicht. Für einige<br />

ausgewählte Verbindungen wurden die Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen nach<br />

dem DFG Eichgeradenverfahren ermittelt. Bei Mehrfachbestimmungen <strong>von</strong> Proben<br />

aus dem Handel wurde eine gute Wiederholbarkeit (Variationskoeffizienten meist<br />

zwischen 2 <strong>und</strong> 6 %) festgestellt. Die mit Hilfe der entwickelten SFE-Methoden<br />

erzielten Untersuchungsergebnisse <strong>von</strong> Proben aus dem Handel stimmen mit den<br />

Ergebnissen herkömmlichen Verfahren gut überein. Die gewonnenen Ergebnisse<br />

zeigen, daß die SFE zur Routineanalytik <strong>von</strong> Pestizidrückständen in Obst <strong>und</strong><br />

Gemüse hervorragend eingesetzt werden kann, dies hat sich auch bei einer<br />

Laborvergleichsuntersuchung gezeigt (EU Proficiency Test I <strong>und</strong> II 1996,1997).<br />

3. Neben den Einstellungen des <strong>Extraktion</strong>sgerätes wurde auch der Einfluß weiterer<br />

analytischer Parameter auf die Extrahierbarkeit verschiedener Analyten am Beispiel<br />

ausgesuchter Pestizide untersucht.<br />

3.1 Polarität der Analyten: Da überkritisches Kohlendioxid ein recht unpolares<br />

Lösungsmittel ist, ist es gut zur <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> unpolaren bis mittelpolaren<br />

Pestiziden geeignet. Polarere Pestizide werden dagegen nur unvollständig<br />

extrahiert.<br />

3.2 pH-Wert: Bei Verbindungen mit sauren oder basischen Eigenschaften kann die<br />

Extrahierbarkeit bedeutend verbessert werden, wenn der pH-Wert der zu<br />

extrahierenden Proben entsprechend alkalisch oder sauer eingestellt wird (Bsp.<br />

Carbendazim <strong>und</strong> 2,4-D).<br />

3.3 Feuchtigkeitsgehalt: Bei unpolaren Pestiziden spielt der Feuchtigkeitsgehalt der<br />

Probe eine wichtige Rolle. Mit zunehmendem Wasseranteil werden für diese<br />

Substanzen schlechtere Wiederfindungen erzielt. Durch Zugabe <strong>von</strong> größeren<br />

Mengen Adsorbens können solche Substanzen wesentlich besser extrahiert werden<br />

(Bsp. Pyrethroide, chlororganische Pestizide).<br />

3.4 Abbau: Es wurde festgestellt, daß einige Pestizide einen signifikanten Abbau<br />

zeigen, wenn die <strong>Extraktion</strong>shülsen bei Raumtemperatur gelagert werden. Um<br />

diesen Abbau zu minimieren, sollten Proben, die solche empfindlichen Stoffe enthalten,<br />

bis zur <strong>Extraktion</strong> im Gefrierschrank aufbewahrt <strong>und</strong> erst kurz vor der<br />

<strong>Extraktion</strong> in den Probengeber eingestellt werden.<br />

4. Umfassende Untersuchungen wurden auch im Bereich der Messung durchgeführt.<br />

Für viele Substanzen ist eine Kalibrierung nach dem Standardadditionsverfahren<br />

notwendig, da anderenfalls infolge der Matrixeinflüsse falsche Ergebnisse erzielt<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

7


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

werden. Für einige Verbindungen, deren gaschromatographische Bestimmung<br />

Schwierigkeiten bereitet, wurden einfach durchzuführende Derivatisierungsmethoden<br />

entwickelt, die direkt nach der SFE-<strong>Extraktion</strong> in den Vorlagegefäßen durchgeführt<br />

werden können (Bsp. N-Methyl-Carbamate, Carbendazim, Thiabendazol, Organo-<br />

Zinn-Verbindungen).<br />

5. Im Bereich der Bedarfsgegenstände wurden Methoden zur <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong><br />

Pentachlorphenol aus Holz- <strong>und</strong> Stoffproben sowie <strong>von</strong> Di-Isopropyl-Naphthalin aus<br />

Recycling-Papier entwickelt. Desweiteren wurden Additive mit antioxidativer Wirkung<br />

aus Kunststoffen extrahiert, <strong>und</strong> dabei mit herkömmlichen Methoden vergleichbare<br />

Ergebnisse erzielt.<br />

Konsequenz für die Praxis<br />

Die erarbeiteten Methoden wurden noch während der Forschungsarbeiten in der Praxis<br />

der amtlichen Lebensmittelüberwachung erprobt <strong>und</strong> eingesetzt. Verschiedene<br />

Pestizide, die bisher routinemäßig nicht erfaßt wurden, konnten somit als Rückstände in<br />

<strong>Lebensmitteln</strong> festgestellt werden. Mit SFE-Methoden wurde 1996 <strong>und</strong> 97 erstmalig in<br />

größerem Umfang auf Rückstände der Carbendazim-Gruppe in Obst <strong>und</strong> Gemüse <strong>und</strong><br />

auf Rückstände an 2,4-D in Zitrusfrüchten untersucht. Damit wurde ein wichtiger Beitrag<br />

zur Beschreibung der Rückstandssituation dieser Stoffe geleistet.<br />

Die erarbeiteten Multimethoden erfordern einen geringen Arbeitsaufwand <strong>und</strong><br />

ermöglichen einen hohen Probendurchsatz. Daher bietet sich die Möglichkeit die SFE<br />

für routinemäßige Pestizidrückstandsuntersuchungen z.B. für Monitoringprogramme<br />

einzusetzen.<br />

Den durchgeführten Untersuchungen zufolge kann die SFE auch im Bereich der<br />

Bedarfsgegenständeanalytik sehr erfolgreich eingesetzt werden, wie am Beispiel <strong>von</strong><br />

PCP in Holz <strong>und</strong> Di-Isopropyl-Naphthalin in Papier gezeigt wurde.<br />

Bisherige Veröffentlichungen:<br />

• Bestimmung <strong>von</strong> Carbendazim, Benomyl, Thiophanat-Methyl <strong>und</strong> 2,4-D in pflanzlichen<br />

Proben nach <strong>Extraktion</strong> mit überkritischem Kohlendioxid<br />

Lebensmittelchemie 52 (1998) 13 <strong>und</strong> Lebensmittelchemie 52 (1998) 74<br />

• Analysis of Carbendazim/Benomyl, Thiophanate Methyl and 2,4-D in Fruits and<br />

Vegetables after Supercritical Fluid Extraction<br />

Journal of Chromatography A 825 (1998) 45-54<br />

• Analysis of Several N-Methyl-O-Aryl-Carbamates in Fruits and Vegetables after<br />

Supercritical Fluid Extraction (SFE)<br />

9th IUPAC International Congress - Pesticide Chemistry, Books of Abstracts, Volume<br />

II<br />

• Analysis of Pesticide Residues in Fruits and Vegetables by SFE and GC-MSD / LC-<br />

MSD<br />

Tagungsband Int. SFE/SFC/XSE-Forum, Siegen 1998<br />

Schlagworte: SFE, Rückstandsanalytik, Lebensmittel, Bedarfsgegenstände<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

8


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

1.1 ZIELSETZUNG<br />

1. EINLEITUNG<br />

Erste Versuche mit der SFE an der CLUA Stuttgart Anfang 1995 [4], sowie einzelne<br />

Veröffentlichungen [1,2] ließen die vielfältigen Möglichkeiten, die die SFE im Bereich<br />

der Lebensmittelanalytik <strong>und</strong> insbesondere der Rückstandsanalytik bietet, vermuten.<br />

Um diese potentiellen Möglichkeiten zu konkretisieren, wurde im Frühsommer 1995 ein<br />

Antrag auf Forschungsmittel mit dem Titel:<br />

„<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem<br />

Kohlendioxid zur Bestimmung <strong>von</strong> Pflanzenbehandlungsmitteln <strong>und</strong><br />

anderen Bestandteilen“<br />

gestellt.<br />

Im Juli 1995 wurde der Antrag genehmigt:<br />

Die Chemische Landesuntersuchungsanstalt Stuttgart wird gebeten, ein<br />

Forschungsprojekt zur Überprüfung der Anwendbarkeit der „<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong><br />

<strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem Kohlendioxid<br />

zur Bestimmung <strong>von</strong> Pflanzenbehandlungsmitteln <strong>und</strong> anderen Bestandteilen“<br />

durchzuführen. Im Rahmen dieses Projekts soll in einer wissenschaftlichen Arbeit<br />

untersucht werden, inwieweit die <strong>Extraktion</strong> mit überkritischem Kohlendioxid in der<br />

Praxis der Untersuchungen im Rahmen der Lebensmittelüberwachung eingesetzt<br />

werden kann, um<br />

• umweltbelastende Lösungmittel zu vermeiden,<br />

• durch Automatisierung Einsparungen zur erzielen,<br />

• Stoffe aus <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> zu extrahieren.<br />

1.2 APPARATIVE VORAUSSETZUNGEN<br />

Für die Durchführung der SFE-<strong>Extraktion</strong>en stand ein automatisiertes Gerät der Fa.<br />

HP (7680T) zur Verfügung. Im Verlauf des Projektes stellte die Fa. ISCO einen<br />

weiteren Extraktor zur Verfügung. Zur Bestimmung standen Gaschromatographen<br />

mit verschiedenen Detektortypen sowie ein HPLC-DAD zur Verfügung. Gegen Ende<br />

des Projektes war es möglich einige Messungen mit einem LC-MSD bei der Fa. HP<br />

durchzuführen.<br />

1.3 SFE ALS ALTERNATIVE ZU HERKÖMMLICHEN EXTRAKTIONSVERFAHREN<br />

Seit einigen Jahren werden <strong>von</strong> verschiedenen Herstellern Geräte angeboten, die eine<br />

<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Proben mit überkritischem Kohlendioxid im analytischen Maßstab<br />

ermöglichen. Die günstigen physikalischen <strong>und</strong> physikalisch-chemischen Eigenschaften<br />

des überkritischen Kohlendioxids machen es möglich, <strong>Extraktion</strong>en schnell <strong>und</strong> selektiv<br />

durchzuführen. Die SFE (Supercritical Fluid Extraction) entwickelt sich damit zu einer<br />

attraktiven Alternative zu herkömmlichen <strong>Extraktion</strong>smethoden.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

9


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Herkömmliche Lösungsmittel-<strong>Extraktion</strong>en liefern in der Regel stark mit Matrixbestandteilen<br />

verunreinigte Extrakte. Daher ist oft, vor der Bestimmung an einem<br />

chromatographischen System, eine aufwendige Reinigung der Extrakte erforderlich.<br />

Dies ist stets mit einem hohen Arbeits-, Zeit- <strong>und</strong> Kostenaufwand verb<strong>und</strong>en. Im<br />

Gegensatz dazu liefert die SFE Extrakte, die in der Regel ohne weiteres für<br />

chromatographische Bestimmungen eingesetzt werden können. Im Vergleich zu den<br />

herkömmlichen Methoden liegen die Vorteile der SFE vor allem im hohen Probendurchsatz,<br />

sowie bei der Einsparung <strong>von</strong> Lösungsmitteln <strong>und</strong> Personalkosten. Die<br />

Probenaufarbeitung ist weitgehend automatisiert <strong>und</strong> erfordert, im Gegensatz zu den<br />

herkömmlichen Aufarbeitungsmethoden, nur wenig manuelle Arbeitsschritte. Dies<br />

erleichtert die Dokumentation des Analysengangs <strong>und</strong> dürfte zudem zu einer Verbesserung<br />

der Vergleichbarkeit zwischen Laboratorien führen. Der extrem geringe<br />

Lösungsmittelbedarf macht die SFE auch unter dem Aspekt des Umweltschutzes<br />

interessant.<br />

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<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

2.1 EINFÜHRUNG IN DIE SFE<br />

2. DAS EXTRAKTIONSVERFAHREN<br />

SFE (Supercritical Fluid <strong>Extraktion</strong>) ist eine <strong>Extraktion</strong>sverfahren, bei dem die zu<br />

untersuchenden Proben unter Einsatz eines überkritischen Fluids (meist Kohlendioxid,<br />

CO2) als <strong>Extraktion</strong>smittel extrahiert werden.<br />

Als überkritische Fluide werden Substanzen im überkritischen Zustand bezeichnet.<br />

Dieser Zustand kann erreicht werden, wenn beide kritische Daten (kritische Temperatur<br />

<strong>und</strong> kritischer Druck) gleichzeitig überschritten werden. Beim Kohlendioxid liegt<br />

beispielsweise die kritische Temperatur bei 31,1 °C <strong>und</strong> der kritische Druck bei 73,7<br />

bar.<br />

Überkritische Fluide sind weder Gase noch Flüssigkeiten. Ihre physikalischen <strong>und</strong><br />

physikalisch-chemischen Eigenschaften können sowohl mit denen <strong>von</strong> Gasen als auch<br />

mit denen <strong>von</strong> Flüssigkeiten verglichen werden. Aufgr<strong>und</strong> ihrer hohen Dichte besitzen<br />

überkritische Fluide ähnlich gute Solvenseigenschaften (Löseeigenschaften) wie<br />

Flüssigkeiten. Geringe Viskositäten <strong>und</strong> hohe Diffusionskraft verleihen überkritischen<br />

Fluiden für <strong>Extraktion</strong>en günstige gasähnliche Transporteigenschaften (Mobilität). Wie<br />

Gase haben überkritische Fluide ein gutes Kompressionsverhalten. Durch Änderungen<br />

des Druckes <strong>und</strong> der Temperatur kann die Dichte, <strong>und</strong> somit das damit verb<strong>und</strong>ene<br />

Lösungsvermögen, über weite Bereiche variiert werden.<br />

<strong>Extraktion</strong>en mit überkritischen Fluiden werden schon seit längerer Zeit großtechnisch<br />

betrieben. Einige Beispiele hierfür sind die Entkoffeinierung <strong>von</strong> Kaffee, die schonende<br />

<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> ätherischen Ölen, die Reinigung <strong>von</strong> Medikament-Präparaten, die<br />

<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Hopfen, die Entölung <strong>von</strong> Lecithin, die <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Erdölprodukten<br />

<strong>und</strong> anderes mehr [20]. Milde <strong>und</strong> selektive <strong>Extraktion</strong>sbedingungen führen zu reineren<br />

<strong>und</strong> qualitativ höherwertigen Extrakten als bei den herkömmlichen Verfahren. Dies<br />

macht die SFE auch für den Einsatz im analytischen Bereich interessant.<br />

Seit einigen Jahren bieten verschiedene Hersteller SFE-<strong>Extraktion</strong>sgeräte an, die für<br />

analytische Zwecke geeignet sind.<br />

Ähnlich wie bei <strong>Extraktion</strong>en mit Flüssigkeiten (Soxhlet) wird die Probe in eine Hülse<br />

gebracht <strong>und</strong> mit dem <strong>Extraktion</strong>smittel (hier das Fluid) extrahiert. Da im Unterschied zu<br />

den klassischen <strong>Extraktion</strong>en mit Flüssigkeiten unter relativ hohen Drucken gearbeitet<br />

wird, muß die zu extrahierende Probe in eine druckfeste Spezialhülse (mit einer HPLC-<br />

Säule vergleichbar) gebracht werden.<br />

Das mit Extrakten aus der Probe beladene Fluid wird an einer speziellen Vorrichtung<br />

(Restriktor) schlagartig auf Atmosphärendruck gebracht. Das Kohlendioxid wird<br />

gasförmig <strong>und</strong> entweicht <strong>und</strong> die Extrakte schlagen sich auf einer gekühlten Falle<br />

nieder. Mit einem flüssigen Lösungsmittel werden die Extrakte <strong>von</strong> der Falle in ein<br />

Vorlagegefäß eluiert. Bei einigen Geräten taucht der Restriktor direkt in eine Lösungs-<br />

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<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

mittelvorlage ein. Die auf diese Weise erhaltene extrakthaltige Lösung kann meist direkt<br />

zur chromatographischen Bestimmung eingesetzt werden.<br />

Das analytische Laboratorium <strong>von</strong> heute steht unter ständigem Druck, seinen Probendurchsatz<br />

zu vergrößern, seine Betriebskosten zu senken <strong>und</strong> anfallende Abfälle zu<br />

reduzieren. Die Zuverlässigkeit, Exaktheit <strong>und</strong> Reproduzierbarkeit der analytischen<br />

Methoden muß dabei erhalten bleiben oder sogar verbessert werden.<br />

In der Vergangenheit wurde, sowohl seitens der Forschung als auch der Anwender in<br />

die Automatisierung <strong>und</strong> Verbesserung chromatographischer Trennmöglichkeiten,<br />

sowie in die Verbesserung der Empfindlichkeit <strong>und</strong> der Auswertungsmethoden <strong>von</strong><br />

Detektorsignalen viel investiert. Zur Optimierung <strong>und</strong> Automatisierung der Probenaufbereitung<br />

wurde bisher jedoch nur wenig geleistet.<br />

Ein Blick auf die heute angewendeten Methoden in der Rückstandsanalytik zeigt aber,<br />

daß der größte Arbeitsaufwand <strong>und</strong> der größte Materialverbrauch gerade in diesem<br />

Bereich (Probenaufbereitung) liegt. Klassische <strong>Extraktion</strong>smethoden zeichnen sich<br />

durch eine Vielzahl schwieriger manueller Arbeitsschritte aus (z.B. Zweiphasenextraktionen,<br />

Einengen <strong>von</strong> Lösungen mit Rotationsverdampfern, säulenchromatographische<br />

Reinigungen). Solche Arbeitsschritte bei der Probenaufarbeitung sind in der<br />

Regel sehr aufwendig <strong>und</strong> müssen, um den heutigen Anforderungen zu entsprechen,<br />

durch zuverlässigere automatisierbare Prozesse ersetzt werden.<br />

Die SFE entwickelt sich zu einer interessanten Alternative zu den klassischen<br />

<strong>Extraktion</strong>sverfahren, die mit organischen Lösungsmitteln arbeiten. Bei der SFE sind<br />

viele Arbeitsschritte automatisiert worden (<strong>Extraktion</strong>, z.T. auch Clean-up, Aufnahme<br />

der Extrakte in das für die chromatographischen Prozesse geeignete Lösungsmittel),<br />

wodurch sich erhebliche Raum-, Arbeitszeit- <strong>und</strong> Kostenersparnisse ergeben [5,6,15].<br />

Mit Hilfe der SFE kann auch der hohe Verbrauch an Lösungsmitteln, der derzeit bei der<br />

Rückstandsanalytik anfällt, reduziert werden. Zum einem wird die Exposition des<br />

Laborpersonals mit den oft ges<strong>und</strong>heitlich bedenklichen Lösungsmitteln vermieten, zum<br />

anderen werden die Probleme, die bei der umweltgerechten Lösungsmittel-Entsorgung<br />

bzw. der Rückgewinnung auftreten, minimiert. Dies macht die SFE auch unter dem<br />

Aspekt des Umweltschutzes attraktiv [12].<br />

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<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

2.2 PHYSIKALISCHE GRUNDLAGEN DES VERFAHRENS<br />

Stoffe können in verschiedenen Aggregatszuständen vorliegen: gasförmig, flüssig, fest<br />

<strong>und</strong> überkritisch. Diese Zustände können durch Variation <strong>von</strong> Druck <strong>und</strong> Temperatur<br />

ineinander übergehen, siehe Abb. 2.2-1 [21].<br />

Abb. 2.2-1: Phasendiagramm <strong>von</strong> Kohlendioxid<br />

Druck [P]<br />

Pc=7,3 MPa<br />

1= Schmelzkurve<br />

2= Sublimationskurve<br />

3= Verdampfungskurve<br />

fest<br />

2<br />

1<br />

flüssig<br />

3<br />

gasförmig<br />

überkritisches<br />

Fluid<br />

kritischer<br />

Punkt<br />

Tc=31,1°C Temperatur [T]<br />

Entlang der Verdampfungskurve koexistieren der flüssige <strong>und</strong> der gasförmige Zustand.<br />

Bewegt man sich entlang dieser Kurve, beobachtet man für CO2 bei einem Druck <strong>von</strong><br />

73,7 bar (kritischer Druck) <strong>und</strong> einer Temperatur <strong>von</strong> 31,1°C (kritische Temperatur) das<br />

Verschwinden der Phasengrenze. Bei diesem Punkt erreichen die beiden Phasen<br />

„flüssig“ <strong>und</strong> „gasförmig“ die gleiche Dichte <strong>und</strong> vermischen sich zu einer einzigen<br />

Phase. Dieser Punkt, der im P/T-Diagramm das Ende der Verdampfungskurve darstellt,<br />

wird als kritischer Punkt bezeichnet. Der kritische Druck <strong>und</strong> die kritische Temperatur<br />

sind charakteristische Stoffkonstanten. Zur Erreichung des überkritischen Zustandes<br />

müssen beide Größen (sowohl die kritische Temperatur als auch der kritische Druck)<br />

überschritten werden. Eine Substanz im überkritischen Zustand ist weder flüssig noch<br />

gasförmig, sie wird im allgemeinen als überkritisches Fluid bezeichnet. Temperatur- <strong>und</strong><br />

Druck-Veränderungen überhalb der kritischen Daten führen lediglich zu Änderungen der<br />

Dichte, können also nicht wie bei Flüssigkeiten <strong>und</strong> Gasen zu Phasenumwandlungen<br />

führen.<br />

Überkritische Fluide zeigen interessante physikalische <strong>und</strong> physikalisch-chemische<br />

Eigenschaften (siehe Tab. 2.2-1). Die Dichte überkritischer Fluide ist größenordnungsmäßig<br />

vergleichbar mit der <strong>von</strong> flüssigen Lösungsmitteln. Sie zeichnen sich<br />

deshalb durch ein hohes Lösungsvermögen aus, das teils vergleichbar, teils größer ist<br />

als das <strong>von</strong> flüssigen Lösungsmitteln. Andererseits haben überkritische Fluide im<br />

Vergleich zu Flüssigkeiten viel höhere Diffusionskoeffizienten <strong>und</strong> niedrigere<br />

Viskositäten. Das Penetrationsvermögen <strong>und</strong> die Transporteigenschaften (Mobilität) <strong>von</strong><br />

überkritischen Fluiden sind somit in etwa vergleichbar mit denen <strong>von</strong> Gasen. Diese<br />

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<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Eigenschaften machen überkritischen Fluide als <strong>Extraktion</strong>smittel außerordentlich<br />

interessant.<br />

Tab. 2.2-1: Gegenüberstellung der physikalischen Eigenschaften [21].<br />

Aggregatszustände Dichte Diffusionskoeffizient<br />

(g/ml)<br />

(cm 2 Viskosität<br />

/s)<br />

(Ns/m 2 )<br />

Gase 10 -4 - 10 -3 ca. 10 -1 ca. 10 -4<br />

überkritische Fluide 0,1 - 1 10 -3 - 10 -4 10 -3 - 10 -4<br />

Flüssigkeiten 0,6 - 1,4 ca. 10 -5 ca. 10 -2<br />

Bisher wurden bereits einige Fluide für die SFE erprobt: Kohlendioxid, Ammoniak,<br />

Stickstoffmonoxid, Pentan, Freone <strong>und</strong> andere mehr. Von diesen hat sich jedoch nur<br />

das überkritische Kohlendioxid für den Routineeinsatz im Laboratorium bewährt.<br />

Kohlendioxid bietet einige Vorteile: es ist leicht in den überkritischen Zustand überführbar<br />

(vgl. Tab. 2.2-2), zeigt ein recht gutes Lösungsvermögen <strong>und</strong> wird in einem<br />

hohen Reinheitsgrad zu einem relativ günstigen Preis angeboten. Es ist einfach zu<br />

handhaben, ungiftig <strong>und</strong> umweltfre<strong>und</strong>lich. Kohlendioxid ist außerdem im Gegensatz zu<br />

Wasser oder Ammoniak chemisch inert.<br />

Tab. 2.2-2: Kritische Daten verschiedener Stoffe [22]<br />

Fluid kritische Temperatur Tc (°C) kritischer Druck Pc (MPa)<br />

CHF3 25,9 4,83<br />

CClF3 28,8 3,92<br />

CO2 31,1 7,37<br />

N2O 36,4 7,24<br />

NH3 132,2 11,27<br />

n-Pentan 196,6 4,22<br />

CH3OH 239,4 8,09<br />

H2O 374,1 22,04<br />

2.3 MÖGLICHKEITEN ZUR OPTIMIERUNG VON SFE-EXTRAKTIONEN<br />

Das Lösungsvermögen ist <strong>von</strong> der Dichte des Fluids abhängig. Diese kann durch<br />

Variation des Druckes <strong>und</strong> der Temperatur eingestellt werden. Bei höheren Dichten<br />

werden die <strong>Extraktion</strong>seigenschaften verbessert.<br />

Je dichter ein überkritisches Fluid ist, desto effektiver kann es die elektrostatischen<br />

Wechselwirkungen zwischen Ionen abschirmen <strong>und</strong> abschwächen. Dies erklärt die<br />

bessere Löslichkeit <strong>von</strong> polaren Substanzen bei hohen Dichten.<br />

Da überkritisches Kohlendioxid relativ unpolare Eigenschaften besitzt (je nach Dichte in<br />

der Größenordnung <strong>von</strong> Hexan bis Dichlormethan) kann es gut unpolare bis<br />

mittelpolare Substanzen lösen. Große polare Moleküle wie Zucker oder Proteine lösen<br />

sich kaum <strong>und</strong> sind daher nicht extrahierbar.<br />

Eine zentrale Rolle bei SFE spielen die Einflüsse der Matrix. Das <strong>Extraktion</strong>smedium<br />

muß die zu extrahierenden Substanzen nicht nur lösen können, es muß auch die<br />

Wechselwirkungen zwischen den aktiven Stellen der Matrix <strong>und</strong> den Analyten<br />

überwinden können.<br />

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<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Im folgenden werden die Einflüsse einiger wichtiger Parameter auf die <strong>Extraktion</strong> näher<br />

erläutert.<br />

2.3.1 Die Rolle der Temperatur<br />

Die <strong>Extraktion</strong>skinetik wird im wesentlichen durch Diffusions- <strong>und</strong> Desorptionsprozesse<br />

limitiert. Bei höheren Temperaturen ist die <strong>Extraktion</strong>skinetik stark verbessert. Moleküle<br />

besitzen eine höhere kinetische Energie (Mobilität) <strong>und</strong> intermolekulare<br />

Wechselwirkungen können besser überw<strong>und</strong>en werden, dadurch werden Diffusions-<br />

<strong>und</strong> Desorptionsprozesse erleichtert <strong>und</strong> die <strong>Extraktion</strong>szeiten verkürzt. Allerdings<br />

werden, um die Dichte hoch zu halten <strong>und</strong> damit die Lösefähigkeit aufrecht zu erhalten,<br />

höhere Drücke benötigt. Die einsetzbare Temperatur ist somit vom maximal einsetzbaren<br />

Druck des Fluidextraktors abhängig. Meist sind aber die thermische Stabilität der<br />

zu extrahierenden Substanzen oder die Menge der mitextrahierbaren Begleitstoffe die<br />

Faktoren, die die <strong>Extraktion</strong>stemperatur limitieren.<br />

2.3.2 Die Rolle des Druckes<br />

Bei gleichbleibender Temperatur führt eine Erhöhung des Druckes zu einer Dichteerhöhung<br />

<strong>und</strong> somit auch zu einer Verbesserung der Lösungseigenschaften des Fluids.<br />

Bei höheren Dichten verliert das überkritische Kohlendioxid allerdings an Diffusionskraft<br />

<strong>und</strong> wird viskoser, wodurch die <strong>Extraktion</strong>skinetik verschlechtert wird.<br />

Es wird ersichtlich, daß hier viele gegenläufige Faktoren eine Rolle spielen. Diese<br />

müssen für das jeweilige Problem richtig abgewogen werden, um optimale Ergebnisse<br />

zu erzielen.<br />

2.3.3 Die Rolle der Matrix<br />

Eine zentrale Rolle bei <strong>Extraktion</strong>en mit überkritischem Kohlendioxid spielt die Matrix.<br />

Wechselwirkungen zwischen dem Analyten <strong>und</strong> der Matrix erschweren die <strong>Extraktion</strong><br />

<strong>und</strong> erfordern schärfere <strong>Extraktion</strong>sbedingungen. Die Teilchengröße <strong>und</strong> Oberflächenbeschaffenheit<br />

der zu extrahierenden Partikel spielt auch eine Rolle. In den Partikeln<br />

eingeschlossene, <strong>und</strong> dadurch schwer zugängliche Analyten erfordern höhere<br />

<strong>Extraktion</strong>szeiten <strong>und</strong> eine starke Diffusionskraft des Fluids.<br />

Ein zu hoher Gehalt an mobilem Wasser in der Matrix bringt Schwierigkeiten (auch<br />

gerätetechnischer Art, siehe Kap. 3.1.3.2.) mit sich. Das Wasser kann jedoch durch den<br />

Einsatz <strong>von</strong> Adsorbentien mit großer Oberfläche wie z.B. Diatomeenerden physikalisch<br />

geb<strong>und</strong>en werden, wodurch sich gleichzeitig die zur <strong>Extraktion</strong> bestimmten Stoffe leicht<br />

zugänglich über eine große Oberfläche verteilen.<br />

Die Wechselwirkungen zwischen dem Analyten <strong>und</strong> der Matrix können durch den<br />

Einsatz geringer Mengen an Lösungsmitteln (sog. Modifiern) geschwächt werden.<br />

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<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

2.3.4 Die Rolle <strong>von</strong> Modifiern<br />

Modifier sind in der Regel organische Lösungsmittel (z.B. Methanol, Acetonitril, Aceton),<br />

die entweder direkt der Matrix oder auch in einer Mischkammer dem überkritischen<br />

Fluid zugemischt werden.<br />

Durch Modifier kann die Lösungskraft des Fluids beeinflußt werden, z.B. hat ein mit<br />

Methanol modifiziertes CO2-Fluid eine größere Polarität als reines CO2-Fluid. Polarere<br />

Substanzen werden dadurch besser solvatisiert [8].<br />

Die Wirkung <strong>von</strong> Modifiern beschränkt sich nicht nur auf die Verbesserung der<br />

Löslichkeit <strong>von</strong> Verbindungen, sondern auch auf die Überwindung <strong>von</strong> Wechselwirkungen<br />

zwischen Matrix <strong>und</strong> Analyten. Dies ist insbesondere im Bereich der<br />

Spurenanalytik interessant, da hier die Löslichkeit meist nicht der begrenzende Faktor<br />

ist. Modifier wie Methanol <strong>und</strong> Wasser können aktive polare Zentren der Matrix, die mit<br />

polaren Molekülen wechselwirken können, maskieren, wodurch die <strong>Extraktion</strong> dieser<br />

Stoffe erleichtert wird.<br />

Da durch den Zusatz <strong>von</strong> Modifiern die Löslichkeit <strong>von</strong> polaren Stoffen erhöht wird,<br />

werden Extrakte erhalten, die in der Regel mit erheblich mehr störenden Matrixkomponenten<br />

belastet sind, die <strong>Extraktion</strong>sselektivität nimmt demnach ab [1]. Viele<br />

Autoren, die Untersuchungen zu diesem Thema durchgeführt haben, berichten, daß ein<br />

Zusatz <strong>von</strong> Modifiern oft keine Verbesserung der <strong>Extraktion</strong>sausbeuten bewirkt [1].<br />

2.4 AUFBAU EINES SFE-EXTRAKTORS<br />

Allen SFE-Geräten gemeinsam ist eine Pumpe zum Verdichten des Kohlendioxids, eine<br />

beheizbare <strong>Extraktion</strong>skammer in der die Probe extrahiert wird, ein für die Expansion<br />

des Fluids zuständiger, sog. Restriktor <strong>und</strong> eine Vorrichtung zur Sammlung der<br />

Extrakte (Falle)(siehe Abb. 2.2-2).<br />

Die wesentlichen Unterschiede zwischen Geräten verschiedener Anbieter liegen in der<br />

Art der Falle (fest oder flüssig) <strong>und</strong> in der Art der Fluid-Expansion (Restriktor) aber auch<br />

in der Höhe des maximal einsetzbaren Druckes.<br />

Die <strong>Extraktion</strong>shülsen (thimbles) sind druckfeste Behälter, in welche die Proben<br />

eingefüllt werden. Sie bestehen aus einem Edelstahlrohr, das mit zwei speziellen<br />

Schraubkappen verschlossen wird. Diese Kappen sind mit einem Ventil versehen durch<br />

das das überkritische Fluid in die Hülsen geleitet wird. Bei Geräten, bei denen in der<br />

Hülse <strong>und</strong> dem sie umgebenden Raum (<strong>Extraktion</strong>skammer) der gleiche Druck<br />

vorherrscht (z.B. Extraktoren der Fa. ISCO) können wesentlich kostengünstigere<br />

Hülsen aus Kunststoffmaterial verwendet werden.<br />

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<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 2.2-2: Schematischer Aufbau eines SFE-Extraktors mit Festphasenfalle<br />

CO2<br />

Modifier<br />

Thimble<br />

Nozzle<br />

ODS<br />

Solvent<br />

Vial<br />

Der Restriktor (nozzle) ist das Kernstück des Extraktors. Hierbei handelt sich um eine<br />

Kapillare oder ein Ventil durch die/das das überkritische Fluid entweicht. Er ist<br />

beheizbar, um die bei der Expansion des Kohlendioxids entstehende Kälte (Joule-<br />

Thompson-Effekt) zu kompensieren <strong>und</strong> somit Kondensationen oder das Gefrieren <strong>von</strong><br />

Stoffen (z.B. Fett oder Wasser) <strong>und</strong> damit Verstopfungen zu vermeiden. Es gibt<br />

statische <strong>und</strong> variable Restriktoren. Der Vorteil variabler Restriktoren ist, daß sie den<br />

Gasfluß unabhängig vom eingesetzten <strong>Extraktion</strong>sdruck regeln können.<br />

Die Fallen (traps) verschiedener Geräte zeigen ebenfalls prinzipielle Unterschiede. Bei<br />

der On-line-SFE, bei der dem <strong>Extraktion</strong>svorgang direkt ein chromatographischer<br />

Vorgang nachgeschaltet ist, werden die Extrakte am Säulenanfang der chromatographischen<br />

Säule aufgefangen [23]. Bei flüssigen Fallen werden die Substanzen direkt<br />

in ein Vorlagegefäß, das ein Lösungsmittel enthält, geleitet. Dies kann bei der<br />

<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> leichtflüchtigen Stoffen nützlich sein. Bei den Festphasenfallen werden<br />

die Extrakte in einer gekühlten Festphasenfalle mit großer Oberfläche aufgefangen. Die<br />

Extrakte werden dann <strong>von</strong> der Falle mit einem organischen Lösungsmittel in eine<br />

Vorlage eluiert. Der Vorteil dieser Fallen besteht darin, daß man durch gezielte Wahl<br />

des Festphasenmaterials <strong>und</strong> der Elutionsmittel eine Fraktionierung der Extrakte <strong>und</strong><br />

somit einen zusätzlichen Reinigungseffekt erzielen kann.<br />

2.5 ABLAUF EINER EXTRAKTION<br />

Das Kohlendioxid wird mit Hilfe einer Pumpe <strong>und</strong> einer Heizeinrichtung auf den nötigen<br />

Druck <strong>und</strong> die nötige Temperatur gebracht. In überkritischem Zustand gelangt es dann<br />

in die beheizbare <strong>Extraktion</strong>szelle, in der sich die Probe befindet. Hier findet die<br />

<strong>Extraktion</strong> statt.<br />

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<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Es wird zwischen statischer <strong>und</strong> dynamischer <strong>Extraktion</strong> unterschieden. Bei der<br />

statischen <strong>Extraktion</strong> findet kein Fluß statt. Die Probenmatrix wird mit dem <strong>Extraktion</strong>sfluid<br />

unter bestimmten Bedingungen (Druck, Temperatur) durchdrängt<br />

(„eingeweicht“). Bei der dynamischen <strong>Extraktion</strong> findet ein Fluß statt. Die Probe wird<br />

<strong>von</strong> dem Fluid unter vordefinierten Bedingungen durchflossen <strong>und</strong> somit extrahiert.<br />

Nachdem das Fluid die <strong>Extraktion</strong>skammer verlassen hat, erfolgt im Restriktor eine<br />

Expansion, das überkritische Fluid wird in den gasförmigen Aggregatzustand überführt<br />

<strong>und</strong> verliert dabei seine Lösekraft. Somit kommt es zu einer Präzipitation der Extrakte<br />

im Restriktor selbst <strong>und</strong> in der nachgeschalteten Falle. Bei Festphasenfallen werden die<br />

ausgefallenen Substanzen mit einem Lösungsmittel (etwa 1-1,5 ml) in eine Vorlage<br />

eluiert. Dabei wird auch der Restriktor mit durchflossen. Hierbei werden sowohl die<br />

Falle als auch der Restriktor beheizt. Die Temperatur darf hier nicht zu hoch sein, um zu<br />

vermeiden, daß thermolabile Komponenten zersetzt werden oder daß das<br />

Lösungsmittel bereits verdampft. Es folgt eine Nachreinigung des Restriktors <strong>und</strong> der<br />

Falle mit einer größeren Menge an Lösungsmittel (ca. 5 ml). Das Gerät ist dann für<br />

einen erneuten <strong>Extraktion</strong>svorgang bereit.<br />

2.6 ENTWICKLUNG EINER SFE-METHODE<br />

Bei der Entwicklung einer SFE-Methode ist die Optimierung mehrerer Parameter,<br />

sowohl im Bereich der Geräteeinstellung, als auch im Bereich der Probenvorbehandlung<br />

notwendig.<br />

Die Extrahierbarkeit <strong>von</strong> Stoffen aus der Matrix ist <strong>von</strong> vielen, oft gegenläufigen<br />

Faktoren abhängig, die gegeneinander abgewogen werden müssen.<br />

2.6.1 Probenvorbereitung<br />

Die Probenvorbereitung muß sich vor allem nach der zu extrahierenden Matrix, aber<br />

auch nach den zu extrahierenden Analyten richten. Es muß so verfahren werden, daß<br />

bei möglichst wenig Verlusten eine für die Gesamtprobe repräsentative <strong>und</strong> zudem<br />

leicht extrahierbare Teilprobe erhalten wird.<br />

Bei Proben mit hohem Gehalt an mobilem Wasser muß dieses entweder entfernt oder<br />

ausreichend immobilisiert werden.<br />

Im folgenden werden beispielhaft für verschiedenen Fragestellungen mögliche<br />

Probenvorbereitungen aufgelistet:<br />

• Pestizide <strong>und</strong> andere organische Kontaminanten aus Wasserproben können an<br />

einer Festphasenfalle (z.B. RP-C18) adsorbiert werden. Diese Falle kann dann<br />

mittels SFE extrahiert werden.<br />

• Andere flüssige Proben, in denen höhere Rückstandskonzentrationen (als in Wasser)<br />

zu erwarten sind, wie z.B. Säfte oder Wein können mit einem Adsorbens (z.B.<br />

Hydromatrix) vermengt werden <strong>und</strong> dann mit der SFE extrahiert werden.<br />

• Obst <strong>und</strong> Gemüseproben werden nach einer Zerkleinerung ebenfalls mit einem<br />

wasserbindenden Adsorbens versetzt.<br />

• Proben mit hohem Fettgehalt (z.B. Ölsamen, Schokolade, Öle) bereiten oft<br />

Schwierigkeiten bei der SFE. Große Mengen an mitextrahiertem Fett können zu<br />

Überladungen der Falle <strong>und</strong> zu Verstopfungen führen. Es besteht prinzipiell die<br />

Möglichkeit, das Fett durch gezielte Wahl der <strong>Extraktion</strong>sbedingungen <strong>von</strong> der Probe<br />

abzutrennen, um bei einer darauffolgenden <strong>Extraktion</strong> die erwünschten Stoffe<br />

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<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

selektiver zu erhalten (fraktionierte <strong>Extraktion</strong>). Bei diesem Verfahren muß jedoch<br />

meist mit Verlusten an Analyten gerechnet werden.<br />

• Halbflüssige <strong>und</strong> pasteuse Proben mit hohem Zuckergehalt (z.B. Honig) bereiten<br />

ebenfalls Schwierigkeiten, da die zu extrahierenden Analyten abgeschirmt werden<br />

können. Um eine möglichst optimale <strong>Extraktion</strong> zu gewährleisten, <strong>und</strong> die<br />

<strong>Extraktion</strong>soberfläche zu vergrößern müssen derartige Proben durch Vermengung<br />

z.B. mit Seesand oder Papier aufgelockert werden.<br />

• Trockene Proben (wie z.B. Mehle, Getreideerzeugnisse) müssen gegebenenfalls<br />

mit Modifiern (z.B. Wasser oder Methanol) angefeuchtet werden, um eine <strong>Extraktion</strong><br />

der Wirkstoffe zu erleichtern. Sehr fein zerkleinerte, pulverisierte Proben müssen vor<br />

der <strong>Extraktion</strong> aufgelockert werden (z.B. mit Seesand) um den Fluß des Fluids zu<br />

erleichtern.<br />

Eine wesentliche Rolle bei der <strong>Extraktion</strong> spielen auch die zu extrahierenden Analyten.<br />

Ist der Analyt wegen schlechter Löslichkeit im Fluid oder aufgr<strong>und</strong> <strong>von</strong><br />

Wechselwirkungen mit der Matrix nicht leicht extrahierbar, kann gegebenenfalls durch<br />

Zugabe <strong>von</strong> Modifiern in die <strong>Extraktion</strong>shülse die <strong>Extraktion</strong> verbessert werden.<br />

Gegebenenfalls besteht die Möglichkeit die Analyten direkt innerhalb der<br />

<strong>Extraktion</strong>shülse zu derivatisieren <strong>und</strong> sie dadurch in eine leichter extrahierbare Form<br />

zu überführen (in-situ-Derivatisierungen [13,14]).<br />

Eigene Untersuchungen zur Optimierung der Probenvorbereitung im Bereich der<br />

Pestizidanalytik werden in Kap. 3.1.3 dargestellt.<br />

2.6.2 Geräteeinstellungen - Optimierung der <strong>Extraktion</strong>sbedingungen<br />

Die theoretischen Überlegungen zur Optimierung <strong>von</strong> <strong>Extraktion</strong>sbedingungen sind in<br />

Kapitel 2.3 dargestellt. Das Verständnis der physikalischen <strong>und</strong> physikalischchemischen<br />

Zusammenhänge, die bei den <strong>Extraktion</strong>en eine Rolle spielen, ist zwar<br />

hilfreich bei der Entwicklung <strong>von</strong> <strong>Extraktion</strong>smethoden, da diese jedoch sehr komplex<br />

sind, spielt die Erfahrung eine genauso große Rolle. Die optimalen <strong>Extraktion</strong>sbedingungen<br />

für Stoffe aus komplexen Matrizes müssen daher oft experimentell<br />

ermittelt werden.<br />

Die wichtigsten Geräte-Parameter, die variiert werden können sind:<br />

1. <strong>Extraktion</strong>stemperatur, <strong>Extraktion</strong>sdruck (bzw. Dichte),<br />

2. <strong>Extraktion</strong>sflußrate,<br />

3. <strong>Extraktion</strong>szeit,<br />

4. Zumischung <strong>von</strong> Modifiern zum Fluid (auch direkt in die <strong>Extraktion</strong>shülse),<br />

5. Festphasenfalle (Material <strong>und</strong> Temperatureinstellung bei der <strong>Extraktion</strong>),<br />

6. Elutionsparameter nach der <strong>Extraktion</strong> (Wahl der Lösungsmittel,<br />

Temperatureinstellung <strong>von</strong> Festphasenfalle <strong>und</strong> Restriktor).<br />

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<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3. APPLIKATIONEN<br />

3.1 ANALYTIK VON PFLANZENSCHUTZMITTELRÜCKSTÄNDEN IN OBST UND<br />

GEMÜSE<br />

3.1.1 Einleitung<br />

Der Einsatz <strong>von</strong> Pflanzenschutzmitteln ist in der modernen Landwirtschaft nicht mehr<br />

wegzudenken. Gemäß Pflanzenschutzgesetz sind „ ... Pflanzenschutzmittel ... dazu<br />

bestimmt, Pflanzen oder Pflanzenerzeugnisse vor Schadorganismen oder Krankheiten<br />

zu schützen „ [34]. Weltweit sind schätzungsweise 500-600 verschiedene Wirkstoffe im<br />

Einsatz, die entsprechend ihrer Wirkung in verschiedene Gruppen eingeteilt werden<br />

können [92,89] (siehe Tab. 3.1.1-1).<br />

Tab. 3.1.1-1: Einteilung <strong>von</strong> Pflanzenschutzmitteln nach ihrer Wirkung<br />

Gruppe Wirkung Einige Vertreter<br />

Herbizide gegen Unkräuter Phenoxyalkancarbonsäuren, Triazine,<br />

Uronsäurederivate<br />

Fungizide gegen Pilze Dithiocarbamate, Benzimidazole, Triazole<br />

Insektizide gegen Insekten Carbamate, Pyrethroide,<br />

Organophosphorsäureester<br />

Synergisten potenzieren die Wirkung <strong>von</strong><br />

Insektiziden<br />

Piperonylbutoxid<br />

Akarizide gegen Milben Carbamate, Pyrethroide, Zinnorganische<br />

Verbindungen<br />

Nematizide gegen Nematoden Organophosphorsäureester<br />

Molluskizide gegen Schnecken Metaldehyd<br />

Rodentizide gegen Nagetiere<br />

Kumarinderivate<br />

Zu den Pflanzenschutzmitteln werden im allgemeinem auch Wachstumsregulatoren <strong>und</strong><br />

Keimhemmungsmittel gezählt.<br />

Die Anwendung <strong>von</strong> Pflanzenschutzmitteln ist gesetzlich geregelt. Ihre Zulassung in der<br />

B<strong>und</strong>esrepublik Deutschland erfolgt durch die Biologische B<strong>und</strong>esanstalt für Land- <strong>und</strong><br />

Forstwirtschaft (BBA). Eine Zulassung erfolgt nur dann, wenn „das Pflanzenschutzmittel<br />

bei bestimmungsgemäßer <strong>und</strong> sachgerechter Anwendung ... keine schädlichen<br />

Auswirkungen auf die Ges<strong>und</strong>heit <strong>von</strong> Mensch <strong>und</strong> Tier hat, die nach dem Stande der<br />

wissenschaftlichen Erkenntnisse nicht vertretbar sind“ [34].<br />

Mit der Zulassung wird die Anwendung geregelt <strong>und</strong> gegebenenfalls werden einzuhaltende<br />

Wartezeiten festgesetzt. Trotz Einhaltung der festgelegten Wartezeiten<br />

zwischen Einsatz der Pestizide <strong>und</strong> Ernte können noch Rückstände der Pflanzenschutzmittel<br />

im Endprodukt verbleiben. Zum Schutz der Verbraucher werden in der<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

20


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Rückstandshöchstmengenverordnung (RHmV) für alle Pflanzenschutzmittel maximal<br />

zulässige Gehalte (Höchstmengen) festgesetzt [34]. Die Einhaltung der festgelegten<br />

Höchstmengen muß durch geeignete Analysenmethoden kontrolliert werden. Dies ist<br />

Aufgabe der amtlichen Lebensmittelüberwachung. Darüber hinaus werden b<strong>und</strong>esweit<br />

im Rahmen des nationalen Monitoring-Programmes Daten zu Rückständen in<br />

<strong>Lebensmitteln</strong> gesammelt <strong>und</strong> ausgewertet, um u.a. zeitliche Trends festzustellen <strong>und</strong><br />

die Aufnahme <strong>von</strong> Pflanzenschutzmitteln durch den Verbraucher über die Nahrung<br />

abzuschätzen.<br />

Zur Analytik werden überwiegend Multimethoden eingesetzt, die eine große Anzahl an<br />

Wirkstoffen erfassen können [3]. Da sich Pflanzenschutzmittel in ihren Eigenschaften<br />

(z.B. Polarität) sehr stark unterscheiden, ist es jedoch nicht möglich alle Stoffe mit einer<br />

einzigen Methode zu erfassen. Zur Erfassung bestimmter Wirkstoffe oder<br />

Wirkstoffgruppen sind Einzelbestimmungs-Methoden erforderlich, da sie z.B. aufgr<strong>und</strong><br />

ihrer hohen Polarität oder geringen Stabilität nicht mit den Multimethoden erfaßbar sind.<br />

Die derzeit üblichen Multimethoden beinhalten folgende Arbeitsschritte: Zerkleinerung,<br />

<strong>Extraktion</strong>, Clean-up, ggf. Derivatisierung <strong>und</strong> Messung <strong>und</strong> sind in der Regel sehr<br />

arbeitsaufwendig [3].<br />

Pestizidrückstandslaboratorien stehen ständig vor neuen Aufgaben <strong>und</strong> Herausforderungen<br />

(neue Wirkstoffe, Qualitätssicherungsmaßnahmen, Absenkung der<br />

Nachweisempfindlichkeit, Monitoring-Programme). Deshalb besteht großes Interesse<br />

an schnellen, kostengünstigen <strong>und</strong> automatisierten Analysenverfahren, um die Analytik<br />

effizienter zu gestalten. Möglichkeiten hierzu bietet die SFE, die sich zur <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong><br />

mittel- bis unpolaren Pestiziden anbietet.<br />

Der Einsatz der SFE in der Pestizidanalytik würde viele Vorteile mit sich bringen, da die<br />

<strong>Extraktion</strong> automatisiert abläuft <strong>und</strong> durch eine selektive <strong>Extraktion</strong> auf eine Reinigung<br />

der Extrakte verzichten werden könnte. <strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong> Nachreinigung sind in der Regel<br />

die arbeitsintensivsten Schritte im Bereich der Rückstandsanalytik.<br />

Besonders attraktiv ist die Entwicklung <strong>von</strong> SFE-Multimethoden zur gleichzeitigen<br />

<strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong> Bestimmung <strong>von</strong> mehreren Pestiziden. Die Entwicklung <strong>von</strong> Methoden<br />

zur Bestimmung einzelner Pestizide oder Pestizidklassen ist jedoch ebenfalls sehr<br />

wichtig, da gerade in diesen Fällen die herkömmliche Analytik sehr arbeitsaufwendig ist<br />

<strong>und</strong> in der Praxis oft selten durchgeführt wird. Im Rahmen dieser Arbeit wurden eine<br />

SFE-Multimethode sowie verschiedene Einzelbestimmungsmethoden entwickelt.<br />

Eine Schlüsselstellung bei jeder Methodenentwicklung nehmen die Probenvorbereitung<br />

<strong>und</strong> die Messung ein.<br />

Die Sicherstellung einer ausreichend guten Meßgenauigkeit ist bei der Entwicklung<br />

analytischer Verfahren <strong>von</strong> hoher Priorität. Nur anhand zuverlässiger Meßergebnisse<br />

kann die Optimierung vorausgehender analytischen Teilschritte effektiv gestaltet<br />

werden.<br />

Durch die Optimierung der Probenvorbereitung wird gewährleistet, daß die zu untersuchenden<br />

Teilproben für die Gesamtprobe repräsentativ sind.<br />

Demnach sind diese beiden Arbeitsschritte bei der Entwicklung analytischer Methoden<br />

<strong>von</strong> großer Wichtigkeit <strong>und</strong> müssen vorrangig optimiert werden.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

21


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.2 Optimierung der Meßbedingungen<br />

3.1.2.1 Wahl des Einspritz- <strong>und</strong> Detektionsystems<br />

Als Bestimmungssystem wurde ein GC/MSD gewählt. GC/MSD-Systeme werden<br />

wegen ihrer vielfältigen Vorteile immer verbreiteter im Bereich der Rückstandsanalytik<br />

eingesetzt. MS-Detektoren bieten im Gegensatz zu den herkömmlich EC-, NP-, FP-<br />

Detektoren eine universelle <strong>und</strong> gleichzeitig sehr spezifische Detektionsmöglichkeit, je<br />

nach Modus. Durch die hohe Aussagekraft, der durch die Massenspektrometrie<br />

gelieferten Daten, wird die Unsicherheit bei der Identifizierung <strong>von</strong> Substanzen<br />

minimiert. Die im SIM-Modus, durch die gezielte Registrierung bestimmter Massen<br />

erreichbare, recht hohe Detektionsempfindlichkeit, genügt den Anforderungen der<br />

Lebensmittelanalytik in den allermeisten Fällen. Da die Messung mit Hilfe des GC/MSD<br />

besonders selektiv erfolgen kann, kann meist auf eine Reinigung der Extrakte (Cleanup)<br />

verzichtet werden.<br />

Für die Identifizierung unbekannter Verbindungen im Chromatogramm können, die im<br />

SCAN-Modus aufgenommenen Massenspektren mit Hilfe eines Suchprogramms<br />

(automatische Bibliotheksuche) mit den Spektren mehrerer Tausend Verbindungen<br />

verglichen werden. Die Zuordnung <strong>von</strong> Massenspektren unbekannter Peaks zu<br />

Substanzen anhand der Vorlagen der Spektrenbibliothek ist jedoch, selbst bei ausreichender<br />

Abtrennung der Substanz <strong>von</strong> Begleitstoffen, nicht immer einfach. Bei<br />

Substanzen, die in geringer Konzentration vorliegen, werden die Massenspektren vom<br />

Untergr<strong>und</strong>rauschen oft derart verfälscht, daß eine Identifizierung des Spektrums sehr<br />

erschwert wird oder kaum möglich ist (vgl. Abb. 3.1.2-1, 1µl).<br />

In diesen Fällen ist es vorteilhaft eine größere Menge an Extrakt einzuspritzen (vgl.<br />

Abb. 3.1.2-1, 5µl). Ein zu starkes Einengen <strong>von</strong> Probenextrakten sollte vermieden<br />

werden, da es häufig zu einem Ausfallen <strong>von</strong> mitextrahierten Begleitstoffen kommt,<br />

wobei Wirkstoffe mitgerissen werden können <strong>und</strong> zudem die Gefahr besteht, daß<br />

Pestizide sich teilweise verflüchtigen.<br />

Im SIM-Modus ist eine gezielte Aufnahme ausgewählter Massen mit höherer<br />

Empfindlichkeit möglich. Durch eine geeignete Auswahl dieser Massen können durch<br />

begleitende Stoffe verursachte Störungen meist ausgeschaltet werden. Auch die<br />

Bestimmungsgrenzen im SIM-Modus können durch den Einsatz höherer Mengen des<br />

Extraktes verbessert werden, da das Verhältnis <strong>von</strong> Peakhöhe zu Untergr<strong>und</strong>rauschen<br />

günstiger wird (vgl. Abb. 3.1.2-2).<br />

Größere Volumina bis z.B. 10 µl können mit einem Kaltaufgabesystem (KAS) als<br />

Injektionssystem aufgegeben werden, das die Möglichkeit einer Lösungsmittelausblendung<br />

bietet. Durch Verwendung eines KAS (Fa. Gerstel) konnten die Nachweis-<br />

<strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen deutlich erniedrigt werden. Die Verwendung des KAS als<br />

Injektionssystem bietet noch weitere Vorteile: Durch die Aufgabe der Probe in ein kaltes<br />

Injektionssystem werden die Analyten im Vergleich zu anderen Injektionsmöglichkeiten<br />

thermisch weniger belastet. Der Großteil der schwerflüchtige Begleitstoffe aus dem<br />

Probenextrakt verbleiben in dem etwa 10 cm langen Injektionsliner. Dadurch wird die<br />

analytische Säule geschont. In der Praxis ist ein regelmäßiges Austauschen der<br />

Injektionsliner erforderlich, da Verschmutzungen an der Oberfläche mit Analyten<br />

unerwünschte Wechselwirkungen eingehen können (siehe Kap. 3.1.2.2).<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

22


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.2-1: Massenspektren <strong>von</strong> Malathion in einem Clementinen-Extrakt<br />

(0,5 g/ml) bei verschiedenen Injektionsvolumina, Malathion 0,25 ng/µl<br />

Ab<strong>und</strong>ance<br />

750<br />

700<br />

650<br />

600<br />

550<br />

500<br />

450<br />

400<br />

350<br />

300<br />

250<br />

200<br />

150<br />

100<br />

50<br />

Ab<strong>und</strong>ance<br />

0<br />

m/z--><br />

16000<br />

14000<br />

12000<br />

10000<br />

8000<br />

6000<br />

4000<br />

2000<br />

0<br />

m/z--><br />

7000<br />

6000<br />

5000<br />

4000<br />

3000<br />

2000<br />

69<br />

69 79<br />

83<br />

63 79<br />

93<br />

97<br />

111<br />

Scan 485 (15.505 min): 0802007.D<br />

80 100 120 140 160 180 200 220 240 260 280<br />

111<br />

125<br />

127<br />

125<br />

127<br />

143<br />

149<br />

158<br />

158<br />

173<br />

173<br />

187<br />

201<br />

185 199<br />

207<br />

229<br />

211 229<br />

243<br />

255<br />

243 256<br />

261<br />

276<br />

271<br />

80 100 120 140 160 180 200 220 240 260 280<br />

93<br />

143<br />

158<br />

1000<br />

100<br />

211<br />

256<br />

285<br />

0<br />

m/z--><br />

60 80 100 120 140 160<br />

184 199<br />

180 200<br />

227238<br />

220 240<br />

286<br />

271<br />

260 280<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

1 µl<br />

5 µl<br />

Vergleichsspektrum aus der<br />

Spektrenbibliothek (HPPest)<br />

285<br />

287<br />

23


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.2-2: Nachweis <strong>von</strong> Brompropylat bei unterschiedlichen Injektions<br />

volumina (GC/MSD-SIM-Modus) 0,5 g Orangenextrakt/ml,<br />

nach der GPC<br />

96<br />

94<br />

92<br />

90<br />

88<br />

86<br />

84<br />

82<br />

80<br />

78<br />

76<br />

74<br />

72<br />

70<br />

68<br />

66<br />

64<br />

62<br />

60<br />

58<br />

56<br />

54<br />

1µl<br />

Brompropylat<br />

1,5 pg<br />

52<br />

50<br />

Time--><br />

21.20 21.40 21.60 21.80 22.00 22.20 22.40 22.60 22.80<br />

50<br />

Time--><br />

21.20 21.40 21.60 21.80 22.00 22.20 22.40 22.60 22.80<br />

130<br />

125<br />

120<br />

115<br />

110<br />

105<br />

100<br />

95<br />

90<br />

85<br />

80<br />

75<br />

70<br />

65<br />

60<br />

55<br />

3µl<br />

Brompropylat<br />

4,5 pg<br />

Bei Betrachtung der Abb. 3.1.2-2 fällt eine überproportionale Zunahme der Peakfläche<br />

des Brompropylat bei Einspritzung eines höheren Volumens auf. Die Gründe hierfür<br />

liegen zum einen an der Verbreiterung der Peaks, wodurch Anteile des Analyten im<br />

Untergr<strong>und</strong>rauschen verschwinden <strong>und</strong> zum anderen an Abbauvorgängen,<br />

insbesondere im Injektionssystem. Diese Effekte fallen bei niedrigen Konzentrationen<br />

stärker ins Gewicht. Dieser Sachverhalt wird im folgenden Kapitel näher erläutert.<br />

3.1.2.2 Einflüsse des Injektionssystems <strong>und</strong> „Matrixeinflüsse“<br />

Bei der gaschromatographischen Bestimmung einiger Substanzen wird das Verhältnis<br />

zwischen der in das GC-System eingebrachten Substanzmenge <strong>und</strong> dem<br />

resultierenden Detektorsignal durch verschiedene Faktoren stark beeinflußt. Es ist z.B.<br />

seit langem bekannt, daß das Lösungsmittel, in dem die zu messende Probe gelöst ist,<br />

einen Einfluß auf die Bestimmung haben kann („Lösungsmitteleinflüsse“).<br />

Der Zustand der mit der Probe in Kontakt kommenden Flächen des jeweiligen Einspritzsystems<br />

hat ebenfalls einen großen Einfluß. Die Probe wird z.B. bei einer split/splitless-<br />

Injektion oder bei einem KAS primär in einen durch Silylierung oberflächlich<br />

desaktivierten Injektionsliner eingespritzt. Der „Aktivitätsgrad“ der Oberfläche des<br />

Injektionsliners nimmt mit zunehmender Benutzungsdauer zu, da durch Abspaltung <strong>von</strong><br />

Silylresten freie Silanol-Gruppen entstehen. Die Oberflächen <strong>von</strong> Injektionsliner <strong>und</strong><br />

Vorsäule werden <strong>von</strong> Einspritzung zu Einspritzung immer mehr mit einem Film<br />

schwerflüchtiger Verbindungen belegt. Diese „Schmutzbeläge“ weisen ebenfalls eine<br />

„aktive“ Oberfläche auf. Substanzen können mit diesen aktiven Stellen im<br />

Injektionssystem in Wechselwirkung treten, wodurch Abbaureaktionen quasi katalysiert<br />

werden.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

24


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Bei zahlreichen Stoffen wie Dicofol, Captan, Folpet <strong>und</strong> einigen N-Methyl-Carbamaten<br />

machen sich die beschriebenen Effekte nachweislich in Form eines Abbaus bemerkbar.<br />

Die Bildung ihrer Abbauprodukte (p,p’-Dichlorbenzophenon, Tetrahydrophthalimid,<br />

Phthalimid <strong>und</strong> die korrespondierenden Phenole der N-Methyl-Carbamate) nimmt mit<br />

dem Benutzungs- <strong>und</strong> Verschmutzungsgrad des Injektionssystems zu. Zum Beispiel<br />

wurde beobachtet, daß die Verbindung Azinphos-Methyl nach längerem Gebrauch des<br />

Injektionsliners kaum mehr detektierbar ist.<br />

Die Wechselwirkung zwischen diesem „Schmutzbelag“ <strong>und</strong> verschiedenen Verbindungen<br />

bewirkt eine unerwünschte Retention <strong>und</strong> macht sich auch in der Peakform z.B.<br />

bei Thiabendazol, Imazalil <strong>und</strong> Prochloraz als Tailing deutlich bemerkbar (vgl. Abb.<br />

3.1.5-28 in Kap. 3.1.5.5.2.3). Dieses Tailing ist um so ausgeprägter je stärker der<br />

Verschmutzungsgrad des Injektionssystems <strong>und</strong> der Vorsäule ist.<br />

Matrixeinflüsse:<br />

Eine wesentliche Rolle spielen aber auch die Art <strong>und</strong> Konzentration der in der Probelösung<br />

befindlichen Matrixbestandteile [vgl. 27,28]. Es wurde beispielsweise festgestellt,<br />

daß ein mit Thiabendazol versetzter Probenextrakt wesentlich höhere Signale<br />

erbrachte, als eine Lösung dieses Stoffes in reinem Lösungsmittel, obwohl beide<br />

Lösungen die gleiche Konzentration an Thiabendazol aufwiesen <strong>und</strong> gleiche chromatographische<br />

Bedingungen vorlagen [29].<br />

Matrixbestandteile in den Probeextrakten wirken offenbar „schützend“ auf die Wirkstoffe,<br />

in dem sie aktive Stellen im Injektionssystem besetzen. In Abb. 3.1.2-3 wird die<br />

„Schutzwirkung“ der Matrix am Beispiel der Substanz Dicofol verdeutlicht. Auffällig ist,<br />

daß bei Anwesenheit <strong>von</strong> Matrix die Zersetzung <strong>von</strong> Dicofol zu p,p´-Dichlorbenzophenon<br />

in erheblich kleinerem Umfang abläuft.<br />

Es wurde untersucht, in welchem Maße die Bestimmung verschiedener Wirkstoffe<br />

durch die oben beschriebenen Effekte beeinflußt wird. Hierzu wurden Kalibrierungen in<br />

reinem Lösungsmittel <strong>und</strong> in Lösungen mit unterschiedlichem Matrixanteil erstellt <strong>und</strong><br />

verglichen. Wie aus Tab. 3.1.2-1 zu entnehmen ist, spielen für viele der Stoffe (unter<br />

den genannten Bedingungen) „Matrixeinflüsse“ eine vernachlässigbare Rolle (vgl. Abb.<br />

3.1.2-4, Ethion). Bei anderen Stoffen dagegen können diese Effekte bei der<br />

Quantifizierung der Rückstände auf keinen Fall außer acht gelassen werden (vgl. Abb.<br />

3.1.2-4, Azinphos-Methyl). Derartige „Matrixeinflüsse“ auf die gaschromatographische<br />

Bestimmung <strong>von</strong> Wirkstoffen wurden sowohl bei den Extrakten der DFG-Methoden S8<br />

oder S19 als auch bei den SFE-Extrakten festgestellt. In der Regel zeigen die<br />

ungereinigten Extrakte der klassischen (naßchemischen) Aufarbeitungsmethoden viel<br />

stärkere Matrixeffekte als SFE-Extrakte, während die über Gelpermeationschromatographie<br />

(GPC) gereinigten Extrakte in etwa vergleichbare Effekte zeigen.<br />

Die Ergebnisse dieser Untersuchungen zum Einfluß der Matrix bei der gaschromatographischen<br />

Bestimmung wurden in [29] veröffentlicht.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

25


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.2-3: Matrixeinflüsse, thermisch bedingter Abbau des Dicofols im<br />

Injektionssystem<br />

FlV<br />

FlV<br />

4,5<br />

4<br />

3,5<br />

3<br />

2,5<br />

2<br />

1,5<br />

1<br />

0,5<br />

0<br />

0,3<br />

0,25<br />

0,2<br />

0,15<br />

0,1<br />

0,05<br />

0<br />

Dicofol<br />

Matrix-Eichung<br />

Lösungsmittel-Eichung<br />

0 2 4 6 8 10<br />

p,p´- Dichlorbenzophenon<br />

Lösungsmittel-Eichung<br />

Matrix-Eichung<br />

Konzentration [µg/ml]<br />

0 2 4 6 8 10<br />

Konzentration [µg/ml]<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

Cl<br />

Cl<br />

HO CCl3<br />

Dicofol<br />

O<br />

CHCl3<br />

Cl<br />

p,p´-Dichlorbenzophenon<br />

26<br />

Cl


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.2-4: Matrixeinflüsse am Beispiel Ethion <strong>und</strong> Azinphos-Methyl<br />

FlV<br />

FlV<br />

7<br />

6<br />

5<br />

4<br />

3<br />

2<br />

1<br />

0<br />

2,5<br />

1,5<br />

0,5<br />

Ethion<br />

Matrix-Eichung<br />

Lösungsmittel-Eichung<br />

0 2 4 6 8 10<br />

Konzentration<br />

2<br />

1<br />

0<br />

Azinphos-Methyl<br />

Matrix-Eichung<br />

Lösungsmittel-Eichung<br />

0 2 4 6 8 10<br />

Konzentration<br />

CH3CH2O<br />

CH3CH2O P<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

S<br />

O<br />

S S P<br />

N<br />

N N<br />

Ethion<br />

S<br />

S<br />

S P<br />

Azinphos-Methyl<br />

OCH2CH3<br />

OCH2CH3<br />

OCH3<br />

OCH3<br />

27


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.2-1: Auftreten <strong>von</strong> „Matrixeinflüssen“, GC/MSD (Säule HP5, 30 m),<br />

Injektor: KAS, silylierter Glasliner, Einspritzmenge 3 µl [29]<br />

Matrix - <strong>und</strong> Lösungsmittel-Eichungen im Vergleich<br />

Substanz<br />

vor der GPC:<br />

Matrixkonzentration<br />

0,6 g Zitrone/ml<br />

Wirkstoffkonzentration in<br />

mg/kg bez. auf Frucht<br />

nach der GPC:<br />

Matrixkonzentration<br />

1,25 g Zitrone/ml<br />

Wirkstoffkonzentration in<br />

mg/kg bez. auf Frucht<br />

0,2 0,4 1 4 0,1 0,25 0,5 1,0 3,5<br />

Azinphos-Methyl +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++<br />

Bromacil + +<br />

Brompropylat +++ +++ ++ 0 ++ ++ ++ + 0<br />

Carbaryl + +<br />

Chlorfenvinphos 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Chlorfenson 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Chlorpyrifos 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Chlorpyrifos-Methyl 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Chlorthalonil ++ + 0 0 + 0 0 0 0<br />

Diazinon 0 0 0 0 - - 0 0 0<br />

Dichlofluanid 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Dichloran 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Dicofol +++ +++ +++ ++ +++ +++ +++ +++ ++<br />

Dimethoat ++ ++ 0 0 ++ ++ + 0 0<br />

Endosulfan (-beta) 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Endosulfan (-alpha) 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Endosulfansulfat + + 0 0 + 0 0 0 0<br />

Ethion 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Fenarimol + 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Fenitrothion ++ + + 0 + + 0 0 0<br />

Fenpropimorph - - 0 0 0 0 0 0 0<br />

Fenthion - - - - - - - - 0<br />

Fonofos 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Imazalil* +++ +++ +++ +<br />

Malathion + 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Mecarbam + 0 0 0 + 0 0 0 0<br />

Metalaxyl 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Methidathion ++ + + 0 + + + 0 0<br />

Myclobutanil + 0 0 0 + + + 0 0<br />

Orthophenylphenol ++ + 0 0 + 0 0 0 0<br />

p,p´-Dichlorbenzophenon --- --- --- --- --- --- --- --- ---<br />

Parathion 0 0<br />

Parathion-Methyl ++ ++ 0 0 + 0 0 0 0<br />

Pirimiphos-Methyl 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Prochloraz +++ ++ +<br />

Procymidon 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Propiconazol + + 0<br />

Pyridaphenthion 0 0<br />

Quinalphos 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Tetradifon 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Thiabendazol +++ +++ +++ +++<br />

Tolylfluanid + + 0 0 0 0 0 0 0<br />

Vinclozolin 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />

Verhältnis <strong>von</strong> Eichung auf Matrix zu Eichung in reinem Lösungsmittel in %: --- = unter 20% ,<br />

- = 75-89% , 0 = 90-112% , + = 113-124% , ++ = 125-150% , +++ = über 150%<br />

Die Auswertung erfolgte über zwei interne Standards.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

28


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.2.3 Berücksichtigung der „Matrixeinflüsse“ bei der<br />

Bestimmung<br />

Die Verwendung <strong>von</strong> „Eichungen auf Matrix“ ist zur korrekten Quantifizierung <strong>von</strong><br />

Substanzen, bei denen deutliche „Matrixeinflüsse“ auftreten, unumgänglich. Eine<br />

Möglichkeit hierfür sind „externe Matrix-Eichungen“ d.h. zur Kalibrierung werden<br />

matrixhaltige Standards verwendet. In diesem Fall muß für jede zu untersuchende<br />

Probe eine gleichartige, pestizidfreie Blindprobe aufgearbeitet werden. Die Eichlösungen<br />

werden durch Zusatz der entsprechenden Wirkstoffe zu den Extrakten der<br />

Blindprobe hergestellt. Um „Matrixeinflüsse“ auszugleichen, muß darauf geachtet<br />

werden, daß Eichlösungen <strong>und</strong> Probenextrakt in etwa die gleiche Konzentration an<br />

Matrix aufweisen.<br />

Eine weitere Möglichkeit sind „innere Eichungen“ nach dem Standardadditionsverfahren.<br />

Dazu wird der Probenextrakt in mehrere Aliquote geteilt, die mit den entsprechenden<br />

Wirkstoffen in unterschiedlichen Mengen dotiert werden (parallele<br />

Standardaddition, vgl. Abb. 3.1.2-5).<br />

Abb. 3.1.2-5: Prinzip der “inneren Eichung“ nach einer Aliquotierung<br />

(„parallele“ Standardaddition)<br />

Probenextrakt<br />

(mit internem Standard)<br />

Aliquotierung<br />

Aliquot 1 Aliquot 2 Aliquot 3 Aliquot 4<br />

Standardaddition Standardaddition Standardaddition<br />

Volumenausgleich Volumenausgleich Volumenausgleich Volumenausgleich<br />

Meßlösung 1 Meßlösung 2<br />

Meßlösung 3<br />

29<br />

Meßlösung 4<br />

Messung Messung Messung Messung<br />

Kalibrierung<br />

Vorteilhaft bei diesem Verfahren ist, daß eine zusätzliche Aufarbeitung <strong>von</strong> pestizidfreier<br />

Matrix, die <strong>von</strong> der Probenmatrix mehr oder weniger abweichen kann (Sorte,<br />

Reifegrad, Schalen- u/o Kernanteil), entfällt. Abb. 3.1.2-6 zeigt das Prinzip einer solchen<br />

Kalibrierung <strong>und</strong> Abb. 3.1.2-7 eine Kalibrierung am Beispiel Imazalil.<br />

Abb. 3.1.2-6: „Innere Eichung“ nach dem Standardadditionsverfahren<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Flächenverhältnis<br />

Analyt/ISTD<br />

|x|<br />

zugegebene Menge an Analyt (Aufstockung)<br />

|x|: Absolute Menge an Analyt im Probenextrakt vor der Dotierung (y=0)<br />

Abb. 3.1.2-7: „Innere Eichung“ („parallele“ Standardaddition)<br />

beispielhaft für Imazalil in Orangenextrakt<br />

200<br />

180<br />

160<br />

140<br />

120<br />

100<br />

80<br />

60<br />

40<br />

20<br />

0<br />

ermittelte Gehalte:<br />

über innere Eichung: 0,83 ppm<br />

über Lösungsmitteleichung: 1,9 ppm<br />

<strong>und</strong>otiert<br />

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y = 233,82x + 57,882<br />

R 2 = 0,9997<br />

0 0,1 0,2 0,3 0,4 0,5 0,6<br />

zudotierte Menge an Imazalil in µg pro 0,3 g Probenaliquot<br />

In Anbetracht der geringen Probenmenge, die bei der SFE extrahiert wird, ist diese Art<br />

der inneren Eichung, bei der Aliquotierungen vorgenommen werden, häufig nicht<br />

praktikabel. „Innere Eichungen“ nach dem Standardadditionsverfahren können aber<br />

auch ohne eine Aliquotierung erstellt werden, in dem die gleiche Probelösung mehrfach<br />

mit Standard aufgestockt <strong>und</strong> gemessen wird. Die Tatsache, daß die Matrixeffekte nach<br />

jeder Standardzugabe verringert werden (Matrixkonzentration nimmt ab) bleibt hier<br />

allerdings unberücksichtigt, weshalb es wichtig ist kleine Volumina zu dotieren<br />

(vergleiche Abb. 3.1.2-8).<br />

30


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.2-8: Prinzip der „inneren Eichung“ (Standardadditionsverfahren)<br />

Probelösung<br />

(mit ISTD)<br />

Messung<br />

Standardaddition<br />

Messung Erstellung einer<br />

Kalibrierung<br />

Standardaddition<br />

Messung<br />

In der Regel zeigen Eichungen auf Matrix im Vergleich zu den entsprechenden<br />

„Lösungsmittel-Eichungen“ eine deutlich bessere Linearität.<br />

Zur Minimierung gerätebedingter Effekte, ist auf jeden Fall der regelmäßige Austausch<br />

des Injektionsliners <strong>und</strong>/oder der Vorsäule zu empfehlen. Damit möglichst gleiche<br />

Gerätebedingungen bei der Bestimmung vorliegen, empfiehlt es sich, die zu vergleichenden<br />

Lösungen (Probelösung <strong>und</strong> Eichlösung) in kleinem zeitlichen Abstand zu<br />

chromatographieren.<br />

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31


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.3 Optimierung der Probenvorbereitung<br />

3.1.3.1 Zerkleinerung (Erzeugung repräsentativer Teilproben)<br />

Ziel der Probenvorbereitung ist es, Teilproben zu erhalten, die für die Gesamtprobe<br />

repräsentativ sind. Hierbei muß jedoch darauf geachtet werden, daß die Verluste <strong>von</strong><br />

Substanzen durch Abbauvorgänge so gering wie möglich gehalten werden. Geeignete<br />

Probenvor- <strong>und</strong> aufbereitungsstrategien sind daher erforderlich.<br />

Da bei der SFE relativ wenig Probemenge pro Versuch eingesetzt wird (z.B. bis zu ca. 3<br />

g bei Verwendung des HP 7680 Extraktors), muß besonders darauf geachtet werden,<br />

daß die eingesetzten Obst- <strong>und</strong> Gemüseproben gut homogenisiert werden. Bei einigen<br />

Matrizes wie Salaten, Kernobst <strong>und</strong> Erdbeeren bereitet dies in der Regel keine<br />

Probleme. Bei anderen Proben ist jedoch die Erzielung einer ausreichenden<br />

Homogenität schwieriger. Zum Beispiel werden bei Trauben mit den üblichen Zerkleinerungsmethoden<br />

die Schalen, auf denen sich oberflächlich aufgebrachte Wirkstoffe<br />

zum Großteil befinden, nicht in dem gewünschten Grad zerkleinert, wodurch bei<br />

Gehaltsbestimmungen zwangsläufig hohe statistische (zufällige) Fehler auftreten (vgl.<br />

Kap. 3.1.4.7.1).<br />

Während der Probenvorbereitung (Grob- <strong>und</strong> Feinzerkleinerung) treten in größerem<br />

oder kleineren Umfang Wirkstoffverluste auf. Durch die Feinzerkleinerung der Probe<br />

wird die Kompartimentierung der Zellen aufgehoben, wodurch Enzyme, die für Abbauvorgänge<br />

verantwortlich sind, freigesetzt werden. Darüber hinaus wird sauerstoffhaltige<br />

Luft in die Matrix eingeschlagen. Verschiedene enzymatische <strong>und</strong> chemische<br />

Reaktionen (auch Verknüpfungsreaktionen mit Matrixbestandteilen) werden dadurch<br />

ermöglicht oder begünstigt. Zudem kann die bei dem Feinzerkleinerungsprozeß<br />

freigesetzte Wärme zu einer Beschleunigung <strong>von</strong> Abbauprozessen führen.<br />

Bei den Abbauvorgängen im zerkleinerten Probenmaterial spielen enzymatisch<br />

katalysierten Reaktionen (Oxidationen, Hydrolysen u.a.) eine wichtige Rolle. Um solche<br />

Reaktionen zu vermeiden, muß die Aktivität der Enzyme so weit wie möglich<br />

unterdrückt oder ausgeschaltet werden.<br />

Enzyme sind biochemische Katalysatoren. Ihre Aktivitäten hängen stark <strong>von</strong> den<br />

vorherrschenden Bedingungen im Reaktionsmedium ab. So zeigen z.B. viele Enzyme<br />

bei Verringerung des verfügbaren Wassers (aw-Wert), z.B. durch Zusatz <strong>von</strong> Salzen,<br />

einen Aktivitätsrückgang. Oxidasen zeigen in der Regel ein pH-Optimum im neutralen<br />

pH-Bereich. Unterhalb pH=3 werden Phenolasen irreversibel denaturiert. Ähnliches gilt<br />

auch für Temperaturen oberhalb 85°C (Blanchieren). Solch drastische Bedingungen<br />

können aber nicht zum Schutz der Proben vor enzymatischer Oxidation angewendet<br />

werden, ohne die Zersetzung empfindlicher Pestizide befürchten zu müssen.<br />

Desweiteren ist es theoretisch möglich unerwünschte enzymatische Reaktionen z.B.<br />

durch Vergiftung <strong>von</strong> Enzymen zu unterdrücken (z.B. bei Oxidasen durch<br />

Komplexierung des Kupfers im aktiven Zentrum mit EDTA, Sulfid oder Zitronensäure).<br />

Enzymatische <strong>und</strong> chemische Oxidationen können z.B. durch Zusatz antioxidativ<br />

wirksamer Stoffe, wie zum Beispiel Ascorbinsäure oder Schwefeldioxid unterdrückt<br />

werden.<br />

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32


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Die Anwendbarkeit <strong>von</strong> Antioxidantien, Enzymvergiftern, Säuren <strong>und</strong> Salzen wurde im<br />

Rahmen dieser Arbeit allerdings nicht näher untersucht.<br />

Ein eleganter Weg Oxidationen zu vermeiden ist, die Verdrängung der sauerstoffhaltigen<br />

Luft in der Probe durch Trockeneis oder flüssigem Stickstoff, wobei gleichzeitig<br />

die Probe auch gekühlt wird [2,128].<br />

Durch Einhaltung niedriger Temperaturen werden chemische <strong>und</strong> enzymatische<br />

Prozesse, die zu einem Wirkstoffabbau führen können, erheblich verlangsamt.<br />

Eine sehr einfache Möglichkeit die Temperaturen während der Zerkleinerung tief zu<br />

halten ist die Proben in gefrorenem Zustand feinzuzerkleinern. Diese Vorgehensweise<br />

ist sehr einfach durchzuführen <strong>und</strong> hat sich als sehr vorteilhaft auch im Hinblick auf den<br />

Zerkleinerungsgrad erwiesen. Die Zerkleinerung wird durch die Eiskristalle in den Zellen<br />

unterstützt. Das Material ist nach der Feinzerkleinerung in der Regel ausreichend<br />

homogen <strong>und</strong> befindet sich noch in gefrorenem Zustand. Eine Separierung der<br />

wäßrigen (Saft) <strong>von</strong> der festen Phase (Zellwände) findet praktisch nicht statt. Die<br />

zerkleinerten Proben lassen sich schnell wieder tiefgefrieren. Auf diese Weise wird in<br />

der Regel eine bedeutend bessere Homogenität erreicht als bei einer Zerkleinerung der<br />

Proben bei Raumtemperatur. Dies wurde am Beispiel einer Traubenprobe gezeigt<br />

(siehe Tab. 3.1.3-1 <strong>und</strong> Abb. 3.1.3-1).<br />

Die bessere Homogenität macht sich auch in der geringeren Streuung der Analysenwerte<br />

bei der gefroren zerkleinerten Traubenprobe bemerkbar (siehe auch Kap.<br />

3.1.4.7.1).<br />

Tab. 3.1.3-1: Auswirkungen unterschiedlicher Zerkleinerungsarten<br />

(vgl. Abb. 3.1.3-1).<br />

Zustand der Beobachtungen nach der Feinzerkleinerung<br />

Probe vor der Zerkleinerungs- Durchmesser der Zustand der Sonstiges<br />

Feinzerkleinerung dauer Schalenfragmente Kerne<br />

„frisch“ etwa 40 s etwa 0,5-1 cm meist ganz größere<br />

Fruchtfleischstücke<br />

noch vorhanden<br />

tiefgefroren etwa 15 s etwa 0,5-3 mm zerkleinert Fruchtfleisch fein<br />

verteilt, zahlreiche<br />

Luftbläschen<br />

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33


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.3-1: „frisch“ <strong>und</strong> tiefgefroren zerkleinerte Trauben „Alphonse Lavallee“<br />

(vgl. Tab. 3.1.2-1)<br />

„frisch“ zerkleinert<br />

Abbildungs-Maßstab 1:1<br />

tiefgefroren zerkleinert<br />

Abbildungs-Maßstab 1:1<br />

Der höhere Zerkleinerungsgrad der durch die Zerkleinerung in tiefgefrorenem Zustand<br />

erreicht wird, wirkt sich auch positiv auf die Extrahierbarkeit aus. Bei einem<br />

entsprechenden Versuch wurden aus einer gefroren zerkleinerten Orange bedeutend<br />

bessere Ausbeuten der Fungizide Imazalil <strong>und</strong> Thiabendazol erzielt. Die unterschiedlich<br />

zerkleinerten Orangenproben wurden je zwei Mal extrahiert (erster <strong>Extraktion</strong>sschritt mit<br />

Aceton:Wasser 3:1, pH 3-4, zweiter <strong>Extraktion</strong>sschritt mit Aceton:Wasser 4:1, pH∼9,5).<br />

Während bei der zweiten <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> frisch zerkleinerten Proben noch beträchtliche<br />

10-15 % dieser Wirkstoffe erfaßt wurden, wurden bei gefroren zerkleinerten Proben nur<br />

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34


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

noch 4-7 % gef<strong>und</strong>en [vgl. 29]. Die verbesserte <strong>Extraktion</strong> der gefroren zerkleinerten<br />

Orange war darüber hinaus auch an der deutlich geringeren Farbintensität, die der<br />

extrahierte Filterkuchen nach der ersten <strong>Extraktion</strong> aufwies, erkennbar.<br />

3.1.3.2 Entfernung bzw. Immobilisierung <strong>von</strong> Wasser<br />

Obst- <strong>und</strong> Gemüseproben haben einen hohen Gehalt an Wasser. Dieses Wasser muß<br />

vor der SFE-<strong>Extraktion</strong> geb<strong>und</strong>en oder entfernt werden. Zur Entfernung oder<br />

Immobilisierung <strong>von</strong> Wasser werden in der Literatur verschiedene Vorgehensweisen<br />

beschrieben wie z.B. Gefriertrocknung [40], die Verwendung <strong>von</strong> chemischen Trockenmitteln<br />

wie Magnesiumsulfat, Natriumsulfat [8,41,42] <strong>und</strong> der Zusatz <strong>von</strong> Wasser<br />

adsorbierenden Materialien, die eine große Oberfläche besitzen <strong>und</strong> dadurch in der<br />

Lage sind, große Mengen an Wasser physikalisch zu binden. Durch die Vermengung<br />

der Probe mit dem Adsorbens kommt es zu einer starken Oberflächenvergrößung,<br />

wodurch die <strong>Extraktion</strong> erleichtert wird [1,2,12,9].<br />

3.1.3.2.1 Wasserentfernung durch Gefriertrocknung<br />

Die Gefriertrocknung ist eine relativ schonende Methode, einer Probe Wasser zu<br />

entziehen <strong>und</strong> die Probe aufzukonzentrieren. Dadurch ist es theoretisch möglich, mehr<br />

Probe für die <strong>Extraktion</strong> einzusetzen <strong>und</strong> somit die Nachweisgrenzen herabzusetzen.<br />

Der Trocknungsvorgang dauert jedoch einige St<strong>und</strong>en. Bei Proben mit relativ viel<br />

Zucker wie z.B. Südfrüchten bilden sich karamelartige, pasteuse Massen, die den<br />

Trocknungsvorgang verzögern <strong>und</strong> ggf. Rückstände einschließen. Getrocknete Proben<br />

nehmen schnell Luftfeuchtigkeit auf, so daß ihre Handhabung Sorgfalt verlangt.<br />

Desweiteren bestehen Bedenken, daß es unter den Bedingungen der Gefriertrocknung<br />

zu einer Verflüchtigung <strong>von</strong> Wirkstoffen kommen kann.<br />

Die Gefriertrocknung ist nach unserer Erfahrung mit einem großen Arbeitsaufwand<br />

verb<strong>und</strong>en <strong>und</strong> bringt keine entscheidenden Vorteile.<br />

3.1.3.2.2 Wasserbindung durch Adsorbentien<br />

Zur Wasserbindung werden verschiedene Adsorbentien auf Basis <strong>von</strong> Diatomeenerde<br />

eingesetzt, die natürlicherweise eine sehr große Oberfläche aufweisen (z.B. Hydromatrix<br />

(Varian), Kieselgur, Celite) [1,2,12].<br />

Die vorzerkleinerte <strong>und</strong> homogenisierte Obst- oder Gemüseprobe wird hierbei in einem<br />

bestimmten Verhältnis (z.B. 2,5:2) mit einem Adsorbens vermengt. Aliquote des<br />

homogenen Gemisches werden in <strong>Extraktion</strong>shülsen gefüllt <strong>und</strong> bis zur <strong>Extraktion</strong><br />

tiefgefroren aufbewahrt.<br />

Diese Art der Probenvorbereitung ist einfach durchzuführen, erfordert wenige<br />

Arbeitsschritte <strong>und</strong> ermöglicht eine effiziente <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Rückständen.<br />

Versuche haben gezeigt, daß das Mischungsverhältnis <strong>von</strong> Probe zu Adsorbens einen<br />

großen Einfluß auf die Extrahierbarkeit <strong>von</strong> unpolaren Analyten hat (vgl. hierzu Kap.<br />

3.1.4.7.3 <strong>und</strong> 3.1.7.1).<br />

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35


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.4 SFE-Multimethoden für Pestizide in Obst <strong>und</strong> Gemüse<br />

Eine Multimethode ist in der Regel nur ein Kompromiß. Nicht alle Substanzen sind unter<br />

den ausgearbeiteten Bedingungen optimal extrahierbar. Verluste <strong>von</strong> Substanzen<br />

werden oft bewußt in Kauf genommen, um ein möglichst gutes Gesamtergebnis bei<br />

einem angemessenen Aufwand zu erzielen.<br />

In Rahmen dieser Arbeit wurde eine SFE-Multimethode zur Aufarbeitung <strong>von</strong> Obst- <strong>und</strong><br />

Gemüseproben ausgearbeitet. Sehr hilfreich für die Entwicklung dieser Methode waren<br />

die Arbeiten <strong>von</strong> Lehotay et al [1,2]. Im folgenden werden Versuche zur Optimierung der<br />

<strong>Extraktion</strong>sbedingungen vorgestellt.<br />

3.1.4.1 Optimierung der <strong>Extraktion</strong>sbedingungen<br />

Selbst bei hoher CO2-Dichte weisen SFE-Extrakte <strong>von</strong> Obst <strong>und</strong> Gemüse noch eine<br />

relativ hohe Reinheit auf. Daher wurden bei der Methodenoptimierung nur Dichtebereiche<br />

<strong>von</strong> >0,85 g/ml ausgewählt.<br />

Prinzipiell ist es möglich durch die Einstellung einer geringeren Dichte, <strong>Extraktion</strong>en<br />

selektiver zu gestalten. Dies war jedoch bei den Applikationen im Bereich der<br />

Pestizidrückstandsanalytik nicht erforderlich.<br />

Selbst als die SFE-<strong>Extraktion</strong>en bei relativ drastische <strong>Extraktion</strong>sbedingungen<br />

durchgeführt wurden, waren im allgemeinen die gewonnenen Extrakte in ihrer Reinheit<br />

mit den Extrakten herkömmlicher Multimethoden vergleichbar obwohl bei diesen z.T.<br />

sehr arbeits- <strong>und</strong> zeitaufwendige Clean-up Arbeitsschritte durchgeführt werden (siehe<br />

hierzu auch Abb. 3.1.4-1).<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

36


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.4-1: MSD-Chromatogramme eines SFE-Extraktes <strong>und</strong> eines DFG S8-<br />

Extraktes [3] aus Birnen im Vergleich (SCAN-Modus)<br />

(SFE-Bedingungen siehe Anlage1)<br />

Ab<strong>und</strong>ance<br />

1400000<br />

1300000<br />

1200000<br />

1100000<br />

1000000<br />

900000<br />

800000<br />

700000<br />

600000<br />

500000<br />

400000<br />

300000<br />

200000<br />

100000<br />

0<br />

Time--><br />

Ab<strong>und</strong>ance<br />

1200000<br />

1100000<br />

1000000<br />

900000<br />

800000<br />

700000<br />

600000<br />

500000<br />

400000<br />

300000<br />

0<br />

Time--><br />

11.39<br />

12.41<br />

13.20<br />

13.26<br />

12.87<br />

12.83<br />

12.13<br />

11.28<br />

12.63<br />

11.39<br />

14.45<br />

TIC: 0301001.D<br />

Birne, SFE-Extrakt 2g/ml Acetonitril, 1 µl in KAS, SCAN<br />

Diphenylamin<br />

Fettsäuren<br />

15.41<br />

15.29<br />

14.93<br />

16.94<br />

16.85<br />

Fettsäuren<br />

17.37 17.67 17.75<br />

17.31<br />

17.21<br />

Procymidon<br />

Fettsäuren<br />

ISTD<br />

20.99<br />

Iprodion<br />

21.74<br />

Phthalat<br />

Phosalon<br />

12.00 14.00 16.00 18.00 20.00 22.00 24.00<br />

12.41<br />

Diphenylamin<br />

13.20<br />

200000<br />

10.24 10.37<br />

10000010.42<br />

11.28<br />

13.26<br />

15.42<br />

12.76 13.23<br />

12.88<br />

12.83 14.45<br />

12.13<br />

11.66 12.01 12.05<br />

11.89 11.96 12.24 12.72<br />

12.5313.46<br />

14.93<br />

14.51<br />

14.70 15.29 15.56<br />

TIC: 0401002.D<br />

Birne, S8-Extrakt 2g/ml Isooktan, 1 µl in KAS, SCAN<br />

Fettsäuren<br />

16.94<br />

16.85<br />

Fettsäuren<br />

Procymidon<br />

17.77<br />

17.67<br />

17.04 17.21<br />

(KAS= Kaltaufgabesystem)<br />

Fettsäuren<br />

ISTD<br />

20.99<br />

Iprodion<br />

21.75<br />

Phthalat<br />

23.41<br />

23.59<br />

Phosalon<br />

12.00 14.00 16.00 18.00 20.00 22.00 24.00<br />

Um festzustellen, wie sich eine Veränderung der <strong>Extraktion</strong>sparameter (Temperatur,<br />

Druck, Dichte, Modifier) auf die <strong>Extraktion</strong>sausbeuten auswirkt, wurde eine mit<br />

Hydromatrix im Verhältnis 3:2 vermengte Salatprobe bei unterschiedlichen Bedingungen<br />

extrahiert.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

37


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.4-1: Untersuchungsergebnisse eine Salatprobe bei Variation der<br />

<strong>Extraktion</strong>sparameter<br />

<strong>Extraktion</strong>sbedingungen ermittelte Gehalte<br />

in mg/kg<br />

Modifier<br />

Temperatur Druck Dichte Procymidon Oxadixyl direkt in die<br />

(°C) (bar) (g/ml)<br />

<strong>Extraktion</strong>shülse<br />

45 376 0,93 0,021 0,027<br />

50 350 0,9 0,025 0,032<br />

55 347 0,88 0,022 0,029<br />

60 329 0,85 0,026 0,031<br />

50 350 0,9 0,022 0,020 0,5 ml Methanol<br />

55 347 0,88 0,021 0,030 0,5 ml Methanol<br />

60 329 0,85 0,020 0,025 0,2 ml Methanol<br />

60 329 0,85 0,024 0,029 0,5 ml Methanol<br />

Wie in Tab. 3.1.4-1 ersichtlich, ließen sich durch die Variation der aufgeführten<br />

Parameter keine signifikanten Unterschiede bei den <strong>Extraktion</strong>sausbeuten der Pestizide<br />

feststellen. Die Abweichungen liegen innerhalb der üblichen analytischen Streubereiche<br />

[18].<br />

Variation des Elutionsmittels der Festphasenfalle:<br />

Bei Verwendung des HP-Gerätes werden die Extrakte auf einer Festphasenfalle (z.B.<br />

ODS) aufgefangen. Nach der <strong>Extraktion</strong> werden sie mit Hilfe eines organischen<br />

Lösungsmittels aus der Festphasenfalle in ein 1,5-ml Vorlagegläschen eluiert. Dabei<br />

kann die Falle beheizt werden. Um die gewünschten Analyten in das 1,5 ml Vorlagegläschen<br />

zu eluieren, ist es wichtig ein Lösungsmittel auszuwählen das gute Lösungseigenschaften<br />

aufweist.<br />

In einem Versuch wurden die Lösungsmittel Acetonitril <strong>und</strong> Methanol diesbezüglich miteinander<br />

verglichen (siehe Tab. 3.1.4-2).<br />

Unpolare Lösungsmittel wie Isooctan wurden nicht in den Versuch miteinbezogen, da<br />

sie das nach der <strong>Extraktion</strong> oft etwas feuchte Festphasenmaterial nicht benetzen<br />

können.<br />

Auch bei diesem Versuch lagen die Unterschiede in den erzielten Ergebnissen innerhalb<br />

der üblichen analytischen Streubreite (siehe Tab. 3.1.4-2).<br />

Acetonitril ist prinzipiell wegen seines höheren Siedepunktes <strong>und</strong> der geringeren<br />

Polarität besser für die Gaschromatographie geeignet als Methanol.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

38


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.4-2: Vergleich <strong>von</strong> Acetonitril <strong>und</strong> Methanol als Elutionslösungsmittel,<br />

extrahierte Probe: Salat<br />

Pestizid<br />

Lösungsmittel<br />

(in mg/kg)<br />

Dimethoat Vinclozolin Procymidon Oxadixyl Benalaxyl<br />

Methanol 0,53 0,82 2,7 0,70 0,008<br />

0,54 0,89 2,76 0,76 0,006<br />

0,61 0,98 2,95 0,88 0,010<br />

0,66 1,16 3,21 0,85 0,010<br />

Mittelwert<br />

0,59 0,96 2,91 0,80 0,009<br />

Acetonitril 0,57 1,31 3,35 0,78 0,007<br />

0,57 1,17 3,00 0,77 0,008<br />

0,57 1,21 3,05 0,73 0,008<br />

0,61 1,00 2,62 0,78 0,008<br />

Mittelwert<br />

0,58 1,17 3,01 0,77 0,008<br />

Gesamt-Mittelwert (n=8) 0,58 1,07 2,96 0,78 0,008<br />

Variationskoeffizient<br />

in %<br />

7,3 15,9 8,6 7,5 16,7<br />

3.1.4.2 Durchführung der Multimethode<br />

In Abb. 3.1.4-2 sind schematisch die Arbeitsschritte der ausgearbeiteten SFE-<br />

Multimethode aufgeführt. Eine detaillierte Analysenvorschrift findet sich in Anlage 1<br />

(Code 100E3101). Die allermeisten Obst- <strong>und</strong> Gemüsesorten können nach diesem<br />

Verfahren aufgearbeitet werden. Je nach Matrix können geringfügige Abweichungen<br />

<strong>von</strong> diesem Schema erforderlich sein (vgl. Kap. 2.6.2).<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

39


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.4-2: Durchführungsschema der Multimethode (siehe auch Anlage 1)<br />

Analyse mit<br />

LC/MS<br />

<strong>Extraktion</strong>sbedingungen:<br />

SFE-Parameter für HP 7680T:<br />

Probenvorbereitung<br />

ggf. pH-Wert-Einstellung<br />

Probe mit Hydromatrix vermischen<br />

(Verhältnis: z.B. 3:2,5)<br />

ein Aliquot in die <strong>Extraktion</strong>shülse füllen<br />

Supercritical Fluid Extraction (SFE)<br />

• <strong>Extraktion</strong>sdruck: 329 bar, Temperatur: 55°C<br />

• Dichte: 0,89 g/ml<br />

• statische <strong>Extraktion</strong>: 2 min<br />

• dynamische <strong>Extraktion</strong>: 25 min<br />

• CO2-Fluß: 1,8 ml/min<br />

• Fallenmaterial: ODS, 10°C während der <strong>Extraktion</strong><br />

• Elutions-Lösungsmittel: Acetonitril<br />

ggf.<br />

Derivatisierung<br />

GC/MSD Analyse<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

40


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

SFE-Parameter für ISCO SFX 3560:<br />

• <strong>Extraktion</strong>sdruck: 330 bar, Temperatur: 55°C<br />

• Dichte: 0,89 g/ml<br />

• statische <strong>Extraktion</strong>: 2 min<br />

• dynamische <strong>Extraktion</strong>: 25 min<br />

• CO2-Fluß: 1,8 ml/min<br />

• Lösungsmittel in der Vorlage: 10 ml Aceton:Acetonitril (4:1)<br />

• Temperatur der Vorlage: 0°C<br />

3.1.4.3 Wiederfindungsversuche<br />

3.1.4.3.1 Vorgehensweise bei Dotierungen<br />

Für Wiederfindungsversuche wurde unbehandeltes Probenmaterial zerkleinert <strong>und</strong><br />

portionsweise (z.B. 3 g oder 2,5 g) in 50 ml Bechergläser (hohe Form) eingewogen.<br />

Anschließend wurde mit den Standardlösungen in Aceton dotiert. Die Konzentration<br />

der Standardlösungen wurde so gewählt, daß bis max. 200 µl der Lösung zugegeben<br />

werden mußten. Nach Zugabe <strong>von</strong> z.B. 2 g Hydromatrix wurde der Ansatz intensiv<br />

mit einem Spatel vermischt, für einige Minuten zur Verdampfung des Lösungsmittels<br />

stehen gelassen <strong>und</strong> quantitativ in die <strong>Extraktion</strong>shülse überführt.<br />

Auf ähnliche Art <strong>und</strong> Weise wurden weitere Probenaliquote mit der gleichen Menge<br />

reinen Acetons versetzt <strong>und</strong> wie oben beschrieben weiter aufgearbeitet. Die daraus<br />

erhaltenen Extrakte dienten zur Herstellung <strong>von</strong> „Matrix-Eichungen“.<br />

Wenn eine pH-Wert Einstellung nötig war, wurde zunächst das Probenmaterial auf<br />

den gewünschten pH-Wert eingestellt (z.B. durch Zugabe <strong>von</strong> 50 %iger K2CO3-<br />

Lösung) <strong>und</strong> wie oben beschrieben weiter verfahren.<br />

Bei flüssigen Proben wie Orangensaft wurden auch größere Probenmengen dotiert<br />

<strong>und</strong> mit Hydromatrix im entsprechenden Verhältnis vermischt. In die <strong>Extraktion</strong>shülsen<br />

wurden dann Aliquote dieser Mischung eingewogen. Diese Vorgehensweise<br />

bereitete bei zerkleinertem Obst <strong>und</strong> Gemüse Probleme, da keine ausreichende<br />

Homogenität erzielt werden konnte.<br />

3.1.4.3.2 Wiederfindungen mit HP 7680T<br />

Für die Durchführung <strong>von</strong> Wiederfindungsversuchen wurde zunächst eine Mischung<br />

<strong>von</strong> Pestiziden aus unterschiedlichen Pestizidklassen zusammengestellt. Die Dotierung<br />

erfolgte auf pestizidfreie Apfelmus-Matrix (Dotierung 0,5 µg pro 3 g Probe,<br />

entsprechend 0,167 ppm). Die hierbei erzielten Wiederfindungen <strong>und</strong> Variationskoeffizienten<br />

sind in Tab. 3.1.4-3 angegeben.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

41


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.4-3: Wiederfindungen verschiedener Pestizde mit der SFE-Multimethode<br />

Probe: Apfelmus, Dotierung: 0,5µ/Ansatz (0,167 ppm)<br />

Extraktor: HP 7680T<br />

Pestizid Ansatz Ansatz Ansatz Ansatz MittelWiederVariations- 1 2 3 4 wertfindungkoeffizient Wiederfindungen<br />

Sollwert 0,5µg/3g Ansatz<br />

[%] [%]<br />

HCB 0,478 0,474 0,492 0,479 0,481 96 1,4<br />

Carbofuran 0,504 0,495 0,478 0,486 0,491 98 2,0<br />

Dimethoat 0,492 0,497 0,429 0,490 0,477 95 5,8<br />

Pirimicarb 0,513 0,514 0,496 0,480 0,501 100 2,8<br />

Thiabendazol 0,159 0,157 0,172 0,144 0,158 32 6,3<br />

p,p-DDE 0,448 0,446 0,440 0,421 0,439 88 2,4<br />

Cyproconazol 0,502 0,488 0,486 0,517 0,498 100 2,5<br />

Iprodion 0,480 0,479 0,497 0,500 0,489 98 2,0<br />

Azinphos-Methyl 0,493 0,460 0,494 0,488 0,484 97 2,9<br />

Fenarimol 0,459 0,461 0,472 0,499 0,473 95 3,4<br />

Permethrin 0,429 0,414 0,421 0,405 0,417 83 2,1<br />

Analysenmethode: siehe Anhang 1<br />

Mit Ausnahme <strong>von</strong> Thiabendazol wurden für die extrahierten Substanzen sehr gute<br />

Wiederfindungen erzielt. Es ist zu beachten, daß Thiabendazol zwei basische Stickstoffatome<br />

in seinem Molekül aufweist <strong>und</strong> aus diesem Gr<strong>und</strong> eine <strong>Extraktion</strong> unter<br />

sauren Bedingungen, wie sie in Apfelmus vorliegen, erschwert ist (siehe Kap. 3.1.4.7.2<br />

<strong>und</strong> 3.1.5.3.1). Zudem wurde festgestellt, daß die Elution <strong>von</strong> Thiabendazol <strong>von</strong> der<br />

Festphasenfalle in die Vorlage vermutlich wegen Wechselwirkungen mit freien Silanol-<br />

Gruppen an der Oberfläche des ODS-Fallenmaterials ebenfalls erschwert ist (vgl. hierzu<br />

Kap. 3.1.5.2.2, Wechselwirkung <strong>von</strong> Wirkstoffen mit Oberflächen). Zu berücksichtigen<br />

ist hier auch die geringe Löslichkeit, die Thiabendazol in Acetonitril hat.<br />

In Tab. 3.1.4-4 werden die Wiederfindungsraten <strong>und</strong> Variationskoeffizienten (n=5) für<br />

zahlreichen Verbindungen angegeben die auf pestizidfreie Pfirsich-Martix dotiert<br />

wurden (Dotierung: 0,5 µg pro 3 g entsprechend 0,167 ppm).<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

42


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.4-4: Wiederfindungen verschiedener Pestizde mit der SFE-Multimethode<br />

Probe: Pfirsich, Dotierung 0,5µ/Ansatz (0,167 ppm)<br />

Extraktor: HP 7680T<br />

Pestizid Wiederfindung<br />

Mittelwert<br />

%<br />

Variationskoeffizient<br />

in %<br />

Nachweisgrenze<br />

(3-faches<br />

Gr<strong>und</strong>linienrauschen)<br />

in ppm<br />

Azinphos-Ethyl 86,3 3,2 0,015<br />

Azinphos-Methyl 77,1 6,8 0,02<br />

Benalaxyl 94,7 3,4 0,013<br />

Binapacryl 90,9 3,8 0,013<br />

Biphenthrin 87,0 4,4 0,005<br />

Biphenyl 86,4 5,5 0,005<br />

Bitertanol 86,8 3,6 0,006<br />

Bromazil 80,3 5,7 0,02<br />

Bromophos 94,7 2,7 0,005<br />

Bromophos-Ethyl 108,8 4,3 0,005<br />

Brompropylat 85,2 5,5 0,005<br />

Bupirimat 90,8 7,7 0,025<br />

Buprofezin 90,3 4,6 0,01<br />

Carbaryl 79,0 7,0 0,005<br />

Carbofuran 88,8 2,9 0,005<br />

Chinomethionat 93,7 1,6 0,005<br />

Chlorfenvinphos 95,5 5,9 0,005<br />

Chlorpyrifos 85,9 4,2 0,005<br />

Chlorpyrifos-Methyl 82,9 5,0 0,005<br />

Chlorthalonil 90,9 2,9 0,005<br />

Chlozolinat 94,0 2,2 0,01<br />

Cyfluthrin 103,8 4,0 0,02<br />

Cyhalothrin lambda 81,8 6,3 0,02<br />

Cypermethrin 83,4 6,5 0,04<br />

Cyproconazol 89,1 3,9 0,005<br />

Deltamethrin 71,6 10,2 0,04<br />

Demeton-S-Methyl 83,8 11,4 0,02<br />

Demeton-S-Methyl-Sulfon 64,5 4,2 0,02<br />

Diazinon 84,6 5,5 0,005<br />

Dichlofluanid 76,5 6,8 0,005<br />

Dichloran 83,5 3,2 0,01<br />

p,p-Dichlorbenzophenon* 112,3 24,9<br />

Dicofol* 66,4 5,9 0,04<br />

Dicofol o,p 96,3 9,3 0,007<br />

Dieldrin 108,5 6,3 0,015<br />

Diethofencarb 105,8 1,3 0,005<br />

Dimethoat 81,8 5,2 0,04<br />

Diniconazol 96,3 1,6 0,01<br />

Dioxathion 85,4 5,7 0,008<br />

Diphenylamin 82,7 6,7 0,005<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

43


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Pestizid Mittelwert<br />

in %<br />

Variationskoeffizient<br />

in %<br />

Nachweisgrenze<br />

(3-faches<br />

Gr<strong>und</strong>linienrauschen)<br />

in ppm<br />

Disulfoton 70,3 2,1 0,01<br />

Endosulfan alpha 87,6 5,7 0,02<br />

Endosulfan beta 90,7 2,8 0,02<br />

Endosulfansulfat 117,8 4,1 0,006<br />

Endrin 88,8 4,0 0,01<br />

Ethion 89,3 6,4 0,005<br />

Fenarimol 94,0 3,5 0,025<br />

Fenchlorfos 95,8 1,8 0,005<br />

Fenitrothion 84,9 3,5 0,006<br />

Fenoxycarb 97,2 5,5 0,013<br />

Fenpropathrin 86,5 4,0 0,01<br />

Fenpropimorph 87,8 3,1 0,005<br />

Fenson 89,0 4,2 0,007<br />

Fenthion 86,6 5,0 0,005<br />

Fenthionsulfoxid 85,4 2,3 0,01<br />

Fenvalerat** 118,6 13,1 0,05<br />

Flusilazol 82,8 5,1 0,005<br />

Folpet 67,3 8,0 0,005<br />

Fonofos 91,3 5,4 0,005<br />

Hexaconazol 93,8 3,5 0,01<br />

Hexythiazox 80,8 10,0 0,1<br />

Imazalil 73,4 9,7 0,08<br />

Iprodion 79,3 4,2 0,015<br />

Lindan 94,4 1,6 0,005<br />

Malaoxon 94,4 6,3 0,005<br />

Malathion 86,7 2,8 0,007<br />

Mecarbam 91,4 7,1 0,015<br />

Metalaxyl 92,9 1,7 0,01<br />

Metazachlor 99,3 1,9 0,02<br />

Methidathion 87,9 2,9 0,01<br />

Methiocarb 96,2 5,5 0,015<br />

Mevinphos 85,4 2,4 0,01<br />

Myclobutanil 83,8 1,7 0,033<br />

Nuarimol 88,8 4,4 0,03<br />

Omethoat*** 9,0 14,7 -<br />

Orthophenylphenol 89,3 4,8 0,005<br />

Oxadixyl 90,7 5,5 0,025<br />

Parathion 82,6 4,7 0,005<br />

Parathion-Methyl 86,1 4,9 0,01<br />

Penconazol 86,3 3,1 0,005<br />

Permethrin 106,7 3,7 0,01<br />

Phosalon 78,4 4,7 0,007<br />

Phosmet 83,2 6,9 0,005<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

44


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Pestizid Mittelwert<br />

in %<br />

Nachweisgrenze<br />

(3-faches<br />

Gr<strong>und</strong>linienrauschen)<br />

in ppm<br />

Pirimicarb 81,9 3,2<br />

0,005<br />

Pirimiphos-Methyl 93,2 2,8 0,005<br />

Prochloraz 71,7<br />

Variationskoeffizient<br />

in %<br />

16,5 0,1<br />

Procymidon 83,9 5,2 0,005<br />

Profenofos 92,6 3,5 0,005<br />

Propargit 72,0 5,4 0,013<br />

Propiconazol 84,6 3,4 0,01<br />

Propoxur 88,6 3,2 0,007<br />

Propyzamid 92,3 1,6 0,005<br />

Prothiophos 89,3 3,0 0,005<br />

Pyrazophos 85,3 3,3 0,01<br />

Pyrifenox 1 88,2 3,5<br />

0,015<br />

Pyrifenox 2 84,4 5,9 0,01<br />

Pyrimethanil 90,8 2,7 0,005<br />

Quinalphos 83,3 4,7 0,015<br />

Quintozen 85,8 1,8 0,01<br />

Tebuconazol** 130,0 2,5 0,05<br />

Tebufenpyrad 89,6 2,8 0,005<br />

Tecnazen 88,4 1,2 0,005<br />

Tetradifon 83,2 5,4 0,007<br />

Tetramethrin 86,7 3,7 0,005<br />

Thiabendazol 70,8 9,5 0,015<br />

Tolclofos-Methyl 95,6 1,7 0,005<br />

Tolylfluanid 78,4 5,5 0,005<br />

Triadimefon 91,1 4,2 0,013<br />

Triadimenol 92,9 3,4 0,01<br />

Triazophos 90,2 2,5 0,02<br />

Vinclozolin 83,3 4,6 0,005<br />

Analysenmethode: siehe Anlage 1<br />

* Dicofol wird im Injektor teilweise zu p,p’-Dichlorbenzophenon abgebaut<br />

** gestört<br />

*** hohe Polarität<br />

Im Bereich der Pestizidrückstandsanalytik gilt eine Methode als für einen Stoff geeignet,<br />

wenn die Wiederfindung im Bereich zwischen 70 <strong>und</strong> 110 % liegt. Bei den hier<br />

aufgeführten Stoffen wurde dies lediglich für Omethoat <strong>und</strong> Demeton-S-Methyl-Sulfon<br />

nicht erreicht.<br />

Bei den Stoffen Folpet <strong>und</strong> Dicofol u.a. kommt es, je nach Zustand des Injektionssystems<br />

zu Zersetzungen. Hier ist nicht die <strong>Extraktion</strong>, sondern die Bestimmung<br />

problematisch.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

45


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.4.3.3 Wiederfindungen mit ISCO SFX 3560<br />

Einer pestizidfreien Karottenprobe wurde eine Mischung <strong>von</strong> Pestiziden zudotiert (0,167<br />

ppm). Pro <strong>Extraktion</strong>sansatz wurden je 3 g Probe eingesetzt, die mit 2,5 g Hydromatrix<br />

vermengt wurden. Die folgende Tab. 3.1.4-5 gibt die erzielten Wiederfindungen <strong>und</strong><br />

Variationskoeffizienten an.<br />

Tab. 3.1.4-5: Wiederfindungen verschiedener Pestizde mit der SFE-Multimethode<br />

Probe: Karotte, Dotierung: 0,5µ/Ansatz (0,167 ppm)<br />

Extraktor: ISCO SFX-3560<br />

Pestizid Ansatz Ansatz Ansatz Mittelwert mittlere Variations-<br />

1 2 3<br />

Wieder- koeffizient<br />

Wiederfindung in µg/3g Ansatz findung [%]<br />

(Sollwert 0,5)<br />

HCB 0,454 0,420 0,444 0,439 88 4,0<br />

Carbofuran 0,473 0,462 0,464 0,466 93 1,3<br />

Dimethoat 0,513 0,519 0,531 0,521 104 1,8<br />

Pirimicarb 0,479 0,454 0,464 0,466 93 2,7<br />

Thiabendazol 0,363 0,331 0,369 0,354 71 5,8<br />

p,p-DDE 0,446 0,426 0,451 0,441 88 3,0<br />

Cyproconazol 0,487 0,441 0,450 0,459 92 5,3<br />

Iprodion 0,452 0,425 0,449 0,442 88 3,3<br />

Azinphos-Methyl 0,495 0,447 0,505 0,482 97 6,4<br />

Fenarimol 0,421 0,448 0,466 0,445 89 5,1<br />

Permethrin 0,444 0,414 0,439 0,432 87 3,7<br />

Probe/Hydromatrix 3 g : 2,5 g<br />

Extraktor: ISCO SFX 3560, <strong>Extraktion</strong>sbedingungen: siehe Kap. 3.1.4.2<br />

Bestimmung GC/MSD: siehe Anlage 1<br />

Die hierbei erzielten Wiederfindungen liegen, wie auch bei Verwendung des Extraktors<br />

der Fa. HP, sehr hoch (vgl. Tab. 3.1.4.-3). Bei Thiabendazol ist allerdings hier eine<br />

höhere Wiederfindungsrate erzielt worden. Dies läßt sich zum einen begründen durch<br />

den höheren pH-Wert den die Karottenmatrix im Vergleich zur Apfelmusmatrix hat <strong>und</strong><br />

zum anderen durch die Tatsache, daß beim ISCO- Extraktor die Extrakte direkt in eine<br />

flüssige Phase eingeleitet werden.<br />

Da Carbendazim nicht direkt gaschromatographisch bestimmbar ist, wurde nach der<br />

<strong>Extraktion</strong> eine Derivatisierung mit Pentafluorbenzylbromid durchgeführt. Bei dieser<br />

Reaktion werden auch Thiabendazol <strong>und</strong> Carbofuran umgesetzt (siehe Tab. 3.1.4-6).<br />

Auffällig ist, daß bei Thiabendazol die ermittelte Wiederfindung <strong>von</strong> 71 % ohne<br />

Derivatisierung auf 59 % nach der Derivatisierung gesunken ist. Die Gründe für diese<br />

Abnahme liegen nicht bei der Derivatisierung sondern eher an der Neigung des<br />

Thiabendazols sich an Oberflächen zu adsorbieren. Eine Abnahme der Konzentration<br />

<strong>von</strong> Thiabendazol in Lösungen mit fortschreitender Zeit wurde häufiger festgestellt.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

[%]<br />

46


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.4-6: Wiederfindungen nach Derivatisierung mit PFB-Br<br />

Pestizid Ansatz Ansatz Ansatz Mittelwert mittlere Variations-<br />

1 2 3<br />

Wieder- koeffizient<br />

Wiederfindung in µg/3g Ansatz findung [%]<br />

(Sollwert 0,5)<br />

[%]<br />

Carbofuran 0,461 0,434 0,440 0,445 89 3,2<br />

Thiabendazol 0,288 0,288 0,302 0,293 59 2,8<br />

Carbendazim 0,411 0,423 0,453 0,429 86 5,0<br />

Probe/Hydromatrix 3 g : 2,5 g<br />

Extraktor: ISCO SFX 3560, <strong>Extraktion</strong>sbedingungen: siehe Kap. 3.1.4.2<br />

Bestimmung GC/MSD: siehe Anlage 1<br />

3.1.4.4 Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen<br />

Wie in Tab. 3.1.4-4 bereits dargestellt, wurden die Nachweisgrenzen für eine Vielzahl<br />

<strong>von</strong> Stoffen abgeschätzt (3-faches Gr<strong>und</strong>linien-Rauschen). Für einige ausgewählte<br />

Stoffe aus verschiedenen Stoffgruppen wurden die Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen<br />

nach dem DFG-Eichgeradenverfahren ermittelt (siehe Tab. 3.1.4-7). Hierzu<br />

wurden Wiederfindungsversuche bei vier verschiedenen Konzentrationen jeweils 4 mal<br />

durchgeführt (16 Aufarbeitungen) [80]. Die Dotierungen erfolgten auf Apfelmatrix, wobei<br />

die niedrigste dotierte Konzentration im Bereich der erwarteten Nachweisgrenze lag <strong>und</strong><br />

die höchste ein Zehnfaches hier<strong>von</strong> [81].<br />

Tab. 3.1.4-7: Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen nach DFG [82]<br />

Pestizid<br />

NG (µg/kg) BG (µg/kg) kleinste **<br />

Höchstmenge [34]<br />

(µg/kg)<br />

Azinphos-Methyl 8 12 50<br />

Carbofuran 5 8 200<br />

Cyproconazol 3 8 50<br />

Dimethoat 8 14 50<br />

Fenarimol 9 13 20<br />

Thiabendazol* 6 11 10<br />

Permethrin 6 13 50<br />

Iprodion 11 16 20<br />

HCB 9 16 10<br />

Pirimicarb 8 13 50<br />

p,p´-DDE<br />

Probe/Hydromatrix 3 g : 2,5 g<br />

5 8 50<br />

Extraktor: ISCO SFX 3560, <strong>Extraktion</strong>sbedingungen: siehe Kap. 3.1.4.2<br />

Bestimmung GC/MSD: siehe Anlage 1<br />

*nach Derivatisierung mit PFB-Br, **für Säuglingsnahrung 10 µg/kg<br />

Diese Ergebnisse zeigen, daß die SFE erfolgreich in einem Rückstandslaboratorium zur<br />

routinemäßigen Pestizidanalytik eingesetzt werden kann.<br />

Eine detaillierte Analysenvorschrift zur Bestimmung <strong>von</strong> Pestiziden in Obst <strong>und</strong><br />

Gemüse befindet sich im Anlage 1 (Code 100E3101).<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

47


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.4.5 Methodenvergleich<br />

Um die hier vorgestellte SFE-Multimethode (siehe Anlage 1) mit den herkömmlichen in<br />

der Routineanalytik eingesetzten Multimethoden (DFG-S8 <strong>und</strong> DFG-S19) zu<br />

vergleichen, wurden zahlreiche Proben aus dem Handel parallel untersucht. Die<br />

Ergebnisse sind in Anlage 5 tabellarisch dargestellt.<br />

Aus den Ergebnissen wird ersichtlich, daß durch SFE-<strong>Extraktion</strong> für fast alle Wirkstoffe,<br />

mit den DFG-Methoden vergleichbare Ergebnisse erzielt werden.<br />

Für die zum Teil unterschiedlichen Ergebnisse kommen zusätzlich zu den Unterschieden<br />

bei den <strong>Extraktion</strong>sausbeuten auch weitere Ursachen in Frage:<br />

1. Analytische Sreubreite:<br />

Insbesondere bei Einfach- aber auch bei Doppelbestimmungen ist die statistische<br />

Sicherheit gering. Bei geringen Gehalten ist die analytische Streubreite sehr hoch. Im<br />

allgemeinen wird bei der gängigen Rückstandsanalytik <strong>von</strong> Pestiziden eine<br />

Streubreite <strong>von</strong>:<br />

100 % bei Meßwerten <strong>von</strong> 0,01 mg/kg,<br />

50 % bei Meßwerten <strong>von</strong> 0,1 mg/kg <strong>und</strong><br />

25 % bei Meßwerten <strong>von</strong> 1 mg/kg<br />

angegeben [18]. Diese Größenordnung hat sich oft bei Ringversuchen bestätigt.<br />

2. Inhomogenitäten der Proben (vgl. Kap. 3.1.4.7.1 <strong>und</strong> 3.1.3.1)<br />

3. Fehlerquellen bei der Messung z.B. durch Matrixeffekte (vgl. Kap. 3.1.2.2).<br />

Bedingt durch die analytische Streuung sind einzelne Analysenergebnisse stets mit<br />

einer Unsicherheit behaftet. Um diese Unsicherheit zu verringern werden Mehrfachbestimmungen<br />

durchgeführt <strong>und</strong> Mittelwerte gebildet. Aus diesem Gr<strong>und</strong> wurde eine<br />

Erdbeerprobe aus dem Handel mehrfach untersucht. Insgesamt wurden 5 Untersuchungen<br />

nach DFG-S8 <strong>und</strong> 12 Untersuchungen mit SFE gemacht. Die Untersuchungsergebnisse<br />

sind in Tab. 3.1.4-8 aufgelistet.<br />

5-fach-Bestimmung nach der DFG-S8 Methode:<br />

Die DFG-S8-Methode wurde in einer leicht abgewandelten Form wie folgt durchgeführt:<br />

50 g zerkleinerte Probe werden mit Aceton (Endvolumen 200ml) am Ultra-Turrax<br />

homogenisiert. Der Extrakt wird durch eine Nutsche filtriert. Ein Aliquot (40 ml) des<br />

filtrierten Acetonextraktes wird mit 5 ml gesättigter Natriumchloridlösung <strong>und</strong> 50 ml<br />

Wasser versetzt <strong>und</strong> zwei mal mit je 10 ml Dichlormethan ausgeschüttelt. Die vereinigten<br />

Dichlormethanphasen werden mit Natriumsulfat getrocknet <strong>und</strong> am<br />

Rotationsverdampfer eingeengt. Der eingeengte Extrakt wird in 10 ml Cyclohexan/Essigester<br />

(1:1) aufgenommen. Ein Aliquot da<strong>von</strong> (4 ml) wird gelpermeationschromatographisch<br />

(GPC) gereinigt. Das Eluat wird an der Rotationszentrifuge eingeengt<br />

in Isooctan (mit ISTD) aufgenommen <strong>und</strong> zur Chromatographie verwendet.<br />

Die bei diesem Methodenvergleich erzielten Ergebnisse werden in Tab. 3.1.4-8 sowie in<br />

den Abb. 3.1.4-3 <strong>und</strong> 3.1.4-4 aufgeführt.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

48


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.4-8: Ergebnisse des Methodenvergleiches DFG-S8 (mod.) <strong>und</strong><br />

SFE-Multimethode<br />

Pestizid Mittelwerte Standard-<br />

Variationsabweichungen<br />

koeffizienten<br />

SFE S8 SFE S8 SFE S8*<br />

α-Endosulfan 0,009 0,009 0,0013 0,0009 17% 10%<br />

β-Endosulfan 0,023 0,020 0,0029 0,001 13% 5%<br />

Endosulfansulfat 0,027 0,024 0,0033 0,001 12% 4,2%<br />

Metalaxyl 0,106 0,082 0,0067 0,005 6% 6,1%<br />

*Alle 5 Bestimmungen mit der DFG-S8-Methode wurden nebeneinander aufgearbeitet (keine echten<br />

Wiederholbestimmungen)<br />

Abb. 3.1.4-3: Mehrfachbestimmung einer Erdbeerprobe mit der SFE-Multimethode<br />

0,14<br />

0,12<br />

0,1<br />

0,08<br />

0,06<br />

0,04<br />

0,02<br />

0<br />

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 MW<br />

Nummer des Versuchs<br />

Metalaxyl<br />

Endosulfansulfat<br />

ß-Endosulfan<br />

a-Endosulfan<br />

49<br />

Mittelwerte in ppm<br />

Metalaxyl 0,106<br />

a-Endosulfan 0,009<br />

ß-Endosulfan 0,023<br />

Endosulfansulfat 0,027<br />

Abb. 3.1.4-4: Mehrfachbestimmung einer Erdbeerprobe mit der DFG-S8-Methode<br />

mg/kg<br />

0,14<br />

0,12<br />

0,1<br />

0,08<br />

0,06<br />

0,04<br />

0,02<br />

0<br />

1 2 3 4<br />

5<br />

Nummer des Versuchs<br />

6 MW<br />

Metalaxyl<br />

Endosulfansulfat<br />

ß-Endosulfan<br />

a-Endosulfan<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

Mittelwerte in ppm<br />

Metalaxyl 0,082 mg/kg<br />

a-Endosulfan 0,009<br />

ß-Endosulfan 0,020<br />

Endosulfansulfat 0,024


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

In Tab. 3.1.4-9 werden die einzelnen Arbeitsschritte die bei der SFE-Multimethode<br />

(siehe Anlage 1) <strong>und</strong> der DFG S8 Methode anfallen, gegenübergestellt.<br />

Tab. 3.1.4-9: Gegenüberstellung der DFG-S8 <strong>und</strong> der SFE-Methode:<br />

SFE<br />

DFG S8 (modifiziert)<br />

Arbeitsschritte:<br />

• Probenzerkleinerung <strong>und</strong><br />

• Probenzerkleinerung <strong>und</strong><br />

Homogenisierung<br />

Homogenisierung<br />

• einwiegen<br />

• einwiegen<br />

• Zugabe <strong>von</strong> Adsorbens<br />

• mit Aceton homogenisieren<br />

• Einfüllen in die <strong>Extraktion</strong>shülse<br />

• Aliquotierung<br />

• Vorlage mit ISTD-Lösung versetzen • Kochsalzlösung zugeben<br />

• <strong>Extraktion</strong><br />

• mit Dichlormethan ausschütteln<br />

• Chromatographie<br />

• mit Natriumsulfat trocknen<br />

• am Rotationsverdampfer konzentrieren<br />

• in 10 ml Ethylacetat/Cyclohexan<br />

aufnehmen<br />

• Gelpermeationschromatographie<br />

• Lösungsmittel entfernen<br />

• mit ISTD-Lösung aufnehmen<br />

• Chromatographie<br />

Chemikalienverbrauch:<br />

40 g hochreines Kohlendioxid<br />

techn. Kohlendioxid zur Kühlung der Falle<br />

3 g Hydromatrix<br />

6,5 ml Acetonitril<br />

5 ml Cyclohexan: Ethylacetat 1:1<br />

Arbeitszei für Aufarbeitung:<br />

4 St<strong>und</strong>en/12 Proben<br />

200 ml Aceton<br />

20 ml Dichlormethan<br />

300 ml Cyclohexan/Essigester (1:1)<br />

Natriumsulfat<br />

Natriumchlorid<br />

Arbeitszeit für Aufarbeitung:<br />

16 St<strong>und</strong>en/12 Proben<br />

Der Vergleich zeigt, daß die Vorteile der SFE vor allem in der Effizienz <strong>und</strong> der<br />

Einsparung <strong>von</strong> Lösungsmitteln <strong>und</strong> Personalkosten liegen.<br />

Die wenigen Arbeitsschritte <strong>und</strong> die weitgehende Automatisierung bei der SFE<br />

minimieren die Fehlerquellen <strong>und</strong> müßten zu einer besseren Vergleichbarkeit<br />

zwischen Laboratorien führen.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

50


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.4.6 Matrixbezogene Multimethoden<br />

Unsere Erfahrungen der letzten Jahre haben gezeigt, daß in die Praxis der Lebensmittelüberwachung<br />

die Entwicklung <strong>und</strong> Verwendung <strong>von</strong> matrixbezogenen Multimethoden<br />

viele Vorteile hat. Eine matrixbezogene Multimethode berücksichtigt ggf. die<br />

Eigenheiten der betreffenden Matrix (pH-Wert, Wasser- <strong>und</strong> Fettgehalt) <strong>und</strong> zielt nur auf<br />

Stoffe ab, die in dieser Matrix zu erwarten sind. Die selektive Erfassung der<br />

betreffenden Pestizide wird durch die Verwendung eines GC/MSD im SIM-Modus als<br />

Bestimmungssystem ermöglicht.<br />

Um festzustellen, welche Wirkstoffe für die einzelnen Probenarten relevant sind, wurden<br />

Daten aus Jahresberichten <strong>von</strong> Untersuchungseinrichtungen der B<strong>und</strong>esrepublik<br />

Deutschland, Monitoring-Daten verschiedener Staaten sowie Literaturangaben<br />

ausgewertet. Darüber hinaus wurden z.B. aus dem INTERNET Anwendungsempfehlungen<br />

<strong>und</strong> Angaben zu angewendeten Pestizidmengen gesammelt.<br />

Die Anwendung <strong>von</strong> matrixbezogenen analytischen Verfahren ermöglicht ein zielgerichteteres<br />

<strong>und</strong> dadurch effektiveres Arbeiten, da der Umfang der Untersuchungen<br />

auf Stoffe begrenzt wird, die für die jeweilige Matrix relevant sind. Auch im Hinblick auf<br />

die Qualitätssicherung hat diese Vorgehensweise Vorteile, da die Methodenvalidierung<br />

nur für die relevanten Stoff-Matrix-Kombinationen erfolgen muß.<br />

Für folgende Matrizes wurden spezifische Bestimmungsmethoden entwickelt <strong>und</strong><br />

teilweise validiert: Trauben, Kernobst, Zitrusfrüchte <strong>und</strong> Beerenobst.<br />

3.1.4.6.1 Pestizide in Zitrusfrüchten<br />

Zitrusfrüchte zählen zu den Obstsorten die weltweit am meisten konsumiert werden.<br />

Beim Anbau <strong>von</strong> Zitrusfrüchten werden üblicherweise mehrfach Pflanzenschutzmittel<br />

(überwiegend Fungizide <strong>und</strong> Insektizide) eingesetzt. Meist findet nach der Ernte auch<br />

eine Behandlung der Oberfläche mit Fungiziden statt. Die Früchte beinhalten daher oft<br />

eine Vielzahl unterschiedlicher Wirkstoffe. Bei Untersuchungen <strong>von</strong> Zitrusfrüchten im 2.<br />

Halbjahr 1996 am CVUA Stuttgart wurde eine mittlere Anzahl <strong>von</strong> 6,0 verschiedenen<br />

Wirkstoffen pro Probe festgestellt [29].<br />

Die in Zitrusfrüchten vorkommenden Wirkstoffe unterscheiden sich zum Teil erheblich in<br />

ihrem chemischen Verhalten, so daß derzeit zu ihrer Erfassung der Einsatz mehrerer<br />

analytischer Verfahren notwendig ist [vgl. 29]. Diese Verfahren sind z.T. sehr zeit- <strong>und</strong><br />

arbeitsaufwendig <strong>und</strong> benötigen hohe Mengen an organischen Lösungsmitteln.<br />

Ein Ersatz einiger dieser Methoden durch weitgehend automatisierte SFE-Methoden<br />

würde viele Vorteile mit sich bringen. Dies wurde am Beispiel 2,4-D <strong>und</strong> Carbendazim<br />

gezeigt (siehe Kap. 3.1.5.4.2 <strong>und</strong> 3.1.5.3.2). Diese bei Zitrusfrüchten (2,4-D) <strong>und</strong> Obst<br />

allgemein (Carbendazim) häufig angewendeten Verbindungen lassen sich mit Hilfe der<br />

SFE bedeutend schneller <strong>und</strong> einfacher als mit den derzeit gebräuchlichen naßchemischen<br />

Einzelbestimmungs-Methoden bestimmen.<br />

Um festzustellen, inwieweit sich die für Zitrusfrüchte relevanten Stoffe auch mittels SFE<br />

erfassen lassen, wurden Wiederfindungsversuche durchgeführt.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

51


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Die erzielten Wiederfindungsraten werden in Tab. 3.1.4-10 <strong>und</strong> in Abb. 3.1.4-5 aufgeführt.<br />

Zum Vergleich sind in Abb. 3.1.4-5 auch die entsprechenden Daten einer<br />

kürzlich in unserem Hause entwickelten naßchemischen Methode [29] mit aufgeführt.<br />

Tab. 3.1.4-10: Wiederfindung <strong>von</strong> Stoffen aus dotierten Orangen (n=5)<br />

Wiederfindung in % Variationskoeffizienten %<br />

Pestizid SFE naßchemisch SFE naßchemisch<br />

(0,167 ppm) nach [29]<br />

(0,25 ppm)<br />

nach [29]<br />

Biphenyl 94 85 3,5 6,5<br />

Brompropylat 70 91 6,9 3,1<br />

Chlorfenvinphos 79 87 6 3,9<br />

Chlorpyriphos-Methyl 82 96 5,8 5,1<br />

Diazinon 84 89 4,1 5,2<br />

Dichloran 90 70 17,4 8,1<br />

Dicofol* 81 95 9,9 5<br />

Dimethoat 87 84 9,1 9,9<br />

α-Endosulfan 71 90 6,8 5,1<br />

ß-Endosulfan 92 91 4,8 4,7<br />

Endosulfansulfat 80 94 20,5 3,2<br />

Fenarimol 100 76 9,5 6,1<br />

Fenitrothion 72 90 6,4 4,8<br />

Fenthion 81 80 12,9 5,1<br />

Fonofos 95 100 7,7 3,9<br />

Mecarbam 90 92 10,1 4,6<br />

Metalaxyl 108 80 3,1 3,4<br />

Methidathion 76 87 14,1 5,4<br />

Myclobutanil 105 96 3,5 4,7<br />

Parathion 83 92 4,5 4,6<br />

Parathion-Methyl 96 89 12,2 4,2<br />

Pirimiphos-Methyl 74 84 5,4 9,8<br />

Prochloraz 92 106 3,6 5,3<br />

Procymidon 103 89 3,3 3,6<br />

Propiconazol 87 90 4,8 6,1<br />

Pyridaphenthion 99 82 11,6 6,4<br />

Quinalphos 79 89 4,5 5,1<br />

Tetradifon 84 94 4,4 3,4<br />

Vinclozolin 89 91 2,8 3,4<br />

Analysenmethode: siehe Anlage 1, Code: 100E3101<br />

Probe: gefroren zerkleinerte Orangen, Probenmenge 3g, Hydromatrix 1,5g<br />

Bestimmung: mittels GC/MSD<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

52


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.4-5: Wiederfindungen bei Dotierungsversuchen nach der SFE-Methode <strong>und</strong><br />

nach [29], dotierte Matrix: Orange (je n=5), Dotierungen 0,167 ppm (SFE),<br />

0,25 ppm (naßchemische Methode)<br />

Vinclozolin<br />

Tetradifon<br />

Quinalphos<br />

Pyridaphenthion<br />

Propiconazol<br />

Procymidon<br />

Prochloraz<br />

Pirimiphos-Methyl<br />

Parathion-Methyl<br />

Parathion<br />

Myclobutanil<br />

Methidathion<br />

Metalaxyl<br />

Mecarbam<br />

Fonofos<br />

Fenthion<br />

Fenitrothion<br />

Fenarimol<br />

Endosulfan-Sulfat<br />

b-Endosulfan<br />

a-Endosulfan<br />

Dimethoat<br />

Dicofol*<br />

Dichloran<br />

Diazinon<br />

Chlorpyriphos-Methyl<br />

Chlorfenvinphos<br />

Brompropylat<br />

Biphenyl<br />

0 35 70 105<br />

SFE naßchemisch [3]<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

53


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.4.6.2 Pestizide in Kernobst<br />

Äpfel <strong>und</strong> Birnen gehören zu den am meisten konsumierten Obstsorten in Deutschland.<br />

Während des Anbaus werden mehrfach Insektizide <strong>und</strong> Fungizide eingesetzt.<br />

Insbesondere Äpfel werden häufig über einen längeren Zeitraum unter klimatisierten<br />

Bedingungen gelagert. Vor der Einlagerung werden die Früchte oft durch Eintauchen in<br />

Lösungen, die Fungizide <strong>und</strong>/oder Bräunungsverhütungsmittel (z.B. Diphenylamin)<br />

enthalten, behandelt. Nach den Untersuchungen der letzten Jahre zeigt Kernobst eine<br />

vergleichsweise geringe Pestizidbelastung, wobei im allgemeinen in Birnen mehr<br />

Fungizide gef<strong>und</strong>en werden als in Äpfel.<br />

Zur Ermittlung der Wiederfindungen wurde jeweils 0,33 ppm der Wirkstoffe auf<br />

pestizidfreies Apfelmus dotiert. Die folgende Tab. 3.1.4-11 gibt die erzielten Wiederfindungen<br />

<strong>und</strong> Variationskoeffizienten für n=5 an.<br />

Tab. 3.1.4-11: ermittelte Wiederfindungen <strong>von</strong> Pestiziden aus dotiertem Apfelmus<br />

, Dotierungsmenge 0,33 ppm, <strong>Extraktion</strong>sgerät ISCO SFX 3560<br />

Pestizid Mittlere StandardVariations- Bemerkungen<br />

Wiederfindung abweichungkoeffizient in %<br />

in %<br />

Azinphos-Methyl 104,2 9,6 9,2<br />

Biphenthrin 76,1 3,2 4,2<br />

Brompropylat 91,0 4,5 4,9<br />

Captan 75,6 6,3 8,4 zersetzt sich im Injektor<br />

Carbaryl 97,0 3,3 3,4<br />

Chlorpyrifos 89,8 4,9 5,4<br />

Chlorpyrifos-Methyl 87,7 5,7 6,5<br />

Cyhalothrin lambda 81,4 5,1 6,3<br />

Cypermethrin 71,7 4,2 5,8<br />

Deltamethrin 71,0 6,3 8,8<br />

Diazinon 86,6 6,7 7,8<br />

Dichlofluanid 92,4 7,7 8,4<br />

Dicofol 70,8 17,3 24,4 zersetzt sich im Injektor<br />

Dimethoat 99,0 5,8 5,8<br />

Diphenylamin 108,0 17,4 16,1<br />

α-Endosulfan 88,9 4,8 5,4<br />

ß-Endosulfan 75,1 7,8 10,4<br />

Fenpropathrin 80,7 3,0 3,8<br />

Fenthion 84,6 5,0 6,0<br />

Fenvalerat 81,2 3,2 3,9<br />

Flusilazol 84,2 2,4 2,9<br />

Folpet 76,0 4,9 6,4<br />

Imazalil 89,4 8,0 9,0<br />

Iprodion 87,1 11,1 12,7 Zersetzung im Injektor<br />

Malathion 93,1 3,4 3,7<br />

Omethoat 14,7 1,4 9,3 hohe Polarität<br />

Parathion-Methyl 87,3 4,6 5,3<br />

Phosalon 93,3 4,7 5,0<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

54


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Pestizid Mittlere<br />

Wiederfindung<br />

in %<br />

Standardabweichung<br />

Variationskoeffizient<br />

in %<br />

Bemerkungen<br />

Phosmet 94,2 3,7 3,9<br />

Pirimicarb 98,2 5,2 5,3<br />

Procymidon 93,8 3,7 3,9<br />

Propargit 78,7 9,1 11,5<br />

Quinalphos 92,8 9,7 10,5<br />

Tetradifon 93,4 4,4 4,8<br />

Thiabendazol 43,8 5,5 12,6 pH-Wert nicht eingestellt<br />

Tolylfluanid 92,7 4,4 4,7<br />

Vinclozolin 90,8 6,1 6,7<br />

Probe/Hydromatrix 3 g : 2,5 g<br />

Extraktor: ISCO SFX 3560, <strong>Extraktion</strong>sbedingungen: siehe Kap. 3.1.4.2<br />

Bestimmung GC/MSD: siehe Anlage 1<br />

Während Dimethoat (Löslichkeit in Wasser 39,8 mg/L, Po/w 0,74 [136]) sich noch gut<br />

mittels SFE extrahieren läßt, sind die Wiederfindungen beim polareren Abbauprodukt<br />

Omethoat (Po/w -0,74 [136]) unbefriedigend.<br />

3.1.4.6.3 Pestizide in Beerenobst<br />

Beerenobst ist stark anfällig gegen Pilzbefall <strong>und</strong> wird daher häufig mehrfach mit<br />

Fungiziden behandelt. Neben der einheimischen Produktion, die im Frühsommer<br />

vermarktet wird, werden in den Monaten Januar bis April große Mengen Erdbeeren aus<br />

Marokko, Spanien <strong>und</strong> Italien importiert.<br />

In den letzten Jahren wurden in spanischen Erdbeeren eine ganze Reihe auch neuer<br />

Pestizide nachgewiesen.<br />

Für einige der vorkommenden Pestizide wurden Wiederfindungsversuche durchgeführt.<br />

Die Ergebnisse sind in Tab. 3.1.4-12 aufgeführt.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

55


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.4-12: Wiederfindungen <strong>von</strong> Pestiziden aus dotierten Erdbeeren<br />

, Dotierungsmenge 0,33 ppm, <strong>Extraktion</strong>sgerät HP 7680T, (n=5)<br />

Pestizid Mittlere Wiederfindung Variationskoeffizient<br />

in %<br />

in %<br />

Chlorpyrifos-Methyl 93 10,2<br />

Cyfluthrin 63 7,2<br />

Cypermethrin 62 7,7<br />

Cyproconazol 97 1,4<br />

Dicofol 101 10,4<br />

Dimethoat 95 6,2<br />

α-Endosulfan 81 9,5<br />

ß-Endosulfan 95 9,1<br />

Endosulfansulfat 85 10,5<br />

Fenarimol 99 2,9<br />

Folpet 86 14,4<br />

Lindan 87 5,9<br />

Myclobutanil 101 2,6<br />

Pyrifenox 1 92 2,5<br />

Pyrifenox 2 93 2,7<br />

Procymidon 100 6,9<br />

Tolclofos-Methyl 93 9,2<br />

Analysenmethode: siehe Anlage 1<br />

3.1.4.6.4 Pestizide in Tafeltrauben<br />

Trauben werden mittlerweile über das ganze Jahr hinweg angeboten. Während<br />

europäische Ware hauptsächlich im Sommer <strong>und</strong> Herbst angeboten wird, werden in der<br />

restlichen Zeit die Früchte vor allem aus Südamerika <strong>und</strong> Südafrika importiert. Da<br />

Trauben anfällig gegen Schimmelbefall sind, werden sie häufig mehrfach mit<br />

Fungiziden behandelt. Insbesondere Trauben aus dem Mittelmeerraum (Türkei,<br />

Griechenland, Italien) weisen häufig Mehrfachrückstände auf.<br />

Für einige der vorkommenden Pestizide wurden Wiederfindungsversuche durchgeführt.<br />

Die Ergebnisse sind in Tab. 3.1.4-13 <strong>und</strong> tab. 3.1.4-14 aufgeführt.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

56


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.4-13: Wiederfindungen <strong>von</strong> Pestiziden aus dotierten Trauben<br />

, Dotierungsmenge 0,167ppm, <strong>Extraktion</strong>sgerät ISCO SFX 3560<br />

Pestizid Mittlere StandardVariations- Wiederfindung abweichungkoeffizient in %<br />

in %<br />

Brompropylat 91,3 3,8 4,2<br />

Chlorpyrifos 86,6 2,7 3,1<br />

Chlorthalonil 85,9 4,8 5,6<br />

Chlozolinat 81,9 4,1 5,0<br />

Deltamethrin 65,4 9,5 14,6<br />

Dichlofluanid 82,1 3,1 3,8<br />

Diethofencarb 98,9 3,6 3,6<br />

Dimethoat 85,5 7,4 8,6<br />

Endosulfan, alpha 86,5 2,9 3,3<br />

Endosulfan, beta 86,3 4,6 5,3<br />

Endosulfansulfat 91,3 8,7 9,5<br />

Folpet 81,2 12,4 15,3<br />

Folpet Abbau 87,4 9,1 10,4<br />

Iprodion 86,3 6,8 7,9<br />

Iprodion Abbau 78,4 6,9 8,8<br />

L-Cyhalothrin 78,5 3,9 5,0<br />

Myclobutanil 84,7 5,0 5,9<br />

Oxadixyl 89,7 3,7 4,1<br />

Parathion-Methyl 79,9 4,8 6,0<br />

Penconazol 92,1 3,2 3,5<br />

Procymidon 93,2 2,9 3,1<br />

Pyrazophos 102,8 3,1 3,1<br />

Pyrimethanil 99,1 4,3 4,4<br />

Tebuconazol 89,6 6,1 6,8<br />

Tetradifon 89,5 4,4 4,9<br />

Tolylfluanid 87,3 2,7 3,1<br />

Triadimefon 91,8 4,9 5,3<br />

Triadimenol 102,8 4,4 4,3<br />

Vinclozolin 92,5 3,5 3,8<br />

Probe/Hydromatrix 3 g : 2,5 g<br />

Extraktor: ISCO SFX 3560, <strong>Extraktion</strong>sbedingungen: siehe Kap. 3.1.4.2<br />

Bestimmung GC/MSD: siehe Anlage 1<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

57


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.4-14: Wiederfindungen <strong>von</strong> Pestiziden aus dotierten Trauben<br />

Dotierungsmenge 0,6 ppm, <strong>Extraktion</strong>sgerät HP 7680T<br />

Pestizid Mittlere Standard- Variationskoeffizient<br />

Wiederfindung<br />

in %<br />

abweichung<br />

in %<br />

Brompropylat 87,5 28,6 5,5<br />

Chlorpyrifos 88,7 19,1 3,6<br />

Chlozolinat 95,1 32,8 5,7<br />

Cyhalothrin 74,0 15,6 3,5<br />

Diethofencarb 89,0 25,0 4,7<br />

Endosulfan, alpha 94,2 18,3 3,2<br />

Endosulfan, beta 96,9 23,4 4,0<br />

Endosulfansulfat 97,6 24,9 4,3<br />

Myclobutanil 95,4 5,7 1,0<br />

Oxadixyl 97,5 22,0 3,8<br />

Penconazol 92,3 26,0 4,7<br />

Procymidon 97,8 18,1 3,1<br />

Pyrimethanil 97,6 33,4 5,7<br />

Tebuconazol 76,2 14,9 3,3<br />

Tetradifon 74,8 31,0 6,9<br />

Tolylfluanid 65,0 46,2 11,9<br />

Triadimefon 95,5 30,5 5,3<br />

Triadimenol 97,9 16,3 2,8<br />

Vinclozolin 99,0 28,7 4,8<br />

Analysenmethode: siehe Anlage 1<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

58


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.4.7 Einflüsse verschiedener Parameter auf die<br />

<strong>Extraktion</strong>sausbeuten<br />

3.1.4.7.1 Einfluß der Zerkleinerung auf die Probenhomogenität<br />

Wegen der geringen Probenmenge, die bei der SFE eingesetzt werden kann, ist es<br />

erforderlich eine sehr gute Probenhomogenität zu erzielen, damit ein statistisch<br />

repräsentatives Ergebnis erzielt werden kann. Eine sehr gute Feinzerkleinerung <strong>und</strong><br />

damit auch Homogenität kann erreicht werden, wenn die grob zerkleinerte Teilprobe<br />

zunächst tiefgefroren <strong>und</strong> erst in gefrorenen Zustand feinzerkleinert wird (siehe auch<br />

Kap. 3.1.3.1).<br />

Dies wurde in folgendem Versuch demonstriert: Trauben mit Rückständen an<br />

Carbendazim wurden sowohl in frischem als auch in tiefgefrorenem Zustand zerkleinert.<br />

Die auf dieser Weise zerkleinerten Proben wurden je 7 mal extrahiert. Die dabei<br />

ermittelten Carbendazim-Gehalte waren nahezu gleich. Die gefroren zerkleinerte Probe<br />

wies jedoch eine wesentlich geringere Schwankung der Analysenergebnisse auf (vgl.<br />

Tab. 3.1.4-15)<br />

Tab. 3.1.4-15: Einfluß der Feinzerkleinerung auf die Probenhomogenität<br />

Matrix: Tafeltrauben (Alphonse Lavallee)<br />

„frisch“ zerkleinert gefroren zerkleinert<br />

Mittlerer<br />

Carbendazim-Gehalt<br />

Standardabweichung<br />

in %<br />

Analysenmethode: siehe Anlage 2<br />

1,76 mg/kg 1,73 mg/kg<br />

10,9 (n=7) 4,4 (n=7)<br />

3.1.4.7.2 Einfluß der Polarität der Analyten auf die Extrahierbarkeit<br />

Überkritisches Kohlendioxid ist ein recht unpolares Lösungsmittel <strong>und</strong> ist daher gut<br />

zur <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> unpolaren Analyten geeignet. Bei Gegenwart <strong>von</strong> Wasser in der<br />

Probe wirkt dieses als Modifier, so daß eine gute Extrahierbarkeit <strong>von</strong> mittelpolaren<br />

Pestiziden gegeben ist. Die <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Analyten mit hoher Polarität ist jedoch<br />

schwieriger. Dies hat sich bei verschiedenen Versuchen gezeigt. So ist zum Beispiel<br />

Dimethoat besser extrahierbar als Omethoat <strong>und</strong> Methomyl besser extrahierbar als<br />

das polarere Oxamyl. In der Reihe Methiocarb, Methiocarb-Sulfon <strong>und</strong> Methiocarb-<br />

Sulfoxid verschlechtert sich die Extrahierbarkeit mit zunehmender Polarität (siehe<br />

Tab. 3.1.5-34 in Kap. 3.1.5.5.2.6).<br />

Die Extrahierbarkeit <strong>von</strong> basischen Verbindungen ist bei niedrigen pH-Werten <strong>und</strong><br />

<strong>von</strong> sauren Verbindungen bei hohen pH-Werten schlecht, da unter diesen Bedingungen<br />

die Verbindungen zu einem Großteil ionisch vorliegen <strong>und</strong> daher eine hohe<br />

Polarität aufweisen.<br />

So entzieht sich z.B. die Substanz 2,4-D, die unter alkalischen Bedingungen fast<br />

ausschließlich als polares Anion vorliegt, der <strong>Extraktion</strong>. Unter sauren Bedingungen<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

59


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

dagegen liegt die leicht extrahierbare Säureform vor. Analoges gilt auch für weitere<br />

Substanzen wie z.B. Thiabendazol, Carbendazim <strong>und</strong> Imazalil, die unter sauren<br />

Bedingungen zu einem erheblichen Anteil als Kationen vorliegen. Diese Verbindungen<br />

lassen sich am besten im Alkalischen extrahieren (siehe auch Kap. 3.1.5.3.2).<br />

Wie in Abb. 3.1.4-6 ersichtlich, können auch bei <strong>Extraktion</strong>en mit überkritischem<br />

Kohlendioxid die <strong>Extraktion</strong>sausbeuten durch eine geeignete Einstellung des pH-Wertes<br />

verbessert werden (siehe auch Kap. 3.1.5.3.1 <strong>und</strong> 3.1.5.4.3).<br />

Abb. 3.1.4-6: Einfluß des pH auf die Extrahierbarkeit <strong>von</strong> 2,4-D <strong>und</strong> Carbendazim<br />

Recoveries (%)<br />

100<br />

80<br />

60<br />

40<br />

20<br />

0<br />

Carbendazim 2,4-D<br />

pH 2.5<br />

pH 4<br />

pH 7<br />

pH 9.5<br />

3.1.4.7.3 Einfluß des Wassergehaltes auf die Extrahierbarkeit unpolarer Analyten<br />

Hohe Wassergehalte behindern die <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> unpolaren Verbindungen wie<br />

Organochlorpestiziden <strong>und</strong> Pyrethroiden. Für diese Verbindungen können bessere<br />

Wiederfindungsraten erreicht werden, wenn die Proben mit mehr Adsorbens (Hydromatrix,<br />

Hymx) vermischt werden.<br />

Aus Abb. 3.1.4-7 wird ersichtlich, daß bei einigen Verbindungen mit zunehmendem<br />

Proben / Hydromatrix Verhältnis eine starke Abnahme der Wiederfindungen einhergeht.<br />

Insbesondere bei lipophilen Verbindungen mit sehr geringer Wasserlöslichkeit wie bei<br />

den Pyrethroiden (Löslichkeit in Wasser 1 - 500 µg/L [119]) sind diese Effekte stärker<br />

ausgeprägt als bei Verbindungen mit einer verhältnismäßig größeren Löslichkeit wie<br />

z.B. Lindan (7 mg/L) (siehe hierzu auch Kap. 3.1.7.1).<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

60


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.4-7: Einfluß des Wassergehaltes auf die Extrahierbarkeit unpolarer<br />

Pestizide<br />

Recoveries %<br />

100<br />

80<br />

60<br />

40<br />

20<br />

0<br />

0.6 0.8 1.0 1.2 1.4 1.6<br />

Sample/Hymx<br />

Ratio<br />

Biphenthrin<br />

Deltamethrin<br />

Cyhalothrin<br />

Die Polarität des überkritischen Kohlendioxids nimmt mit steigendem Gehalt an<br />

gelöstem Wasser zu („modifier“-Wirkung <strong>von</strong> Wasser). Die Fähigkeit des Fluids<br />

lipophile Substanzen zu lösen nimmt somit mit steigendem Wassergehalt ab. Man<br />

könnte annehmen, daß dies die Ursache für die schlechtere Wiederfindung <strong>von</strong><br />

Cypermethrin ist. Die Löslichkeit <strong>von</strong> Wasser in überkritischem Kohlendioxid ist<br />

jedoch sehr gering (Sättigungskonzentration etwa 3 mg/g [11]). Zudem weist das auf<br />

der Oberfläche des Adsorbens verteilte Wasser eine sehr große Oberfläche auf, so<br />

daß eine rasche Gleichgewichtseinstellung (Sättigung) zu erwarten ist. Die<br />

Absättigung des überkritischen Kohlendioxids mit Wasser dürfte demnach kurz nach<br />

dem ersten Kontakt mit der wasserhaltigen Probe erfolgen. Ein unterschiedlicher Absättigungsgrad<br />

des Fluids kommt demnach als Ursache für den oben genannten<br />

Bef<strong>und</strong> eher nicht in Frage.<br />

Die ziemlich unpolaren Substanzen neigen dazu sich an unpolare Oberflächen wie<br />

Wachs-, Cutin- <strong>und</strong> Ölschichten zu adsorbieren. Es ist vorstellbar, daß beim Verreiben<br />

der Probe mit Hydromatrix solche lipophilen Bestandteile teilweise an der<br />

unregelmäßigen Oberfläche der Hydromatrix haften bleiben <strong>und</strong> dort mehr oder<br />

weniger <strong>von</strong> einer Wasserfilm überzogen <strong>und</strong> abgeschirmt werden. Die darin/darüber<br />

liegenden Wirkstoffe wären in diesem Fall für das lipophile <strong>Extraktion</strong>sfluid nur<br />

schwer zugänglich.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

Permethrin<br />

Cyfluthrin<br />

Cypermethrin<br />

Fenpropathrin<br />

Fenvalerat<br />

DDE<br />

Heptachlor<br />

Dieldrin<br />

Lindan<br />

61


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.4.7.4 Abbau <strong>von</strong> Pestiziden während der Lagerung im Autosampler<br />

Im Gegensatz zu herkömmlichen naßchemischen Analysenmethoden, bei denen die<br />

Proben in der Regel direkt nach ihrer Wägung extrahiert werden, lagern bei der SFE die<br />

aufgearbeiteten Proben oft mehrere St<strong>und</strong>en im Probengeber des <strong>Extraktion</strong>sgerätes<br />

bei Raumtemperatur.<br />

Bei zahlreichen Wiederfindungsversuchen hat sich gezeigt, daß oxidations- oder<br />

hydrolyseempfindliche Substanzen bereits abgebaut werden, wenn die <strong>Extraktion</strong> nicht<br />

unmittelbar nach der Probenvorbereitung erfolgt, sofern die Proben nicht bis dahin<br />

tiefgefroren werden. Abb. 3.1.4-8 <strong>und</strong> 3.1.4-9 zeigt das Abbauverhalten einiger dieser<br />

empfindlichen Verbindungen in zwei verschiedenen Matrizes auf.<br />

Abb. 3.1.4-8: Abbau <strong>von</strong> Pestiziden während der Lagerung in der <strong>Extraktion</strong>shülse<br />

Wiederfindung [%]<br />

Salat<br />

pH∼6<br />

110<br />

100<br />

90<br />

80<br />

70<br />

60<br />

50<br />

40<br />

30<br />

20<br />

10<br />

0<br />

Diazinon<br />

Dioxacarb<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

Disulfoton<br />

Ethiofencarb<br />

Tolylfluanid<br />

Chlozolinate<br />

Dichlofluanid<br />

Folpet<br />

16<br />

30<br />

8<br />

5<br />

Zeit (h)<br />

3<br />

0<br />

62


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.4-9: Abbau <strong>von</strong> Pestiziden während der Lagerung in der <strong>Extraktion</strong>shülse<br />

Wiederfindung [%]<br />

Trauben<br />

pH∼3,5<br />

110<br />

100<br />

90<br />

80<br />

70<br />

60<br />

50<br />

40<br />

30<br />

20<br />

10<br />

0<br />

Tolylfluanid<br />

Diazinon<br />

Dichlofluanid<br />

Fenvalerat<br />

Chlozolinate<br />

Folpet<br />

Disulfoton<br />

Ethiofencarb<br />

Dioxacarb<br />

20<br />

8<br />

Zeit (h)<br />

Wie Abb. 3.1.4-8 zeigt, ist die Matrix nicht ohne Einfluß. So wird zum Beispiel Dioxacarb<br />

unter sauren Bedingungen viel schneller abgebaut als unter neutralen Bedingungen<br />

(siehe hierzu Kap. 3.1.5.5.2.6). Um Abbauvorgänge vor der <strong>Extraktion</strong> möglichst zu<br />

vermeiden, ist es daher erforderlich die Proben bis zur <strong>Extraktion</strong> tiefgefroren<br />

aufzubewahren.<br />

Um die Möglichkeiten der Autosampler der SFE-Geräte nutzen zu können, müßten<br />

diese unbedingt kühlfähig sein.<br />

Die Ergebnisse dieser Untersuchungen wurden in [104] vorgestellt.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

4<br />

0<br />

63


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.5 Entwicklung <strong>von</strong> schnellen Bestimmungsmethoden für<br />

spezielle Pestizidklassen mit analytischen Defiziten<br />

3.1.5.1. Einleitung<br />

Mit Hilfe der in Kap. 3.1.4 vorgestellten Multimethode kann eine Vielzahl <strong>von</strong><br />

Pestiziden bestimmt werden. Es gibt jedoch eine ganze Reihe <strong>von</strong> weiteren Verbindungen<br />

für die diese Methode nicht geeignet ist:<br />

Wegen zu geringer Wiederfindung:<br />

Als Ursachen für schlechte Wiederfindungen bei SFE-<strong>Extraktion</strong>en kommen verschiedene<br />

Faktoren in Betracht:<br />

• schlechte Extrahierbarkeit der Wirkstoffe (z.B. wegen zu hoher Polarität<br />

(siehe Kap. 3.1.4.7.2) <strong>und</strong>/oder starker Wechselwirkungen mit der Matrix)<br />

• schlechte Elution der präzipitierten Stoffe <strong>von</strong> der Festphasenfalle in die<br />

Vorlage (siehe Kap. 3.1.4.3 <strong>und</strong> Kap. 3.1.5.6.2)<br />

• Abbauvorgänge (vgl. Kap. 3.1.4.7.4 <strong>und</strong> Kap. 3.1.5.5.2.7).<br />

Wegen Problemen bei der Gaschromatographie:<br />

z.B. bei polaren Verbindungen wie Phenoxyalkancarbonsäuren (siehe Kap.<br />

3.1.5.4.2), Carbendazim (siehe Kap. 3.1.5.3.2) <strong>und</strong> thermolabilen Verbindungen wie<br />

z.B. N-Methyl-Carbamate (siehe Kap. 3.1.5.5) <strong>und</strong> Organo-Zinn-Verbindungen (siehe<br />

Kap. 3.1.5.6).<br />

Für eine Reihe <strong>von</strong> Verbindungen, die sich nicht mit der vorgestellten Multimethode<br />

bestimmen lassen, wurden im Rahmen dieser Arbeit spezielle SFE-Methoden<br />

entwickelt.<br />

Viele der Stoffe, die bei der SFE-<strong>Extraktion</strong> Probleme bereiten, sind auch bei den<br />

klassischen (naßchemischen) Verfahren bei der Aufarbeitung als „problematisch“<br />

aufgefallen. Zum Beispiel werden für die Stoffe Fenpropimorph, Imazalil <strong>und</strong><br />

Thiabendazol auch bei der DFG-S19 Multimethode [3] sehr geringe Ausbeuten erzielt.<br />

Um die Ursachen hierfür besser zu verstehen <strong>und</strong> eventuelle molekulare Zusammenhänge<br />

zu erkennen, wurden zunächst einige naßchemische Voruntersuchungen<br />

durchgeführt. Dabei sollte ein „Gefühl“ für die Eigenschaften der Wirkstoffe bezüglich<br />

Löslichkeit, Polarität <strong>und</strong> Affinität zu Oberflächen entwickelt werden. Die Erkenntnisse<br />

aus diesen Versuchen sollten bei der Entwicklung <strong>von</strong> SFE-<strong>Extraktion</strong>smethoden<br />

adaptiert werden, um die Wiederfindungen dieser Verbindungen zu verbessern.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

64


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.5.2 Naßchemische Untersuchungen im Vorfeld<br />

3.1.5.2.1 Rolle des pH-Wertes bei <strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong> Flüssig-Flüssig-Verteilung<br />

Homogenate pflanzlicher Proben weisen oft recht niedrige pH-Werte auf: z.B.<br />

Zitronen pH∼2,5, Grapefruit <strong>und</strong> Orangen pH∼3,3, Trauben, Steinobst <strong>und</strong> Kernobst<br />

pH 3 bis 4. Bei den derzeit in der Rückstandsanalytik gängigen Multimethoden wird<br />

der pH-Wert bei der <strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong> Flüssig-Flüssig-Verteilung nicht berücksichtigt.<br />

Unvollständige Extrahierbarkeit <strong>von</strong> sauren <strong>und</strong> basischen Verbindungen sind die<br />

Folge.<br />

Unter sauren Bedingungen liegen verschiedene Wirkstoffe mit basischen Stickstoffatomen<br />

zu einem nicht vernachlässigbaren Anteil in protonierter Form vor. Diese<br />

protonierten Wirkstoffanteile entziehen sich, aufgr<strong>und</strong> ihres polaren Charakters, der<br />

<strong>Extraktion</strong> in die organische Phase. Zur vollständigeren Erfassung derartiger<br />

Wirkstoffe wie Thiabendazol, Carbendazim <strong>und</strong> Imazalil (Formeln siehe Tab. 3.1.5-1)<br />

muß demnach die <strong>Extraktion</strong> bei höheren pH-Werten erfolgen.<br />

Bei der Aufarbeitung <strong>von</strong> dotierten Zitrusfruchtproben nach [29] wurde z.B. festgestellt,<br />

daß Thiabendazol <strong>und</strong> Imazalil bei der Flüssig-Flüssig-Verteilung nach den<br />

ersten zwei Verteilungsschritten (unter sauren Bedingungen) nur zu 10 bis 20 % in<br />

die organische Phase übergingen. Erheblich bessere Wiederfindungsraten wurden<br />

nach einer zusätzliche <strong>Extraktion</strong> im Alkalischen erzielt.<br />

Ein ähnliches Prinzip gilt auch bei der <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> sauer reagierenden Verbindungen.<br />

In diesem Fall sind saure Bedingungen für die <strong>Extraktion</strong> der Wirkstoffe<br />

günstiger. Dies ist z.B. bei der <strong>Extraktion</strong> der Phenoxyalkancarbonsäuren der Fall<br />

[29,19]. Die Einflüsse des pH-Wertes auf die Extrahierbarkeit einiger Wirkstoffe<br />

werden ausführlicher in [29] dargestellt.<br />

Eine andere Problematik liegt im Fall <strong>von</strong> Orthophenylphenol vor, das üblicherweise<br />

als Natrium-Salz zur Oberflächenbehandlung <strong>von</strong> Zitrusfrüchten eingesetzt wird [30].<br />

Bei der <strong>Extraktion</strong> der Oberflächenbehandlungsmittel nach [4,31] werden die Schalen<br />

der Früchte ohne Wasserzusatz direkt mit überkritischem Kohlendioxid bzw. mit<br />

Dichlormethan extrahiert. Da die Schalenoberfläche der Zitrusfrüchte im Gegensatz<br />

zum Fruchtfleisch nicht sauer reagiert <strong>und</strong> kaum Wasser enthält, sind die<br />

Bedingungen für eine Auflösung des Salzes <strong>und</strong> für die Protonierung des Phenolates<br />

zur Phenolform nicht günstig. Es ist demnach, bei diesen Methoden, mit einer<br />

unvollständigen <strong>Extraktion</strong> des Orthophenylphenol zu rechnen.<br />

3.1.5.2.2 Wechselwirkungen <strong>von</strong> Wirkstoffen mit Oberflächen<br />

Theoretische Betrachtung:<br />

Adsorptionen <strong>von</strong> Wirkstoffen an Oberflächen (z.B. über Ionen-Ionen-Wechselwirkungen<br />

oder über Wasserstoffbrücken-Bindungen) sind oft die Ursache für<br />

schlechte Extrahierbarkeit, für Verluste bei der Aufarbeitung <strong>und</strong> für Schwierigkeiten<br />

bei der Chromatographie. Daher sind Kenntnisse über die möglichen Ursachen <strong>und</strong><br />

Mechanismen dieser Erscheinungen für die Entwicklung <strong>von</strong> SFE-Methoden sehr<br />

hilfreich.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

65


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Mögliche Oberflächen mit adsorptiven Eigenschaften sind z.B.:<br />

1. bei der Probenaufarbeitung<br />

Bestandteile der Probe (Wachse, Cutin, Öle, Zellulose, Pektin),<br />

Glasoberflächen (Glasgeräte, Glasfaserpapier),<br />

Cellulose (Papierfilter),<br />

Adsorbentien (Hydromatrix, Kieselgel)<br />

2. bei der Gaschromatographie<br />

Glasoberflächen (GC-Injektions-Liner)<br />

Schmutzablagerungen auf der Oberfläche <strong>von</strong> GC-Injektions-Liner <strong>und</strong> -Vorsäule.<br />

Die Adsorptionskraft bestimmter Oberflächen kann erheblich variieren. Bei Polysilikaten<br />

wie Kieselgel spielt z.B. der Wassergehalt (Aktivitätsstufe) eine erhebliche<br />

Rolle, da Wasser die Oberfläche benetzen <strong>und</strong> maskieren kann.<br />

Eine entscheidende Abschwächung der Aktivität kann z.B. durch Sättigung freier<br />

Silanolgruppen an der Oberfläche durch Silanisierung erreicht werden (z.B.<br />

silanisierte Glasgeräte, GC-Glasliner, Füllmaterialien <strong>von</strong> LC-Säulen).. Die Restmenge<br />

an freien Silanolgruppen bestimmt den Restaktivitätsgrad der Oberfläche<br />

Zu Adsorptionen neigen u.a.:<br />

1. Verbindungen, die als Lewis Säuren oder Basen fungieren <strong>und</strong> dadurch direkt<br />

oder über Wasserstoffbrücken-Bindungen (vgl. Abb. 3.1.5-1) mit der Oberfläche<br />

des Adsorbens in Wechselwirkung treten können (z.B. Verbindungen mit Alkohol-<br />

oder Säuregruppen <strong>und</strong> Verbindungen die basische Stickstoffatome aufweisen),<br />

2. ionische Verbindungen (adsorbieren an Oberflächen die entgegengesetzte<br />

Ladungen aufweisen),<br />

3. lipophile Verbindungen <strong>und</strong> Verbindungen mit lipophilen Resten (neigen zur<br />

Adsorption an lipophile Oberflächen).<br />

Eine wichtige Rolle bei Adsorptionsprozessen spielen auch die beteiligten flüssigen<br />

Phasen (Lösungsmittel). Lösungsmittel treten sowohl mit den Analyten als auch mit<br />

aktiven Stellen der Oberfläche der festen Phase in Wechselwirkung <strong>und</strong> können<br />

damit die Affinität <strong>von</strong> Analyt zu Oberfläche schwächen.<br />

Zum Beispiel wird die Adsorption <strong>von</strong> Verbindungen an einem hydrophilen Adsorbens<br />

(wie Kieselgel) erheblich abgeschwächt, wenn die aktiven Stellen an seiner<br />

Oberfläche durch Lösungsmittelmoleküle wie Wasser oder Methanol „besetzt“<br />

(desaktiviert) werden. Unpolare Lösungsmittel (z.B. Hexan) konkurrieren dagegen<br />

kaum um solche aktive Stellen <strong>und</strong> können in diesem Fall die Adsorptionsprozesse<br />

nur wenig beeinflussen.<br />

Die Adsorption unpolarer Analyten an lipophilen Oberflächen (z.B. Wachsoberflächen)<br />

ist dagegen günstiger, wenn die beteiligte flüssige Phase polar (z.B.<br />

wasserhaltig) ist.<br />

I.a. sind Wechselwirkungen elektrostatischer Art zwischen dem Analyt <strong>und</strong> der<br />

Oberfläche des Adsorbens um so schwächer ausgeprägt, je höher die Dielektrizitätskonstante<br />

des Lösungsmittels ist.<br />

Abb. 3.1.5-1: Wechselwirkung <strong>von</strong> Verbindungen mit aktiven Oberflächen<br />

über Wasserstoffbrückenbindungen, am Beispiel eines<br />

Benzimidazolderivates (Vorschlag)<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

66


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

H<br />

O<br />

H<br />

H<br />

N<br />

H<br />

O<br />

N H<br />

R<br />

H<br />

O<br />

H<br />

N<br />

H<br />

H O<br />

H<br />

O<br />

H H<br />

N<br />

H<br />

O<br />

H<br />

N<br />

H<br />

H O<br />

Praktische Erfahrungen - Adsorptionserscheinungen bei der GPC:<br />

Im folgenden Kapitel werden derartige Adsorptionsvorgänge beschrieben, die zu<br />

Verlusten <strong>von</strong> Analyten führen. Ein praktisches Beispiel bei dem Wechselwirkungen<br />

<strong>von</strong> Verbindungen mit Oberflächen festgestellt wurden, ist die bei zahlreichen<br />

Methoden der Rückstandsanalytik zur Abtrennung höhermolekularer Begleitstoffe<br />

eingesetzte GPC. Bei diesem Verfahren werden Substanzen nach ihrer Größe<br />

(räumliche Ausdehnung) getrennt. Als Säulenmaterial wird meist ein in seiner<br />

Porosität definiertes Copolymerisat auf Basis <strong>von</strong> Styren <strong>und</strong> Divinylbenzol (zu 3 %<br />

quervernetzt) verwendet (Bio-Beads S-X3).<br />

Die Trennung bei der GPC basiert auf folgendem Prinzip:<br />

Die Porengrößen des Säulenmaterials sind so verteilt, daß höhermolekulare Stoffe<br />

z.B. Triglyceride <strong>und</strong> Wachse, aufgr<strong>und</strong> ihrer Ausdehnung in die Mehrzahl der Poren<br />

nicht eindringen können. Dadurch erfahren solche Moleküle nur eine kleine Retention<br />

durch die stationäre Phase. Dagegen können kleinere Moleküle, wie z.B. Pestizide, in<br />

die Poren eindringen <strong>und</strong> legen somit längere Wegsstrecken zurück.<br />

Bei GPC-Elutionsversuchen wurden für verschiedene Substanzen besonders<br />

niedrige Wiederfindungen festgestellt. Auffällig ist, daß diese Substanzen in ihrem<br />

Molekül sterisch nicht gehinderte basische Stickstoffatome aufweisen, die (bis auf<br />

Fenpropimorph) an aromatischen Heterosystemen beteiligt sind (siehe Tab. 3.1.5-1).<br />

Bei Fenpropimorph ist wegen der relativ starren Struktur des Morpholin-Sechsringes<br />

(Sesselkonformation) das basische N-Atom ebenfalls leicht zugänglich.<br />

Die molekularen Verhältnisse spielen hier eine große Rolle, da sie für die Ausprägung<br />

der Basizität entscheidend sind. Bei Pestiziden, wie etwa Diazinon, Pirimiphos-<br />

Methyl <strong>und</strong> Chlorpyrifos, deren Stickstoffatome durch benachbarte Gruppen sterisch<br />

abgeschirmt oder sonst in ihrer Nucleophilie geschwächt sind (siehe Abb. 3.1.5-2)<br />

wurden, erwartungsgemäß, geringere Verluste bei der GPC festgestellt.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

N<br />

H<br />

R<br />

R<br />

H<br />

O<br />

67<br />

H


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-2: Beispiele für N-haltige Pestizide mit abgeschwächter Nucleophilie<br />

H3CO<br />

O<br />

P O<br />

N<br />

N<br />

H3CO<br />

OCH3<br />

OCH3<br />

Diazinon Pirimiphos-methyl<br />

O<br />

P O<br />

N<br />

N<br />

N<br />

H5C2O<br />

Cl<br />

O<br />

P O<br />

OC2H5<br />

N<br />

Chlorpyrifos<br />

Tab. 3.1.5-1: Einige Fungizide mit schlechter Wiederfindung bei der GPC<br />

Verluste festgestellt bei GPC-<br />

Elutionsversuchen*<br />

Wirkstoff Gruppen-<br />

zugehörigkeit<br />

Thiabendazol:<br />

N<br />

N<br />

H<br />

Carbendazim:<br />

Imazalil:<br />

N<br />

N<br />

N<br />

H<br />

N<br />

N CH2 CH<br />

Prochloraz:<br />

N<br />

CH3CH2CH2<br />

NH C<br />

O<br />

S<br />

OCH3<br />

O CH2 CH CH2<br />

Cl<br />

O<br />

Cl<br />

N C<br />

N CH2CH2O<br />

Myclobutanil:<br />

N<br />

N CH2<br />

N<br />

CN<br />

CH2<br />

Fenpropimorph:<br />

Cl<br />

Cl<br />

C Cl<br />

CH2CH2CH3<br />

N<br />

CH3<br />

O<br />

CH3<br />

Cl<br />

Benzimidazolderivat <br />

Benzimidazolderivat<br />

Wirkstoffe in<br />

reinem<br />

Elutionsgemisch<br />

68<br />

Cl<br />

Cl<br />

bei Gegenwart <strong>von</strong><br />

Probenextrakt<br />

(1 g Zitrone/ml)<br />

bis zu 80 % bis zu 95 %<br />

nicht durchgeführt bis zu 90 %<br />

Imidazolderivat bis zu 50 % bis zu 90 %<br />

Imidazolderivat nicht durchgeführt bis zu 60 %<br />

Triazolderivat bis zu 50 % bis zu 60 %<br />

Morpholinderivat<br />

* eingesetztes Probevolumen je 4 ml, Wirkstoffkonzentration: 1 µg/ml<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

bis zu 70% bis zu 80 %


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Bei Thiabendazol, Imazalil <strong>und</strong> Fenpropimorph wurde ein über längere Zeit andauerndes<br />

„Schleichen“ festgestellt. Bei einem Elutionsversuch waren Spuren dieser<br />

Substanzen in der GPC-Fraktion 70-90 min noch nachweisbar (Durchflußrate <strong>von</strong> 5<br />

ml/min, Collect-Fraktion für Pestizide 18-30 min), obwohl diese nach ihrer Größe in<br />

der Fraktion zwischen 18 <strong>und</strong> 30 min zu erwarten wären.<br />

Auffällig ist, daß es bei Gegenwart <strong>von</strong> Matrixbestandteilen in der zu eluierenden<br />

Probelösung zu einer Verschlechterung der Wiederfindungen bei der GPC kommt<br />

(siehe Tab. 3.1.5-1). Beobachtet wurde zudem, daß bei Gegenwart <strong>von</strong> Matrix,<br />

Anteile <strong>von</strong> Imazalil <strong>und</strong> Thiabendazol früher als erwartet im GPC-Eluat auftreten (vor<br />

17 min). Hier könnten Wechselwirkungen zwischen den Wirkstoffen <strong>und</strong><br />

Matrixbestandteilen eine Rolle spielen.<br />

Wechselwirkungen zwischen dem Säulenmaterial <strong>und</strong> Wirkstoffen (etwa über π-<br />

Elektronen-Systeme) spielen bei diesen Effekten sicherlich kaum eine Rolle. Einige<br />

denkbare, mit der GPC in Zusammenhang stehende, zu Verlusten führende Effekte<br />

werden im folgenden aufgeführt:<br />

• Wirkstoffanlagerung an Schwebstoffe, die sich entweder schon vor der GPC<br />

absetzen oder sich am Anfangsbereich der GPC-Säule ablagern.<br />

• Anlagerung weiterer Wirkstoffe an diese Ablagerungen am vorderen Teil der GPC-<br />

Säule. (Die kontinuierliche Abgabe aus diesem „Depot“ könnte für das<br />

Schleichen/Bluten dieser Wirkstoffe verantwortlich sein).<br />

• Wirkstoffanlagerungen an gelöste höhermolekulare Matrixbestandteile, wodurch<br />

diese Moleküle eine kürzere Retention erfahren, als aufgr<strong>und</strong> ihrer räumlichen<br />

Ausdehnung zu erwarten wäre. Sie eluieren dadurch vor der „collect“ Fraktion in<br />

der die Pestizide eluieren.<br />

Die hier beschriebenen Beobachtungen werden auch in [29] erläutert.<br />

Die oben aufgeführten theoretischen Überlegungen <strong>und</strong> die durchgeführten naßchemischen<br />

Untersuchungen haben wertvolle Erkenntnisse zum Verhalten verschiedener<br />

Pestizide bezüglich Extrahierbarkeit <strong>und</strong> Adsorptionsverhalten gebracht.<br />

Diese waren für die Entwicklung <strong>von</strong> speziellen SFE-Methoden für saure <strong>und</strong><br />

basische Pestizide <strong>von</strong> großem Nutzen.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

69


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.5.3 Pestizide mit basischen Eigenschaften<br />

3.1.5.3.1 Einfluß des pH-Wertes auf die Extrahierbarkeit (vgl. Kap. 3.1.4.7.2)<br />

Basische Pestizide können mit ihren freien Elektronenpaaren in Wechselwirkungen<br />

z.B. mit anderen Verbindungen oder verschiedenen Oberflächen treten. Aufgr<strong>und</strong><br />

dieser Eigenschaft treten bei <strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong> Chromatographie Probleme auf (siehe<br />

auch Kap. 3.1.5.2.2), so daß die Analytik dieser Verbindungen ein besonderes<br />

Vorgehen erfordert <strong>und</strong> z.T. sehr aufwendig ist. Häufig handelt es sich bei diesen<br />

Stoffen um Fungizide, die in ihrem Molekül basische Stickstoffatome z.B. als Teil<br />

eines aromatischen Systems aufweisen. Zu den verbreitetsten Vertretern basischer<br />

Fungizide zählen die Benzimidazolderivate Thiabendazol (pKb 9,3 <strong>und</strong> 11,5) [130]<br />

<strong>und</strong> Carbendazim (pKb 9,52), die Imidazolderivate Imazalil <strong>und</strong> Prochloraz (pKb 10,2)<br />

sowie das Morpholinderivat Fenpropimorph (pKb 9,4) (siehe Abb. 3.1.5-3).<br />

Wie in Kap. 3.1.4.7.2 gezeigt, kann die Extrahierbarkeit <strong>von</strong> basischen Verbindungen<br />

bei der SFE durch Erhöhung des pH-Wertes deutlich verbessert werden.<br />

Es wurde ein Versuch durchgeführt um festzustellen, wie sich der pH-Wert auf die<br />

Extrahierbarkeit der oben genannten Fungizide sowie <strong>von</strong> Diphenylamin auswirkt.<br />

Hierzu wurde eine unveränderte (pH-Wert 2,5) <strong>und</strong> eine auf pH 9 eingestellte<br />

(Zugabe <strong>von</strong> 50%iger K2CO3-Lösung) Zitronenmatrix mit einer Mischung dieser<br />

Verbindungen dotiert <strong>und</strong> nach Vermengung mit Hydromatrix extrahiert. Zur<br />

<strong>Extraktion</strong> wurde das <strong>Extraktion</strong>sgerät der Fa. ISCO gewählt, da hier die Extrakte<br />

direkt in eine Lösungsmittelvorlage geleitet werden. Bei Verwendung des Gerätes der<br />

Fa. HP, bei dem die Extrakte zunächst an einer mit ODS befüllten Falle aufgefangen<br />

werden, wurde beobachtet, daß einige basische Pestizide, insbesondere<br />

Thiabendazol aber auch Imazalil <strong>und</strong> Fenpropimorph nur sehr schleppend <strong>von</strong> der<br />

Falle in das Vorlagegläschen eluiert werden. Gr<strong>und</strong> hierfür sind Wechselwirkungen<br />

dieser Pestizide mit aktiven Stellen an der Oberfläche des ODS-Adsorptionsmaterials<br />

(vgl. Kap. 3.1.5.2.2).<br />

Die dabei erzielten Wiederfindungen sind in Tab. 3.1.5-2 dargestellt.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

70


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-3: Strukturformeln einiger Pestizide mit basischen Eigenschaften<br />

N<br />

NH<br />

C<br />

N<br />

O<br />

H<br />

Carbendazim<br />

N<br />

N<br />

H<br />

N<br />

S<br />

OCH 3<br />

N<br />

N<br />

N C<br />

CH 3CH 2CH 2<br />

N CH2 CH<br />

Cl<br />

Imazalil<br />

O<br />

O CH2 CH CH2<br />

N CH 2CH 2O<br />

Thiabendazol Prochloraz<br />

H<br />

N<br />

Diphenylamin<br />

Wie aus der Tab. 3.1.5-2 ersichtlich spielt der pH-Wert bei der <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong><br />

Thiabendazol, Imazalil <strong>und</strong> Carbendazim aus Zitrone eine wichtige Rolle. Bei<br />

Diphenylamin <strong>und</strong> Prochloraz dagegen wurden sowohl im Sauren als auch im<br />

Alkalischen gute Wiederfindungen erzielt. Auffällig ist, daß bei Imazalil der pH-Wert<br />

einen viel größeren Einfluß auf die Wiederfindungen hat als bei Prochloraz, obwohl<br />

es sich bei beiden Molekülen um Imidazolderivate handelt. Im Unterschied zu<br />

Imazalil steht jedoch das aromatische System bei Prochloraz in Konjugation mit der<br />

angrenzenden Carbonylgruppe, so daß die Elektronenverteilung im Molekül<br />

verschoben wird <strong>und</strong> die Basizität des Stickstoffs am Imidazolring geschwächt wird<br />

(siehe Abb. 3.1.5-4).<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

Cl<br />

Cl<br />

Cl<br />

71<br />

Cl


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.5-2: Wiederfindungen verschiedener basischer Pestizide bei<br />

unterschiedlichen pH-Werten<br />

mittlere Wiederfindungen in %<br />

Bedingungen Thiabendazol Carbendazim* Imazalil Diphenylamin Prochloraz<br />

pH∼2,5<br />

pH 9<br />

pH 9, 2. Extr.<br />

15 12 44 96 92<br />

62 94 91 98 95<br />

16 - - - -<br />

* nach Derivatisierung mit Pentafluorbenzylbromid (siehe Kap. 3.1.5.3.2.3)<br />

Abb. 3.1.5-4: Konjugation des Imidazolsystems mit der Carbonylgruppe<br />

bei Prochloraz<br />

H<br />

H<br />

N<br />

N<br />

N C<br />

N C<br />

O<br />

N R 1<br />

R 2<br />

O<br />

N R 1<br />

R2<br />

N<br />

N C<br />

O<br />

N R 1<br />

Prochloraz<br />

N<br />

N<br />

N C<br />

N C<br />

O<br />

N R1<br />

R2<br />

O<br />

R2<br />

H<br />

H<br />

N R 1<br />

Fazit:<br />

Durch diese einfache Maßnahme, der pH-Wert-Einstellung vor der SFE-<strong>Extraktion</strong>,<br />

wird die Bestimmung verschiedener basischer Pestizide ermöglicht. Mit Ausnahme<br />

<strong>von</strong> Carbendazim, das vor einer gaschromatographischen Bestimmung derivatisiert<br />

werden muß, lassen sich die untersuchten Verbindungen bei Berücksichtigung der<br />

Matrixeffekte (vgl. Kap. 3.1.2.3) gut mittels GC/MSD bestimmen.<br />

Obwohl Carbendazim eines der am häufigsten in der Landwirtschaft verwendeten<br />

Fungizide ist, wird es wegen der Aufwendigkeit bestehender analytischer Methoden<br />

bisher nicht routinemäßig untersucht. Stellvertretend für basische Pestizide wurde im<br />

Rahmen dieser Arbeit eine schnelle Methode zur Bestimmung <strong>von</strong> Carbendazim<br />

entwickelt.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

R 2<br />

72


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.5.3.2 Carbendazim, Benomyl <strong>und</strong> Thiophanat-Methyl<br />

Bei der Entwicklung <strong>von</strong> analytischen Methoden zur Bestimmung <strong>von</strong> Carbendazim<br />

muß berücksichtigt werden, daß diese Verbindung der Hauptmetabolit <strong>und</strong> die<br />

fungizid wirksame Form <strong>von</strong> zwei weiteren landwirtschaftlich oft eingesetzten<br />

Verbindungen, Benomyl <strong>und</strong> Thiophanat-Methyl, ist (siehe Abb. 3.1.5-5).<br />

Üblicherweise erfolgt die Bestimmung der drei Fungizide, nach Umwandlung zu<br />

Carbendazim, gemeinsam. In der RHmV ist daher eine Summen-Höchstmenge<br />

berechnet als Carbendazim festgesetzt [34,46].<br />

Abb. 3.1.5-5: Strukturformeln <strong>von</strong> Carbendazim, Thiophanat-Methyl <strong>und</strong> Benomyl<br />

(Carbendazim-Gruppe)<br />

N<br />

H<br />

N NH COOCH3<br />

Carbendazim<br />

NH<br />

NH<br />

S<br />

C<br />

C<br />

S<br />

Thiophanat-Methyl<br />

NH COOCH3<br />

NH COOCH3<br />

O<br />

C<br />

N<br />

N NH<br />

Benomyl<br />

NH C 4H 9<br />

COOCH3<br />

Während der Wachstumsperiode werden diese Fungizide häufig im Kernobstanbau,<br />

beim Anbau <strong>von</strong> Tafeltrauben, Steinobst, Salat <strong>und</strong> Getreide verwendet. Als<br />

Nacherntebehandlungsmittel finden sie bei Bananen, Zitrusfrüchten, Kernobst,<br />

Mangos <strong>und</strong> Kartoffel zum Schutz vor zahlreichen Pilzkrankheiten Verwendung<br />

[30,47].<br />

Carbendazim, Benomyl <strong>und</strong> Thiophanat-Methyl werden nicht mit den gängigen<br />

Multimethoden erfaßt, da sie bei der <strong>Extraktion</strong> Schwierigkeiten bereiten <strong>und</strong> da eine<br />

Umwandlung zu Carbendazim sowie eine Derivatisierung vor der GC-Bestimmung<br />

durchgeführt werden muß. Vorhandene Einzelbestimmungsverfahren sind daher sehr<br />

arbeitsintensiv, verbrauchen große Mengen an Lösungsmittel <strong>und</strong> sind für die<br />

Routineanalytik wenig attraktiv [48,51-58].<br />

Wegen des verbreiteten Einsatzes <strong>und</strong> der unzureichenden Rückstandsdaten ist es<br />

jedoch notwendig diese Stoffe im Rahmen der Lebensmittelüberwachung <strong>und</strong> des<br />

Lebensmittel-Monitoring routinemäßig zu untersuchen [48,49].<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

73


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Jimènez et al [40] entwickelten eine SFE-Methode zur Bestimmung <strong>von</strong> Carbendazim<br />

in gefriergetrocknetem Salat, bei der Methanol als Modifier des Kohlendioxids<br />

verwendet wurde. Die Gefriertrocknung <strong>von</strong> Probenmaterial ist jedoch sehr<br />

zeitaufwendig <strong>und</strong> nicht für alle Obst- <strong>und</strong> Gemüsesorten geeignet (siehe Kap.<br />

3.1.3.2.1). Aharonson et al. [9] beschreiben eine Methode zur Bestimmung der<br />

Benzimidazol-Fungizide einschließlich Carbendazim <strong>und</strong> Thiophanat-Methyl unter<br />

Verwendung <strong>von</strong> SFE <strong>und</strong> HPLC-UV. Sie erzielten gute Wiederfindungen für<br />

Bananen, Kartoffel <strong>und</strong> Äpfel. Allerdings sind die Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen<br />

dieses Verfahrens nicht ausreichend zur Überprüfung kleiner Höchstmengen.<br />

Desweiteren wird nach unserer Erfahrung Carbendazim aus sauren<br />

<strong>Lebensmitteln</strong> nicht vollständig extrahiert (siehe Kap. 3.1.4.7.2).<br />

3.1.5.3.2.1 Umwandlung <strong>von</strong> Benomyl zu Carbendazim<br />

Benomyl ist eine labile Verbindung. Zahlreiche Veröffentlichungen beschreiben die<br />

Kinetik der Zersetzung <strong>von</strong> Benomyl in organischen Lösungsmitteln [64-66] <strong>und</strong> in<br />

wäßrigen Lösungen [66-69]. Ältere Arbeiten berichten, daß Benomyl in wäßrigen<br />

Lösungen [28,45] <strong>und</strong> auf Pflanzen [71] schnell <strong>und</strong> vollständig zu Carbendazim<br />

umgewandelt wird. Baude et al [74] zeigten jedoch bei Feldversuchen, daß Benomyl<br />

sowohl in wäßriger Suspension als auch als Rückstand auf der Pflanze eine gute<br />

Stabilität besitzt. Wegen seiner geringen Wasserlöslichkeit (3,8 ppm bei 20°C [69])<br />

liegt Benomyl in wäßrigen Präparaten als Suspension vor (übliche Konzentration 250<br />

ppm) <strong>und</strong> wird dort nur langsam abgebaut [65].<br />

Da Benomyl-Standardsubstanzen stets einen kleinen Anteil an Carbendazim enthalten<br />

<strong>und</strong> Benomyl sich in organischen Lösungsmitteln rasch zu Carbendazim<br />

umwandelt, ist es nicht möglich carbendazimfreie Benomyl-Lösungen herzustellen<br />

[68]. Für Dotierungsversuche wurde eine Benomyl-Lösung in kaltem Acetonitril<br />

hergestellt (500µg/ml). Diese Lösung wurde unmittelbar nach ihrer Herstellung mit<br />

HPLC/DAD untersucht <strong>und</strong> dabei ein Carbendazimgehalt <strong>von</strong> etwa 40 µg/ml ermittelt,<br />

was etwa 60 µg/ml Benomyl entspricht. Bei einer Lagerung dieser Lösung bei -18°C<br />

stieg der Anteil an Carbendazim über längere Zeit nicht merklich an. Bei<br />

Raumtemperatur setzte sich jedoch das Benomyl rasch zu Carbendazim um. Nach<br />

einer anfänglich hohen Umsetzungsrate (t0,5 = etwa 40 min), erreichte die Reaktion<br />

schnell einen Gleichgewichtszustand, bei dem etwa 20 % des ursprünglichen<br />

Benomyl noch intakt vorlag. Diese Beobachtungen stimmen sehr gut mit kinetischen<br />

Studien über das Verhalten <strong>von</strong> Benomyl in Acetonitril überein, die <strong>von</strong> Singh et al.<br />

[66] durchgeführt wurden. Auch sie beobachteten das Auftreten eines<br />

Gleichgewichtszustandes.<br />

In neutralen wäßrigen Lösungen ist die Umwandlungsrate <strong>von</strong> Benomyl zu<br />

Carbendazim geringer als in organischen Lösungsmitteln, sie steigt jedoch im Sauren<br />

<strong>und</strong> im Alkalischen an [67,68,75]. Im Alkalischen tritt neben der Bildung <strong>von</strong><br />

Carbendazim eine weitere dazu konkurrierende Reaktion auf, die mit steigendem pH-<br />

Wert zunehmend an Bedeutung gewinnt (siehe Abb. 3.1.5-6). Zunächst bildet sich<br />

aus Benomyl unter Ringschluß STB (3-Butyl-2,4-Dioxo[1,2-a]-s-Triazinobenzimidazol),<br />

das bei höheren pH-Werten weiter zu BBU (1-(2-Benzimidazoyl)-3-n-<br />

Butylharnstoff) abgebaut wird [76].<br />

Abb. 3.1.5-6: Abbaupfade <strong>von</strong> Benomyl [69,74,77]<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

74


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

N<br />

N<br />

C<br />

O NH<br />

C4H9<br />

Benomyl<br />

H +<br />

N<br />

O<br />

NH C OCH3<br />

N NH C OCH3<br />

H<br />

Carbendazim<br />

O<br />

OH -<br />

OH -<br />

N<br />

N<br />

C<br />

O N<br />

C4H9<br />

STB<br />

NH<br />

N<br />

O<br />

N NH2<br />

H<br />

2-Aminobenzimidazole<br />

OH -<br />

N<br />

N NH<br />

H C O<br />

NH<br />

Diese Konkurrenzreaktion zur Bildung <strong>von</strong> Carbendazim unter alkalischen Bedingungen<br />

bringt analytische Schwierigkeiten mit sich. Vor einer <strong>Extraktion</strong> unter<br />

alkalischen Bedingungen muß Benomyl zu Carbendazim umgewandelt werden, da<br />

sonst unerwünschtes STB <strong>und</strong> BBU entsteht.<br />

Eine quantitative Umwandlung <strong>von</strong> Benomyl zu Carbendazim kann nach Literaturangaben<br />

durch Erhitzen angesäuerter Proben erreicht werden [51,54]. Allerdings<br />

berichten Calmon et al. [67], daß die Umwandlung bei pH-Werten unterhalb 2,5<br />

wegen der Protonierung des Benomyl gehemmt ist.<br />

Die Umwandlung <strong>von</strong> Benomyl zu Carbendazim wurde deshalb bei pH∼3 durch<br />

Erhitzen der Probe durchgeführt. Bei Wiederfindungsversuchen wurde gezeigt, daß<br />

unter diesen Bedingungen eine sehr hohe Umwandlungsrate <strong>von</strong> Benomyl zu<br />

Carbendazim (über 90 %) erreicht wird (Bem.: der pH-Wert wurde vor der <strong>Extraktion</strong><br />

auf 8 eingestellt). Zudem wurde gezeigt, daß weder Thiophanat-Methyl noch<br />

Carbendazim unter diesen Bedingungen beeinträchtigt werden. Die Wiederfindung<br />

an Benomyl war wesentlich schlechter (73 % als Carbendazim), wenn die dotierten<br />

Proben ohne saure Vorbehandlung direkt alkalisiert (pH=8) <strong>und</strong> extrahiert wurden<br />

(siehe Tab. 3.1.5-3). Dies ist vermutlich auf die kompetitive Bildung <strong>von</strong> STB<br />

zurückzuführen. Die Wiederfindungsraten waren noch niedriger, wenn die bereits in<br />

die <strong>Extraktion</strong>shülsen gefüllten Proben vor der <strong>Extraktion</strong> bei Raumtemperatur<br />

gelagert wurden (siehe Tab. 3.1.5-3, Bem.: etwa 12 % des Benomyls lag bereits vor<br />

der Dotierung als Carbendazim in der Standardlösung vor).<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

C4H9<br />

BBU<br />

75


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.5-3: Wiederfindung <strong>von</strong> Benomyl als Carbendazim<br />

(dotierte Menge 3,3 mg/kg), <strong>Extraktion</strong> bei pH 8<br />

Lagerzeit in der Wiederfindungsrate Bemerkungen<br />

<strong>Extraktion</strong>shülse vor als Carbendazim<br />

der <strong>Extraktion</strong> bei RT<br />

%<br />

0 h 73 keine Vorbehandlung<br />

2 h 41 im Sauren<br />

8 h 28<br />

0 h 94 mit Vorbehandlung<br />

2 h 90 im Sauren<br />

8 h 92 (20 min, 65° C, pH 3)<br />

Der Umwandlungsfaktor 1,52 wurde für die Berechnung verwendet<br />

Anmerkung zur Analytik <strong>von</strong> Benomyl:<br />

Die Umwandlung <strong>von</strong> Benomyl zu STB <strong>und</strong> BBU im Alkalischen eröffnet die Möglichkeit<br />

zur indirekten Bestimmung <strong>von</strong> Benomyl-Rückständen in Proben. Dies wurde<br />

jedoch nicht weiter verfolgt, da in der RHmV eine Summenhöchstmenge für Benomyl<br />

Carbendazim <strong>und</strong> Thiophanat-Methyl angegeben ist. Die gesonderte Bestimmung<br />

<strong>von</strong> Benomyl-Rückständen in Proben ist daher für die Überwachung nicht<br />

interessant.<br />

3.1.5.3.2.2 Thiophanat-Methyl<br />

Thiophanat-Methyl ist beständiger als Benomyl <strong>und</strong> kann oft über längere Zeit in<br />

behandelten Erntegütern nachgewiesen werden [51,78]. Wie Abb. 3.1.5-7 zeigt ist die<br />

Umwandlung <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl zu Carbendazim während der SFE-<strong>Extraktion</strong>,<br />

selbst bei alkalischen Bedingungen, vernachlässigbar. Folglich kann Thiophanat-<br />

Methyl nach einer SFE-<strong>Extraktion</strong> als solches bestimmt werden (HPLC/DAD).<br />

Allerdings wurde eine nicht unwesentliche Umwandlung <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl zu<br />

Carbendazim beobachtet, wenn die <strong>Extraktion</strong> nicht direkt durchgeführt wurde,<br />

sondern die <strong>Extraktion</strong>shülsen einige St<strong>und</strong>en bei Raumtemperatur (z.B. im<br />

Autosampler des <strong>Extraktion</strong>s-Gerätes) lagerten. Diese Umwandlung wird mit<br />

steigendem pH-Wert begünstigt. Allerdings treten auch hier Konkurrenzreaktionen<br />

auf, so daß die Wiederfindungsrate als Carbendazim relativ niedrig lag (bei max. 60%<br />

nach 24 h, pH 8,5) (Abb. 3.1.5-8). Bei -18°C wurde dagegen selbst nach längerer<br />

Lagerung kein wesentlicher Abbau <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl beobachtet. (siehe Abb.<br />

3.1.5-7).<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

76


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-7: Unerwünschter Abbau <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl in der<br />

<strong>Extraktion</strong>shülse während der Lagerung bei Raumtemperatur<br />

µg/<strong>Extraktion</strong>shülse<br />

25<br />

20<br />

15<br />

10<br />

5<br />

0<br />

100 % Wiederfindung ber. als Carbendazim<br />

0 1 2 3 4 5 6 7 10 72*<br />

Lagerzeit der <strong>Extraktion</strong>shülsen in St<strong>und</strong>en bei pH 8,5<br />

Carbendazim Thiophanat-Methyl Summe ber. als Carbendazim<br />

* diese Probe wurde bei -18° C gelagert<br />

Abb. 3.1.5-8: Unerwünschter Abbau <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl in der<br />

<strong>Extraktion</strong>shülse während der Lagerung bei Raumtemperatur<br />

.<br />

Wiederfindung als<br />

Carbendazim in %<br />

100<br />

80<br />

60<br />

40<br />

20<br />

0<br />

0 1 2 3 4 5 6 7 10 24<br />

St<strong>und</strong>en<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

pH 7<br />

pH 8,5<br />

pH 9,5<br />

77


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Umwandlung <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl zu Carbendazim nach der <strong>Extraktion</strong>:<br />

Eine nahezu vollständige Umwandlung <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl zu Carbendazim<br />

wurde durch Zugabe <strong>von</strong> Kaliumcarbonat-Lösung als Katalysator in den GC-Vials,<br />

die den SFE-Extrakt in Acetonitril enthalten, durchgeführt.<br />

Um diese Umwandlung zu optimieren wurde eine einfache kinetische Studie<br />

gemacht. Der Fortgang der Umwandlung wurde mit Hilfe eines RP-HPLC/DAD<br />

verfolgt <strong>und</strong> ist in Abb. 3.1.5-9 dargestellt.<br />

Abb. 3.1.5-9: Kinetik der Umwandlung <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl zu Carbendazim in<br />

Acetonitril/K2CO3<br />

Der erste Schritt dieser basisch katalysierten Reaktion läßt sich anhand der raschen<br />

Abnahme der Peakfläche des Thiophanat-Methyl verfolgen. Diese Abnahme scheint<br />

den Gesetzen einer Reaktion 1. Ordnung zu folgen (Linearität der Beziehung<br />

zwischen dem Logarithmus der Peakfläche <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl gegen die<br />

Reaktionszeit, siehe Abb. 3.1.5-10). Wie in Abb. 3.1.5-9 <strong>und</strong> Abb. 3.1.5-11 zu sehen<br />

ist, entstehen einhergehend mit der Abnahme des Thiophanat-Methyl Zwischenprodukte,<br />

die hier nicht näher untersucht wurden.<br />

Die Halbwertszeiten (HWZ) der Abnahme <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl bei verschiedenen<br />

Temperaturen wurden aus den Steigungen der Geraden in Abb. 3.1.5-10 berechnet<br />

(HWZ=ln 2/Steigung). Die Bildung <strong>von</strong> Carbendazim kann durch die Erhöhung der<br />

Temperatur beschleunigt werden. Allerdings sollte die Temperatur unterhalb 70°C<br />

liegen um zu vermeiden, daß Carbendazim zu 2-Aminobenzimidazol abgebaut wird<br />

(siehe Abb. 3.1.5-7 <strong>und</strong> Abb. 3.1.5-2).<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

78


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-10: Kurven des Logarithmus der relativen Peakflächen <strong>von</strong> Thiophanat-<br />

Methyl gegen die Zeit<br />

ln (signalx100/Int.Std)<br />

6<br />

5<br />

4<br />

3<br />

2<br />

1<br />

0<br />

60°C<br />

t 0.5 =1.1 min<br />

50°C<br />

t 0.5 =1.8 min<br />

40°C<br />

t 0.5 =3.4 min<br />

20°C<br />

t 0.5 =21 min<br />

0 10 20 30 40<br />

Zeit [min]<br />

Abb. 3.1.5-11: Fortgang der Umwandlung <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl zu Carbendazim<br />

in Acetonitril/K2CO3 bei Raumtemperatur (HPLC/DAD, 285 nm)<br />

mAu<br />

100<br />

80<br />

60<br />

40<br />

20<br />

0<br />

0 min 60 min 160 min 300 min<br />

Thiophanat-Methyl<br />

2 4 6 8<br />

mAu<br />

100<br />

80<br />

60<br />

40<br />

20<br />

0<br />

Zwischenprodukte<br />

Carbendazim<br />

Thiophanat-Methyl<br />

2 4 6 8<br />

mAu<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

80<br />

60<br />

40<br />

20<br />

0<br />

Zwischenprodukte<br />

Carbendazim<br />

2 4 6 8<br />

mAu<br />

100<br />

80<br />

60<br />

40<br />

20<br />

0<br />

Zwischenprodukte<br />

Carbendazim<br />

79<br />

2 4 6 8


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-12: Bildung <strong>von</strong> Carbendazim bei der Umwandlung <strong>von</strong> Thiophanat-<br />

Methyl in Acetonitril/K2CO3 bei verschiedenen Temperaturen<br />

Die Bildung der Zwischenprodukte erfolgt rasch. Wesentlich langsamer <strong>und</strong> daher<br />

geschwindigkeitsbestimmend erfolgt die nachfolgende Bildung des Carbendazim.<br />

(Abb. 3.1.5-9 <strong>und</strong> Abb. 3.1.5-11). Dies hat Auswirkungen auf die Analytik. Die HPLC-<br />

Bestimmung kann erst dann durchgeführt werden, wenn sich die Zwischenprodukte<br />

quantitativ in Carbendazim umgewandelt haben <strong>und</strong> nicht sobald kein Thiophanat-<br />

Methyl mehr vorhanden ist, da sonst zu niedrige Werte ermittelt werden. Analog dazu<br />

sollte eine nachfolgende Derivatisierung des Carbendazim erst nach vollständig<br />

erfolgter Umwandlung durchgeführt werden, da andernfalls das Derivatisierungsmittel<br />

mit Thiophanat-Methyl selbst oder den Zwischenprodukten reagiert, wodurch andere<br />

Produkte als das gewünschte Carbenazim-Derivat entstehen können.<br />

Bestimmung <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl als solches:<br />

Es wurde gezeigt, daß sich Thiophanat-Methyl bei pH-Werten zwischen 4 <strong>und</strong> 9,5 gut<br />

extrahieren läßt. Wegen der Instabilität des Thiophanat-Methyl im Alkalischen sind<br />

jedoch niedrigere pH-Werte günstiger. Wird die <strong>Extraktion</strong> jedoch bei höheren pH-<br />

Werten durchgeführt, ist darauf zu achten, daß unter alkalischen Bedingungen in den<br />

<strong>Extraktion</strong>shülsen ein Abbau erfolgen kann. Sowohl die <strong>Extraktion</strong> als auch die<br />

Bestimmung müssen ohne Verzögerung möglichst rasch durchgeführt werden, da<br />

Thiophanat-Methyl selbst in den in Acetonitril gelösten Extrakten innerhalb einiger<br />

St<strong>und</strong>en teilweise zu Carbendazim umgewandelt wird.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

80


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.5.3.2.3 Derivatisierung <strong>von</strong> Carbendazim mit PFB-Br im GC-Vial<br />

Die direkte Bestimmung <strong>von</strong> Carbendazim mittels HPLC-DAD ist relativ unempfindlich.<br />

Eine gaschromatographische Bestimmung ist nur nach Derivatisierung<br />

möglich. Da für Carbendazim <strong>und</strong> Thiophanat-Methyl eine gemeinsame<br />

Höchstmenge, berechnet als Carbendazim, gilt <strong>und</strong> Carbendazim sehr empfindlich<br />

als PFB-Derivat mit GC-MSD bestimmt werden kann, ist es sinnvoll beide Stoffe<br />

zusammen als Carbendazim zu bestimmen (Benomyl wird schon vor der <strong>Extraktion</strong><br />

zu Carbendazim umgewandelt). Im Rahmen dieser Arbeit wurde daher eine Methode<br />

entwickelt bei der die Umwandlung <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl <strong>und</strong> die anschließende<br />

Derivatisierung des Carbendazim direkt in dem GC-Gläschen durchgeführt wird, in<br />

dem der SFE-Extrakt anfällt. Beide Reaktionen werden durch K2CO3-Lösung<br />

katalysiert.<br />

Sie ist einfach durchzuführen <strong>und</strong> erfordert nur wenige Arbeitsschritte (siehe Anlage<br />

2, Code 101E3102).<br />

3.1.5.3.2.4 Bestimmung mittels GC-MSD<br />

Die derivatisierten Extrakte können ohne weitere Reinigung direkt zur Messung<br />

eingesetzt werden.<br />

Tab. 3.1.5-4 zeigt die Strukturformel des Derivates, seine Retentionszeit sowie die<br />

zur Quantifizierung <strong>und</strong> Identifizierung verwendeten SIM-Massen auf.<br />

Tab. 3.1.5-4: GC-MS-Daten des Carbendazim-bis-PFB-Derivates<br />

Strukturformel Retentionszeit<br />

(min)<br />

N<br />

N<br />

CH2C6F5<br />

CH2C6F5<br />

N C<br />

O<br />

OCH3<br />

24,10<br />

GC-Bedingungen: siehe Anlage 2 (Code 101E3102)<br />

Quantifizierungs-<br />

Masse<br />

(m/z)<br />

551<br />

Bestätigungs-<br />

Massen<br />

(m/z)<br />

492, 292<br />

Zur Kompensation <strong>von</strong> Matrix-Effekten bei kleinen Carbendazim-Konzentrationen ist<br />

es günstig Kalibrierungen nach dem Standard-Additionsverfahren durchzuführen.<br />

Abb. 3.1.5-13 zeigt die Matrix-Effekte des Carbendazim-bis-PFB-Derivates am<br />

Beispiel eines Orangensaft-Extraktes.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

81


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-13: Matrixeffekte, die bei niedrigen Konzentrationen an Carbendazim-<br />

Derivat auftraten, Eichlösungen auf Orangensaft-Extrakt<br />

Fläche vs. Internen Standard<br />

120<br />

100<br />

80<br />

60<br />

40<br />

20<br />

3.1.5.3.2.5 Validierung<br />

Wiederfindungen:<br />

"Matrix Eichung"<br />

0<br />

0 20 40 60 80 100 120 140 160<br />

ng Carbendazim/ml<br />

"Lösungsmittel-Eichung"<br />

Zur Ermittlung der Wiederfindungsraten wurden zerkleinerte Grapefruit-, Trauben-<br />

<strong>und</strong> Eisbergsalat-Proben mit Thiophanat-Methyl oder Carbendazim dotiert. Die<br />

verwendete Analysenvorschrift befindet im Anlage 2. Tab. 3.1.5-5 zeigt die<br />

ermittelten Wiederfindungen.<br />

Tab. 3.1.5-5: Wiederfindung <strong>von</strong> dotiertem Carbendazim (0,33 mg/kg) <strong>und</strong><br />

Thiophanat-Methyl (0,66 mg/kg) aus verschiedenen <strong>Lebensmitteln</strong><br />

Lebensmittel Carbendazim Thiophanat-Methyl<br />

Grapefruit<br />

Trauben<br />

Eisbergsalat<br />

Analysenmethode: siehe Anlage 2<br />

Mittlere Wiederfindung in %<br />

91 85<br />

92 79<br />

93 -<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

82


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen:<br />

Die Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen für Carbendazim wurden nach dem DFG-<br />

Eichgeradenverfahren ermittelt (siehe Tab. 3.1.5-6) [80]. Hierzu wurden Wiederfindungsversuche<br />

bei vier verschiedenen Konzentrationen jeweils 4 mal durchgeführt<br />

(16 Aufarbeitungen). Die Dotierungen erfolgten auf Apfelmatrix, wobei die niedrigste<br />

dotierte Konzentration im Bereich der erwarteten Nachweisgrenze lag [81].<br />

Tab. 3.1.5-6: Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen nach dem DFG-Eichgeradenverfahren<br />

[80-82]<br />

Parameter Carbendazim<br />

(als Bis-PFB-Derivat)<br />

dotierte Menge (µg/kg) 4,8/9,5/19/28,6<br />

berechnete Nachweisgrenze 3 µg/kg<br />

berechnete Bestimmungsgrenze* 5 µg/kg<br />

Korrelation der Geraden (r) 0,998<br />

Korrelationskoeffizient (%RSD) 3,6<br />

Analysenmethode: siehe Anlage 2<br />

* kleinste Höchstmenge für Obst <strong>und</strong> Gemüse 100 µg/kg, für Säuglingsnahrung 10<br />

µg/kg [34]<br />

Laborvergleichsuntersuchung<br />

Eine zerkleinerte, mit einer unbekannten Menge an Carbendazim dotierte Apfelprobe<br />

wurde mit der in Anlage 2 vorgestellten SFE-Methode untersucht. Diese Probe wurde<br />

<strong>von</strong> der Europäischen Kommission im März 1997 im Rahmen einer<br />

Laborvergleichsuntersuchung (Proficiency Test) zur Verfügung gestellt [83]. Tab.<br />

3.1.5-7 zeigt die Ergebnisse, die mit der SFE-Methode erzielt wurden, im Vergleich<br />

zu denen der 58 teilnehmenden Laboratorien.<br />

Tab. 3.1.5-7: European Commission’s Proficiency Test II (März 1997)<br />

Teilnehmerzahl 58<br />

Mittelwert 0,507 mg/kg<br />

Median 0,513 mg/kg<br />

dotierte Menge 0,653 mg/kg<br />

Ergebnis der SFE-Methode 0,66 mg/kg<br />

Wiederfindung 1) 100% (0,5 mg/kg)<br />

1 ) pestizidfreie Apfelmatrix, die <strong>von</strong> den Organisatoren zur Verfügung gestellt wurde,<br />

wurde mit 0,5 mg/kg Carbendazim dotiert<br />

Analysenmethode: siehe Anlage 2<br />

Die Ergebnisse dieser Untersuchungen wurden in [101, 102] veröffentlicht.<br />

Untersuchungsergebnisse <strong>von</strong> zahlreichen Proben aus dem Handel werden in Kap.<br />

3.1.6.2 vorgestellt.<br />

3.1.5.3.2.6 <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> „gewachsenen“ Carbendazim-Rückständen aus<br />

Keltertrauben<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

83


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Im Rahmen eines Feldversuches im Überwachungsgebiet der CVUA Stuttgart wurde<br />

die Wirksamkeit der botriticiden Präparate „Skala“ <strong>und</strong> „Botrylon“ im Weinbau<br />

untersucht. Zur Überprüfung der Rückstandssituation der enthaltenen Wirkstoffe<br />

Carbendazim, Pyrimethanil <strong>und</strong> Diethofencarb zum Zeitpunkt der Lese wurden <strong>von</strong><br />

Weinkontrolleuren entsprechende Proben entnommen.<br />

Die Trauben wurden nach der Zerkleinerung zu je 3 g in 50 ml Bechergläser<br />

eingewogen <strong>und</strong> zum Teil mit NaHCO3-Lösung zur Einstellung des pH-Wertes auf<br />

etwa 6,5 („neutral“) bzw. 8,5 („alkalisch“) versetzt. Die restlichen Proben wiesen<br />

einen pH-Wert <strong>von</strong> etwa 3 auf („sauer“). Alle Proben wurden anschließend mit 2 g<br />

Hydromatrix verrührt <strong>und</strong> zur SFE-<strong>Extraktion</strong> eingesetzt. Die Ergebnisse sind in Tab.<br />

3.1.5-8 dargestellt.<br />

Tab. 3.1.5-8: Einfluß des pH-Wertes auf die Extrahierbarkeit <strong>von</strong><br />

Carbendazim aus Trauben mittels SFE<br />

Carbendazimgehalt (in ppm) bestimmt nach Derivatisierung<br />

mit PFBB/K2CO3<br />

SFE-Methode DFG-Methode<br />

„alkalisch“ „neutral“ „sauer“<br />

pH∼8,5 pH∼6,5 pH∼3<br />

Probe 1 0,18 (n=5) 0,035 (n=4)<br />

Probe 2 0,10 (n=6) 0,053 0,018 (n=3)<br />

Probe 3 0,16 (n=6) 0,039 (n=4)<br />

Probe 4 0,17 (n=6) 0,042 (n=3)<br />

Probe 5 0,37 (n=4) 0,38 (n=2)<br />

Probe 6 0,16 (n=5) 0,045 0,019 (n=2)<br />

Analysenmethode: siehe Anlage 2<br />

Wie zu erwarten war, spielt der pH-Wert auch bei der SFE-<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> gewachsenen<br />

Carbendazim-Rückständen eine große Rolle. Unter alkalischen Bedingungen<br />

wurden für Carbendazim Werte ermittelt, die mit denen der DFG-Methode<br />

vergleichbar sind. Unter sauren Bedingungen konnte dagegen nur ein Bruchteil des<br />

Carbendazim erfaßt werden.<br />

Die Ergebnisse der Untersuchung auf Pyrimethanil <strong>und</strong> Diethofencarb sind in Kap.<br />

3.1.6.1 dargestellt.<br />

3.1.5.3.2.7: SFE- <strong>und</strong> DFG-Methode zur Bestimmung der Carbendazim-Gruppe im<br />

Kostenvergleich<br />

In Tab. 3.1.5-9 werden die einzelnen Arbeitsschritte, die bei der SFE-Methode (siehe<br />

Anlage 2) <strong>und</strong> der DFG-Methode 261, 378 zur Bestimmung <strong>von</strong> Carbendazim,<br />

Benomyl <strong>und</strong> Thiophanat-Methyl anfallen, gegenübergestellt. Darüber hinaus werden<br />

die Kosten für die beiden Verfahren geschätzt. Es wird ersichtlich, daß die SFE-<br />

Methode im Vergleich zu der herkömmlichen Methode deutlich effizienter ist. Die<br />

Vorteile liegen vor allem in der Einsparung <strong>von</strong> Lösungsmittel- <strong>und</strong> Personalkosten.<br />

Tab. 3.1.5-9: Gegenüberstellung der DFG-261, 378 <strong>und</strong> der SFE-Methode zur<br />

Bestimmung der Stoffe der Carbendazim-Gruppe<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

84


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

SFE-Methode DFG 261, 378<br />

Arbeitsschritte<br />

• einwiegen<br />

• einwiegen<br />

• alkalisieren<br />

• mit Methanol homogenisieren<br />

• Zugabe <strong>von</strong> Adsorbens<br />

• ausschütteln<br />

• einfüllen in die <strong>Extraktion</strong>shülse • abnutschen, nachwaschen,<br />

• <strong>Extraktion</strong><br />

auffüllen<br />

• Derivatisierung<br />

• Aliquotierung<br />

• Chromatographie<br />

• mit DMF am Rotationsverdampfer<br />

konzentrieren<br />

• mit DMF <strong>und</strong> Ammoniak versetzen<br />

• auf dem Wasserbad erwärmen<br />

• am Rotationsverdampfer<br />

konzentrieren<br />

• mit Phosphatpuffer <strong>und</strong> Salzlösung<br />

versetzen<br />

• 3 x mit Dichlormethan ausschütteln<br />

• mit Natriumsulfat trocknen<br />

• am Rotationsverdampfer<br />

konzentrieren<br />

• aufnehmen<br />

• Al2O3-Säulen herstellen<br />

• säulenchromatographische<br />

Reinigung<br />

• Lösungsmittel entfernen<br />

• Derivatisierung<br />

• Chromatographie<br />

Arbeitszeit pro Serie in St<strong>und</strong>en<br />

6 Arbeitsst<strong>und</strong>en für 12 Proben 20 Arbeitsst<strong>und</strong>en für 6 Proben<br />

Chemikalienverbrauch<br />

• 40 g hochreines Kohlendioxid<br />

• 250 ml Methanol<br />

• techn. Kohlendioxid zur Kühlung der • 240 ml Dichlormethan<br />

Falle<br />

• 150 ml Hexan/Essigester<br />

• 10 g Hydromatrix<br />

• 10 ml DMF<br />

• 8 ml Acetonitril<br />

• Natriumsulfat<br />

• 5 ml Hexan<br />

• Natriumchlorid<br />

Kosten für die Aufarbeitung pro Probe in DM<br />

Personalkosten: ca. 15 DM Personalkosten: ca. 100 DM<br />

Chemikalien /<br />

ca. 10 DM Chemikalien /<br />

ca. 55 DM<br />

Verbrauchsmaterial<br />

Verbrauchsmaterial:<br />

Summe<br />

ca. 65 DM ca. 155 DM<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

85


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.5.4 Saure Pestizide<br />

3.1.5.4.1 Einführung<br />

Ähnlich wie im Fall basischer Verbindungen ist bei sauren Pestiziden zur Verbesserung<br />

der Extrahierbarkeit eine pH-Wert-Einstellung notwendig. Eine Ansäuerung<br />

der Matrix ist hier erforderlich um das Säure-Base-Gleichgewicht in Richtung der<br />

leicht extrahierbaren protonierten Form zu verschieben. Die meisten Pestizide mit<br />

Carbonsäure-Funktion sind herbizid <strong>und</strong>/oder wachstumsregulatorisch wirksam.<br />

Zu den wichtigsten Vertretern gehören die Phenoxyalkancarbonsäuren, die als<br />

Selektivherbizide im Getreideanbau verwendet werden. Beispiele hierfür sind<br />

2,4-D <strong>und</strong> Mecoprop, die weltweit zu den mengenmäßig am häufigsten verwendeten<br />

Pestiziden gehören. Pestizide mit Säuregruppen sind in der Regel gut wasserlöslich<br />

<strong>und</strong> daher systemisch wirksam, d.h. sie dringen z.B. über die Wurzeln in die Pflanzen<br />

ein <strong>und</strong> verteilen sich über die Assimilatenbahnen über die ganze Pflanze. Hier<br />

können sie über die Säuregruppe Bindungen mit verschiedenen Pflanzeninhaltsstoffen,<br />

wie Kohlenhydraten <strong>und</strong> Proteinen eingehen (Ausbildung geb<strong>und</strong>ener<br />

Rückstände).<br />

Analytisch bereiten Pestizide mit Säuregruppen einige Schwierigkeiten, da sie<br />

besondere <strong>Extraktion</strong>sbedingungen erfordern <strong>und</strong> nicht ohne Derivatisierung<br />

gaschromatographisch bestimmt werden können. Sie werden daher nicht mit den<br />

gängigen Multimethoden erfaßt <strong>und</strong> somit routinemäßig kaum untersucht.<br />

Die Entwicklung einer einfachen Methode zur Bestimmung solcher Pestizide ist daher<br />

erforderlich.<br />

Stellvertretend für Phenoxyalkancarbonsäuren wurde 2,4-D für die Entwicklung einer<br />

Bestimmungsmethode ausgewählt. 2,4-D wird nicht nur als Herbizid im Getreideanbau<br />

eingesetzt, sondern auch in geringen Konzentrationen als Wachstumsregulator beim<br />

Anbau <strong>von</strong> Obst <strong>und</strong> Gemüse. In Getreide werden üblicherweise nur geringe Gehalte<br />

an Phenoxyalkancarbonsäuren gef<strong>und</strong>en, da die Behandlung bereits zu einem sehr<br />

frühen Zeitpunkt des Anbaus erfolgt. Bei Zitrusfrüchten wird 2,4-D zudem häufig auch<br />

zur Nacherntebehandlung eingesetzt, weshalb hier am ehesten mit Rückständen zu<br />

rechnen ist.<br />

3.1.5.4.2 2,4-D-Rückstände in Zitrusfrüchten<br />

Seit den späten 40 iger Jahren wird 2,4-D im Zitrusanbau als Wachstumsregulator<br />

eingesetzt [9]. In den USA werden beispielsweise Zitrusbäume vor der Ernte mit<br />

schwach konzentrierten 2,4-D-Isopropylester-Lösungen behandelt [4,9]. 2,4-D bewirkt<br />

eine Verlangsamung der Reifungsprozesse in den Früchten, wodurch der Fruchtabfall<br />

verzögert wird. Dadurch kann die Erntezeit erheblich verlängert werden. Die Belastung<br />

der Früchte mit 2,4-D durch diese Behandlung ist relativ gering [9].<br />

In Ländern wie Argentinien, Uruguay <strong>und</strong> Südafrika werden Zitrusfrüchte vor der<br />

Einschiffung zum Export nach Europa mit wäßrigen Wachsemulsionen behandelt, die<br />

etwa 500 ppm 2,4-D enthalten. Der Wirkstoff wird hier meist als Salz (z.B. Natrium-<br />

oder Dimethylammonium-Salz) oder als Ester (z.B. Isopropylester) eingesetzt<br />

[5,9,125,132]. In USA <strong>und</strong> Spanien wird 2,4-D nur bei Früchten verwendet, die zur<br />

Lagerung bestimmt sind [125,131]. Hier wird das 2,4-D-haltige Wachs vor dem<br />

Verkauf abgewaschen <strong>und</strong> durch ein 2,4-D-freies Glanzwachs ersetzt.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

86


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Mit 2,4-D behandelte Zitrusfrüchte sind beständiger gegen Pilzbefall. Dies ist darauf<br />

zurückzuführen, daß biologische Prozesse, die für die natürliche Alterung der Früchte<br />

verantwortlich sind, mit Hilfe <strong>von</strong> 2,4-D verzögert werden. Dadurch bleiben die<br />

Resistenzmechanismen der Früchte gegenüber Pilzen länger intakt [9,47,50].<br />

Die zur Oberflächenbehandlung <strong>von</strong> Zitrusfrüchten eingesetzten 2,4-D-Ester<br />

hydrolysieren in der Regel kurze Zeit nach ihrer Anwendung zu der Säureform [5,9].<br />

Der als Säure vorliegende Wirkstoff kann sich nun an verschiedene Moleküle mit<br />

reaktionsfähigen Gruppen (z.B. Hydroxyl- oder Epoxid-Gruppen [vgl. 33]) anbinden. In<br />

Betracht kommen hier in erster Linie Wachse, die zur Oberflächenbehandlung der<br />

Früchte eingesetzt werden, fruchteigene Wachse <strong>und</strong> Cutin-Makromoleküle,<br />

Wachsalkohole <strong>und</strong> Polysaccharide. Reaktionen mit stickstoffhaltigen Substanzen<br />

(z.B. Aminosäuren) unter Ausbildung <strong>von</strong> Amidbindungen spielen auf der Schalenoberfläche<br />

eine untergeordnete Rolle.<br />

Über Esterbindungen geb<strong>und</strong>ene Rückstände können mittels einer alkalischen<br />

Hydrolyse, wie sie auch bei anderen Methoden zur Bestimmung <strong>von</strong> Phenoxyalkancarbonsäuren<br />

in Getreide eingesetzt wird [2,6], freigesetzt werden.<br />

3.1.5.4.3 <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> freiem 2,4-D<br />

Einfluß des pH-Wertes:<br />

Zur <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> 2,4-D mit überkritischem Kohlendioxid wird das Probenmaterial<br />

angesäuert, wodurch das Säure-Base-Gleichgewicht (pKs=2,73) in Richtung der gut<br />

extrahierbaren protonierten Form verschoben wird (siehe auch Kap. 3.1.4.7.2).<br />

Der Einfluß des pH-Wertes auf die Extrahierbarkeit <strong>von</strong> 2,4-D wird in Tab. 3.1.5-10<br />

dargestellt. Es wird ersichtlich, daß unter alkalischen Bedingungen, nur geringe<br />

Anteile des 2,4-D extrahiert werden.<br />

Tab. 3.1.5-10: Wiederfindungen <strong>von</strong> 2,4-D in Abhängigkeit<br />

vom pH-Wert, Grapefruit-Matrix 0,5 ppm<br />

„sauer“ pH 1-2 „alkalisch“ pH∼9,5<br />

Wiederfindung in %<br />

100 (n=2) 6 (n=4)<br />

Analysenmethode: siehe Anlage 3<br />

Einfluß des Wassergehaltes:<br />

Zur Überprüfung des Einflusses <strong>von</strong> vorhandenem Wasser wurden Wiederfindungsversuche<br />

mit unterschiedlichem Probe/Hydromatrix-Verhältnis durchgeführt. Dabei<br />

wurden bei Orangensaft für Probe/Hydromatrix-Verhältnisse <strong>von</strong> 0,75:1 bis 1,65:1<br />

nahezu identisch Wiederfindungsraten für 2,4-D festgestellt. Noch größere Anteile an<br />

Probe (höherer Wasseranteil) führten jedoch zu einer Verschlechterung der<br />

Wiederfindung.<br />

3.1.5.4.4 Freisetzung <strong>von</strong> geb<strong>und</strong>enen 2,4-D-Rückständen<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

87


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Nach der Ernte wird 2,4-D häufig als Isopropyl-Ester oder Dimethylamin-Salz eingesetzt.<br />

2,4-D-Ester hydrolysieren nach der Anwendung rasch zur freien Säure<br />

[30,59,60]. Die Säure kann dann teilweise an Wachsüberzüge <strong>und</strong> natürliche<br />

Schalenbestandteile unter Esterbildung binden. Derartig „geb<strong>und</strong>ene“ 2,4-D-<br />

Rückstände werden bei einer <strong>Extraktion</strong> mit Lösungsmitteln nicht mit erfaßt.<br />

Es wurde festgestellt daß sich der Anteil an extrahierbarem 2,4-D deutlich erhöht,<br />

wenn Proben mit gewachsenen 2,4-D-Rückständen unter alkalischen Bedingungen<br />

erhitzt werden (Tab. 3.1.5-11, Abb. 3.1.5-14). Eventuell geb<strong>und</strong>ene 2,4-Dichlorphenol-Anteile<br />

(Abbauprodukt <strong>von</strong> 2,4-D) dürften bei dem alkalischen Aufschluß [29]<br />

ebenfalls freigesetzt werden.<br />

Eine Erhöhung des extrahierbaren 2,4-D wurde ebenfalls festgestellt, wenn die<br />

Proben im Sauren erhitzt wurden, allerdings wurde in diesem Fall deutlich weniger<br />

2,4-D freigesetzt als bei alkalischer Hydrolyse.<br />

Zur Optimierung dieses alkalischen Aufschlusses wurde der pH-Wert <strong>und</strong> die<br />

Erhitzungszeit variiert, um die Bildung unerwünschter Artefakte, die bei der GC-<br />

Bestimmung stören können, möglichst klein zu halten. Es zeigte sich, daß bereits<br />

relativ milde Bedingungen ausreichen, um den Großteil des „geb<strong>und</strong>enen“ 2,4-D<br />

freizusetzen. Keine weitere Erhöhung des extrahierbaren 2,4-D aber deutlich<br />

dunklere Extrakte wurden bei längerer Erhitzungszeit <strong>und</strong> höheren pH-Werten erzielt<br />

(Tab. 3.1.5-11).<br />

Tab. 3.1.5-11: Einfluß der Erhitzungszeit <strong>und</strong> des pH-Wertes während der<br />

Hydrolyse auf die Freisetzung <strong>von</strong> 2,4-D<br />

Erhitzungszeit pH-Wert während 2,4-D Menge<br />

(min) der Hydrolyse<br />

1) Fruchtart<br />

(Herkunftsland)<br />

- 2) - 0,22 mg/kg<br />

15 ∼9,5 0,47 mg/kg<br />

20 ∼9,5 0,48 mg/kg Orange<br />

30 ∼9,5 0,44 mg/kg (Südafrika)<br />

45 ∼9,5 0,47 mg/kg<br />

15 >13 0,46 mg/kg<br />

- 2) - 0,11 mg/kg Zitrone<br />

30 ∼2,5 3) 0,17 mg/kg (Argentinien)<br />

20 ∼9,5 0,31 mg/kg<br />

- 2) - 0,60 mg/kg<br />

60 ∼3,3 3) 0,62 mg/kg Orange<br />

30 2 0,88 mg/kg (Simbabwe)<br />

60 2 0,94 mg/kg<br />

20 ∼9,5 1,60 mg/kg<br />

1)<br />

alle Proben wurden bei pH∼2,5 extrahiert, SFE-Bedingungen: siehe Anlage 3<br />

2) es wurde keine Hydrolyse durchgeführt<br />

3) natürlicher pH Wert<br />

Die Auswirkung eines alkalischen Aufschlusses vor der SFE-<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> 2,4-Dhaltigen<br />

Zitrusproben aus dem Handel wird aus Abb. 3.1.5-14 ersichtlich.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

88


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-14: Freisetzung geb<strong>und</strong>ener 2,4-D Rückstände aus Zitrusfrüchten<br />

durch alkalische Hydrolyse<br />

2,4-D (mg/kg)<br />

0,6<br />

0,5<br />

0,4<br />

0,3<br />

0,2<br />

0,1<br />

0<br />

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10<br />

ohne alkalische Hydrolyse nach alkalischer Hydrolyse<br />

Nr. Fruchtart Herkunftsland Verhältnis<br />

1 Orange Simbabwe 1,6<br />

2 Orange Uruguay 1,7<br />

3 Orange Südafrika 2,1<br />

4 Grapefruit Südafrika 6,3<br />

5 Grapefruit Argentinien 2,4<br />

6 Grapefruit Honduras 3,0<br />

7 Zitrone Argentinien 4,0<br />

8 Zitrone Argentinien 5,7<br />

9 Zitrone Argentinien 2,8<br />

3.1.5.4.5 Derivatisierungsmöglichkeiten <strong>von</strong> Phenoxyalkancarbonsäuren<br />

Die Derivatisierung des 2,4-D, sowie auch weiterer Phenoxyalkancarbonsäuren zu<br />

den 2,2,2-Trichlorethyl- (TCE) Derivaten ist einfach in der Durchführung <strong>und</strong> hat sich<br />

als sehr zuverlässig <strong>und</strong> robust erwiesen. Durch die Zugabe <strong>von</strong> 20 %iger statt<br />

konzentrierter Schwefelsäure als Katalysator konnte die Reinheit der Extrakte nach<br />

der Derivatisierung weiter erhöht werden. Diese Derivatisierungsmethode wird in [19]<br />

eingehend erläutert.<br />

Als Alternative zu der Trichlorethylierung wurde eine Derivatisierung mit 1,3-Dichlor-<br />

Isopropanol (DCIP) vorgenommen [29]. Reagentienverteilung <strong>und</strong> Ablauf der<br />

Reaktion entsprechen der Trichlorethylierung. Zu den DCIP- <strong>und</strong> TCE-Derivaten<br />

wurden neben 2,4-D auch weitere Phenoxyalkancarbonsäuren <strong>und</strong> andere Säuren<br />

derivatisiert. Wie in Abb. 3.1.5-15 <strong>und</strong> 3.1.5-16 zu sehen ist, lassen sich die Derivate<br />

gaschromatographisch gut trennen.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

89


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-15: TIC der 1,3-Dichlorisopropylester saurer Pestizide<br />

340000<br />

320000<br />

300000<br />

280000<br />

260000<br />

240000<br />

220000<br />

200000<br />

180000<br />

160000<br />

140000<br />

120000<br />

100000<br />

80000<br />

60000<br />

40000<br />

20000<br />

15.51<br />

15.78<br />

16.15<br />

16.70<br />

16.50<br />

17.06<br />

17.40<br />

18.01<br />

18.64<br />

19.32<br />

20.05<br />

20.22<br />

21.26<br />

0<br />

Time--><br />

15.00 16.00 17.00 18.00 19.00 20.00 21.00 22.00<br />

Abb. 3.1.5-16: TIC der 2,2,2-Trichlorethylester saurer Pestizide<br />

60000<br />

50000<br />

40000<br />

30000<br />

20000<br />

10000<br />

0<br />

Time--><br />

14.42<br />

14.79<br />

15.85<br />

15.36<br />

15.07<br />

16.65<br />

16.27<br />

17.75<br />

17.13 17.39<br />

18.47<br />

19.30<br />

19.08<br />

20.29<br />

21.67<br />

15.00 16.00 17.00 18.00 19.00 20.00 21.00 22.00 23.00 24.00 25.00<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

90<br />

1,3-Dichlorpropan-2-ol Derivate<br />

15.51 Dichlorbenzoesäure<br />

15.78 Clopyralid<br />

16.15 4-Chlorphenoxyessigsäure<br />

16.50 MCPP (Mecoprop)<br />

16.70 Dicamba<br />

17.06 MCPA<br />

17.40 2,4-DP (Dichlorprop)<br />

18.01 2,4-D<br />

18.64 Triclopyr<br />

19.32 2,4,5-TP (Fenoprop)<br />

20.05 2,4,5-T<br />

20.22 MCPB<br />

21.26 2,4-DB<br />

24.50<br />

2,2,2-Trichlorethyl Derivate<br />

14.42 Reagenz-Blindpeak<br />

14.79 Dichlorbenzoesäure<br />

15.07 Clopyralid<br />

15.36 4-Chlorphenoxyessigsäure<br />

15.84 MCPP (Mecoprop)<br />

15.86 Dicamba<br />

16.27 MCPA<br />

16.65 2,4-DP (Dichlorprop)<br />

17.14 2,4-D<br />

17.39 Interner Standard PCB 101<br />

17.75 Triclopyr<br />

18.47 2,4,5-TP (Fenoprop)<br />

19.09 2,4,5-T<br />

19.30 MCPB<br />

20.29 2,4-DB<br />

21.67 Picloram<br />

24.50 p,p´-DDA


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Charakteristisch für die Massenspektren der DCIP-Derivate ist, daß die, wegen ihrer<br />

höheren Massen in der Regel weniger störungsanfälligen höhermolekularen Ionen,<br />

i.a. stark vertreten sind. Die Bestimmungen mittels GC/MSD gewinnen dadurch an<br />

Empfindlichkeit <strong>und</strong> Spezifität. Problematisch für den Einsatz <strong>von</strong> DCIP ist allerdings<br />

dessen cancerogenes Potential [32].<br />

2,4-Dichlorphenol als Abbauprodukt <strong>von</strong> 2,4-D wird bei den oben beschriebenen<br />

Derivatisierungsreaktionen nicht umgesetzt. Als Alternative bietet sich hier eine<br />

Umsetzung mit Pentafluorbenzylbromid an, siehe [29], bei der auch phenolische<br />

Gruppen derivatisiert werden.<br />

Die Massenspektren der verschiedenen 2,4-D-Derivate sind in den Abbildungen<br />

3.1.5-17 bis 19 dargestellt.<br />

Abb. 3.1.5-17: Massenspektrum <strong>von</strong> 2,4-D-TCE-Ester<br />

9500<br />

9000<br />

8500<br />

8000<br />

7500<br />

7000<br />

6500<br />

6000<br />

5500<br />

5000<br />

4500<br />

4000<br />

3500<br />

3000<br />

2500<br />

2000<br />

1500<br />

1000<br />

500<br />

0<br />

m/z--><br />

61<br />

77<br />

111<br />

133<br />

145 161<br />

175<br />

175<br />

205<br />

2,4-D-TCE-Ester<br />

220238 271 277<br />

316 318<br />

352<br />

374384 408<br />

60 80 100 120 140 160 180 200 220 240 260 280 300 320 340 360 380 400<br />

Abb. 3.1.5-18: Massenspektrum <strong>von</strong> 2,4-D-DCP-Ester<br />

9500<br />

9000<br />

8500<br />

8000<br />

7500<br />

7000<br />

6500<br />

6000<br />

5500<br />

5000<br />

4500<br />

4000<br />

3500<br />

3000<br />

2500<br />

2000<br />

1500<br />

1000<br />

500<br />

0<br />

m/z--><br />

63<br />

75<br />

111<br />

133<br />

145<br />

175<br />

177<br />

210<br />

220<br />

255<br />

269 284<br />

100 150 200 250 300 350 400<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

175<br />

2,4-D-DCIP-Ester<br />

317<br />

332<br />

344<br />

380 387 417<br />

91


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-19: Massenspektrum <strong>von</strong> 2,4-D-PFB-Ester<br />

9500<br />

9000<br />

8500<br />

8000<br />

7500<br />

7000<br />

6500<br />

6000<br />

5500<br />

5000<br />

4500<br />

4000<br />

3500<br />

3000<br />

2500<br />

2000<br />

1500<br />

1000<br />

500<br />

m/z--> 0<br />

63 75<br />

111<br />

133<br />

145<br />

181<br />

175<br />

100 150 200 250 300 350 400<br />

3.1.5.4.6 Bestimmung mittels GC-MSD<br />

()<br />

2,4-D-PFB-Ester<br />

219 224 243 279288 307 342 365380<br />

Die derivatisierten Extrakte können ohne weitere Reinigung direkt zur Messung<br />

eingesetzt werden.<br />

Tab. 3.1.5-12 zeigt die Sturkturformeln der Derivate, deren Retentionszeiten sowie<br />

die zur Quantifizierung <strong>und</strong> Identifizierung verwendeten SIM-Massen auf.<br />

Die beschriebenen „Matrix-Effekte“, die die gaschromatographische Bestimmung<br />

beeinflussen können, erwiesen sich im Fall der 2,4-D-TCE-Derivate als sehr gering.<br />

Lediglich bei sehr geringen Gehalten (


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.5.4.7 Validierung<br />

Wiederfindung:<br />

Zur Ermittlung der Wiederfindungsrate wurden zerkleinerte Grapefruit mit 2,4-D<br />

dotiert (0,25 ppm) <strong>und</strong> nach der Analysenvorschrift 102E3102 (siehe Anlage 3) fünf<br />

mal aufgearbeitet. Die ermittelte Wiederfindungsrate betrug 93 %.<br />

Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen:<br />

Die Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen für 2,4-D wurden nach dem DFG-Eichgeradenverfahren<br />

ermittelt (siehe Tab. 3.1.5-13) [80]. Hierzu wurden Wiederfindungsversuche<br />

bei vier verschiedenen Konzentrationen jeweils 4 mal durchgeführt<br />

(16 Aufarbeitungen). Die Dotierungen erfolgten auf Apfelmatrix, wobei die niedrigste<br />

dotierte Konzentration im Bereich der erwarteten Nachweisgrenze lag [81].<br />

Tab. 3.1.5-13: Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen nach dem DFG-<br />

Eichgeradenverfahren [80,81]<br />

Parameter 2,4-D<br />

(als TCE-Derivat)<br />

dotierte Menge (µg/kg) 7,1/14,2/22,8/71<br />

berechnete Nachweisgrenze 6 µg/kg<br />

berechnete Bestimmungsgrenze * 14 µg/kg<br />

Korrelation der Geraden (r) 0,999<br />

Korrelationskoeffizient (%RSD) 3,8<br />

Analysenvorschrift: siehe Anlage 3<br />

* die kleinste Höchstmenge für Obst <strong>und</strong> Gemüse beträgt 100µg/kg, für Säuglingsnahrung<br />

10 µg/kg<br />

Methodenvergleich:<br />

Zur weiteren Überprüfung der Methode wurden Proben, die gewachsene 2,4-D-<br />

Rückstände enthielten, mit der SFE-Methode zur Bestimmung <strong>von</strong> 2,4-D <strong>und</strong> parallel<br />

dazu mit einer naßchemischen Methode untersucht [29].<br />

Die Ergebnisse sind in Tab. 3.1.5-14 zusammengefaßt. Bei beiden Methoden wird<br />

ein alkalischer Aufschluß vor der <strong>Extraktion</strong> durchgeführt. Es wurden nahezu<br />

identische Ergebnisse erzielt.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

93


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.5-14: Vergleich der SFE-Methode zur Bestimmung <strong>von</strong> 2,4-D in<br />

Zitrusfrüchten mit einer <strong>Extraktion</strong>smethode die organische<br />

Lösungsmittel verwendet<br />

Fruchtart Herkunftsland 2,4-D in mg/kg<br />

SFE-Methode „Lösungsmittel“<br />

Methode [29]<br />

Zitrone Argentinien 0,16 0,17<br />

Zitrone Argentinien 0,15 0,16<br />

Zitrone Argentinien 0,12 0,13<br />

Grapefruit Argentinien 0,19 0,21<br />

Grapefruit Argentinien 0,13 0,14<br />

Grapefruit Südafrika 0,63 0,60<br />

Grapefruit Südafrika 0,59 0,64<br />

Clementine Argentinien 0,29 0,29<br />

Die Ergebnisse dieser Untersuchungen wurden in [101,102] veröffentlicht.<br />

Untersuchungsergebnisse <strong>von</strong> zahlreichen Zitrusfruchtproben aus dem Handel<br />

werden i Kap. 3.1.6.3 vorgestellt.<br />

3.1.5.4.8 Behandlung <strong>von</strong> Zitronen mit 2,4-D <strong>und</strong> Lagerungsversuch<br />

Um festzustellen, mit welcher Kinetik 2,4-D auf der Oberfläche <strong>von</strong> Zitrusfrüchten<br />

nach einer Behandlung geb<strong>und</strong>en wird, wurden unbehandelte Zitronen wie folgt<br />

behandelt: Ein Teil der Proben wurde in eine wäßrige 2,4-D-Lösung (1000 ppm)<br />

eingetaucht, der andere Teil der Proben wurde mit einer 2,4-D-haltigen<br />

Wachsemulsion auf Polyethylen-Basis überzogen (500 ppm). Gelagert wurden die<br />

Proben bei Temperaturen zwischen 3 <strong>und</strong> 7°C in einem Kellerraum. Gegen Ende des<br />

Versuches (ab etwa dem 100. Tag) stieg die Temperatur witterungsbedingt<br />

allmählich auf etwa 12°C-14°C an.<br />

Zu verschiedenen Zeitpunkten wurden Früchte entnommen, zerkleinert <strong>und</strong> tiefgefroren.<br />

Der Gehalt an 2,4-D in den jeweiligen Einzelfrüchten wurde mit <strong>und</strong> ohne<br />

die Durchführung einer alkalischen Hydrolyse bestimmt (freies 2,4-D <strong>und</strong> „Gesamt-<br />

2,4-D“). Zur <strong>Extraktion</strong> wurde die SFE eingesetzt (Analysenvorschrift siehe Anlage 3.<br />

Die Ergebnisse sind in Tab. 3.1.5-15 / Abb. 3.1.5-20 <strong>und</strong> Tab. 3.1.5-16 / Abb. 3.1.5-<br />

21 zusammengefaßt.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

94


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.5-15: Zitronen behandelt mit wäßriger 2,4-D-haltiger Lösung<br />

Lagerzeit<br />

(Tage)<br />

Proben-<br />

nummer<br />

mit Hydrolyse<br />

("Gesamt-2,4-D")<br />

2,4-D (mg/kg)*<br />

ohne Hydrolyse<br />

(freies 2,4-D)<br />

Faktor<br />

freies 2,4-D /<br />

"Gesamt-2,4-D"<br />

95<br />

Mittlerer<br />

Faktor<br />

0 1 7,39 6,97 0,94<br />

2 5,44 5,20 0,96 0,95<br />

10 3 3,28 3,10 0,95<br />

4 7,22 6,80 0,94 0,94<br />

28 5 3,67 2,75 0,75<br />

6 5,39 3,63 0,67 0,71<br />

7 5,61 4,00 0,71<br />

50 9 6,39 3,80 0,59<br />

10 7,39 3,90 0,53 0,57<br />

11 5,49 3,40 0,62<br />

12 8,77 4,75 0,54<br />

71 13 4,56 2,38 0,52<br />

14 5,56 2,90 0,52 0,52<br />

* Mittelwerte aus mindestens 2 Bestimmungen pro Probe<br />

Abb. 3.1.5-20: Bindung des 2,4-D an die Matrix während der Lagerung behandelter<br />

Zitronen<br />

Faktor:<br />

freies 2,4-D /<br />

"Gesamt-2,4-D"<br />

1,0<br />

0,5<br />

0,0<br />

2,4-D in wässriger Lösung aufgebracht<br />

0 10 28 50 71<br />

Lagerzeit (Tage)<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.5-16: Zitronen behandelt mit wäßriger 2,4-D-haltiger Wachsemulsion<br />

Lagerzeit<br />

(Tage)<br />

Proben-<br />

nummer<br />

mit Hydrolyse<br />

("Gesamt-2,4-D")<br />

2,4-D (mg/kg)*<br />

ohne Hydrolyse<br />

(freies 2,4-D)<br />

Faktor<br />

freies 2,4-D /<br />

"Gesamt-2,4-D"<br />

96<br />

Mittlerer<br />

Faktor<br />

0 1 1,53 1,59 1,04<br />

2 1,04<br />

5 3 1,83 1,82 1,00<br />

4<br />

1,86 1,83 0,98 0,99<br />

14 5 1,36 1,28 0,94<br />

6 1,14 1,08 0,94 0,94<br />

28 7 1,50 1,29 0,86<br />

8 1,36 1,23 0,90 0,88<br />

35 9 1,39 1,13 0,82<br />

10 0,82<br />

50 11 1,58 1,18 0,75<br />

12 1,38 1,13 0,82 0,78<br />

71 13 1,40 0,94 0,67<br />

14 1,59 1,05 0,66 0,67<br />

99 15 1,32 0,81 0,62<br />

16 1,32 0,84 0,63 0,62<br />

130 17 1,20 0,50 0,42<br />

18 1,22 0,49 0,40 0,41<br />

* Mittelwerte aus mindestens 2 Bestimmungen pro Probe<br />

Abb. 3.1.5-21: Bindung des 2,4-D an die Matrix während der Lagerung behandelter<br />

Zitronen<br />

Faktor:<br />

freies 2,4-D /<br />

"Gesamt-2,4-D"<br />

1,0<br />

0,5<br />

0,0<br />

2,4-D mit Wachs aufgebracht<br />

0 5 14 28 35 50 71 99 130<br />

Lagerungszeit (Tage)<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Der Anteil an geb<strong>und</strong>enem 2,4-D stieg sowohl bei den mit Wachs behandelten als<br />

auch bei den mit wäßriger 2,4-D-Lösung behandelten Zitronen im Verlauf der<br />

Lagerung deutlich an (siehe Tab. 3.3.5-15 <strong>und</strong> 3.1.5-16)<br />

Bemerkenswert ist, daß sich trotz der sehr langen Lagerzeit <strong>von</strong> über 4 Monaten kein<br />

signifikanter 2,4-D Abbau feststellen ließ (vgl. Abb. 3.1.5-22).<br />

Abb. 3.1.5-22: Mittlere Gehalte an "Gesamt-2,4-D" einzelner Früchte während der<br />

Lagerung<br />

Gehalt an 2,4-D (mg/kg)<br />

1,6<br />

1,4<br />

1,2<br />

1<br />

0,8<br />

0,6<br />

0,4<br />

0,2<br />

0<br />

Mittelwert<br />

0 14 28 35 50 71 99 130<br />

97<br />

Lagerungszeit (Tage)<br />

3.1.5.4.9 Freisetzung <strong>von</strong> geb<strong>und</strong>enem 2,4-D aus Zitrusfrüchten bei simulierter<br />

Verdauung <strong>und</strong> simulierter Verarbeitung<br />

Die in der RHmV festgesetzten Höchstmengen für 2,4-D [34] beziehen sich auf das<br />

freie 2,4-D, seine Salze <strong>und</strong> Ester, wobei unter 2,4-D-Ester die Esterverbindungen zu<br />

verstehen sind, die als Pflanzenschutzmittel eingesetzt werden <strong>und</strong> in den Proben<br />

noch unhydrolysiert als Rückstände vorliegen. Das über Konjugate an Matrixbestandteile<br />

geb<strong>und</strong>ene 2,4-D ist hierbei nicht berücksichtigt [127].<br />

Derartiges geb<strong>und</strong>enes 2,4-D kann aber ebenfalls <strong>von</strong> Relevanz sein, da es bei der<br />

Verarbeitung <strong>von</strong> Zitrusfrüchten <strong>und</strong> im Verdauungsapparat des Menschen<br />

freigesetzt <strong>und</strong> dadurch bioverfügbar werden kann.<br />

Um dies zu überprüfen, wurde eine 2,4-D-haltige argentinische Zitronenprobe, die<br />

einen großen Anteil an geb<strong>und</strong>enem 2,4-D enthielt, einer simulierten Magen- <strong>und</strong><br />

Dünndarmverdauung unterzogen (Durchführung siehe Anlage 8) [135].<br />

Für die Verdauungsversuche wurde Pepsin sowie Galle <strong>und</strong> Dünndarmenzyme aus<br />

Schwein verwendet. Magen- <strong>und</strong> Dünndarmverdauung wurden isoliert betrachtet.<br />

Die Ergebnisse dieser Versuche sind in Abb. 3.1.5-23 <strong>und</strong> 3.1.5-24 dargestellt.<br />

Es wird ersichtlich, daß unter den Bedingungen einer simulierten Dünndarmverdauung<br />

große Anteile des geb<strong>und</strong>enen vorliegenden 2,4-D freigesetzt werden<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

können (57 % nach 1 h <strong>und</strong> 86 % nach 3 h); bei einer simulierten Magenverdauung<br />

dagegen, innerhalb <strong>von</strong> 3 h, nur 14 %.<br />

Auch ohne Zusatz <strong>von</strong> Enzymen bei einem pH-Wert <strong>von</strong> 7,4 <strong>und</strong> 37°C wurde eine<br />

erhebliche 2,4-D-Freigesetzung festgestellt (70%).<br />

Abb. 3.1.5-23: Gegenüberstellung der ermittelten 2,4-D-Gehalte in Zitronen bei<br />

unterschiedlicher Probenvorbehandlung<br />

Alkalische Hydrolyse<br />

Dünndarmverdauung (3h)<br />

Ohne Enzyme (3h) pH<br />

7,4/ 37°C<br />

Dünndarmverdauung (1h)<br />

Magenverdauung 3h<br />

Freies 2,4-D<br />

29%<br />

39%<br />

69%<br />

78%<br />

90%<br />

100%<br />

0 0,05 0,1 0,15 0,2 0,25 0,3 0,35 0,4 0,45 0,5<br />

2,4-D in ppm<br />

Abb. 3.1.5-24: Freisetzung <strong>von</strong> geb<strong>und</strong>enem 2,4-D durch verschiedene Verfahren<br />

Alkalische Hydrolyse<br />

Dünndarmverdauung (3h)<br />

Ohne Enzyme (3h)<br />

Dünndarmverdauung (1h)<br />

Magenverdauung 3h<br />

14<br />

0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 110<br />

57<br />

Freigesetzter Anteil <strong>von</strong> geb<strong>und</strong>enem 2,4-D in %<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

70<br />

86<br />

100<br />

98


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Simulierung einer Zitrusfruchtverarbeitung<br />

Zur Simulierung der Herstellung einer Zitronenmarmelade wurde eine Probe zerkleinerter<br />

argentinischer Zitronen (die oben aufgeführte Probe), die einen hohen<br />

Anteil an geb<strong>und</strong>enem 2,4-D enthielt, 1 h lang in einem siedenden Wasserbad<br />

erhitzt. Unter diesen Bedingungen wurde etwa 25 % des geb<strong>und</strong>enen 2,4-D<br />

freigesetzt, so daß der Gehalt an freiem 2,4-D <strong>von</strong> 0,121 auf 0,174 mg/kg anstieg.<br />

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99


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.5.5 N-Methyl-Carbamate<br />

3.1.5.5.1 Einführung<br />

N-Methyl-Carbamate werden häufig in der Landwirtschaft eingesetzt. Es handelt sich<br />

meist um Insektizide, einige zeigen jedoch auch akarizide, nematizide oder<br />

molluskizide Wirkung [92,89].<br />

Als gemeinsames Strukturmerkmal weisen die Vertreter dieser Pestizidklasse eine N-<br />

Methyl-Carbamat-Gruppe auf:<br />

R<br />

O<br />

O C<br />

NHCH3<br />

In Abbildung 3.1.5-25 werden die Strukturformeln, die Wasserlöslichkeit <strong>und</strong> die<br />

Wirkung einiger N-Methyl-Carbamate aufgeführt [92,119]. Nach der Art des Restes R-<br />

werden die N-Methyl-Carbamate im allgemeinen in zwei Gr<strong>und</strong>typen unterteilt:<br />

• Aryl-Carbamate<br />

• Oxim-Carbamate.<br />

Im Vergleich zu den Aryl-Carbamaten weisen Oxim-Carbamate eine deutlich höhere<br />

Polarität auf <strong>und</strong> wirken daher meist systemisch, d.h. sie werden über die<br />

Leitungsbahnen über das ganze Pflanzensystem verteilt.<br />

Wegen ihrer vergleichsweise geringen Persistenz <strong>und</strong> dem schwachen Bioakkumulationspotential<br />

konnten die N-Methyl-Carbamate, zusammen mit den<br />

Organophosphorsäureestern, die Organochlorinsektizide, die in den 40iger <strong>und</strong><br />

50iger Jahren weit verbreitet waren, verdrängen.<br />

Ähnlich wie bei Organophosphorsäureestern basiert die insektizide Wirkung der<br />

Carbamate auf der Hemmung des Enzyms Chlolinesterase. Carbamate werden<br />

jedoch in der Regel schneller metabolisiert <strong>und</strong> sind daher für Warmblüter im allgemeinen<br />

weniger toxisch. In den letzten Jahren sind allerdings Bedenken hinsichtlich<br />

ihre toxikologischen Wirkung beim Menschen aufgekommen. So wird <strong>von</strong><br />

einer subchronischen Neurotoxizität, infolge einer längeren Anwendung der Substanz<br />

Carbaryl in Wohnräumen berichtet. Weiterhin führt bei einigen Vertretern, wie<br />

beispielsweise Aldicarb, die Metabolisierung der Thioethergruppe zum Sulfoxid <strong>und</strong><br />

Sulfon, zu einer deutlichen Erhöhung des toxikologischen Potentials.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

100


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-25: Strukturformeln einiger N-Methyl-Carbamate [92]:<br />

DIOXACARB (6g/l)<br />

Insektizid<br />

O<br />

CH 2<br />

O<br />

O C<br />

ETHIOFENCARB (1,8g/l)<br />

Insektizid<br />

O<br />

O C<br />

NHCH3<br />

SCH 2CH 3<br />

NHCH3<br />

CARBOFURAN (0,32g/l)<br />

Insektizid <strong>und</strong> Nemadizid<br />

N<br />

O<br />

O<br />

C<br />

C<br />

S<br />

CH3<br />

O<br />

O C<br />

N<br />

O<br />

NHCH3<br />

O<br />

O C<br />

NHCH 3<br />

OXAMYL (280g/l)<br />

Insektizid <strong>und</strong> Nematizid<br />

ARYL-CARBAMATE<br />

O<br />

O<br />

O<br />

C<br />

NHCH3<br />

PROPOXUR (1,9g/l)<br />

Insektizid<br />

O<br />

C<br />

CH3S O NHCH3 METHIOCARB (0,027g/l)<br />

Insektizid <strong>und</strong> Molluskizid<br />

O O<br />

O<br />

O C<br />

NHCH 3<br />

BENDIOCARB (0,26g/l)<br />

Insektizid<br />

OXIM-CARBAMATE<br />

H 3CS<br />

C N<br />

H<br />

O<br />

O<br />

C<br />

101<br />

NHCH 3<br />

PROMECARB (0,091g/l)<br />

Insektizid<br />

N<br />

O<br />

O<br />

C<br />

NHCH3<br />

AMINOCARB (0,92mg/l)<br />

Insektizid <strong>und</strong> Akarizid<br />

CARBARYL (0,12g/l)<br />

Insektizid <strong>und</strong> Nemadizid<br />

Anmerkung: In Klammern ist die Löslichkeit der Substanzen in Wasser bei 20°C aufgeführt.<br />

O<br />

O C<br />

NHCH 3<br />

ALDICARB (9g/l)<br />

Insektizid, Nematizid <strong>und</strong> Akarizid<br />

H3C<br />

C<br />

S<br />

CH3<br />

N<br />

O<br />

O<br />

C<br />

O<br />

O C<br />

NHCH3<br />

NHCH 3<br />

METHOMYL (58g/l)<br />

Insektizid <strong>und</strong> Akarizid<br />

Zu den wichtigsten Metabolisierungsreaktionen der N-Methyl-Carbamate zählen,<br />

neben der erwähnten Oxidation <strong>von</strong> Thioethergruppen zu Sulfonen <strong>und</strong> Sulfoxiden,<br />

die Hydroxylierung des aromatischen Restes sowie die Hydrolyse der Carbamat-<br />

Gruppe unter Bildung <strong>von</strong> Methylamin, Kohlendioxid <strong>und</strong> des korrespondierenden<br />

Phenols bzw. Oxims [133]. Im Gegensatz zu den Organophosphorsäureestern<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

zeigen sich die N-Methyl-Carbamate in der Regel in der Pflanze widerstandsfähiger<br />

gegen Hydrolyse <strong>und</strong> werden eher durch Ringhydroxylierung abgebaut [123].<br />

Dioxacarb (siehe Abb. 3.1.5-25) wird hauptsächlich über die hydrolytische Spaltung<br />

des cyclischen Acetals abgebaut, wobei neben Benzaldehyd, Ethylenglykol freigesetzt<br />

wird. Darüber hinaus zeigen einige Vertreter einen starken photochemischen<br />

Abbau (z.B. Ethiofencarb <strong>und</strong> Propoxur) [105,106,134].<br />

Zu den N-Methyl-Carbamaten werden im weitesten Sinne auch die Verbindungen<br />

Furathiocarb, Benfuracarb <strong>und</strong> Carbosulfan gezählt. Diese drei Verbindung werden<br />

sowohl auf der Pflanze selbst, als auch während der Probenvor- <strong>und</strong> aufarbeitung zu<br />

Carbofuran umgewandelt (siehe Abb. 3.1.5-26).<br />

Abb. 3.1.5-26: Umwandlung <strong>von</strong> Furathiocarb, Benfuracarb <strong>und</strong> Carbosulfan zu<br />

Carbofuran<br />

O<br />

O<br />

O<br />

O<br />

C<br />

O<br />

O<br />

C<br />

N<br />

CH3<br />

S<br />

CH3<br />

N<br />

C O<br />

O<br />

FURATHIOCARB<br />

N<br />

CH3<br />

O<br />

S<br />

CH3<br />

CH<br />

N<br />

BENFURACARB<br />

O<br />

C<br />

O N S N<br />

CH3<br />

CH3<br />

C2H4 C<br />

CARBOSULFAN<br />

C4H9<br />

OC2H5<br />

O<br />

C4H9<br />

C4H9<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

O<br />

O<br />

C<br />

O NH<br />

CH3<br />

CARBOFURAN<br />

102


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.5.5.1.1 Analytik<br />

Analytisch bereiten N-Methyl-Carbamate gewisse Schwierigkeiten. Aufgr<strong>und</strong> der<br />

Thermolabilität der Carbamatgruppe <strong>und</strong> der hohen Polarität einiger Vertreter werden<br />

sie in den gängigen Multimethoden, bei denen die Bestimmung mittels<br />

Gaschromatographie erfolgt, in der Regel nicht erfaßt.<br />

Eine gaschromatographische Bestimmung <strong>von</strong> N-Methyl-Carbamaten ist nach ihrer<br />

Umsetzung zu thermostabilen Derivaten möglich. In der Literatur werden verschiedene<br />

Möglichkeiten hierzu beschrieben, wie beispielsweise die Umsetzung mit<br />

Dinitrofluorbenzol [107,108], mit Essigsäureanhydrid [122] oder mit verschiedenen<br />

Perfluoracylanhydriden wie z.B. Heptafluorpropionsäueanhydrid [109].<br />

Die meisten in der Literatur beschriebenen Methoden zur Bestimmung der N-Methyl-<br />

Carbamate basieren auf eine flüssigkeitschromatographischen Auftrennung <strong>und</strong><br />

anschließender Fluoreszenzdetektion [121]. Dabei werden die N-Methyl-Carbamate<br />

nach ihrer Auftrennung mittels RP-LC mit Lauge hydrolysiert <strong>und</strong> das dabei entstehende<br />

Methylamin mit o-Phthalsäureanhydrid in Gegenwart <strong>von</strong> 2-Mercaptoethanol<br />

(OPA/2-Me) zu einem fluoreszierenden Isoindol-Derivat umgesetzt. Dieses<br />

wird fluorimetrisch mit hoher Empfindlichkeit detektiert [110-114].<br />

3.1.5.5.2 Bestimmung <strong>von</strong> N-Methyl-Carbamaten nach <strong>Extraktion</strong> mittels SFE<br />

3.1.5.5.2.1 Übersicht<br />

In diesem Abschnitt wird zunächst eine SFE-<strong>Extraktion</strong>smethode für die N-Methyl-<br />

Carbamate vorgestellt <strong>und</strong> anschließend folgende drei Bestimmungsmöglichkeiten<br />

gegenübergestellt <strong>und</strong> ihre Vor- <strong>und</strong> Nachteile erläutert:<br />

1. direkte Bestimmung mittels GC/MSD bei Verwendung eines Kaltaufgabesystems,<br />

2. Bestimmung mittels GC/MSD nach Derivatisierung mit PFB-Br,<br />

3. Bestimmung mittels LC/MSD im API-Elektrospray-Modus.<br />

Abb. 3.1.5-27: zeigt den Analysengang zur Bestimmung der N-Methyl-Carbamate<br />

auf. Eine detaillierte Analysenvorschrift befindet sich in Anlage 4.<br />

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103


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-27: SFE-Methode zur Bestimmung der N-Methyl-Carbamate<br />

Bestimmung<br />

mit LC/MS<br />

Feinzerkleinerung der Probe<br />

3 Teile der Probe werden intensiv<br />

mit 2 Teilen Hydromatrix vermengt<br />

5g Aliquot (3g Probe) wird<br />

in eine <strong>Extraktion</strong>shülse eingewogen<br />

Supercritical Fluid Extraction (SFE)<br />

3. 1.<br />

2.<br />

Derivatisierung mit<br />

PFB-Br/K2CO3<br />

GC/MSD Bestimmung<br />

Anmerkungen:<br />

Zu 1: Im Rahmen der Vorversuche zur Optimierung der gaschromatographischen<br />

Bedingungen (siehe Kap. 3.1.2.1 <strong>und</strong> 3.1.2.2) wurde festgestellt, daß verschiedene<br />

polare <strong>und</strong> thermolabile Verbindungen (u.a. auch Carbamate) bei Verwendung eines<br />

Kaltaufgabesystems (Kaltinjektion <strong>und</strong> Lösungsmittelausblendung, vgl. Kap 3.1.2.1)<br />

gaschromatographisch auch ohne Derivatisierung bestimmt werden können. Daraus<br />

ergibt sich die Möglichkeit eine ganze Reihe <strong>von</strong> N-Methyl-Carbamaten in die<br />

üblichen Multimethoden zu integrieren, wodurch für diese Verbindungen auf eine<br />

gesonderte Bestimmung mittels HPLC verzichtet werden kann (effizientere Analytik).<br />

Zu 3: Für die Bestimmung aller N-Methyl-Carbamate <strong>und</strong> deren Umwandlungsprodukte<br />

bietet sich die LC-MSD als Methode der Wahl an. Es bot sich die Möglichkeit<br />

dieses Verfahren, das durch die Entwicklung verbesserter Geräte für die<br />

Routineanalytik interessant geworden ist, für einige Messungen zu verwenden. Die<br />

Messungen wurden in den Laboratorien der Fa. HP in Waldbronn durchgeführt.<br />

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104


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.5.5.2.2 <strong>Extraktion</strong> mit SFE<br />

Die Mehrzahl der N-Methyl-Carbamate sind unpolare bis mittelpolare Verbindungen<br />

<strong>und</strong> lassen sich gut unter den <strong>Extraktion</strong>sbedingungen der in Kapitel 3.1.4.2<br />

aufgeführten Multimethode extrahieren. Dies haben auch erste Versuche mit einigen<br />

N-Methyl-Carbamaten gezeigt.<br />

SFE-Parameter: <strong>Extraktion</strong>sgerät: HP 7680T<br />

• <strong>Extraktion</strong>sdruck: 329 bar, Temperatur: 55°C<br />

• Dichte: 0,89 g/ml<br />

• statische <strong>Extraktion</strong>: 2 min<br />

• dynamische <strong>Extraktion</strong>: 25 min<br />

• CO2-Fluß: 1,8 ml/min<br />

• Fallenmaterial: ODS, 10°C während der <strong>Extraktion</strong><br />

• Lösungsmittel: Acetonitril<br />

3.1.5.5.2.3 Direkte Bestimmung mittels GC-MSD (KAS3-Gerstel)<br />

N-Methyl-O-Aryl-Carbamate können direkt gaschromatographisch bestimmt werden.<br />

Infolge <strong>von</strong> Wechselwirkungen mit aktiven Stellen im GC-Injektionssystem werden sie<br />

jedoch bei erhöhten Temperaturen teilweise zu ihren korrespondierenden Phenolen<br />

abgebaut. So kommt es, daß in den erhaltenen Chromatogrammen sowohl die<br />

Muttersubstanz (das Carbamat) als auch das Abbauprodukt (Phenol) auftritt. Das<br />

Ausmaß der Zersetzungen hängt in erster Linie <strong>von</strong> der Aktivität der Oberflächen ab,<br />

mit denen die Pestizide in Kontakt kommen. So ist z.B. bei Verwendung eines stark<br />

verschmutzten Injektionsliners der Abbau viel größer <strong>und</strong> auf Gr<strong>und</strong> unerwünschter<br />

Wechselwirkungen (Retention) die Peakform viel schlechter als bei Verwendung eines<br />

sauberen Liners (stärkeres Tailing). Interessant ist, daß bei Gegenwart <strong>von</strong><br />

Matrixbestandteilen in den zu messenden Lösungen, dieser Abbau viel geringer<br />

ausfällt <strong>und</strong> die Peaks eine schärfere Form aufweisen (siehe Abb. 3.1.5-28). Gr<strong>und</strong><br />

hierfür ist die Maskierung <strong>von</strong> aktiven Stellen durch Matrixbestandteile<br />

(Konkurrenzreaktion). Aus diesem Gr<strong>und</strong> erhält man bei Verwendung <strong>von</strong><br />

Kalibrierstandards in reinen Lösungsmitteln Ergebnisse die deutlich überhöht sind. Die<br />

Verwendung <strong>von</strong> Kalibrierlösungen, die Matrix enthalten ist daher unerläßlich (vgl.<br />

Kap. Matrixeffekte 3.1.2.3).<br />

Bei diesem Verfahren muß auf jeden Fall darauf geachtet werden, daß das<br />

Injektionssystem in einer guten Kondition ist. Darüber hinaus sollten zu Kontrollzwecken<br />

die korrespondierenden Phenole mit erfaßt werden.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

105


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-28: Unerwünschter Abbau <strong>und</strong> Retention im GC-Injektor-System:<br />

0,8<br />

0,6<br />

0,4<br />

0,2<br />

0,5<br />

0,4<br />

0,3<br />

0,2<br />

0,1<br />

0<br />

0<br />

"Lösungsmittel-Kalibrierung"<br />

Methiocarb<br />

0 0,2 0,4 0,6 0,8 1<br />

µg/ml<br />

"Matrix-Kalibrierung"<br />

Methiocarb<br />

Korresp. Phenol<br />

Korresp. Phenol<br />

0 0,2 0,4 0,6 0,8 1<br />

µg/ml<br />

Ab<strong>und</strong>ance<br />

1500<br />

1000<br />

500<br />

Ion 168.00 (167.70 to 168.70): 1301019.D<br />

15.83<br />

0<br />

Time--><br />

15.70 15.75 15.80 15.85 15.90 15.95 16.00 16.05 16.10 16.15 16.20<br />

Ab<strong>und</strong>ance<br />

1500<br />

Ab<strong>und</strong>ance 1000<br />

8000<br />

500<br />

7000<br />

6000<br />

5000 0<br />

Time--><br />

15.70 15.75 15.80 15.85 15.90 15.95 16.00 16.05 16.10 16.15 16.20<br />

4000<br />

3000<br />

2000<br />

1000<br />

15.74<br />

Ion 153.00 (152.70 to 153.70): 0201002.D<br />

0<br />

Time--><br />

15.70 15.75 15.80 15.85 15.90 15.95 16.00 16.05 16.10 16.15 16.20<br />

Ab<strong>und</strong>ance<br />

3.1.5.5.2.4 Bestimmung mittels GC-MSD nach Derivatisierung<br />

Methiocarb<br />

Ion 326.00 (325.70 to 326.70): 1301019.D<br />

Methiocarb<br />

Ion 326.00 (325.70 to 326.70): 0201002.D<br />

Zur Erzeugung thermostabiler Derivate werden die N-Methyl-Carbamate (NMC) mit<br />

Pentafluorbenzylbromid (PFB-Br) umgesetzt. Die eingesetzte Derivatisierungsmethode<br />

ist identisch mit derjenigen, die zur Umsetzung <strong>von</strong> Carbendazim,<br />

Thiabendazol <strong>und</strong> 2,4-D eingesetzt wird (siehe auch Kap. 3.1.5.3.2.3 <strong>und</strong> 3.1.5.4.5,<br />

Anlage 2 sowie [29]). Sie kann gut zu Screeningzwecken eingesetzt werden, da<br />

Verbindungen mit unterschiedlichen reaktiven Gruppen wie Säure-, Alkohol- <strong>und</strong> z.T.<br />

Amino-Gruppen gut mit PFB-Br umgesetzt werden. Sie ist einfach in der Durchführung<br />

<strong>und</strong> wird in dem GC-Vial durchgeführt in dem die SFE-Extrakte anfallen.<br />

Bei dieser Reaktion werden sowohl die N-Methyl-O-Aryl-Carbamate als auch ihre<br />

korrespondierende Phenole zum gleichen Derivat umgesetzt <strong>und</strong> gemeinsam erfaßt<br />

(siehe Abb. 3.1.5-29).<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

106


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-29: Reaktionsgleichung zur Bildung der PFB-Derivate<br />

Derivatisierung der NMC mit Pentafluorbenzylbromid<br />

R<br />

O<br />

Hydrolyse<br />

O<br />

C<br />

R O H<br />

NHCH3<br />

Korr. Phenol<br />

+ C6F5CH2 Br<br />

K2CO3/ H2O<br />

Katalyse<br />

R O CH2C6F5<br />

PFB-Derivat<br />

Die Oxim-Carbamate lassen sich jedoch nicht zu analytisch interessanten Derivaten<br />

umsetzen.<br />

Ethiofencarb läßt sich im Vergleich zu den anderen Aryl-Carbamaten erheblich<br />

schlechter umsetzen. Dies könnte auf sterische Gründe zurückzuführen sein, denn<br />

Ethiofencarb besitzt als einziger Vertreter in ortho-Position zur Phenolgruppe einen<br />

vergleichsweise sperrigen Rest (-CH2SCH2CH3). Eine Oxidation <strong>von</strong> Ethiofencarb am<br />

Schwefelatom während der Derivatisierung ist ebenfalls nicht auszuschließen.<br />

Eine weitere Besonderheit tritt bei der Derivatisierung <strong>von</strong> Dioxacarb auf. Hier kommt<br />

es nicht zu einer Abspaltung der Carbamatgruppe, sondern primär zu einer<br />

Hydrolyse der Acetalfunktion. Die Anlagerung des Pentafluorbenzylrestes erfolgt erst<br />

nach einer Cyclisierung. In Abb. 3.1.5-30 wird ein möglicher Reaktionsmechanismus<br />

für die Entstehung des Derivatisierungsproduktes <strong>von</strong> Dioxacarb vorgestellt.<br />

Abb. 3.1.5-30: Reaktionsmechanismus zur Entstehung des Dioxacarb-PFB-Derivates<br />

Derivatisierung <strong>von</strong> Dioxacarb mit PFB-Br<br />

O O<br />

O<br />

O C<br />

Dioxacarb<br />

C 6F 5CH 2<br />

O<br />

H<br />

NHCH3<br />

N<br />

O<br />

CH3<br />

C O<br />

Derivatisierungsprodukt<br />

HOCH2CH2OH<br />

H2O<br />

C6F5CH2 Br K2CO3<br />

Derivatisierung<br />

Gaschromatographische Bestimmung:<br />

O H<br />

H<br />

O<br />

O<br />

O C<br />

H<br />

N<br />

NHCH3<br />

O<br />

CH 3<br />

C O<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

- H<br />

H<br />

H<br />

O<br />

H<br />

H<br />

O<br />

H<br />

H<br />

N<br />

N<br />

O<br />

107<br />

C O<br />

CH3<br />

O<br />

C<br />

O<br />

CH3


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

In Tabelle 3.1.5-17 sind die zur GC-MSD Bestimmung der Aryl-Carbamat-Derivate<br />

verwendeten Quantifizierungs- <strong>und</strong> Identifizierungsmassen angegeben. Die<br />

apparativen Einstellungen sind in Anlage 4 aufgeführt.<br />

Tabelle 3.1.5-17: Verwendete Identifizierungs- <strong>und</strong> Quantifizierungsmassen<br />

Verbindung Target-/Qualifier-Ionen (m/z)<br />

Aminocarb 331, 150, 181<br />

Bendiocarb 346, 331, 125<br />

Carbanolat 336, 155, 181<br />

Carbaryl 324, 143, 115<br />

Carbofuran 344, 163, 135<br />

Dioxacarb 345, 188, 181<br />

Ethiofencarb 348, 287, 181<br />

Fenobucarb 330, 301, 181<br />

Isoprocarb 316, 135, 181<br />

Landrin 316, 135, 181<br />

Methiocarb 348, 167, 139<br />

Promecarb 330, 287, 181<br />

Propoxur 332, 290, 109<br />

GC/MSD Bedingungen: siehe Anlage 4<br />

Rechtliche Problematik:<br />

Da sich die Höchstmengen in der Rückstandshöchstmengenverordnung nur auf die<br />

N-Methyl-Carbamate beziehen <strong>und</strong> die Abbauprodukte nicht berücksichtigt werden,<br />

ergibt sich bei deren gemeinsamer Bestimmung ein rechtliches Problem, da eventuell<br />

bereits in der Probe vorliegendes Phenol (Abbauprodukt) mit erfaßt wird. Für die<br />

korrespondierenden Phenole der Verbindungen Carbaryl (α-Naphthol), Propoxur (o-<br />

Isopropoxyphenol), Promecarb (3-Isopropyl,2-methyl-phenol) <strong>und</strong> Carbofuran (2,3<br />

Dihydro-2,2-dimethyl-7-benzofuranol) wurden Wiederfindungsversuche durchgeführt<br />

<strong>und</strong> dabei Wiederfindungen <strong>von</strong> über 90% festgestellt.<br />

3.1.5.5.2.5 Bestimmung mittels LC-MSD<br />

Unter den schonenden Bedingungen der Flüssigkeitschromatographie findet kein<br />

Abbau der N-Methyl-Carbamate statt. Durch den Einsatz der LC/MSD konnte eine<br />

sehr empfindliche <strong>und</strong> selektive Bestimmung dieser Verbindungen erzielt werden. Die<br />

Empfindlichkeit <strong>und</strong> Robustheit der HPLC-MSD-Geräte konnte in den letzten Jahren<br />

durch Optimierung der Interface-Techniken bedeutend verbessert werden. Die<br />

Messungen wurden an einem HP 1100 series LC/MSD im API-Elektrospray-Modus<br />

durchgeführt.<br />

Bei diesem Verfahren kommt es durch Protonierung in der flüssigen Phase zu einer<br />

Ionisierung <strong>von</strong> Analyten. Die LC-Eluate werden nach der Säule in eine Kammer<br />

gesprüht <strong>und</strong> das Elutionsmittel im Stickstoffstrom verdampft. Durch die zunehmende<br />

Ladungsdichte in den erzeugten Tröpfchen werden diese aufgr<strong>und</strong> <strong>von</strong><br />

aufeinanderfolgenden Coulomb-Explosionen, zu immer kleineren Einheiten reduziert.<br />

Durch Einwirkung eines elektrischen Feldes kommt es letztendlich zu einer<br />

Freisetzung <strong>von</strong> Ionen in die Gasphase. Die erzeugten Ionen werden in Richtung des<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

108


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Analysators beschleunigt. Vor dem Eintritt in den Quadrupol erfolgt eine<br />

Fragmentierung der Ionen aufgr<strong>und</strong> <strong>von</strong> Kollisionen, die auf ein angelegtes<br />

Spannungsfeld (Fragmentorspannung) zurückzuführen sind (collision induced<br />

dissociation) [126]. Die zur Quantifizierung <strong>und</strong> Identifizierung verwendeten Massen<br />

werden in Tab. 3.1.5-18 aufgeführt.<br />

Tab. 3.1.5-18: Zur Quantifizierung <strong>und</strong> Identifizierung herangezogene m/z<br />

N-Methyl-Carbamat M+1 M-56 weitere<br />

Fragmentionen<br />

Bemerkungen<br />

Aldicarb Sulfon 223 240 (M+18)<br />

Aminocarb 209 152 M+1:<br />

Bendiocarb 224 167 protoniertes Molekülion<br />

Carbanolat 214 157<br />

Carbaryl 202 145 219 (M+18)<br />

Carbofuran 222 165<br />

Dioxacarb 224 165 M-56:<br />

Ethiofencarb 226 169 164 (M-61) protoniertes<br />

Fenobucarb 208 151 korrespondierendes<br />

Isoprocarb 194 137 Phenol<br />

Landrin 226 169<br />

Methiocarb 226 169<br />

Methiocarb Sulfon 258 185<br />

Methiocarb Sulfoxid 242 185 M+18:<br />

Methomyl 163 106 180 (M+18) Ammonium-Addukt<br />

Metolcarb 166<br />

Oxamyl 220<br />

Promecarb 208 151<br />

Propoxur 210 153 168 (M-41)<br />

Benfuracarb 411 - 190, 252<br />

Furathiocarb 383 - 252, 195<br />

Carbosulfan 381 - 222<br />

Das Fragmentierungsmuster der N-Methyl-Carbamate ist im Vergleich zur GC meist<br />

sehr einfach, durch Abspaltung der Carbamatgruppe tritt das protonierte<br />

korrespondierende Phenol als Hauptfragmention auf. Vereinzelt treten bei einigen<br />

Vertretern wie z.B. bei Ethiofencarb durch Spaltung der Thioethergruppe auch<br />

weitere nennenswerte Fragmente auf (vgl. Abb. 3.1.5-31). Im allgemeinen kann das<br />

Fragmentierungsmuster durch Variation der Fragmentorspannung verändert werden.<br />

Bei höherer Fragmentorspannung kommt es zu einer stärkeren Bildung <strong>von</strong><br />

Fragmentionen. Die Intensität der Hauptfragmentionen nimmt jedoch dabei meist ab.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

109


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-31: Fragmentierung <strong>von</strong> Ethiofencarb<br />

CH 2<br />

O<br />

O C<br />

SCH 2CH 3<br />

Ethiofencarb<br />

O<br />

O C<br />

NHCH3<br />

CH2 SCH2CH3<br />

M+1<br />

CH2<br />

H<br />

O<br />

O C<br />

N<br />

H<br />

CH3<br />

CH3CH2SH<br />

NHCH3<br />

H<br />

M-61<br />

H 3C N C O<br />

+<br />

H<br />

O<br />

NH<br />

C<br />

CH3<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

O<br />

CH2 SCH2CH3<br />

H<br />

O<br />

H<br />

H<br />

O<br />

H<br />

M-56<br />

110<br />

CH2 SCH2CH3


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

LC-MSD-Einstellungen:<br />

LC-Parameter:<br />

• Säule: 2,1x 30 mm, 3,5µ, ZORBAX XDB C-18,<br />

• mobile Phasen: A: 1 mM wäss. CH3COONH4, B: Methanol/Acetonitril 1:1,<br />

10%B → 90%B in 5 min,<br />

• Fluß 0,3 ml/min,<br />

• Ofentemperatur: 50°C,<br />

• Injektionsvolumen: 0,5-2µl.<br />

MSD-Parameter:<br />

• API-Elektrospray,<br />

• Fragmentor 40 V,<br />

• drying gas: Stickstoff 10 l/min, 300°C<br />

Abb. 3.1.5-32 zeigt für einige N-Methyl-Carbamate mehrere SIM-Chromatogramme<br />

übereinander gelegt. Dabei wird deutlich, daß für Carbaryl, Fenobucarb <strong>und</strong><br />

Promecarb, bei der hier gewählten Fragmentorspannung <strong>von</strong> 40 V, die Fragmentionen<br />

in ausreichender Ausbeute entstehen, so daß eine Identifizierung relativ gut<br />

möglich ist. Für Aminocarb <strong>und</strong> Isoprocarb sind die erzeugten Fragmentionen jedoch<br />

sehr schwach ausgeprägt. Hier ist eine Identifizierung, vor allem bei kleinen Gehalten<br />

problematisch. Durch eine Erhöhung der Fragmentorspannung ist es jedoch möglich,<br />

die Fragmentierung so zu gestalten, daß durch verstärkte Bildung <strong>von</strong><br />

Fragmentionen, die Identifizierung dieser Verbindungen verbessert wird.<br />

Das Meßsystem bietet die Möglichkeit die Fragmentorspannung je nach Fragestellung<br />

für jede Substanz individuell zu wählen. Dies wurde aus zeitlichen Gründen<br />

nicht durchgeführt, da alle Messungen bei HP in Waldbronn durchgeführt wurden (zu<br />

diesem Zeitpunkt war das entsprechende Analysengerät beim CVUA Stuttgart noch<br />

nicht vorhanden).<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

111


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-32: SIM-Chromatogramme übereinander gelegt,<br />

Dotierung auf Apfel 0,166 ppm, Endvol. 1,5 ml, Injektionsvol. 0,5 µl,<br />

m/z 208, 151, 145, 202, 137, 194, 152, 209<br />

Aminocarb<br />

Carbaryl<br />

Isoprocarb<br />

Promecarb<br />

Fenobucarb<br />

166 pg<br />

9 10 11 12<br />

Empfindlichkeit des Verfahrens:<br />

Durch die API (Atmospheric Pressure Ionisation) Elektrospray-Technik können ohne<br />

vorherige Derivatisierung für die N-Methyl-Carbamate Nachweisgrenzen erreicht<br />

werden, die im Bereich dessen liegen, was mittels GC-MSD möglich ist. Wie Abb.<br />

3.1.5-33 zeigt sind die Hauptmassen <strong>von</strong> Promecarb <strong>und</strong> Fenobucarb bei einer<br />

Konzentration <strong>von</strong> 0,003 ppm bezogen auf die Probe (3,3 pg absolut) noch deutlich in<br />

einem Apfelextrakt nachweisbar. Allerdings waren unter den gewählten Bedingungen<br />

die Hauptfragmentionen mit der Masse 151 nicht mehr nachweisbar. (Anmerkung:<br />

beide Verbindungen geben ein Fragmention mit der Masse 151). Durch eine<br />

Erhöhung des Injektionsvolumens oder einer Verschiebung der Fragmentorspannung<br />

könnte die Nachweisempfindlichkeit der Fragmentionen jedoch noch weiter gesteigert<br />

werden <strong>und</strong> dadurch die Selektivität erhöht werden.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

112


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-33: Abschätzung der Nachweisempfindlichkeit<br />

Dotierung auf Apfel 0,003 ppm, Endvol. 1,5 ml, Injektionsvol. 0,5 µl<br />

Vorteile der LC/MSD:<br />

m/z 151<br />

Promecarb<br />

m/z 208<br />

Fenobucarb<br />

3,3 pg<br />

Die Vorteile der LC/MSD Methode lassen sich wie folgt zusammenfassen:<br />

• hohe Selektivität <strong>und</strong> Empfindlichkeit,<br />

• keine Derivatisierung erforderlich,<br />

• Erfassung aller N-Methyl-Carbamate (Oxim- <strong>und</strong> Aryl-),<br />

• gleichzeitige Bestimmung der Abbauprodukte möglich,<br />

• Schnelligkeit.<br />

3.1.5.5.2.6 Wiederfindungen<br />

Es wurden mehrere Wiederfindungsversuche mit verschiedenen Matrizes (Apfel,<br />

Orangensaft, Traube, Karotte, Blumenkohl) durchgeführt <strong>und</strong> mit den drei beschriebenen<br />

Bestimmungsmethoden untersucht. Die dabei erzielten Wiederfindungen<br />

lagen unabhängig <strong>von</strong> der gewählten Bestimmungsmethode in der gleichen<br />

Größenordnung. In Abb. 3.1.5-34 sind die mittels SFE <strong>und</strong> LC-MSD erzielten<br />

Wiederfindungen für eine mit 0,167 ppm dotierte Traubenmatrix aufgeführt. Mit<br />

diesem Verfahren können, im Gegensatz zu den beiden gaschromatographischen<br />

Verfahren, nicht nur die Aryl- sondern auch die Oxim-Carbamate <strong>und</strong> Benfuracarb,<br />

Furathiocarb <strong>und</strong> Carbosulfan erfaßt werden.<br />

Die erzielten Wiederfindungen bei Verwendung der anderen Bestimmungs-<br />

verfahren werden nicht gesondert aufgeführt. Im Vergleich wiesen die mittels LC-<br />

MSD erzielten Ergebnisse <strong>von</strong> Wiederholbestimmungen die kleinsten Schwankungen<br />

auf (Variationskoeffizienten zwischen 1,3% <strong>und</strong> 4,8%, meist im Bereich <strong>von</strong> 2%).<br />

Erwartungsgemäß waren die Wiederfindungen der polaren Oxim-Carbamate<br />

Aldicarbsulfon, Oxamyl <strong>und</strong> Methomyl schlecht (vgl. Kap. 3.1.4.7.2).<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

113


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-34: Wiederfindungen verschiedener Carbamate (SFE-LC-MSD)<br />

dotierte Matrix: Traube, Dotierungs-Level: 0,167 ppm<br />

Aldicarb Sulfon<br />

Aminocarb<br />

Bendiocarb<br />

Carbaryl<br />

Carbofuran<br />

Dioxacarb<br />

Ethiofencarb<br />

Fenobucarb<br />

Isoprocarb<br />

Landrin<br />

Methioc. Sulfon<br />

Methioc. Sulfoxid<br />

Methiocarb<br />

Methomyl<br />

Metolcarb<br />

Oxamyl<br />

Promecarb<br />

Propoxur<br />

Var. Koeff.: 1,3-4,8 %<br />

280 g/l<br />

58 g/l<br />

10g/l<br />

Abbau<br />

0 20 40 60 80 100<br />

114<br />

Wiederfindung in %<br />

Anmerkung: Die neben den Balken aufgeführten Werte zeigen die Löslichkeit der Carbamate in<br />

Wasser bei 20°C.<br />

3.1.5.5.2.7 Abbau in der <strong>Extraktion</strong>shülse<br />

Im Gegensatz zu den herkömmlichen Analysenverfahren, bei denen die Proben<br />

unmittelbar nach der Einwaage extrahiert werden, werden die Proben bei der SFE bis<br />

zur <strong>Extraktion</strong> manchmal über mehrere St<strong>und</strong>en im Autosampler des SFE-Gerätes<br />

bei Raumtemperatur gelagert. Dabei kann es zu einem signifikanten Abbau<br />

bestimmter empfindlicher Verbindungen kommen:<br />

Abbau <strong>von</strong> Dioxacarb:<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Dioxacarb weist eine Acetalgruppe auf, die insbesondere säurekatalysiert leicht<br />

hydrolysierbar ist. So wurde z.B. beobachtet, daß bei Dotierungen auf Traube<br />

(pH∼3,5) die Wiederfindungen mit der Lagerzeit der zu extrahierenden SFE-Hülsen<br />

rasch abnahmen. Bei Salat dagegen (pH∼6) war unter vergleichbaren Bedingungen<br />

praktisch kein Rückgang der Wiederfindungen festzustellen (siehe Kap. 3.1.4.7.4). In<br />

der folgenden Abbildung (3.1.5-35) wird der Abbau <strong>von</strong> Dioxacarb in Apfelmus-Matrix<br />

(pH∼5) gezeigt.<br />

Abb. 3.1.5-35: Abbau <strong>von</strong> Dioxacarb in Apfelmus/Hydromatrix-Gemisch 3:2 bei<br />

Lagerung in der <strong>Extraktion</strong>shülse bei Raumtemperatur<br />

80<br />

60<br />

40<br />

20<br />

0<br />

Umwandlung zu Carbofuran:<br />

Wiederfindung in %<br />

0 h 2 h 12 h<br />

Lagerzeit bei RT<br />

O<br />

O<br />

O<br />

O<br />

C<br />

NHCH3<br />

Wie bereits erwähnt, werden Carbosulfan, Benfuracarb <strong>und</strong> Furathiocarb leicht zu<br />

Carbofuran abgebaut. Dieser Abbau erfolgt sowohl auf der behandelten Pflanze als<br />

auch während der Analyse. Abb. 3.1.5-36 zeigt den Fortgang der Umwandlung <strong>von</strong><br />

Benfuracarb <strong>und</strong> Furathiocarb zu Carbofuran während der Lagerung der <strong>Extraktion</strong>shülsen<br />

bei Raumtemperatur . Dabei werden die Wiederfindungen als Carbofuran<br />

angegeben. Zur Berechnung wurden hierbei die Umwandlungsfaktoren 1,73 für<br />

Furathiocarb <strong>und</strong> 1,86 für Benfuracarb herangezogen. Wie aus der Graphik<br />

ersichtlich, erfolgt bei Benfuracarb eine raschere Umwandlung zu Carbofuran als bei<br />

Furathiocarb.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

115


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-36: Umwandlung zu Carbofuran in Apfelmus/Hydromatrix-Gemisch 3:2<br />

bei Lagerung in der <strong>Extraktion</strong>shülse bei Raumtemperatur<br />

80<br />

60<br />

40<br />

20<br />

0<br />

Fazit:<br />

Wiederfindung in %<br />

0 h 2 h 20 h<br />

Lagerzeit bei RT<br />

O<br />

O<br />

O<br />

C<br />

O<br />

N<br />

CH3<br />

S<br />

CH3<br />

CH<br />

N<br />

C2H4 C<br />

BENFURACARB<br />

O<br />

C<br />

N<br />

CH3<br />

FURATHIOCARB<br />

CH3<br />

CH3<br />

N<br />

C O<br />

O<br />

116<br />

OC2H5<br />

Mit Hilfe der SFE können N-Methyl-O-Aryl-Carbamate mit sehr guten Ausbeuten<br />

extrahiert werden. Oxim-Carbamate zeigen dagegen wegen ihrer hohen Polarität<br />

geringere Wiederfindungen. Es wurden drei verschiedene Verfahren zur Bestimmung<br />

dieser Verbindungen miteinander verglichen: die direkte Bestimmung mittels<br />

GC/MSD bei Verwendung eines Kaltaufgabesystems, die Bestimmung mittels<br />

GC/MSD nach Derivatisierung mit PFB-Br <strong>und</strong> die Bestimmung mittels LC/MSD. Mit<br />

der LC/MSD ist eine direkte schnelle <strong>und</strong> einfache Bestimmung aller N-Methyl-<br />

Carbamate <strong>und</strong> Ihrer Abbauprodukte mit guter Empfindlichkeit möglich.<br />

Die Ergebnisse dieser Untersuchungen wurden als Poster beim 2nd European<br />

Pesticide Residue Workshop in Almería, beim 9th IUPAC International Congress-<br />

Pesticide Chemistry <strong>und</strong> beim 3. SFE-SFC-XSE Forum in Siegen, sowie als Vortrag<br />

beim MS-Anwendertreffen der Fa. HP in Fulda (1998) vorgestellt [103,104].<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

O<br />

S<br />

O<br />

C4H9


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.5.6 Organozinn-Pestizide<br />

3.1.5.6.1 Einleitung<br />

Organozinn-Verbindungen werden in der Industrie z.B. als Hilfsmittel bei der Verarbeitung<br />

<strong>von</strong> PVC, als Holzschutzmittel <strong>und</strong> als Bestandteil <strong>von</strong> Anstrichmitteln für<br />

Schiffsteile, die vor Anlagerung <strong>von</strong> Pflanzen <strong>und</strong> Tieren geschützt werden sollen,<br />

verwendet [84,85]. In der Landwirtschaft werden sie seit den 50 iger Jahren [86] als<br />

Akarizide <strong>und</strong> Fungizide eingesetzt.<br />

Die Strukturformeln der Organozinn-Pestizide werden in Abb. 3.1.5-37 aufgeführt.<br />

Triphenylzinn-Verbindungen (Fentinhydroxid <strong>und</strong> Fentinacetat) werden hauptsächlich<br />

wegen ihrer fungiziden Wirkung <strong>und</strong> als Antifraßmittel gegen blattfressende Larven<br />

im Kartoffel-, Rüben- <strong>und</strong> Sellerieanbau verwendet [85]. Fentinacetat hat darüber<br />

hinaus algizide <strong>und</strong> mulluscizide Eigenschaften. Es wird nach dem Aufbringen innerhalb<br />

kurzer Zeit zu Fentinhydroxid umgewandelt [93].<br />

Die Trialkyl-Zinn-Verbindungen Azocyclotin, Cyhexatin <strong>und</strong> Fenbutatinoxid sind<br />

gegen alle beweglichen Entwicklungsstadien der Spinnmilbe wirksam [92]. Cyhexatin<br />

wurde lange Zeit bei der Produktion <strong>von</strong> Obst eingesetzt. 1987 wurde allerdings das<br />

Produkt (Handelsname Plictran) vom Hersteller aufgr<strong>und</strong> <strong>von</strong> Studien, die eine<br />

teratogene Wirkung bei Versuchstieren nachwiesen, vom Markt genommen.<br />

Dennoch ist Cyhexatin ist in mehreren EU-Staaten noch zugelassen [120].<br />

Analytik:<br />

Organo-Zinn-Pestizide werden in Deutschland im Rahmen der Lebensmittelüberwachung<br />

nicht routinemäßig untersucht [124], da zu ihrer Bestimmung eine gesonderte<br />

Aufarbeitung <strong>und</strong> Derivatisierung erforderlich ist.<br />

Zur Beseitigung analytischen Defizite im Bereich der Pestizid-Rückstandsanalytik<br />

wurde vom BMG eine Liste <strong>von</strong> Substanzen zusammengestellt, für die schwerpunktmäßig<br />

analytische Methoden entwickelt werden sollen. In dieser Prioritätenliste<br />

stehen die Organo-Zinn-Pestizide Fentinacetat, Fentinhydroxid <strong>und</strong> Azocyclotin unter<br />

den ersten sechs <strong>und</strong> Fenbutatinoxid, Cyhexatin <strong>und</strong> Fentinchlorid unter den ersten<br />

25 Stoffen mit größter Priorität [124].<br />

Für die Spurenanalytik zinnhaltiger Pestizide sind in der Literatur verschiedene<br />

Analysenmethoden beschrieben worden. Diese Methoden lassen sich in zwei<br />

Gruppen einteilen.<br />

Bei den indirekten Bestimmungsverfahren werden die Organozinn-Verbindungen<br />

durch einen Aufschluß zerstört. Das freigesetzte Zinn wird z. B. polarographisch<br />

[94,95], über AAS [93] oder ICP/MS bestimmt. Für die Bestimmung der unzersetzten<br />

Pestizide werden in der Literatur u.a. flüssigkeitschromatographische, gaschromatographische<br />

<strong>und</strong> dünnschichtchromatographische Verfahren beschrieben. Für<br />

gaschromatographische Untersuchungen muß durch Alkylierung oder Hydrierung die<br />

Thermostabilität erhöht <strong>und</strong> die Siedetemperatur der Moleküle erniedrigt werden, da<br />

bei allen hier vorgestellten Verbindungen eine direkte gaschromatographische<br />

Analyse nicht möglich ist. Für eine Bestimmung mittels HPLC ist, bei Verwendung<br />

eines DAD-Detektors, ebenfalls eine Derivatisierung notwendig, weil nicht alle<br />

zinnhaltigen Pestizide ein Chromophor enthalten.<br />

Abb.3.1.5-37: Strukturformeln der Organozinn-Pestizide<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

117


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Sn<br />

OH<br />

Organozinn-Pestizide<br />

Fentinhydroxid<br />

(Triphenylzinnhydroxid)<br />

Sn<br />

O<br />

C<br />

O CH3<br />

Fentinacetat<br />

(Triphenylzinnacetat)<br />

CH 2<br />

CH2<br />

Sn<br />

CH2<br />

N<br />

Sn<br />

OH<br />

Cyhexatin<br />

(Tricyclohexylzinnhydroxid)<br />

Sn<br />

N<br />

N<br />

Azocyclotin<br />

(Tri(cyclohexyl)-1-1H-1,2,4-triazol-1-yl-zinn)<br />

O<br />

CH2<br />

Sn<br />

CH2<br />

CH 2<br />

Fenbutatinoxid<br />

(Bis[tris(2-methyl-2-phenylpropyl)zinn]oxid)<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

118


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.5.6.2 <strong>Extraktion</strong> mit SFE<br />

Organozinn-Pestizide weisen eine geringe Polarität auf <strong>und</strong> werden bei den in der<br />

Literatur beschriebenen Analysenmethoden mit unpolaren Lösungsmitteln wie Hexan<br />

oder Dichlormethan extrahiert. Überkritisches Kohlendioxid bietet sich daher<br />

ebenfalls als <strong>Extraktion</strong>smittel an.<br />

Es wurden <strong>Extraktion</strong>sversuche mit beiden zu Verfügung stehenden <strong>Extraktion</strong>sgeräten<br />

durchgeführt. Die dabei verwendeten Bedingungen werden im folgenden<br />

aufgeführt:<br />

SFE-Parameter HP 7680T:<br />

• <strong>Extraktion</strong>sdruck: 329 bar, Temperatur: 55°C<br />

• Dichte: 0,89 g/ml<br />

• statische <strong>Extraktion</strong>: 2 min<br />

• dynamische <strong>Extraktion</strong>: 25 min<br />

• CO2-Fluß: 1,8 ml/min<br />

• Fallenmaterial: ODS, 10°C während der <strong>Extraktion</strong><br />

• Elutionslösungsmittel: Hexan<br />

SFE-Parameter ISCO SFX 3560:<br />

• <strong>Extraktion</strong>sdruck: 330 bar, Temperatur: 55°C<br />

• Dichte: 0,89 g/ml<br />

• statische <strong>Extraktion</strong>: 2 min<br />

• dynamische <strong>Extraktion</strong>: 25 min<br />

• CO2-Fluß: 1,8 ml/min<br />

• Lösungsmittel in der Vorlage: 10 ml Hexan<br />

• Temperatur der Vorlage: 0°C<br />

Während bei Verwendung des Gerätes der Fa. ISCO gute Wiederfindungen erzielt<br />

werden konnten (siehe unter Wiederfindungen) wurden bei Verwendung des HP-<br />

Extraktors, bei dem die Extrakte zunächst an einer Festphasenfalle gesammelt<br />

werden, niedrige <strong>und</strong> schwankende Ergebnisse erzielt. Wie aus den oben aufgeführten<br />

Bedingungen ersichtlich, wurde bei diesem Gerät zur Elution der Extrakte aus<br />

der Festphasenfalle in die Vorlagen, Hexan verwendet. Dies könnte auch die<br />

Ursache für die schlechten Wiederfindungen sein. Bei der SFE-<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Obst -<br />

<strong>und</strong> Gemüseproben gelangt, trotz der Verwendung <strong>von</strong> Adsorbentien stets eine<br />

gewisse Menge an Wasser bis zur Falle. Die Elution mit Hexan ist gestört, da dieses<br />

Lösungsmittel sich mit dem Wasser nicht mischt, so daß die präzipitierten Analyten<br />

vom Wasser abgeschirmt werden. Aus Zeitgründen konnte diese Problematik jedoch<br />

nicht weiter verfolgt werden.<br />

3.1.5.6.3 Optimierung der Derivatisierung mit Grignard-Reagenz<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

119


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Um die gaschromatographische Bestimmung der Organo-Zinn-Pestizide zu ermöglichen,<br />

müssen diese derivatisiert werden, wobei ein vierter organischer Rest am<br />

Zinnatom eingeführt wird (siehe Abb. 3.1.5-38).<br />

Abb. 3.1.5-38: Derivatisierung schematisch<br />

R<br />

R Sn<br />

R<br />

R<br />

X R Sn<br />

R: Alkyl, Aryl; R’: Alkyl; X: Hydroxid, Acetat, Triazol<br />

In der Literatur werden zur Derivatisierung der Organo-Zinn-Verbindungen verschiedene<br />

Möglichkeiten beschrieben.<br />

Eine Alkylierung am Zinnatom ist durch eine Umsetzung mit Tetraalkylborat möglich.<br />

Die Ethylierung mit Tetraethylborat wird in der Literatur zum Beispiel für die<br />

Umsetzung der Organozinn-Verbindungen aus Trinkwasser <strong>und</strong> Abwasser sowie aus<br />

Bodenproben beschrieben [97].<br />

Die am häufigsten beschriebene Derivatisierungsmethode <strong>von</strong> Organozinn-Verbindungen<br />

ist die Umsetzung mit Grignard-Reagenzien [3,88,90,93,98], vgl. Abb.<br />

3.1.5-39.<br />

Abb. 3.1.5-39: Umsetzung mit Grignard-Reagenz<br />

R<br />

R Sn<br />

R<br />

X + CH3MgCl R<br />

R<br />

Sn<br />

R<br />

CH3 +<br />

R<br />

R'<br />

MgClX<br />

Dort beschriebenen Verfahren zur Derivatisierung mit Grignard-Reagenz sind<br />

allerdings etwas langwierig <strong>und</strong> daher für die Routineanalytik wenig attraktiv. Die<br />

Derivatisierung wird oft in aufwendigen Apparaturen unter Stickstoffatmosphäre<br />

durchgeführt. Es folgt dann meist eine mehrmalige Ausschüttelung der Derivate aus<br />

dem Derivatisierungsansatz sowie in einigen Fällen eine Nachreinigung durch<br />

Säulenchromatographie.<br />

Im Rahmen dieser Arbeit wurde eine erheblich einfachere Variante dieser Derivatisierung<br />

ausgearbeitet.<br />

Derivatisierungsreaktion:<br />

Bei Verwendung des ISCO-Gerätes werden die Extrakte in 20 ml Vorlagegläschen, in<br />

denen 10 ml Hexan vorgelegt wurde aufgefangen. Nach Beendigung der <strong>Extraktion</strong><br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

120


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

sind etwa 4-5 ml des Hexans noch im Vorlagegefäß vorhanden. Diese Lösung wird<br />

direkt zur Derivatisierung eingesetzt.<br />

Nach Zugabe <strong>von</strong> Internem Standard (PCB IUPAC Nr. 101) in Isooctan <strong>und</strong> der<br />

Grignard-Reagenz-Lösung wird der Ansatz 15 min unter Rühren (Magnetrührer) bei<br />

Raumtemperatur derivatisiert. Die Reaktion wird durch Zugabe <strong>von</strong> 15 %iger<br />

Ammoniumchlorid-Lösung gestoppt.<br />

Nach kräftigem Schütteln wird die obere organische Phase mit Stickstoff bis auf etwa<br />

1,5 ml eingeengt, in ein GC-Vial überführt <strong>und</strong> zur GC-MSD-Bestimmung eingesetzt.<br />

Bei der Derivatisierung entstand neben dem Hauptderivat Triphenyl-methyl-zinn in<br />

geringen Mengen ein weiteres Produkt, das Diphenyl-dimethyl-zinn. Möglicherweise<br />

findet hier als Nebenreaktion eine Substitution des Phenyl-Restes durch einen<br />

Methyl-Rest statt. Auffällig war, daß mit der Zunahme der Bildung des Dimethyl-<br />

Derivates eine geringere Ausbeute an Methyl-Derivat einherging. Das Dimethyl-<br />

Derivat wird in Abb. 3.1.5-40 abgebildet:<br />

Abb. 3.1.5-40: Strukturformel <strong>von</strong> Diphenyl-dimethyl-zinn (unerwünschtes<br />

Nebenprodukt bei der Derivatisierung <strong>von</strong> Fentinacetat <strong>und</strong> -hydroxid)<br />

Sn CH 3<br />

Diphenyl-dimethyl-zinn<br />

Abb. 3.1.5-41 zeigt die Entstehung der Derivatisierungsprodukte aus den Organo-<br />

Zinn-Verbindungen.<br />

CH 3<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

121


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-41: Entstehung der Derivatisierungsprodukte aus den Organo-Zinn-<br />

Verbindungen nach Umsetzung mit Grignard-Reagenz<br />

Bildung der Derivatisierungsprodukte<br />

OH<br />

Sn<br />

Fentinhydroxid<br />

OH<br />

Sn<br />

Cyhexatin<br />

CH2<br />

Sn<br />

CH2<br />

CH 2<br />

CH2<br />

CH3<br />

Tricyclohexyl-methyl-zinn<br />

CH3<br />

Sn<br />

Tricyclohexyl-methyl-zinn<br />

CH2<br />

Sn<br />

CH 3<br />

O<br />

CH 2<br />

Tris(2-methyl-2-phenyl-propyl)-methyl-zinn<br />

Fenbutatinoxid<br />

CH 2<br />

Sn<br />

CH2<br />

CH 2<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

Sn<br />

CH 3<br />

C O<br />

O<br />

Sn<br />

Fentinacetat<br />

N<br />

N<br />

Sn<br />

N<br />

Azocyclotin<br />

122


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Wie erwähnt, enthalten SFE-Extrakte <strong>von</strong> Obst <strong>und</strong> Gemüseproben geringe Mengen<br />

an Wasser. Da Wasser mit Grignard-Reagenz reagieren kann, wurde überprüft, ob<br />

diese kleinen Wassermengen die Derivatisierung beeinflussen können. Darüber<br />

hinaus wurde die Reaktion in drei verschiedenen Reaktionsmedien durchgeführt <strong>und</strong><br />

die Derivatisierungsausbeuten wurden verglichen:<br />

• Isooctan:Hexan 1:4 (IO:HEX),<br />

• Cyclohexan: Ethylacetat 1:1 (CH:EA),<br />

• tert.-Butyl-Methyl-Ether (TBME).<br />

In diesen Fällen wurden Extrakte aus 3 g Mango verwendet, die zuvor mit<br />

Natriumsulfat getrocknet wurden. Dotiert wurde kurz vor der Derivatisierung mit je 1<br />

µg an Cyhexatin, Fentinhydroxid <strong>und</strong> Fenbutatinoxid. Die Ergebnisse dieser<br />

Untersuchungen werden in Tab. 3.1.5-19 dargestellt.<br />

Tab. 3.1.5-19: Derivatisierungsausbeute der Organo-Zinn-Pestizide bei Variation<br />

der Derivatisierungsparameter<br />

Verwendetes Cyhexatin Fentin- Fentin Abbau** Anmerkungen<br />

Lösungsmittel<br />

hydroxid<br />

TPME<br />

1 1 1 auf 1 normiert<br />

TPME* 0,99 0,96 1,36 *Wasser nicht<br />

entfernt<br />

CH:EA<br />

1:1<br />

0,98 1,04 0,10<br />

IO:HEX<br />

1:4<br />

0,91 0,88 1,87<br />

** Zur Entstehung des Diphenyl-dimethyl-zinn-Derivates aus Fentinhydroxid siehe oben<br />

Die Unterschiede in den Derivatisierungsausbeuten bei Verwendung verschiedener<br />

Lösungsmittel waren nur gering. Bei Derivatisierung in Cyclohexan-Ethylacetat wurde<br />

deutlich weniger unerwünschtes Diphenyl-dimethyl-zinn gebildet, als in den anderen<br />

Reaktionsmedien. Dieser Sachverhalt sollte noch weiter untersucht werden. Das in<br />

den Probenextrakten vorhandene Wasser störte die Derivatisierungsreaktion nicht.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

123


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.5.6.4 Bestimmung mittels GC-MSD<br />

Die Bestimmung der Derivate wurde mittels GC-MSD im EI-Modus durchgeführt. Es<br />

wurden die Meßbedingungen der im Anhang 1 aufgeführten SFE-Multimethode<br />

eingesetzt.<br />

Die Bestimmung der Organozinn-Verbindungen mittels GC/MSD bietet sich an, da<br />

diese charakteristische Isotopenmuster im Massenspektrum aufweisen. Das Element<br />

Zinn besitzt zehn Isotope, <strong>von</strong> denen 120 Sn (natürliche Häufigkeit: 32,4 %), 118 Sn<br />

(24,3 %) <strong>und</strong> 116 Sn (14,7 %) am häufigsten vorkommen. Massenspektren zinnhaltiger<br />

Verbindungen zeigen daher ein charakteristisches Isotopenmuster. Abb. 3.1.5-42<br />

verdeutlicht dies am Massenspektrum <strong>von</strong> Triphenyl-methyl-zinn, dem Derivat <strong>von</strong><br />

Fentinhydroxid <strong>und</strong> Fentinacetat.<br />

Abb. 3.1.5-42: Massenspektrum <strong>von</strong> Triphenyl-methyl-zinn<br />

Ab<strong>und</strong>ance<br />

120000<br />

110000<br />

100000<br />

90000<br />

80000<br />

70000<br />

60000<br />

50000<br />

40000<br />

30000<br />

20000<br />

10000<br />

0<br />

m/z--><br />

77<br />

91<br />

120<br />

Scan 819 (19.275 min): 9301002.D<br />

124 154<br />

169<br />

197<br />

210<br />

289<br />

118 Sn +<br />

251271<br />

294 335<br />

351<br />

365<br />

100 150 200 250 300 350 400<br />

3<br />

116 Sn +<br />

124<br />

120 Sn +<br />

393 414434<br />

Cyhexatin <strong>und</strong> Azocyclotin werden bei der Derivatisierung zu Tricyclohexyl-methylzinn<br />

umgesetzt (vgl. Abb. 3.1.5-41). In der Rückstands-HöchstmengenVO wird für<br />

beide Pestizide eine Summenhöchstmenge, berechnet als Cyhexatin, angegeben<br />

[34]. Ähnliches gilt auch für Fentinacetat <strong>und</strong> Fentinhydroxid, die beide zu Triphenylmethyl-zinn<br />

umgesetzt werden. Hier besteht ebenfalls eine Summenhöchstmenge,<br />

berechnet als Fentinhydroxid [34].<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

3<br />

3


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Zur Bestimmung der Substanzen im SIM-Modus, wurden die in Tab 3.1.5-20 aufgeführten<br />

Quantifizierungs- <strong>und</strong> Identifizierungs-Ionen (Target- <strong>und</strong> Qualifier-Ionen)<br />

ausgewählt.<br />

Tab 3.1.5-20: Übersicht der Derivatisierungsprodukte, Retentionszeiten <strong>und</strong><br />

detektierten Massen im SIM-Modus<br />

Target-/ Retentions-<br />

Organo-Zinn-<br />

Pestizid<br />

Derivatisierungsprodukt Qualifier-Ionen<br />

[m/z]<br />

zeit<br />

[min]<br />

Azocyclotin Tricyclohexyl-methyl-zinn 301/<br />

Cyhexatin 299; 219<br />

Fentinacetat<br />

Fentinhydroxid<br />

Fenbutatinoxid<br />

Triphenyl-methyl-zinn<br />

Tris(2-methyl-2phenylpropyl)-methyl-zinn<br />

351/<br />

349; 347<br />

401/<br />

399; 397<br />

19,05<br />

19,28<br />

34,30<br />

Unerwünschtes Nebenprodukt aus Fentinhydroxid <strong>und</strong> Fentinacetat<br />

Diphenyl-<br />

zinn-dihydroxid<br />

Diphenyl-dimethyl-zinn<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

289/<br />

287; 285<br />

13,22<br />

125


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb.3.1.5-43: Massenspektren der Derivatisierungsprodukte zinnhaltiger Pestizide<br />

Ab<strong>und</strong>ance<br />

140000<br />

130000<br />

120000<br />

110000<br />

100000<br />

90000<br />

80000<br />

70000<br />

60000<br />

50000<br />

Tricyclohexyl-methyl-zinn aus Cyhexatin <strong>und</strong> Azocyclotin<br />

(19.016 min)<br />

135<br />

137<br />

40000<br />

30000<br />

83<br />

20000<br />

67<br />

10000<br />

m/z--> 0<br />

60 80<br />

116<br />

100 120 140<br />

159 175<br />

160 180<br />

203<br />

200 220<br />

249 251<br />

240 260<br />

287 307 327 355<br />

280 300 320 340 360 380<br />

365 384<br />

150000<br />

140000<br />

130000<br />

120000<br />

110000<br />

100000<br />

90000<br />

80000<br />

70000<br />

60000<br />

50000<br />

40000<br />

30000<br />

20000<br />

10000<br />

m/z--> 0<br />

Triphenyl-methyl-zinn aus Fentinhydroxid <strong>und</strong> Fentinacetat<br />

Ab<strong>und</strong>ance (19.263 min)<br />

120<br />

197<br />

219<br />

77<br />

91<br />

124<br />

154<br />

169<br />

201<br />

221 247<br />

289<br />

273 293 318<br />

373 405<br />

80 100 120 140 160 180 200 220 240 260 280 300 320 340 360 380<br />

Tris(2-methyl-2-phenyl-propyl)-methyl-zinn aus Fenbutatinoxid<br />

Ab<strong>und</strong>ance (38.956 min)<br />

85000<br />

80000<br />

75000<br />

70000<br />

65000<br />

60000<br />

55000<br />

50000<br />

45000<br />

40000<br />

35000<br />

91<br />

30000<br />

25000<br />

20000<br />

15000<br />

10000<br />

5000<br />

m/z--> 0<br />

60<br />

77<br />

80<br />

117<br />

100 120 140 160 180 200 220 240 260 280 300 320 340 360 380 400<br />

135<br />

197<br />

289<br />

405<br />

201 227 253<br />

145 161<br />

281 303 341<br />

345<br />

369<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

301<br />

351<br />

349<br />

401<br />

126


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Kalibrierung<br />

Zur Erstellung <strong>von</strong> Kalibrierungen wurden folgende Standardlösungen angefertigt:<br />

• Azocyclotin/Fentinacetat-Standardgemisch<br />

• Cyhexatin/Fentinhydroxid/Fenbutatinoxid-Standardgemisch.<br />

Bei der Zusammenstellung der Standardlösungen wurde beachtet, daß Verbindungen,<br />

die das gleiche Derivat ergeben, nicht zusammen vorkommen.<br />

Während die Kalibrierkurven der Derivate <strong>von</strong> Cyhexatin <strong>und</strong> Azocyclotin eine sehr<br />

gute Linearität aufwiesen, war bei Fentinhydroxyd/-acetat <strong>und</strong> bei Fenbutatinoxid bei<br />

Abwesenheit <strong>von</strong> Matrixbestandteilen die Linearität schlecht. Dies deutet auf eine<br />

Zersetzung dieser Substanzen im Injektionssystem hin. Dagegen zeigte sich bei<br />

Anwesenheit <strong>von</strong> Matrixbestandteilen in den Meßlösungen ein linearer Verlauf der<br />

Kalibrierkurven, was auf Matrixeffekte hindeutet (vgl. Kap. 3.1.2.3).<br />

Um den Einfluß verschiedener Matrizes auf die Derivatisierungsausbeute <strong>und</strong> die<br />

Steigung der Kalibriergeraden zu untersuchen, wurden Extrakte verschiedener<br />

Matrizes (Petersilie, Mango, Zitrone), mit unterschiedlichen Mengen an Organo-Zinn-<br />

Pestiziden dotiert <strong>und</strong> derivatisiert. Dabei wurde festgestellt, daß die Art der Matrix<br />

keinen nennenswerten Einfluß auf die Steigung der Kalibriergeraden hatte.<br />

3.1.5.6.5 Bestimmung mittels LC-MSD (API-Elektrospray)<br />

Für die Bestimmung der Organo-Zinn-Pestizide mittels LC-MSD ist keine Derivatisierung<br />

erforderlich.<br />

Erste Messungen wurden mit einem HP 1100 series MSD-Gerät im Elektospray-<br />

Modus (Fragmentorspannung 80V) durchgeführt. Hierbei wurden die Verbindungen<br />

mittels LC aufgetrennt <strong>und</strong> Massenspektren für die einzelnen Verbindungen<br />

aufgenommen. Es wurde festgestellt, daß nicht das protonierte Molekülion als<br />

Hauptmasse im Massenspektrum auftritt, sondern die Triphenyl-/Trialkyl-Zinn-<br />

Kationen. Mögliche Mechanismen, die zur Entstehung dieser Hauptfragmentionen bei<br />

Cyhexatin, Azocyclotin, Fentinhydroxid <strong>und</strong> Fentinacetat führen, werden in Abb.<br />

3.1.5-44 dargestellt.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

127


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.5-44: Entstehung der Hauptfragmentionen aus Fentin, Fentinacetat,<br />

Azocyclotin <strong>und</strong> Cyhexatin.<br />

Sn<br />

O<br />

H<br />

Fentinhydroxid<br />

O<br />

Sn<br />

O<br />

C<br />

CH3<br />

Fentinacetat<br />

O<br />

H<br />

Cyhexatin<br />

N<br />

Sn<br />

Sn<br />

N<br />

N<br />

Azozyclotin<br />

+H<br />

+H<br />

+H<br />

+H<br />

O<br />

Sn<br />

O<br />

H H<br />

Sn<br />

O<br />

C H<br />

N<br />

CH3<br />

Sn<br />

O<br />

H H<br />

Anmerkung: Die angegebenen Massen beziehen sich auf das 120 Sn-Isotop<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

Sn<br />

N<br />

N<br />

H<br />

N<br />

H2O<br />

H2O<br />

Sn<br />

Sn<br />

128<br />

Triphenylzinnkation<br />

(Hauptfragmention)<br />

m/z 351<br />

CH3COOH<br />

Tricyclohexylzinnkation<br />

(Hauptfragmention)<br />

m/z 369<br />

N<br />

NH


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Bei der Fragmentierung <strong>von</strong> Cyhexatin <strong>und</strong> Azocyclotin im MSD entsteht nach Abspaltung<br />

<strong>von</strong> Cyclohexen <strong>und</strong> Wasser ein weiteres Fragmention mit hoher Intensität<br />

(siehe Abb. 3.1.5-45) .<br />

Abb. 3.1.5-45: Abspaltung <strong>von</strong> Cyclohexen aus Cyhexatin <strong>und</strong> Azocyclotin (Vorschlag)<br />

Sn<br />

O<br />

H<br />

H<br />

H<br />

Cyhexatin<br />

H<br />

O<br />

H H<br />

Sn H<br />

Fragmention<br />

m/z 287<br />

N<br />

N<br />

NH<br />

N<br />

Sn<br />

N<br />

N<br />

Azocyclotin<br />

Die Entwicklung einer vollständigen Bestimmungsmethode war leider nicht möglich,<br />

da alle Messungen bei der Fa. HP in Waldbronn erfolgten.<br />

Die bisherigen Erfahrungen zeigen jedoch, daß diese Bestimmungsmethode für<br />

Organo-Zinn-Verbindungen gut geeignet ist. Sie ist nicht nur schnell in der<br />

Durchführung, sondern erlaubt auch prinzipiell die Erfassung <strong>von</strong> Azocyclotin <strong>und</strong><br />

Cyhexatin sowie <strong>von</strong> Fentinhydroxid <strong>und</strong> Fentinacetet nebeneinander.<br />

Die Untersuchungen sollten daher fortgeführt werden.<br />

3.1.5.6.6 Wiederfindungsversuche<br />

Zur Ermittlung der Wiederfindungsraten wurde Apfelmus mit je 0,166 ppm sowie 1,11<br />

ppm der Organo-Zinn-Pestizide dotiert, mit SFE extrahiert <strong>und</strong> nach Derivatisierung<br />

mittels GC-MSD bestimmt.<br />

Die Ergebnisse dieser Untersuchungen werden in Tab. 3.1.5-21 aufgeführt.<br />

Leider konnten Wiederfindungen mit dem LC-MSD-System als Bestimmungs-<br />

verfahren nicht mehr durchgeführt werden.<br />

Tab. 3.1.5-21: Wiederfindungen der Organozinn-Pestizide,<br />

dotierte Probe: Apfelmus,<br />

dotierte Menge: je 0,166 ppm <strong>und</strong> 1,11 ppm, (n=4)<br />

Organozinn-<br />

Dotierung<br />

Dotierung<br />

Pestizide<br />

0,166 ppm<br />

1,11 ppm<br />

Mittlere Wiederfindungen in %<br />

Azocyclotin 73 (10)<br />

83<br />

Fentinacetat 76 (9) 69<br />

Cyhexatin 73 (6) 71<br />

Fentinhydroxid<br />

77 (8) 73<br />

Fenbutatinoxid 75 (6) 71<br />

Anmerkung: In Klammern sind die Wiederfindungen, die bei einer Nachextraktion der<br />

Probe unter den gleichen Bedingungen erzielt wurden, aufgeführt<br />

Angesichts der relativ hohen Wiederfindungen bei der zweiten <strong>Extraktion</strong><br />

(Nachextraktion), erscheint es notwendig <strong>und</strong> möglich die <strong>Extraktion</strong>sbedingungen zu<br />

optimieren, so daß noch bessere Wiederfindungen erzielt werden können.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

129<br />

H<br />

H


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Da Organo-Zinn-Verbindungen bekanntermaßen oxidationsempfindlich sind, könnten<br />

bei weiterführenden Untersuchungen, zu ihrem Schutz, Antioxidantien wie<br />

Ascorbinsäure eingesetzt werden.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

130


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.6 Beispiele aus der Praxis der Lebensmittelüberwachung<br />

3.1.6.1 Bestimmung <strong>von</strong> Pyrimethanil <strong>und</strong> Diethofencarb in<br />

Keltertrauben<br />

Bei einem Feldversuch im Weinbau wurden Pyrimethanil <strong>und</strong> Diethofencarb sowie<br />

Carbendazim zur Überprüfung ihrer Wirksamkeit bei der Bekämpfung <strong>von</strong> Botrytis<br />

cinerea eingesetzt. Verschiedene Traubenproben wurden der CVUA Stuttgart zur<br />

Bestimmung der Wirkstoffgehalte zum Zeitpunkt der Lese vorgelegt (vgl. Kap.<br />

3.1.5.3.2.6).<br />

Pyrimethanil <strong>und</strong> Diethofencarb sind erst in den letzten Jahren auf den Markt gekommen.<br />

In den Wirkstofflisten der gängigen DFG-Multi-Methoden für Pestizide<br />

waren sie noch nicht aufgeführt. Für Pyrimethanil war in der RHmV zu diesem<br />

Zeitpunkt noch keine Höchstmenge festgesetzt worden.<br />

Abb. 3.1.6-1: Strukturformeln <strong>von</strong> Pyrimethanil <strong>und</strong> Diethofencarb<br />

C2H5O<br />

O<br />

C<br />

C2H5O NH O<br />

Diethofencarb<br />

CH3<br />

CH<br />

CH3<br />

H<br />

N<br />

N<br />

N<br />

CH3<br />

Pyrimethanil<br />

Wiederfindungsversuche mit dotierten Traubenproben zeigten, daß diese Stoffe sich<br />

sehr gut mittels SFE extrahieren lassen. Eine Änderung des pH-Wertes <strong>von</strong> ∼3 auf<br />

∼6,5 <strong>und</strong> ∼8,5 zeigte im Gegensatz zu Carbendazim (siehe Kap. 3.1.5.3.2.6) keinen<br />

Einfluß auf die <strong>Extraktion</strong>sausbeuten (siehe Tab. 3.1.6-1). Die Carbamatgruppe des<br />

Diethofencarb zeigt sich im Alkalischen stabil. Die Basizität der drei Stickstoffatome<br />

des Pyrimethanil ist relativ schwach, so daß bei einem pH <strong>von</strong> ∼3 nur ein kleiner<br />

Anteil protoniert vorliegt.<br />

Tab. 3.1.6-1: Wiederfindungsversuche für die Stoffe Pyrimethanil <strong>und</strong><br />

Diethofencarb, je 0,33 ppm<br />

Stoffe Wiederfindungen in % Mittelwert<br />

pH∼3 pH∼6,5 pH∼8,5<br />

(natürlicher pH)<br />

Pyrimethanil 100 106 103 103<br />

Diethofencarb 99 99 98 99<br />

SFE-Bestimmungsmethode: siehe Anlage1<br />

Probe: tiefgefroren zerkleinerte Weintrauben, Probenmenge 3 g / Hydromatrix 2 g<br />

Bestimmung: mittels GC/MSD<br />

CH3<br />

Die ermittelten Wirkstoffgehalte, die die untersuchten Weintrauben <strong>und</strong> die daraus<br />

hergestellten Weine aufwiesen, werden in Tab. 3.1.6-2 dargestellt.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

131


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.6-2: Untersuchungsergebnisse <strong>von</strong> Keltertrauben aus einem Feldversuch<br />

Probennummer Pyrimethanil Diethofencarb<br />

Trauben Wein Trauben Wein<br />

(ppm) (ppm) (ppm) (ppm)<br />

unbehandelt Probe 1 0,05 < 0,005<br />

Probe 2<br />

0,024


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.6.2 Untersuchung <strong>von</strong> Carbendazim in Obst <strong>und</strong> Gemüse<br />

Da die in der Literatur beschriebenen Analysenverfahren für Benomyl, Thiophanat-<br />

Methyl <strong>und</strong> Carbendazim zeitaufwendig <strong>und</strong> arbeitsintensiv sind, werden diese<br />

Verbindungen kaum routinemäßig bestimmt. Mit Hilfe der in Anlage 2 aufgeführten<br />

Methode lassen sie sich jedoch problemlos <strong>und</strong> schnell bestimmen.<br />

Die Untersuchung <strong>von</strong> über 250 Obst- <strong>und</strong> Gemüseproben aus dem Handel zeigt,<br />

daß diese Verbindungen in der Landwirtschaft sehr häufig eingesetzt werden <strong>und</strong><br />

daß durchaus Überschreitungen der Höchstmengen auftreten (siehe Tab. 3.1.6-3<br />

sowie Abb. 3.1.6-2).<br />

Tab. 3.1.6-3: Carbendazim* Rückstände in Proben aus dem Handel (1997)<br />

Probenzahl<br />

Proben mit<br />

Rückständen<br />

Höchstmenge<br />

[34]<br />

>Höchstmenge<br />

Gehalt in<br />

mg/kg<br />

Salate 131 21 (16%) 1,0 2


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.6-2: Carbendazim Rückstände in Proben aus dem Handel (1997)<br />

Salat (131)<br />

Steinobst (20)<br />

Erdbeeren (46)<br />

Zitrusfrüchte (24)<br />

Papayas <strong>und</strong> Mangos (25)<br />

max. 11 ppm<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

< HM: 15%<br />

> HM: 2%<br />

< HM: 40%<br />

> HM: 10%<br />

< HM: 48%<br />

> HM: 0%<br />

< HM: 42%<br />

> HM: 0%<br />

< HM: 24%<br />

> HM: 12%<br />

134


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.1.6-3 zeigt einen Vergleich der beim CVUA Stuttgart gef<strong>und</strong>enen Pestizid-<br />

Rückstände in Obst in den letzten vier Jahren. Aufgeführt sind jeweils die 15 am<br />

häufigsten quantifizierten Pestizide. Die starke Zunahme der Carbendazim-Bef<strong>und</strong>e<br />

im Jahr 1997 ist auf die Einführung der hier vorgestellten Analytik für Routinezwecke<br />

zurückzuführen. Ähnliches gilt auch für die Verbindung 2,4-D im Jahr 1996.<br />

Abb. 3.1.6.-3: Pestizid-Rückstände in Obst in den letzten vier Jahren<br />

(CVUA-Stuttgart)<br />

Carbendazim<br />

Procymidon<br />

Chlorpyriphos<br />

Dichlofluanid<br />

Imazalil<br />

Thiabendazol<br />

Brompropylat<br />

Pyrimethanil<br />

o-Phenyl-Phenol<br />

Endosulfan<br />

Vinclozolin<br />

Ipro dio n<br />

Captan<br />

Prochloraz<br />

Dicofol<br />

Vinclozolin<br />

Procymidon<br />

Chlorpyrifos<br />

Endosulfan<br />

Tetradifon<br />

Dichlofluanid<br />

Brompropylat<br />

Dicofol<br />

Thiabendazol<br />

Prochloraz<br />

M ethidathion<br />

Ipro dio n<br />

Parathion<br />

Mecarbam<br />

Captan<br />

% der Proben<br />

0 5 10 15 20 25 30<br />

1997<br />

376 Proben<br />

77 % mit Rückständen<br />

73 versch. Pestizide<br />

2,8 Wirkstoffe/Probe<br />

8,2 % der Proben >HM<br />

0 5 10 15 20 25 30<br />

Procymidon<br />

Thiabendazol<br />

Chlorpyrifos<br />

Imazalil<br />

Brompropylat<br />

Vinclozolin<br />

Dichlofluanid<br />

Dicofol<br />

Endosulfan<br />

o-Phenyl-Phenol<br />

Captan<br />

Tetradifon<br />

M ethidathion<br />

Ipro dio n<br />

2,4-D<br />

Vinclozolin<br />

Dicofol<br />

Endosulfan<br />

Brompropylat<br />

135<br />

0 5 10 15 20 25<br />

0 5 10 15 20 25<br />

1995<br />

Tetradifon<br />

Chlorpyrifos<br />

Procymidon<br />

1994<br />

M ethidathion<br />

Thiabendazol<br />

Dichlofluanid<br />

Ipro dio n<br />

Azinphos-M ethyl<br />

Carbendazim<br />

Parathion<br />

o-Phenyl-Phenol<br />

% der Proben<br />

427 Proben<br />

71 % mit Rückständen<br />

69 versch. Pestizide<br />

2,7 Wirkstoffe/Probe<br />

4,0 % der Proben >HM<br />

% der Proben % der Proben<br />

324 Proben<br />

72 % mit Rückständen<br />

49 versch. Pestizide<br />

1,9 Wirkstoffe/Probe<br />

8,0 % der Proben >HM<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

1996<br />

329 Proben<br />

68 % mit Rückständen<br />

47 versch. Pestizide<br />

2,1 Wirkstoffe/Probe<br />

6,2 % der Proben >HM


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.6.3 Untersuchung <strong>von</strong> 2,4-D in Zitrusfrüchten<br />

Da die herkömmlichen Verfahren zur Bestimmung <strong>von</strong> 2,4-D relativ arbeitsaufwendig<br />

sind, wird diese Verbindung nur äußerst selten untersucht. Deshalb liegen nur<br />

wenige Daten über die Häufigkeit <strong>und</strong> Höhe <strong>von</strong> 2,4-D-Rückständen in Zitrusfrüchten<br />

vor.<br />

Mit der im Rahmen dieser Arbeit entwickelten SFE-Methode (Anlage 3, Code<br />

102E3102) wurden deshalb 140 Zitrusproben aus verschiedenen Herkunftsländern<br />

untersucht. Die Ergebnisse sind in Tab. 3.1.6-4 dargestellt. In Proben aus<br />

Mittelmeerländern wurden bei dieser Untersuchung selten Rückstände an 2,4-D<br />

nachgewiesen. Dagegen wiesen nahezu alle Proben aus Süd- <strong>und</strong> Mittelamerika <strong>und</strong><br />

aus Südafrika 2,4-D-Rückstände auf. Der höchste Bef<strong>und</strong> wurde in einer Probe aus<br />

Simbabwe mit 1,6 ppm festgestellt. Die Höchstmenge <strong>von</strong> 2 ppm wurde jedoch in<br />

keinem Fall überschritten.<br />

Tab. 3.1.6-4: Rückstände an 2,4-D in Proben des Handels (1996 <strong>und</strong> 1997)<br />

Herkunft<br />

Anzahl Proben mit Gehalt in<br />

Proben Rückständen mg/kg<br />

Südafrika <strong>und</strong> Simbabwe 23 16 (70 %) 0,01-1,6<br />

Süd- <strong>und</strong> Mittelamerika 12 11 (92 %) 0,01-0,38<br />

Mittelmeerländer 83 7 (8 %) 0,01-0,29<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

136


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.1.7 Untersuchung <strong>von</strong> Ringversuchsproben<br />

3.1.7.1 European Commission´s Proficiency Tests on Pesticide<br />

Residues in Fruit and Vegetables 1996/1997<br />

Das CVUA Stuttgart hat Anfang 1997 an einem Ringversuch der Europäischen<br />

Kommission (European Commission´s Proficiency Tests on Pesticide Residues in<br />

Fruit and Vegetables 1996/1997, Proficiency Test I <strong>und</strong> II) teilgenommen.<br />

3.1.7.1.1 Proficiency Test I<br />

Eine dotierte Probe Gemüsepaprika sollte auf folgende Stoffe untersucht werden:<br />

Acephat, Benalaxyl, Binapacryl, Bromophos-Ethyl, Captafol, Chlorthalonil,<br />

Chlorpyrifos, Chlorpyrifos-Methyl, Cyfluthrin, Cypermethrin, DDT, Deltamethrin,<br />

Diazinon, Dioxathion, Endosulfan, Endrin, Fenarimol, Fenchlorphos, Fenvalerat,<br />

Heptachlor, Iprodion, Lambda-Cyhalothrin, Mecarbam, Metalaxyl,<br />

Methamidophos, Methidathion, Permethrin, Pirimiphos-Methyl, Procymidon,<br />

Propoxur, Propyzamid, TEPP <strong>und</strong> Triazophos.<br />

Daneben sollten für die positiven Stoffe Wiederfindungen aus einer dotierten<br />

Blindprobe ermittelt werden. Die Kalibrierung sollte entweder mit Standards in<br />

Lösungsmittel oder mit Standards in Matrixextrakt erfolgen.<br />

Für die Bestimmung wurden folgende Methoden eingesetzt:<br />

1) DFG S19 (modifiziert, ohne Mini-Kieselgelsäulen)<br />

2) SFE Methode (siehe Anlage 1, Code: 100E3101)<br />

Folgende Substanzen wurden identifiziert: Diazinon, Chlorpyrifos, Procymidon,<br />

Endosulfan, Cypermethrin. Tab. 3.1.6-5 zeigt die nach beiden Methoden ermittelten<br />

Wiederfindungen. Zur Herstellung der Kalibrierlösungen wurden Extrakte der<br />

Blindprobe mit Standards versetzt (Eichung auf Matrix).<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

137


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.7-1: Wiederfindungen <strong>von</strong> Wirkstoffen aus Paprika.<br />

Diazinon Chlorpyrifos Procymidon Endosulfan Cypermethrin<br />

α- β- -sulfat<br />

Wiederfindung in %<br />

SFE-Methode: 3g Probe + 2g Hydromatrix, Zusatz: 0,8µg/3g (0,267 ppm)<br />

Ansatz 1 106 96 109 102 105 101 73<br />

Ansatz 2 101 99 105 107 104 104 83<br />

Ansatz 3 88 91 105 103 98 83 83<br />

Ansatz 4 95 90 100 104 97 87 84<br />

Ansatz 5 84 87 92 92 92 80 82<br />

Mittelwert 95 92 102 102 99 91 81<br />

Variationskoeff.<br />

in %<br />

9,7 5,2 6,4 5,5 5,3 12,1 5,6<br />

SFE-Methode: 2g Probe + 2g Hydromatrix, Zusatz: 0,8 µg/2g (0,4 ppm)<br />

Ansatz 1 100 102 105 100 103 87 97<br />

Ansatz 2 93 105 107 107 103 75 98<br />

Ansatz 3 100 102 106 106 104 88 91<br />

Ansatz 4 86 98 99 97 98 81 105<br />

Ansatz 5 97 101 105 100 105 76 93<br />

Mittelwert 95 101 104 102 102 81 97<br />

Variationskoeff.<br />

in %<br />

6,4 2,6 2,9 4,2 2,4 7,4 5,6<br />

Methode DFG S19: Zusatz 0,32 ppm<br />

Mittelwert 85 88 97<br />

SFE-Bestimmungsmethode: siehe Anlage 1<br />

Probe: tiefgefroren zerkleinerte Paprika<br />

Dotierung: auf 3g bzw. 2g Probe je 100µl Standardlösung (Aceton: Isooctan 1:1)<br />

Bestimmung: mittels GC/MSD<br />

95 91<br />

Wie aus Tab. 3.1.7-1 ersichtlich wurden sowohl mit der DFG S19 als auch den SFE-<br />

Methoden für alle Stoffe hohe Wiederfindungen erzielt.<br />

Auffällig ist, daß die Wiederfindung <strong>von</strong> Cypermethrin bei einem Probe/ Hydromatrix<br />

Verhältnis <strong>von</strong> 3:2 mit 81 % deutlich niedriger lag als bei einem Verhältnis <strong>von</strong> 2:2 (97<br />

%) (siehe Tab. 3.1.7-1).<br />

Es besteht hier ein Zusammenhang zwischen dem Wasser/Hydromatrix-Verhältnis in<br />

der Probe (Feuchtigkeitsgrad) <strong>und</strong> der Extrahierbarkeit <strong>von</strong> Cypermethrin (vgl. Kap.<br />

3.1.4.7.3). In Tab. 3.1.7-2 werden die nach der SFE-Methode (Anlage 1) <strong>und</strong> der<br />

DFG-S-19-Methode ermittelten Gehalte mit den Angaben der Organisatoren des<br />

Ringversuches verglichen.<br />

Tab. 3.1.7-2: Gegenüberstellung der ermittelten Gehalte der SFE-Methode <strong>und</strong><br />

der DFG S19 mit den Ergebnisangaben der Organisatoren<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

138


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

SFE-Methode DFG S19<br />

(modifiziert)<br />

Angaben der Organisatoren<br />

Mittelwert Mittelwert Median kleinster höchster<br />

(„korrigiert*“) („korrigiert*“) aller 85 angegebener angegebener<br />

Teilnehmer<br />

Gehalte in ppm<br />

Wert Wert<br />

Diazinon 0,39 (0,41) 0,37 (0,44) 0,312 0,170 0,460<br />

Chlorpyrifos 0,74 (0,80) 0,72 (0,82) 0,681 0,370 0,942<br />

Procymidon 0,75 (0,74) 0,76 (0,78) 0,644 0,315 0,993<br />

Σ-Endosulfan 0,47 (0,47) 0,48 (0,51) 0,391 0,195 0,650<br />

Cypermethrin 0,29 (0,36) 0,34 (0,37) 0,330 0,042 0,695<br />

SFE-Bestimmungsmethode: Anlage 1<br />

Probe: tiefgefroren zerkleinerte Paprika, 3g Probe + 2g Hydromatrix<br />

Bestimmung: mittels GC/MSD<br />

* bei Berücksichtigung der Wiederfindungen<br />

3.1.7.1.2 Proficiency Test II<br />

Eine dotierte Probe Apfel sollte auf folgende Stoffe untersucht werden:<br />

Acephat, Benalaxyl, Binapacryl, Bromophos-Ethyl, Captafol, Carbendazim,<br />

Carbofuran, Chlorthalonil, Chlorpyrifos, Chlorpyrifos-Methyl, Cyfluthrin,<br />

Cypermethrin, DDT, Deltamethrin, Diazinon, Dicofol, Dioxathion, Disulfoton,<br />

Endosulfan, Endrin, Fenarimol, Fenchlorphos, Fenvalerat, Heptachlor, Imazalil,<br />

Iprodion, Lambda-Cyhalothrin, Mecarbam, Metalaxyl, Methamidophos,<br />

Methidathion, Permethrin, Pirimiphos-Methyl, Procymidon, Propiconazol,<br />

Propoxur, Propyzamid, TEPP, Thiabendazol, Triazophos <strong>und</strong> Vinclozolin.<br />

Für die Bestimmung wurden die in Anlage 1 <strong>und</strong> Anlage 2 aufgeführten Methoden<br />

verwendet. Auch hier wurden für die positiven Stoffe Wiederfindungsversuche<br />

durchgeführt (siehe Tab. 3.1.7-3) <strong>und</strong> zur Herstellung der Kalibrierlösungen Extrakte<br />

der Blindprobe mit Standards versetzt (Eichung auf Matrix).<br />

Folgende Substanzen wurden identifiziert: Diazinon, p,p-Dichlorbenzophenon,<br />

Thiabendazol, Methidathion, Iprodion <strong>und</strong> Carbendazim. Tab. 3.1.7-3 zeigt die<br />

ermittelten Wiederfindungen (Carbendazim siehe Kap. 3.1.5.3.2.5).<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

139


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.1.7-3: Wiederfindungen <strong>von</strong> Wirkstoffen aus Paprika.<br />

Diazinon p,p´-Dichlorbenzophenon*<br />

Methidathion Iprodion<br />

Wiederfindung in %<br />

Ansatz 1 94 92 90 87<br />

Ansatz 2 93 89 88 86<br />

Ansatz 3 100 93 89 87<br />

Ansatz 4 104 94 88 87<br />

Ansatz 5 98 94 87 87<br />

Mittelwert 98 92<br />

88 87<br />

SFE-Bestimmungsmethoden: Anlage 1<br />

Probe: tiefgefroren zerkleinerte Paprika 3g Probe + 2g Hydromatrix, Zusatz: 2µg/3g (0,267 ppm)<br />

Bestimmung: mittels GC/MSD<br />

*Abbauprodukt <strong>von</strong> Dicofol<br />

In Tab. 3.1.7-4 werden die nach den SFE-Methoden (Anlage 1 <strong>und</strong> 2) ermittelten<br />

Gehalte mit den Angaben der Organisatoren des Ringversuches verglichen.<br />

Tab. 3.1.7-4: Vergleich der mittels SFE-Methode ermittelten Gehalte mit den<br />

Angaben der Organisatoren<br />

Wirkstoff Ansatz 1 Ansatz 2 Mittelwert<br />

Spiking<br />

level<br />

140<br />

Mittelwert<br />

aller<br />

Teilnehmer<br />

mg/kg mg/kg mg/kg<br />

Carbendazim 0,58 0,74 0,66 0,653 0,507<br />

Diazinon<br />

0,211 0,214 0,21 0,243 0,197<br />

p,p´-Dichlorbenzophenon* 0,331 0,345 0,34 0,373 keine Angabe<br />

Methidathion 0,232 0,237 0,23 0,253 0,246<br />

Iprodion 1,20 1,25 1,22 1,38 1,222<br />

Thiabendazol 1,00 0,943 0,97 1,11 0,825<br />

SFE-Bestimmungsmethoden: Anlage 1 <strong>und</strong> Anlage 2<br />

Probe: tiefgefroren zerkleinerte Paprika 3g Probe + 2g Hydromatrix<br />

Bestimmung: mittels GC/MSD<br />

*Abbauprodukt <strong>von</strong> Dicofol<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.2 EINSATZ DER SFE IN DER ANALYTIK VON BEDARFSGEGENSTÄNDEN<br />

3.2.1 Einleitung<br />

Zu den Bedarfsgegenstände im Sinne des LMBG werden unter anderem gezählt:<br />

• „Gegenstände, die dazu bestimmt sind, bei dem Herstellen, Behandeln, Inverkehrbringen<br />

oder dem Verzehr <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> verwendet zu werden <strong>und</strong> dabei<br />

mit den <strong>Lebensmitteln</strong> in Berührung zu kommen oder auf diese einzuwirken“<br />

(Lebensmittelbedarfsgegenstände) wie z.B. Lebensmittelverpackungen, Geschirr,<br />

• „Spielwaren <strong>und</strong> Scherzartikel“,<br />

• „Gegenstände, die dazu bestimmt sind, nicht nur vorübergehend mit dem<br />

menschlichen Körper in Berührung zu kommen...“, wie Kleidung, Bettwäsche.<br />

In <strong>Bedarfsgegenständen</strong> können Stoffe enthalten sein, die, bei einem Kontakt, ggf.<br />

auf Lebensmittel oder Menschen übergehen (migrieren) können.<br />

Nach §31 LMBG ist es verboten:<br />

„...Gegenstände als Bedarfsgegenstände... so zu verwenden oder für solche<br />

Verwendungszwecke in den Verkehr zu bringen, daß <strong>von</strong> ihnen Stoffe auf<br />

Lebensmittel oder deren Oberfläche übergehen, ausgenommen ges<strong>und</strong>heitlich,<br />

geruchlich <strong>und</strong> geschmacklich unbedenkliche Anteile, die technisch unvermeidbar<br />

sind“.<br />

In der Bedarfsgegenständeverordnung werden deshalb u.a. umfangreiche Positivlisten<br />

<strong>von</strong> Stoffen aufgeführt, die die Zusammensetzung <strong>und</strong> Migration <strong>von</strong><br />

Lebensmittelbedarfsgegenständen regeln. Aufgabe der Lebensmittelüberwachung ist<br />

es, die Einhaltung der Vorschriften hinsichtlich der Zusammensetzung der<br />

Bedarfsgegenstände <strong>und</strong> des Migrationsverhaltens der Inhaltsstoffe zu überwachen.<br />

Auf den ersten Blick erscheinen viele Bedarfsgegenstände gut für <strong>Extraktion</strong>en mit<br />

überkritischem Kohlendioxid geeignet zu sein. Sie enthalten meist wenig oder kein<br />

Wasser oder Fett, Inhaltsstoffe, die bei der SFE im allgemeinen Probleme bereiten<br />

können (vgl. Kap. 2.3.3). Allerdings bereitet bei vielen <strong>Bedarfsgegenständen</strong>, z.B. bei<br />

Kunststoffen, die Zerkleinerung Schwierigkeiten. Da bei der SFE nur wenig Probenmaterial<br />

zur <strong>Extraktion</strong> eingesetzt werden kann, ist hier auf eine besonders gute<br />

Homogenität zu achten. Dies ist aber nicht immer einfach, da z.B. bei der<br />

Zerkleinerung <strong>von</strong> Kunststoffen viel Wärme entsteht <strong>und</strong> Verluste an Inhaltsstoffen<br />

auftreten können. Darüber hinaus ist es bekanntermaßen meist nicht möglich, die<br />

z.B. bei Kunststoffen eingebetteten Inhaltsstoffe durch Dotierungen im Labor zu<br />

simulieren. Daher ist bei reellen Proben eine Abschätzung der <strong>Extraktion</strong>sausbeuten<br />

<strong>von</strong> Inhaltsstoffen sehr schwer.<br />

Im folgenden werden einige Anwendungen vorgestellt, bei denen die SFE zur<br />

<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Inhaltsstoffen in <strong>Bedarfsgegenständen</strong> erfolgreich eingesetzt werden<br />

kann.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

141


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.2.2 Di-Isopropyl-Naphthalin in Papier<br />

3.2.2.1 Einführung<br />

Di-Isopropyl-Naphthalin (DIPN) wird als Isomerengemisch u.a. bei der Herstellung<br />

<strong>von</strong> Durchschreibepapieren <strong>und</strong> Thermopapieren als Farblösungsmittel <strong>und</strong> Farbträger<br />

verwendet. Die allgemeine Strukturformel der DIPN-Isomere ist in Abb. 3.2.2-1<br />

dargestellt [117].<br />

Abb. 3.2.2-1: Strukturformel <strong>von</strong> Di-Isopropyl-Naphthalin<br />

Di-Isopropyl-Naphthalin<br />

(Isomerengemisch)<br />

Da beim Recycling <strong>von</strong> Altpapier alle Prozesse in wäßrigen Medien ablaufen, wird<br />

DIPN wegen seiner stark lipophilen Eigenschaften nur schwer abgetrennt <strong>und</strong> gelangt<br />

somit in Recyclingpapiere <strong>und</strong> Recyclingkartonagen. Aus Sicht der Lebensmittelüberwachung<br />

ist es interessant DIPN zu analysieren, da Verpackungsmaterialien<br />

oft zu einem großen Anteil aus Altpapier hergestellt werden. Kommen<br />

diese Papiere in Kontakt mit <strong>Lebensmitteln</strong>, so kann es durch Migrationen, zu einer<br />

Kontamination kommen [118].<br />

3.2.2.2 Bestimmungsverfahren<br />

Im Rahmen dieser Arbeit wurde eine Methode zur Bestimmung <strong>von</strong> DIPN-Rückständen<br />

in Papier entwickelt. Nach einer <strong>Extraktion</strong> mit überkritischem Kohlendioxid<br />

wurde das DIPN Isomerengemisch mittels GC/MSD gemessen. Erzielte Ergebnisse<br />

wurden mit denen eines naßchemischen Verfahrens verglichen.<br />

3.2.2.2.1 naßchemisches Verfahren<br />

Im Rahmen einer Praktikantenarbeit am CVUA Stuttgart wurde ein Verfahren zur<br />

Bestimmung <strong>von</strong> DIPN in Papieren <strong>und</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> ausgearbeitet, bei dem das<br />

Isomerengemisch mit Hilfe einer Wasserdampfdestillation nach Clevenger aus dem<br />

Papier in eine Isooctan-Vorlage getrieben wird [115]. Die Messung erfolgt fluorimetrisch<br />

nach flüssigkeitschromatographischer Auftrennung. Die einzelnen DIPN-<br />

Isomere konnten flüssigkeitschromatographisch nicht aufgetrennt werden <strong>und</strong><br />

wurden daher als Summe erfaßt.<br />

3.2.2.2.2 <strong>Extraktion</strong> mittels SFE<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

142


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Es wurden <strong>Extraktion</strong>en mit beiden zur Verfügung stehenden Extraktoren durchgeführt.<br />

Die zu extrahierenden Papierproben wurden in kleine Streifen geschnitten <strong>und</strong> in die<br />

<strong>Extraktion</strong>shülsen gefüllt (meist 0,8 bis 1,2 g) <strong>und</strong> extrahiert.<br />

<strong>Extraktion</strong> mit HP-7680T:<br />

Zur Ermittlung der Wiederfindungsrate wurde ein zuvor mit Ether extrahiertes<br />

Filterpapier verwendet. Je 1 g Filterpapier wurde in drei <strong>Extraktion</strong>shülsen gefüllt <strong>und</strong><br />

mit jeweils 5 µg DIPN in acetonischer Lösung versetzt. Vor der <strong>Extraktion</strong> wurde die<br />

Hülse für ca. 1 min offen stehen gelassen, damit das Lösungsmittel verdampfen<br />

konnte. Die <strong>Extraktion</strong> erfolgte nach den unten aufgeführten Bedingungen <strong>und</strong> die<br />

Bestimmung wurde mittels GC-MSD durchgeführt. Dabei wurde eine mittlere<br />

Wiederfindung <strong>von</strong> 98% (n=3) ermittelt.<br />

SFE-Parameter für HP 7680T:<br />

• <strong>Extraktion</strong>sdruck: 329 bar, Temperatur: 55°C<br />

• Dichte: 0,89 g/ml<br />

• statische <strong>Extraktion</strong>: 2 min<br />

• dynamische <strong>Extraktion</strong>: 25 min<br />

• CO2-Fluß: 1,8 ml/min<br />

• Fallenmaterial: ODS, 5°C während der <strong>Extraktion</strong><br />

• Elutions-Lösungsmittel: Acetonitril<br />

<strong>Extraktion</strong> mit ISCO SFX 3560:<br />

Bei <strong>Extraktion</strong>sversuchen mit dem ISCO Gerät wurde zunächst zum Auffangen der<br />

Extrakte Acetonitril/Aceton 1:4 bei einer Temperatur <strong>von</strong> 10°C vorgelegt. Es wurde<br />

jedoch beobachtet, daß es mit steigender <strong>Extraktion</strong>szeit zu Verlusten an DIPN durch<br />

Verflüchtigung kam. Daraufhin wurde das unpolare Isooctan als Vorlagelösungsmittel<br />

verwendet <strong>und</strong> die Temperatur wurde während der <strong>Extraktion</strong> bei 0°C gehalten. Zur<br />

Überprüfung ob unter diesen Bedingungen Verluste auftreten, wurden vier<br />

Vorlagegläschen in denen Isooctan vorgelegt wurde mit je 10 µg DIPN versetzt <strong>und</strong><br />

für 5, 10, 20, 30 min eine <strong>Extraktion</strong> simuliert. Selbst nach 30minütiger<br />

„<strong>Extraktion</strong>szeit“ waren praktisch keine Verluste festzustellen.<br />

SFE-Parameter für ISCO SFX 3560:<br />

• <strong>Extraktion</strong>sdruck: 330 bar, Temperatur: 55°C<br />

• Dichte: 0,89 g/ml<br />

• statische <strong>Extraktion</strong>: 2 min<br />

• dynamische <strong>Extraktion</strong>: 25 min<br />

• CO2-Fluß: 1,8 ml/min<br />

• Lösungsmittel in der Vorlage: 10 ml Isooctan<br />

• Temperatur der Vorlage: 0°C<br />

3.2.2.2.3 Bestimmung mittels GC/MSD<br />

Die nach der SFE erhaltenen Extrakte wurden direkt ohne jegliche Nachreinigung<br />

mittels GC/MSD gemessen. In Abb. 3.2.2-2 sind die SIM-Chromatogramme (m/z 155<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

143


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

<strong>und</strong> 197) einer DIPN-Standardlösung dargestellt. Es wird ersichtlich, daß das<br />

Isomerengemisch durch die Gaschromatographie zu einer Vielzahl <strong>von</strong> Peaks<br />

aufgetrennt wird, die man im wesentlichen in zwei Hauptgruppen unterteilen kann.<br />

Gruppe 1: Retentionszeit-Fenster 17 -17,60 min (leichterflüchtigere Isomere)<br />

Gruppe 2: Retentionszeit-Fenster 17,60-18,30 min (schwererflüchtigere Isomere).<br />

Abb. 3.2.2-2: SIM-Chromatogramme <strong>von</strong> DIPN-Standardlösung (m/z 155, 197)<br />

Ab<strong>und</strong>ance<br />

80000<br />

75000<br />

70000<br />

65000<br />

60000<br />

55000<br />

50000<br />

45000<br />

40000<br />

35000<br />

30000<br />

25000<br />

20000<br />

15000<br />

10000<br />

5000<br />

Ion 155.00 (154.70 to 155.70): 5101002.D<br />

17.82<br />

0<br />

Time--><br />

17.00 17.10 17.20 17.30 17.40 17.50 17.60 17.70 17.80 17.90 18.00 18.10<br />

Ab<strong>und</strong>ance<br />

220000<br />

200000<br />

180000<br />

160000<br />

140000<br />

120000<br />

100000<br />

80000<br />

60000<br />

40000<br />

20000<br />

Ion 197.00 (196.70 to 197.70): 5101002.D<br />

17.83<br />

0<br />

Time--><br />

17.00 17.10 17.20 17.30 17.40 17.50 17.60 17.70 17.80 17.90 18.00<br />

Anmerkung: Die Unterschiede im Peakmuster der beiden SIM-Chromatogramme sind auf die<br />

Unterschiede in den Massenspektren der einzelnen DIPN Isomere zurückzuführen<br />

(Fragmentierungsunterschiede).<br />

Abb. 3.2.2-3: SIM-Chromatogramme <strong>von</strong> DIPN aus Papierextrakt (m/z 155, 197)<br />

Ab<strong>und</strong>ance<br />

180000<br />

170000<br />

160000<br />

150000<br />

140000<br />

130000<br />

120000<br />

110000<br />

100000<br />

90000<br />

80000<br />

70000<br />

60000<br />

50000<br />

40000<br />

30000<br />

20000<br />

10000<br />

Gr. 1<br />

Gr. 1<br />

Gr. 2<br />

m/z 155<br />

Ion 155.00 (154.70 to 155.70): 5501006.D<br />

Gr. 2<br />

17.83<br />

Ab<strong>und</strong>ance<br />

500000<br />

450000<br />

400000<br />

350000<br />

300000<br />

250000<br />

200000<br />

150000<br />

100000<br />

m/z 155 m/z 197<br />

0<br />

Time--><br />

17.00 17.10 17.20 17.30 17.40 17.50 17.60 17.70 17.80 17.90 18.00<br />

50000<br />

Gr. 1<br />

Gr. 1<br />

Gr. 2<br />

m/z 197<br />

Ion 197.00 (196.70 to 197.70): 5501006.D<br />

Gr. 2<br />

17.83<br />

0<br />

Time--><br />

17.00 17.10 17.20 17.30 17.40 17.50 17.60 17.70 17.80 17.90 18.00 18.10<br />

Anmerkung: Die Unterschiede im Peakmuster der beiden SIM-Chromatogramme sind auf die<br />

Unterschiede in den Massenspektren der einzelnen DIPN Isomere zurückzuführen<br />

(Fragmentierungsunterschiede).<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

144


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.2.2-1: Verhältnisse der Peakflächen der Gruppe 2 zu Gruppe 1<br />

bei 2 SIM-Massen (m/z 155, 197)<br />

m/z Standardlösung Papierextrakt<br />

Gruppe 1 Gruppe 2 Verhältnis Gruppe 1 Gruppe 2 Verhältnis<br />

Fläche Gr. 1/Gr. 2 Fläche Gr. 1/Gr. 2<br />

155 3560 7240 0,49 5850 14120 0,41<br />

197<br />

7570 18990 0,40 12410 36860 0,34<br />

Bei ersten <strong>Extraktion</strong>sversuchen <strong>von</strong> Papierproben wurde festgestellt, daß es<br />

Unterschiede in den Peakmustern zwischen dem aus Proben extrahierten DIPNisomerengemisch<br />

<strong>und</strong> dem verwendetem Standard gab (vgl. Abb. 3.2.2-2 <strong>und</strong> Abb.<br />

3.2.2-3). Die Isomeren der ersten Gruppe waren im Verhältnis zu denen der Gruppe<br />

2 in den Probenextrakten schwächer vertreten als im Standard (siehe Tab. 3.2.2-1).<br />

Es lag demnach eine Diskriminierung der leichterflüchtigeren Isomeren in den Proben<br />

vor.<br />

Durch einen Vergleich der Peakmuster eines Extraktes aus einem Wiederfindungsversuch<br />

<strong>und</strong> dem Standard konnte ausgeschlossen werden, daß diese<br />

Diskriminierung während der <strong>Extraktion</strong> auftritt. Wenn man da<strong>von</strong> ausgeht, daß im<br />

verwendeten DIPN-Standard die Isomerenverteilung in etwa mit der des industriell<br />

verwendeten DIPN übereinstimmt, dann müßte diese Diskriminierung im Zeitraum<br />

<strong>von</strong> der ersten Verwendung des DIPN bis zur Analyse erfolgt sein. Dies ließe sich<br />

durch die leichtere Verflüchtigung der leichterflüchtigen Isomere der Gruppe 1 erklären.<br />

Abb. 3.2.2-4: Massenspektrum <strong>von</strong> zwei unterschiedlichen DIPN-Isomeren<br />

Ab<strong>und</strong>ance<br />

130000<br />

120000<br />

110000<br />

100000<br />

90000<br />

80000<br />

70000<br />

60000<br />

50000<br />

40000<br />

30000<br />

20000<br />

10000<br />

0<br />

m/z--><br />

Ab<strong>und</strong>ance<br />

220000<br />

200000<br />

180000<br />

160000<br />

140000<br />

120000<br />

100000<br />

80000<br />

60000<br />

40000<br />

20000<br />

0<br />

m/z--><br />

128<br />

129<br />

120 130 140 150 160 170 180 190 200 210 220<br />

128<br />

129<br />

Scan 1772 (17.231 min): 5101002.D<br />

Peak aus Gruppe 1<br />

141<br />

Scan 1846 (17.832 min): 5101002.D<br />

141<br />

152<br />

152<br />

155<br />

155<br />

165<br />

Peak aus Gruppe 2<br />

165<br />

120 130 140 150 160 170 180 190 200 210 220<br />

Zur Ermittlung der Gehalte wurden die Peaks der jeweiligen Gruppe als Summe<br />

integriert. Bedingt durch die oben beschriebene Diskriminierung werden in Proben für<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

197<br />

197<br />

212<br />

212<br />

145


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

die Isomere der Gruppe 1 niedrigere Ergebnisse erzielt als für die Gruppe 2. Die<br />

Unterschiede zwischen den Ergebnissen aus Gruppe 1 <strong>und</strong> Gruppe 2 lagen<br />

zwischen 4 <strong>und</strong> 30 % (meist im Bereich zwischen 15 <strong>und</strong> 20%). Daher wurde hier<br />

stets der Mittelwert aus den beiden Werten als Ergebnis angegeben.<br />

Da es, wie beschrieben, zwischen Standard <strong>und</strong> Proben Unterschiede im DIPN-<br />

Peakmuster gibt (vgl. Abb. 3.2.2-2 <strong>und</strong> Abb. 3.2.2-3) <strong>und</strong> da die einzelnen Isomere<br />

etwas unterschiedliche Massenspektren aufweisen (siehe Abb. 3.2.2-4 <strong>und</strong> Tab.<br />

3.2.2-1), ergeben sich bei der Bestimmung Unterschiede in den Ergebnissen bei<br />

Verwendung unterschiedlicher Quantifizierungsmassen. Um diesen Fehler möglichst<br />

klein zu halten, wurden mehr als 15 Massen, die zusammen etwa 80% der<br />

Gesamtfläche des DIPN-Signals im SCAN-Modus ausmachen, zur Quantifizierung<br />

herangezogen. Eine Quantifizierung anhand der im SCAN-Modus erhaltenen<br />

Gesamtionenstrom-Chromatogramme wurde nicht durchgeführt, um zu vermeiden,<br />

daß durch Interferenzen koeluierender Verbindungen das Ergebnis verfälscht wird.<br />

3.2.2.3 <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Proben aus dem Handel<br />

Verschiedene Proben wurden mit den SFE-Methoden sowie naßchemisch untersucht<br />

<strong>und</strong> die dabei erzielten Ergebnisse verglichen. Bei diesen Proben handelte es sich<br />

um Papierverpackungen, die dazu verwendet werden offene Lebensmittel vor der<br />

Abgabe an den Verbraucher zu verpacken. Diese Verpackungen waren z.T. mit einer<br />

Kunststoffolie beschichtet. In Tab. 3.2.2-2 werden die Ergebnisse dieser<br />

Untersuchungen zusammengestellt.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

146


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.2.2-2: Zusammenstellung der Ergebnisse der Untersuchung <strong>von</strong> Papieren<br />

<strong>und</strong> Kunststoffolien<br />

Ermittelte Gehalte in ppm<br />

Proben-<br />

Nr.<br />

11146<br />

11211<br />

Papierart<br />

Destillation HP- ISCO-<br />

HPLC Extraktor Extraktor<br />

GC-MSD GC-MSD<br />

Butterbrotpapier 0,24 0,73 -<br />

Packpapier für Backwaren 1,18 0,68 -<br />

147<br />

Anmerkungen<br />

11212 beschichtetes Papier zur<br />

Verpackung <strong>von</strong><br />

<strong>Lebensmitteln</strong><br />

34,2 22,0 Σ=90* *4x extrahiert<br />

11459 Papiertüte für Brot 22,9 22,1 22,4<br />

11460<br />

11883<br />

11884<br />

12170<br />

12368<br />

12591<br />

12813<br />

Papiertüte für Backwaren 1,53 - 5,2<br />

Pappschachtel für fritierte<br />

Backwaren<br />

0,22 2,8 0,85<br />

Papiertüte für Backwaren 0,40 2,0 -<br />

Butterbrotpapier 0,05 0,16 -<br />

Frühstücksbeutel 0,07 0,27 -<br />

Frühstücksbeutel<br />

aus Papier <strong>und</strong> Folie<br />

2,32 0,48/2,65 - mit Folie<br />

Karton für Torten 4,6 7,6 -<br />

13049 Einwickelpapier für Wurst mit<br />

PE-Folie beschichtet<br />

2,72 3,4/26 2,0/9,8 mit Folie<br />

13050 Einwickelpapier für Käse mit<br />

PE-Folie Beschichtet<br />

6,52 4,7/28,6 3,9/11,9 mit Folie<br />

Bei der <strong>Extraktion</strong> einiger wachshaltiger Proben mit dem Extraktor HP 7680T ist es<br />

zu Verstopfungen in der Festphasenfalle <strong>und</strong> in der Leitung, die <strong>von</strong> der Festphasenfalle<br />

zu dem Auffanggläschen führt, gekommen. Bei <strong>Extraktion</strong>en mit dem<br />

ISCO SFX 3560 traten diese Schwierigkeiten dagegen nicht auf.<br />

Bei der Interpretation der Ergebnisse aus der Tab. 3.2.2-2 ist zu beachten, daß das<br />

DIPN innerhalb verschiedener Papierschichten sehr unterschiedlich verteilt ist. Die<br />

große Streuung der Ergebnisse ist in erster Linie sicherlich auf diese Inhomogenitäten<br />

(z.B. Klebeflächen, bedruckte Flächen) zurückzuführen.<br />

Bei mehreren Papieren wurde eine Doppelextraktion durchgeführt. Bei fast allen<br />

Papieren war im Extrakt der zweiten <strong>Extraktion</strong> DIPN nur noch in Spuren vorhanden.<br />

Die 1. <strong>Extraktion</strong> scheint daher nahezu vollständig zu sein. Bei einem Papier<br />

allerdings (Nr. 11211, siehe Tab. 3.2.2-2), das einseitig mit einer glänzenden Schicht<br />

beschichtet war, war trotz mehrerer <strong>Extraktion</strong>en weiterhin DIPN nachweisbar.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.2.2-3: Ergebnisse der Mehrfachextraktion eines beschichteten Papiers<br />

Papier Nr.<br />

11211<br />

dynamische <strong>Extraktion</strong>szeit (min)<br />

5 10 15 25<br />

1. <strong>Extraktion</strong> 63 % 69 % 73 % 75 %<br />

2. <strong>Extraktion</strong> 19 % 13 % 13 % 13 %<br />

3. <strong>Extraktion</strong> 8 % 8 % 8 % 6 %<br />

4. <strong>Extraktion</strong> 6 % 6 % 6 % 6 %<br />

5. <strong>Extraktion</strong> 4 % 4 % n.d. n.d.<br />

Summe als<br />

100 % gesetzt<br />

100 % 100 % 100 % 100 %<br />

Summe 83 ppm 86 ppm 86 ppm 90 ppm<br />

Interessant ist, daß es zu einer Anreicherung <strong>von</strong> DIPN in den mit den Papieren in<br />

Kontakt stehenden Beschichtungsfolien kommt (siehe Tab. 3.2.2-2). Da mit Folien<br />

beschichtete Papiere zur Verpackung <strong>von</strong> fettreichen <strong>Lebensmitteln</strong> (z.B. Käse,<br />

Wurst) vorgesehen sind, ist dieser Bef<strong>und</strong> im Hinblick auf mögliche Migrationen für<br />

die Lebensmittelüberwachung <strong>von</strong> Bedeutung.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

148


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.2.3 PCP (Pentachlorphenol) aus Holz <strong>und</strong> Textilien<br />

3.2.3.1 Einführung<br />

Pentachlorphenol wurde in der Vergangenheit häufig wegen seiner fungiziden<br />

Eigenschaften als Holzschutzmittel eingesetzt. Daneben wurde <strong>und</strong> wird es als<br />

Konservierungsstoff in der Papier- <strong>und</strong> Zellstoffindustrie, in der Textilindustrie, zur<br />

Konservierung <strong>von</strong> Leder, bei der Herstellung <strong>von</strong> Farben, Klebern <strong>und</strong> Leimen etc.<br />

eingesetzt.<br />

Aufgr<strong>und</strong> seiner Toxizität wurde PCP nach <strong>und</strong> nach durch andere Stoffe ersetzt.<br />

Zwischenzeitlich ist seine Verwendung in vielen Bereichen verboten. In Deutschland<br />

ist es nach der Chemikalienverbots-Verordnung verboten Mittel in den Verkehr zu<br />

bringen, die PCP in einer Menge <strong>von</strong> über 0,1 % enthalten. Es sind Höchstmengen<br />

für PCP festgesetzt, deren Einhaltung im Rahmen der amtlichen Lebensmittelüberwachung<br />

zu überprüfen sind (z.B. in Leder, Holz).<br />

3.2.3.2 Bestimmung <strong>von</strong> PCP<br />

3.2.3.2.1 naßchemisches Verfahren<br />

Nach dem derzeit im CVUA Stuttgart verwendeten Verfahren wird Phentachlorphenol<br />

mit Isooctan aus dem zerkleinerten Probenmaterial (Holz, Textilien) isoliert <strong>und</strong> nach<br />

Silylierung mittels GC-MSD bestimmt.<br />

Dazu werden 5 g Probe mit 200 ml Isooctan versetzt <strong>und</strong> 2 h lang unter Rückflußkühlung<br />

auf der Heizplatte oder im Wasserbad extrahiert. Der abgekühlte Extrakt wird<br />

filtriert <strong>und</strong> auf etwa 2-5 ml eingeengt. Anschließend wird der Extrakt in einen 25 ml<br />

Meßkolben überführt, mit Interner Standard-Lösung (HCB) versetzt <strong>und</strong> mit Isooctan<br />

zur Marke aufgefüllt.<br />

Bei positiven Bef<strong>und</strong>en wird die Bestimmung wiederholt <strong>und</strong> die Kalibrierung erfolgt<br />

nach dem Standardadditionsverfahren.<br />

3.2.3.2.2 SFE-Methode<br />

3.2.3.2.2.1 Probenaufarbeitung<br />

PCP ist eine recht saure Verbindung (pKs=5,8). Die Abspaltung des Protons aus der<br />

Phenolgruppe wird durch die elektronenanziehende Wirkung der 5 Chloratome im<br />

Ring erleichtert. Daher wurden zur <strong>Extraktion</strong> des PCP saure Bedingungen<br />

eingestellt (vgl. Kap. 3.1.4.7.2).<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

149


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Abb. 3.2.3-1: Strukturformel <strong>von</strong> PCP<br />

Cl<br />

Cl<br />

Cl<br />

Cl Cl<br />

O<br />

Pentachlorphenol<br />

Je nach Größe <strong>und</strong> Dichte des Ausgangsmaterials werden 0,5 bis 2 g Probe in ein<br />

Becherglas eingewogen. Die Probenmatrix wird mit ca. 150 bis 200 µl 2%iger<br />

Schwefelsäure versetzt <strong>und</strong> mit Wasser befeuchtet. Die befeuchtete <strong>und</strong> angesäuerte<br />

Probe wird mit einem Adsorbens (Hydromatrix) vermengt <strong>und</strong> in die<br />

<strong>Extraktion</strong>shülsen überführt.<br />

3.2.3.2.2.2 <strong>Extraktion</strong> mit ISCO SFX 3560<br />

Die <strong>Extraktion</strong> wurde ausgehend <strong>von</strong> den bisherigen Erfahrungen bei folgenden<br />

Bedingungen durchgeführt:<br />

Extraktor ISCO SFX 3560<br />

• <strong>Extraktion</strong>sdruck CO2-Druck 330 bar<br />

• <strong>Extraktion</strong>stemperatur 55 °C<br />

• Restriktortemperatur 55 °C<br />

• Flußrate (Restrikor) 1,8 ml/min<br />

• Statische <strong>Extraktion</strong>szeit 2,5 min<br />

• Dynamische <strong>Extraktion</strong>szeit 25 min<br />

• Vorlage im Auffanggefäß 5 ml Aceton-Acetonitril-Gemisch (2:1)<br />

• Temperatur der Vorlage 10 °C.<br />

Der Extrakt wird im Stickstoff-Strom vorsichtig auf etwa 1 ml eingeengt.<br />

3.2.3.2.2.3 Derivatisierung mit PFB-Br<br />

Die Derivatisierung erfolgt im Vorlagegefäß. Dazu wird der eingeengte Extrakt mit<br />

200 µl 25% iger Kaliumcarbonat-Lösung (Katalysator) <strong>und</strong> 200 µl 15 %iger PFB-Br-<br />

Lösung in Acetonitril versetzt. Das verschlossene Gefäß wird 3 h im Heizblock auf 65<br />

°C erwärmt. Anschließend wird die organische Phase im Stickstoffstrom entfernt <strong>und</strong><br />

die Derivate in 1 ml Isooctan, das den Internen Standard enthält (PCB IUPAC Nr.<br />

101), aufgenommen. Noch vorhandenes Wasser wird mit Na2SO4 (wasserfrei)<br />

geb<strong>und</strong>en.<br />

Die organische Phase wird in ein GC-Vial überführt <strong>und</strong> zur GC-MSD-Bestimmung<br />

eingesetzt.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

H<br />

150


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.2.3.2.3 Wiederfindungen <strong>und</strong> Untersuchung PCP-haltiger Seide<br />

Zur Ermittlung der Wiederfindungsrate wurde eine PCP-freie Probe insgesamt 3 mal<br />

mit 10 µg PCP dotiert <strong>und</strong> wie oben beschrieben aufgearbeitet. Die Wiederfindungsraten<br />

lagen zwischen 95 <strong>und</strong> 97 %.<br />

Das <strong>Extraktion</strong>sverhalten <strong>von</strong> gealterten PCP-Rückständen könnte jedoch anders sein<br />

als das <strong>von</strong> dotierten. Für weitere Untersuchungen (siehe Tab. 3.2.3-1) wurde deshalb<br />

ein Seidenpulver verwendet, das gealterte PCP-Rückstände enthielt. Diese Probe<br />

wurde im Rahmen eines Ringversuches zur Verfügung gestellt.<br />

Tab. 3.2.3-1: Untersuchungsergebnisse der PCP-haltigen Seidenprobe<br />

PCP-Gehalt (angegebener Gehalt)<br />

30 mg/kg<br />

naßchemisch ermittelter Gehalt<br />

mit der SFE-Methode ermittelter Gehalt<br />

Wiederfindung bei der SFE, Aufstockung mit 15 µg PCP<br />

3.2.3.2.4 Optimierung der <strong>Extraktion</strong><br />

5 mg/kg<br />

28 mg/kg<br />

99 %<br />

Folgende Parameter wurden variiert um zu überprüfen, ob die <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> PCP<br />

noch verbessert werden kann:<br />

- höhere Flußrate,<br />

- höhere <strong>Extraktion</strong>stemperatur,<br />

- längere statische <strong>Extraktion</strong>szeit,<br />

- höherer <strong>Extraktion</strong>sdruck,<br />

- Durchführung einer zweiten <strong>Extraktion</strong>.<br />

Die Untersuchungen wurden mit einer Holzprobe durchgeführt, bei der nach der<br />

naßchemischen Methode ein PCP-Gehalt <strong>von</strong> 5,2 mg/kg ermittelt wurde.<br />

Tab. 3.2.3-2 zeigt die bei Anwendung verschiedener <strong>Extraktion</strong>sbedingungen<br />

ermittelten PCP-Gehalte.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

151


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.2.3-2: Ermittelte PCP-Ergebnisse in einer zerkleinerten Holzprobe bei<br />

Variation der <strong>Extraktion</strong>sbedingungen<br />

<strong>Extraktion</strong>sbedingungen ermittelter PCP-Gehalt (mg/kg)<br />

1. <strong>Extraktion</strong> 2. <strong>Extraktion</strong><br />

naßchemische Methode 4,9 5,6 5,0 n.n. n.d.<br />

SFE-Methode (wie 3.2.2.3.2.2) 4,1 4,0 0,7<br />

SFE, Fluß 2,5 ml/min 4,1 0,81<br />

SFE, <strong>Extraktion</strong>stemperatur 65 °C 4,1 4,0 0,65<br />

SFE, statische <strong>Extraktion</strong>szeit 5 min 4,1 4,0 0,64<br />

SFE, <strong>Extraktion</strong>sdruck 500 bar 4,6 4,6 0,4<br />

SFE, <strong>Extraktion</strong>sdruck 660 bar 4,6 4,5<br />

0,64<br />

Wie die Ergebnisse zeigen, führt eine Erhöhung des <strong>Extraktion</strong>sdruckes <strong>von</strong> 330 auf<br />

500 bar zu einer deutlichen Erhöhung der PCP-Ausbeuten. Eine weitere Erhöhung<br />

des Druckes auf 660 bar brachte keine Vorteile mehr.<br />

Um zu überprüfen, ob die <strong>Extraktion</strong>szeit noch verkürzt werden kann, wurde ein<br />

weiterer Versuch durchgeführt, bei den die dynamische <strong>Extraktion</strong>szeit zwischen 10<br />

<strong>und</strong> 35 min variiert wurde. Tab. 3.2.3-3 zeigt die Ergebnisse dieses Versuchs.<br />

Tab. 3.2.3-3: PCP-Ergebnisse einer Holzprobe bei Variation der <strong>Extraktion</strong>szeit<br />

<strong>Extraktion</strong>sbedingungen<br />

ermittelter PCP-Gehalt (mg/kg)<br />

1. <strong>Extraktion</strong> 2. <strong>Extraktion</strong><br />

naßchemische Methode 4,9 5,6 5,0 n.n.<br />

SFE-Methode (wie 3.2.2.3.2.2) 4,1 4,0 0,7<br />

SFE*, dyn. <strong>Extraktion</strong>szeit 10 min 3,1 3,2 0,45<br />

SFE*, dyn. <strong>Extraktion</strong>szeit 15 min 3,5 3,6 0,21<br />

SFE*, dyn. <strong>Extraktion</strong>szeit 20 min 4,0 4,3 0,17<br />

SFE*, dyn. <strong>Extraktion</strong>szeit 25 min 4,6 0,15<br />

SFE*, dyn. <strong>Extraktion</strong>szeit 30 min 4,6<br />

SFE*, dyn. <strong>Extraktion</strong>szeit 35 min<br />

* <strong>Extraktion</strong>sdruck 500 bar<br />

4,6<br />

Nach diesen Untersuchungen sind die optimierten <strong>Extraktion</strong>sbedingungen:<br />

Extraktor ISCO SFX 3560<br />

• <strong>Extraktion</strong>sdruck CO2-Druck 500 bar<br />

• <strong>Extraktion</strong>stemperatur 55 °C<br />

• Restriktortemperatur 55 °C<br />

• Flußrate (Restrikor) 1,8 ml/min<br />

• Statische <strong>Extraktion</strong>szeit 2,5 min<br />

• Dynamische <strong>Extraktion</strong>szeit 25 min<br />

• Vorlage im Auffanggefäß 5 ml Aceton-Acetonitril-Gemisch (2:1)<br />

• Temperatur der Vorlage 10 °C.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

152


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.2.3.3 Untersuchung <strong>von</strong> Planproben<br />

Mit der optimierten <strong>Extraktion</strong>smethode wurden einige Planproben auf ihren Gehalt<br />

an PCP untersucht. Die Ergebnisse im Vergleich zur herkömmlichen Analysenmethode<br />

sind in Tab. 3.2.3-3 dargestellt.<br />

Tab. 3.2.3-3: PCP-Gehalte in Planproben, <strong>Extraktion</strong> mit SFE im Vergleich zum<br />

naßchemischen Verfahren<br />

Gehalt an PCP (mg/kg)<br />

Proben-Nr. SFE-Methode Mittelwert naßchemisches<br />

SFE-Methode Verfahren<br />

4191 4,6; 4,7; 4,5 4,6 4,9; 5,6; 5,0; n.n.<br />

6280 12,7; 15,3; 15,8 14,6 2,2; 0,6; 0,7; 0,8<br />

5057 0,22; 0,23 0,23 n.n.<br />

Seidenpulver 30,0; 32,2; 30,7 30,9 5,0<br />

3.2.3.4 Fazit<br />

Wie Tab. 3.2.3-3 zeigt, werden mit der SFE-<strong>Extraktion</strong> zum Teil erheblich höhere<br />

Gehalte an PCP festgestellt als nach einer <strong>Extraktion</strong> mit Isooctan. Ausschlaggebend<br />

für diese deutlich verbesserte <strong>Extraktion</strong> dürften sein:<br />

• Zurückdrängung der Dissoziation des PCP durch Einstellung des pH-Wertes <strong>und</strong><br />

• die Zugabe <strong>von</strong> Wasser als Modifier bei der SFE-<strong>Extraktion</strong>, wodurch<br />

Wechselwirkungen zwischen dem PCP <strong>und</strong> Bestandteilen der Holzmatrix reduziert<br />

werden.<br />

Vorteile der SFE-<strong>Extraktion</strong> sind der geringere Lösungsmittelverbrauch, der geringere<br />

Zeit- <strong>und</strong> Arbeitsaufwand <strong>und</strong> die damit verb<strong>und</strong>enen geringeren Kosten [116].<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

153


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.2.4 <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Antioxidantien aus Kunststoff<br />

3.2.4.1 Einführung<br />

Die einzelnen Kunststoffe weisen unterschiedlich günstige physikalische <strong>und</strong><br />

chemische Eigenschaften auf. Sie haben in der Regel für sich allein nicht die<br />

hinsichtlich Verarbeitung, Gebrauch <strong>und</strong> Stabilität benötigten Eigenschaften, sondern<br />

sind oft spröde, lichtempfindlich, wärmeunbeständig, hydrolyseanfällig, gas- oder<br />

wasserdampfdurchlässig. Durch Zugabe weiterer Stoffe, sog. Additiven <strong>und</strong><br />

Verarbeitungshilfsstoffen, werden die gewünschten eigenschaften eingestellt.<br />

Typische Zusatz- <strong>und</strong> Hilfsstoffe sind: Weichmacher, Stabilisatoren, Gleitmittel,<br />

Füllstoffe, Antistatika u.a..<br />

Wärme, energiereiche Lichtstrahlung (UV), Luftsauerstoff sowie Feuchtigkeit<br />

schädigen polymere Werkstoffe derart, daß ein Kettenabbau stattfindet, wodurch sich<br />

die mechanischen Eigenschaften der Kunststoffe verschlechtern. Ein Zusatz <strong>von</strong><br />

Stabilisatoren (Antioxidantien <strong>und</strong> UV-Stabilisatoren) erhöht die Lebensdauer <strong>von</strong><br />

Kunststoffen.<br />

Antioxidantien werden zum Schutz gegen thermische Alterungserscheinungen sowie<br />

gegen Oxidationen eingesetzt. Beispiele für diese Additive sind sterisch gehinderte<br />

Phenole, Thioether <strong>und</strong> Organophosphite [128].<br />

3.2.4.2 Bestimmung <strong>von</strong> Antioxidantien<br />

3.2.4.2.1 naßchemisches Verfahren<br />

Die Antioxidatien werden aus Polyolefinen isoliert <strong>und</strong> mit HPLC-DAD oder<br />

densitometrisch bestimmt.<br />

Dazu werden 5 g zerkleinertes Kunststoffmaterial mit 75 ml Toluol versetzt unter<br />

Rückflußkühlung erwärmt. Dabei löst sich das Polyolefin auf. Zur Fällung des<br />

Polymer gibt man in die noch heiße Lösung ca. 150 ml Ethanol. Die abgekühlte<br />

Lösung wird über ein Faltenfilter filtriert <strong>und</strong> der Niederschlag mit Ethanol<br />

gewaschen. Das Filtrat wird am Rotationsverdampfer auf ca. 5 ml eingeengt, dabei<br />

fällt noch etwas Polymer aus. Nach erneutem Filtrieren, Nachwaschen <strong>und</strong> Einengen<br />

wird der Extrakt mit Ethanol auf 10 ml aufgefüllt <strong>und</strong> zur HPLC oder Densitometrie<br />

eingesetzt.<br />

3.2.4.2.2 SFE-Methode<br />

3.2.4.2.2.1 Probeneinbringung in die SFE-Hülse<br />

Der zerkleinerte Kunststoff wird direkt in eine <strong>Extraktion</strong>shülse eingewogen.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

154


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

3.2.4.2.2.2 <strong>Extraktion</strong> mit ISCO SFX 3560<br />

Die <strong>Extraktion</strong> wurde bei folgenden Bedingungen durchgeführt:<br />

Extraktor ISCO SFX 3560<br />

• <strong>Extraktion</strong>sdruck CO2-Druck 440 bar<br />

• <strong>Extraktion</strong>stemperatur 120 °C<br />

• Restriktortemperatur 50 °C<br />

• Flußrate (Restrikor) 1,5 ml/min<br />

• Statische <strong>Extraktion</strong>szeit 5 min<br />

• Dynamische <strong>Extraktion</strong>szeit 30 min<br />

• Vorlage im Auffanggefäß 5 ml Acetonitril<br />

• Temperatur der Vorlage 10 °C.<br />

Die Bestimmung der Antioxidantien erfolgt direkt aus dem erhaltenen Extrakt mittels<br />

HPLC-DAD.<br />

3.2.4.2.3 Untersuchung <strong>von</strong> Proben mit bekannter Rezeptur<br />

Da durch Dotierung <strong>von</strong> Kunststoffen im Labor die natürlichen Verhältnisse <strong>von</strong><br />

Proben praktisch nicht simulierbar sind, machen Wiederfindungsversuche meist<br />

wenig Sinn. Zur Entwicklung <strong>und</strong> Validierung <strong>von</strong> Methoden sollte deshalb Probenmaterial<br />

zur Verfügung stehen dessen Rezeptur bekannt ist. Antioxidantien werden<br />

jedoch dazu eingesetzt, Oxidationen am Polymer zu verhindern, sie werden dabei<br />

selbst oxidiert <strong>und</strong> damit verbraucht. Dies bedeutet, daß die in der Rezeptur<br />

angegebene Menge an Antioxidantien im Endprodukt bereits nicht mehr vorhanden<br />

zu sein braucht.<br />

Zur Bewertung der SFE-Methode wurden 6 Proben mit bekanntem Gehalt an drei<br />

Antioxidantien untersucht. Die Ergebnisse werden mit denen der bisher gebräuchlichen<br />

naßchemischen Methode verglichen.<br />

3.2.4.2.3.1 untersuchte Antioxidantien<br />

In Tab. 3.2.4-1 sind die Antioxidantien aufgeführt, die in den zur Verfügung<br />

stehenden Proben mit bekannter Rezeptur verwendet wurden.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

155


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.2.4-1: untersuchte Antioxidantien<br />

Abkürzung Chemische Bezeichnung Summen-<br />

A1<br />

A2<br />

A3<br />

Tetrakis (methylen(3,5-di-tert.butyl-4-hydroxycinamat)-methan<br />

n-Octadecyl-ß-(4’-hydroxy-3,5 ditert.-butylphenyl)-propionat <br />

Tris-(2,4-di-tert.-butylphenyl)phosphit <br />

formel<br />

C73H100O1<br />

Im folgenden werden die Abkürzungen A1, A2 <strong>und</strong> A3 verwendet.<br />

3.2.4.2.3.2 Probenmaterial<br />

2<br />

156<br />

Molekular Handels-<br />

gewicht bezeichnung<br />

1168 Irganox 1010<br />

C35H56O4 530 Irganox 1076<br />

C42H63O3P 647 Irgafos 168<br />

In Tab. 3.2.5-2 sind die zur Verfügung gestandenen Proben <strong>und</strong> deren Rezepturangaben<br />

bezüglich A1, A2 <strong>und</strong> A3 aufgeführt.<br />

Tab. 3.2.4-2: untersuchtes Probenmaterial<br />

Bezeichnung Abkürzung Gehalt an Antioxidanz (mg/100g)<br />

nach Rezeptur<br />

A1 A2 A3<br />

Schale, klein Probe 1 36 - 72<br />

Schale, groß Probe 2 4,5 - 14<br />

Polybatch PAO 1490<br />

Probe 3 65 - 180<br />

Daplen Str. 150 RC Probe 4 16 18 35<br />

Attane SC 4103 Probe 5 - 63 120<br />

Amaco PP 100-GA02 Probe 6 30 - 112<br />

3.2.4.2.3.3 Untersuchungsergebnisse<br />

Die zur Verfügung gestandenen Proben 1-6 mit bekanntem Gehalt an Antioxidantien<br />

wurden mittels SFE extrahiert <strong>und</strong> z.T. auch mit der naßchemischen Methode aufgearbeitet.<br />

In der folgenden Tab. 3.2.3-3 werden die erzielten Untersuchungsergebnisse<br />

aufgeführt.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Tab. 3.2.4-3: Untersuchungsergebnisse<br />

Probe Gehalt an A1 Gehalt an A2 Gehalt an A3<br />

(mg/100g)<br />

(mg/100g)<br />

(mg/100g)<br />

SFE naßchem. SFE naßchem. SFE naßchem.<br />

Probe 1 12,7 12,4 - - 34,4 23<br />

Probe 2 1,55 - - - 5,4 -<br />

Probe 3 22,5 n.d. - n.d. 88,5 n.d.<br />

Probe 4 7,85 n.d. 6,75 n.d. 12 n.d.<br />

Probe 5 - n.d. 20,9 n.d. 59,5 n.d.<br />

Probe 6 14,8 n.d. - n.d. 58,1 n.d.<br />

Anmerkung: n.d.: nicht durchgeführt<br />

3.2.4.2.3.4 Variation der SFE-Parameter<br />

Folgende Parameter wurden variiert um zu überprüfen, ob die <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong><br />

Antioxidantien noch verbessert werden kann:<br />

- höhere Flußrate,<br />

- höhere Restriktortemperatur,<br />

- höherer <strong>Extraktion</strong>sdruck.<br />

Die restlichen Parameter der <strong>Extraktion</strong>smethode wurden gleich belassen.<br />

Die Untersuchungen wurden mit Probe Nr. 4 durchgeführt.<br />

Die folgende Tab. 3.2.3-4 zeigt die Ergebnisse bei verschiedenen <strong>Extraktion</strong>sbedingungen.<br />

Tab. 3.2.4-4: SFE-Ergebnisse bei Variation der <strong>Extraktion</strong>sbedingungen, Probe 4<br />

ermittelter Antioxidantien-Gehalt<br />

<strong>Extraktion</strong>sbedingungen<br />

(mg/100g)<br />

A1 A2<br />

SFE-Methode (wie 3.2.5.3.2.2) 15,0 8,9<br />

SFE, Fluß 2,5 ml/min 14,6 10,0<br />

SFE, Restriktortemperatur 60 °C 15,1 11,1<br />

SFE, <strong>Extraktion</strong>sdruck 550 bar<br />

18,4 11,0<br />

Die Bestimmung <strong>von</strong> A3 bereitete aufgr<strong>und</strong> <strong>von</strong> Zersetzungen Probleme. Eine<br />

Quantifizierung wurde deshalb nicht vorgenommen.<br />

Aus Tab. 3.2.4-4 wird ersichtlich daß durch Erhöhung des <strong>Extraktion</strong>sdruckes auf 550<br />

bar die <strong>Extraktion</strong>sausbeuten <strong>von</strong> A1 am deutlichsten gesteigert werden können,<br />

während A2 schon bei milderen Bedingungen gut extrahiert werden kann.<br />

3.2.4.2.4 Fazit<br />

Aus den erzielten Ergebnissen der oben beschriebenen, zur Orientierung dienenden<br />

Untersuchungen, können folgende Folgerungen gezogen werden. Die SFE ist für die<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

157


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Antioxidantien aus Kunststoffen prinzipiell gut geeignet. Die<br />

Verwendung hoher Drucke begünstigt die <strong>Extraktion</strong>. Da mit dem Gerät der Fa. HP<br />

Drucke bis maximal 350 bar erreichbar sind, scheint der Extraktor der Fa. ISCO für<br />

diesen Aufgabenbereich geeigneter zu sein.<br />

Bezüglich <strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong> Probenzerkleinerung sind noch weitere Untersuchungen<br />

erforderlich.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

158


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

4. SCHLUßFOLGERUNGEN<br />

4.1 BEWERTUNG DER SFE ALS EXTRAKTIONSVERFAHREN<br />

Die bisherigen Untersuchungen <strong>und</strong> Ergebnisse haben gezeigt, daß die SFE ein<br />

<strong>Extraktion</strong>sverfahren ist, das für verschiedene Aufgaben im Bereich der Lebensmittelüberwachung<br />

erfolgreich eingesetzt werden kann.<br />

Pestizidrückstandsanalytik:<br />

Im Bereich der Pestizidrückstandsanalytik hat sich die SFE als eine sehr gute<br />

Alternative zu vielen gängigen naßchemischen <strong>Extraktion</strong>smethoden erwiesen.<br />

Vorteilhaft bei der SFE sind neben dem geringeren Lösungsmittelverbrauch, der<br />

geringere Arbeitsaufwand <strong>und</strong> der hohe Probendurchsatz. Dadurch sind SFE-<br />

Methoden in der Regel wesentlich kostengünstiger als entsprechende naßchemische<br />

Verfahren.<br />

Mit der hier vorgestellten SFE-Multimethode werden bei einem geringen<br />

Arbeitsaufwand Ergebnisse erzielt, die mit denen herkömmlicher Multimethoden<br />

vergleichbar sind. Vorteilhaft bei der SFE-Methode ist vor allem die Tatsache, daß<br />

die SFE-Extrakte in der Regel so rein sind, daß ein aufwendiges Clean-up entfällt.<br />

Für zahlreiche Pestizide wurden Wiederfindungsversuche durchgeführt <strong>und</strong> bei<br />

niedrigen Schwankungen gute Wiederfindungen erzielt.<br />

Physikalische begründet sind die Limitationen der SFE bei der <strong>Extraktion</strong> polarer<br />

Analyten. Hier ist die SFE nur bedingt einsetzbar. (z.B. zur <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> sauren<br />

oder basischen Verbindungen nach einer pH-Wert Einstellung). Diese Problematik<br />

stellt sich allerdings auch bei vergleichbaren naßchemischen Verfahren.<br />

Als besonders interessant hat sich die Kombination SFE-<strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong> GC/MSD-<br />

Bestimmung erwiesen. Bei bestimmten Applikationen (saure <strong>und</strong> basische Pestizide<br />

<strong>und</strong> thermolabile Verbindungen wie N-Methylcarbamate <strong>und</strong> Organozinn-Pestizide)<br />

bietet sich darüber hinaus die LC-MSD als Bestimmungsverfahren an.<br />

Bedarfsgegenständeanalytik<br />

Die durchgeführten Untersuchungen (z.B. PCP aus Holz, Di-Isopropyl-Naphthalin aus<br />

Papier, Antioxidantien aus Kunststoff) haben gezeigt, daß die SFE prinzipiell vielfältig<br />

im Bereich der Bedarfsgegenständeanalytik eingesetzt werden kann.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

159


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

4.2 BEWERTUNG DER VERWENDETEN EXTRAKTIONSGERÄTE<br />

SFE-7680T der Fa. Hewlett-Packard:<br />

Das Gerät ist vom Funktionsprinzip her variabel <strong>und</strong> bietet dem Anwender gute<br />

Möglichkeiten, <strong>Extraktion</strong>smethoden zu entwickeln <strong>und</strong> zu optimieren. Die Handhabung<br />

ist sehr einfach <strong>und</strong> komfortabel. Druck- <strong>und</strong> Temperaturbereiche scheinen<br />

ausreichend für Anwendungen in der Pestizidanalytik. Das Gerät bietet zudem einen<br />

Clean-up-Schritt, der der <strong>Extraktion</strong> nachgeschaltet ist (fraktionierte Elution aus der<br />

Festphasenfalle).<br />

Das Geräte weist jedoch auch einige Mängel auf:<br />

Bei den relativ häufig auftretenden Undichtigkeiten, wird die Sequenz abgebrochen,<br />

Kühlung der Falle <strong>und</strong> Heizung der <strong>Extraktion</strong>skammer werden dabei allerdings nicht<br />

abgeschaltet. Dadurch wird unnötig Kühl-CO2<br />

verbraucht. Die nachfolgenden Proben<br />

in der Sequenz verbleiben u.U. für längere Zeit bei Raumtemperatur <strong>und</strong> werden<br />

dadurch meist unbrauchbar. Besser wäre es, wenn nach einer gewissen Zeit die<br />

fehlerhafte, <strong>und</strong>ichte Probe übersprungen <strong>und</strong> die Sequenz fortgeführt würde.<br />

Die Kühlung ist vom Prinzip her umständlich (häufiger Wechsel der Gasflasche<br />

nötig), laut <strong>und</strong> relativ teuer.<br />

Das Volumen der <strong>Extraktion</strong>shülse ist auf 7 ml begrenzt, wodurch auch die<br />

einsetzbare Probenmenge limitiert wird. Zwar reicht die Einwaage für viele Anwendungen<br />

aus, bei einigen Anwendungen wäre jedoch eine größere Probenmenge<br />

günstiger.<br />

SFX 3560 der Fa. ISCO:<br />

Bei dem Gerät der Fa. ISCO werden die Extrakte nicht an einer Festphasenfalle<br />

aufgefangen sondern in eine Lösungsmittelvorlage eingeleitet.<br />

Vorteilhaft gegenüber dem Gerät der Fa. HP ist die Tatsache, daß bei diesem Gerät<br />

wesentlich höhere Drucke eingesetzt werden können. Höhere Drucke in Kombination<br />

mit höheren Temperaturen sind z.B. im Bereich der Bedarfsgegenständeanalytik<br />

erforderlich.<br />

Darüber hinaus bietet sich die Möglichkeit durch eine zweite Förderpumpe dem<br />

überkritischen Kohlendioxid andere Lösungsmittel in beliebigem Verhältnis<br />

zuzumischen oder auch <strong>Extraktion</strong>en mit einem herkömmlichen Lösungsmittel<br />

durchzuführen (Accelerated Solvent <strong>Extraktion</strong>).<br />

Die Kapazität der <strong>Extraktion</strong>shülsen ist mit 10 ml größer als bei dem HP-Gerät, so<br />

daß größere Probenmengen eingesetzt werden können.<br />

Bei dem Gerät der Fa. ISCO traten insgesamt weniger Undichtigkeiten auf als beim<br />

Gerät der Fa. HP. Dies ist darauf zurückzuführen, daß die <strong>Extraktion</strong>shülsen sich<br />

während der <strong>Extraktion</strong> in einer unter Druck stehenden <strong>Extraktion</strong>skammer befinden<br />

(Druckausgleich). Dafür sind mehrmals Probleme mechanischer Art aufgetreten, die<br />

jedoch problemlos repariert werden konnten.<br />

Nachteilig bei diesem Gerät ist, daß Unregelmäßigkeiten im Fluß zu Verlusten <strong>von</strong><br />

Analyten in der Falle durch Verflüchtigung führen können. Im Vergleich zu dem<br />

Extraktor der Fa. HP ist die Bedienung etwas unbequemer.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

160


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

4.3 ALLGEMEINE ANALYTISCHE ERKENNTNISSE<br />

Matrixeffekte<br />

Bei der Optimierung der gaschromatographischen Bestimmung <strong>von</strong> Pestiziden wurde<br />

festgestellt, daß Matrixbestandteile im Probenextrakt einen großen Einfluß auf die<br />

Bestimmung verschiedener Substanzen haben. Diese Matrixbestandteile wirken bei<br />

der Gaschromatographie „schützend“ auf Pestizide, indem sie aktive Stellen im<br />

Injektionssystem besetzen. Dadurch werden Wechselwirkungen der Pestizide mit<br />

den Oberflächen des Injektionssystems verringert. Eine Bestimmung <strong>von</strong> Pestiziden<br />

unter Verwendung <strong>von</strong> Kalibrierlösungen in reinem Lösungsmittel führt für einige<br />

Verbindungen zu falschen, überhöhten Werten. Um dies zu verhindern, ist die<br />

Erstellung <strong>von</strong> „Eichungen auf Matrix“ unerläßlich.<br />

Zerkleinerung (Homogenität)<br />

Aufgr<strong>und</strong> der geringen Probenmenge die für SFE-<strong>Extraktion</strong>en eingesetzt wird, ist<br />

eine gute Homogenität der zerkleinerten Proben erforderlich. Nur so können<br />

Ergebnisse erzielt werden, die für die Gesamtprobe repräsentativ sind.<br />

Bei Obst- <strong>und</strong> Gemüseproben ist dies durch eine Zerkleinerung in gefrorenem<br />

Zustand möglich.<br />

Im Bereich der Bedarfsgegenstände ist ebenfalls eine Feinzerkleinerung der Proben<br />

erforderlich, die jedoch erfahrungsgemäß größere Schwierigkeiten bereitet.<br />

4.4 AUSBLICK<br />

Ein verstärkter Einsatz der SFE in Pestizidrückstandslaboratorien würde viele<br />

Vorteile mit sich bringen. Mit Hilfe der SFE kann nicht nur der Probendurchsatz<br />

erheblich gesteigert werden, sondern auch durch die Automatisierung der<br />

Probenaufarbeitung die Vergleichbarkeit innerhalb der Laboratorien verbessert<br />

werden.<br />

Die Entwicklung <strong>von</strong> weiteren matrixbezogenen Multimethoden wäre vorteilhaft. Hierbei<br />

werden Stoffe, die in den jeweiligen Matrizes zu erwarten sind, gezielt erfaßt <strong>und</strong> zudem<br />

ggf. Eigenheiten der betreffenden Matrizes (z.B. pH-Wert, Wasser-, Fettgehalt)<br />

berücksichtigt.<br />

Für Pestizide, die sich zwar mittels SFE gut extrahieren lassen, jedoch Probleme bei<br />

der Gaschromatographie bereiten, wäre der Einsatz der LC/MSD als Bestimmungsverfahren<br />

sehr interessant (z.B. Uronsäurederivate).<br />

Für die Erfassung <strong>von</strong> polareren Verbindungen ist der Einsatz der beschleunigten<br />

Lösungsmittelextraktion (ASE), die ebenfalls ein automatisiertes <strong>Extraktion</strong>sverfahren<br />

ist, denkbar.<br />

Im Bereich der Bedarfsgegenständeanalytik wurden zwar bisher nur wenige<br />

Applikationen entwickelt. Es ist zu erwarten, daß die SFE für viele weitere<br />

Applikationen erfolgreich eingesetzt werden könnte. In diesem Zusammenhang ist zu<br />

erwähnen, daß das Verfahren auch für die Analytik <strong>von</strong> migrierten Stoffen in<br />

<strong>Lebensmitteln</strong> geeignet ist.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

161


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Die Problematik der Zerkleinerung <strong>von</strong> verschiedenen <strong>Bedarfsgegenständen</strong> konnte,<br />

mangels apparativer Ausstattung, nicht näher verfolgt werden. Ein ausreichender<br />

Zerkleinerungsgrad der Proben ist sowohl unter dem Aspekt der Homogenität als<br />

auch der Extrahierbarkeit als günstig zu bewerten.<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

162


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

5. ABKÜRZUNGEN<br />

2,4-D : 2-(2,4-Dichlorphenoxy)-essigsäure<br />

2,4-DB : 2,4-Dichlorphenoxybuttersäure<br />

2,4-DP : 2,4-Dichlorphenoxypropionsäure<br />

2,4,5-T : 2-(2,4,5-Trichlorphenoxy)-essigsäure<br />

2,4,5-TP : 2,4,5-Trichlorphenoxypropionsäure<br />

a : Wasseraktivität<br />

w<br />

AAS : Atom-Adsorptions-Spektroskopie<br />

API : atmospheric pressure interface<br />

BBA : Biologische B<strong>und</strong>esanstalt<br />

BBU : (1-(2-Benzimidazoyl)-3-n-Butylharnstoff)<br />

BG : Bestimmungsgrenze<br />

BMG : B<strong>und</strong>esministerium für Ges<strong>und</strong>heit<br />

CH : Cyclohexan<br />

CID : collision induced dissociation<br />

CO2 : Kohlendioxid<br />

CVUA : Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt<br />

DAD : Dioden-Array-Detektor<br />

DCIP : Dichlorisopropanol<br />

DDE : 1,1-Dichlor-2,2-bis(4-chlorphenyl)ethylen<br />

DDT : 1,1,1-Trichlo-2,2-bis(4-chlorphenyl)ethan<br />

DFG : Deutsche Forschungsgemeinschaft<br />

DINP : Di-Isopropyl-Naphthalin<br />

DMF : Dimethylformamid<br />

EA : Ethylacetat<br />

EC : electron capture<br />

ECD : Elektroneneinfangdetektor<br />

EDTA : Ethylen-diamin-tetra-essigsäure<br />

EPC : electronic pressure control<br />

FP : flammenphotometrisch<br />

GC : Gaschromatographie<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

163


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

GPC : Gelpermeationschromatographie<br />

h : St<strong>und</strong>e<br />

HCB : Hexachlorbenzol<br />

HEX : Hexan<br />

HM : Höchstmenge<br />

HMZ : Halbwertszeit<br />

HP : Hewlett-Packard<br />

HPLC : high pressure liquid chromatography<br />

Hymx : Hydromatrix<br />

ICP : induktiv gekoppeltes Plasma<br />

ISTD : interner Standard<br />

IUPAC : International Union of Pure and Applied Chemistry<br />

IO : Isooctan<br />

KAS : Kaltaufgabesystem<br />

LC : liquid chromatography<br />

LMBG : Lebensmittel- <strong>und</strong> Bedarfsgegenständegesetz<br />

M : Molekulargewicht<br />

MCPA : 2-(4-Chlor-2-methylphenoxy) essigsäure<br />

MCPB : 2-(4-Chlor-2-methylphenoxy) buttersäure<br />

MCPP : 2-(4-Chlor-2-methylphenoxy) propionsäure<br />

MS : Massenspektrometrie<br />

MSD : massenselektiver Detektor<br />

m/z : Masse/Ladung<br />

n.d. : nicht durchgeführt<br />

NG : Nachweisgrenze<br />

NMC : M-Methyl-Carbamate<br />

NP : Stickstoff-Phosphor<br />

ODS : Octadecylsilan<br />

P : Druck<br />

PAK : polycyclische aromatische Kohlenwasserstoffe<br />

Pc : kritischer Druck<br />

PCB : polychlorierte Biphenyle<br />

PCP : Pentachlorphenol<br />

PE : Polyethylen<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

164


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

PFB : Pentafluorbenzyl<br />

PFB-Br : Pentafluorbenzylbromid<br />

Po/w : Verteilungskoeffizient n-Octanol/Wasser<br />

pKb : Basenkonstante<br />

ppm : parts per million<br />

pKs : Säurekonstante<br />

PVC : Polyvinylchlorid<br />

RHmV : Rückstands-Höchstmengenverordnung<br />

RP : reversed phase<br />

RT : Raumtemperatur<br />

SCAN : scanning modus, Aufzeichnung aller Massen<br />

s : Sek<strong>und</strong>e<br />

Sdp. : Siedepunkt<br />

SFC : supercritical fluid chromatography<br />

SFE : supercritical fluid extraction<br />

SIM : selected ion monitoring<br />

STB : (3-Butyl-2,4-Dioxo[1,2-a]-s-Triazinobenzimidazol)<br />

T : Temperatur<br />

t0,5 : Halbwertszeit<br />

TBME : tert.-Butyl-Metyl-Ether<br />

Tc : kritische Temperatur<br />

TCE : 2,2,2-Trichlorethanol<br />

TEPP : Tetraethylpyrophosphat<br />

TIC : Totalionenstrom-Chromatogramm, total ion chromatogram<br />

UV : Ultraviolett<br />

VO : Verordnung<br />

XSE : Accelerated Solvent Extraction<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

165


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

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S 19: Gaschromatographische Bestimmung <strong>von</strong> Organochlor- <strong>und</strong> Organophosphorverbindungen<br />

sowie stickstoffhaltige <strong>und</strong> andere Pflanzenschutzmittel<br />

S 8: Gaschromatographische Bestimmung <strong>von</strong> Organohalogen-,<br />

Organophosphor- <strong>und</strong> Triazinverbindungen.<br />

S 24: Organozinn-Verbindungen<br />

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167


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

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<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

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169


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

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<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

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Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

171


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

Detection and Liquid Chromatography with Fluorescence Detection<br />

J. of AOAC Int. 78 (1995) 1252<br />

80. Deutsche Forschungsgemeinschaft, Manual of Pesticide Residue Analysis<br />

Volume II, VCH, Weinheim 1992<br />

81. J. Hädrich, Zur Ableitung <strong>von</strong> Nachweisgrenze <strong>und</strong> Bestimmungsgrenze nach<br />

dem Eichkurvenverfahren, 3. Mitteilung: Die Auswahl der Dotierungsniveaus bei<br />

der Anwendung des neuen DFG-Konzeptes <strong>und</strong> ihr Einfluß auf die Höhe der<br />

Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen, Deutsch. Lebensm. R<strong>und</strong>sch. 89 (1993)<br />

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82. J. Vogelgesang, Computer Program Kalibo<br />

Brüssel<br />

83. European Commission’s Proficiency Tests on Pesticide Residues in fruit and<br />

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89. K.A. Hassall, The Chemistry of Pesticides, Their Metabolism, Mode of Action<br />

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Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

172


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

95. METROHM, Application Bulletin Nr. 176/3 d<br />

96. J.A. Stäb et al., J. Chromatography 609 (1992) 195<br />

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99. T. Laue, A. Plagens, Namen- <strong>und</strong> Schlagwort-Reaktionen der Organischen<br />

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Lebensmittelchemie 52 (1998) 13 <strong>und</strong> Lebensmittelchemie 52 (1998) 74<br />

102. M. Anastassiades, W. Schwack, Analysis of Carbendazim, Benomyl<br />

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9 th IUPAC International Congress, Pesticide Chemistry, Books of Abstracts,<br />

Volume II<br />

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Forsch. 184 (1987) 91-95<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

173


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

109. E. Ballesteros, M. Gallego, M. Valcárcel, Automatic Gas Chromatographic<br />

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110. W. Blaß, C. Pilipowski, Bestimmung <strong>von</strong> N-Methylcarbamat-Rückständen mit<br />

HPLC <strong>und</strong> on-line gekoppeltem Reaktionsdetektor in <strong>Lebensmitteln</strong> pflanzlicher<br />

Herkunft <strong>und</strong> Boden, Pflanzenschutz-Nachrichten, Bayer 45 (2) (1992) 277-301<br />

111. A. de Kok, M Hiemstra, C.P. Vreeker, Improved Cleanup Method for the<br />

Multiresidue Analysis of N-Methylcarbamates in Grains, Fruits and Vegetables<br />

by Means of HPLC with Postcolumn Reaction and Fluorescence Detection<br />

Chromatogaphia 24 (1987) 469-476<br />

112. A. de Kok, M Hiemstra, C.P. Vreeker, Optimization of the Postcolumn<br />

Hydrolysis Reaction on Solid Phases for the Routine High-Performance Liquid<br />

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Products, J. of Chromat. 507 (1990) 459-472<br />

113. H.A. Moye, S.J. Scherer, P.A. St. John, Anal. Lett. 10 (1977) 1049-1058<br />

114. R.T. Krause, Liquid Chromatography Determination of N-Methylcarbamate<br />

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734-741<br />

115. C. Kolb, Bestimmung <strong>von</strong> Diiisopropylnaphthalin in <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong><br />

Verpackungen, CVUA Stuttgart 1997 (unveröffentlicht)<br />

116. C. Gentner, Bestimmung <strong>von</strong> PCP <strong>und</strong> Antioxidantien in <strong>Bedarfsgegenständen</strong><br />

nach <strong>Extraktion</strong> mit überkritischem CO2 (SFE), CVUA Stuttgart 1998,<br />

(unveröffentlicht)<br />

117. W. Baumann, Papierchemikalien, Springer Verlag, Berlin, 1994<br />

118. A. Sturaro, Food Contamination by Diisopropylnaphthalenes from Card Board<br />

Packages, Int. J. of Food Sci. and Techn. 29 (1994) 593-603<br />

119. R.D. Wauchope et al., The SCR/CES Pesticide Properties Database for<br />

Environmental Decision-Making, Reviews of Environmental Contamination and<br />

Toxicology, Volume 123, Springer Verlag<br />

120. D.S. Forsyth, D. Weber, K. Dalglish, Survey of Butyltin, Cyclohexyltin and<br />

Phenyltin Compo<strong>und</strong>s in Canadian Wines, J. of AOAC Int. 75, 1992, 964-973<br />

121. B.D. McGarvey, High-performance liquid chromatographic methods for the<br />

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Review, J. of Chromat. 642 (1993) 89-105<br />

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Fresenius J. Anal. Chem. 339, (1991) 151-157<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

174


<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />

123. H.-P. Thier, M. Frehse, Rückstandsanalytik <strong>von</strong> Pflanzenschutzmitteln, Thieme<br />

Verlag, 1986<br />

124. Auswertung des analytischen „Status quo“ bei der Überwachung <strong>von</strong><br />

Rückständen an Pflanzenschutzmitteln, BMG, Jan. 1999<br />

125. Ch. Coggins Jr., Department of Botany and Plant Sciences, University of<br />

California, Riverside, CA 92521-0124, USA, persönliche Mitteilung<br />

126. Schulungsunterlagen der Fa. HP, HP 1100 series LC/MSD<br />

127. Frau Hanns, BMG, persönliche Mitteilung<br />

128. H. Allmendinger, R. Brennecke, P. Ohs, Reduction of Sample Weights for<br />

Residues Analysis, Poster-Beitrag beim 9 th IUPAC International Congress,<br />

Pesticide Chemistry, Books of Abstracts, Volume II<br />

129. W. Frede (Hrsg.) Taschenbuch für Lebensmittelchemiker <strong>und</strong> -technologen,<br />

Band 3, Springer Verlag, 1993<br />

130. N. Aharonson, U. Kaffkaffi, Adsorption, Mobility and Persistance of<br />

Thiabendazole and Methyl-2-Benzimidazolecarbamate in Soils, J. Agr. Food<br />

Chem. 23 (1975 b) 720<br />

131. Dr. M. Garcia, Fa. Citrosol, 46721 Potries, Valencia, Spanien persönliche<br />

Mitteilung<br />

132. Ing. C. Namesny, Growpack LTDA. Juan J. Rousseau, 4159, 12000<br />

Montevideo, Uruguay, persönliche Mitteilung<br />

133. R. Wegler, Chemie der Pflanzenschutz- <strong>und</strong> Schädlingsbekämpfungsmittel,<br />

Band 1 Springer Verlag 1970<br />

134. G. Kopf, Modellreaktionen zum photochemischen Verhalten der insektiziden<br />

Carbamate Propoxur , Pirimicarb, Ethiofencarb auf Pflanzenoberflächen,<br />

Dissertation Universität Karlsruhe (TH), 1992<br />

135. L. Shen, J. Luten, H. Ropperecht, J. Bindels, H. Deelstra, Modification of an invitro<br />

method for estimating the bioavailability of zinc and calcium from foods, Z.<br />

Lebensm. Unters. -Forsch., 199 (1994) 442-445<br />

136. Wirkstoffe in Pflanzenschutz- <strong>und</strong> Schädlingsbekämpfungsmitten, Physikalischchemische<br />

<strong>und</strong> toxikologische Daten, IVA, Industrieverband Agrar e.V. 1990<br />

Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />

175

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