Extraktion von Lebensmitteln und Bedarfsgegenständen
Extraktion von Lebensmitteln und Bedarfsgegenständen
Extraktion von Lebensmitteln und Bedarfsgegenständen
Sie wollen auch ein ePaper? Erhöhen Sie die Reichweite Ihrer Titel.
YUMPU macht aus Druck-PDFs automatisch weboptimierte ePaper, die Google liebt.
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong><br />
mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem Kohlendioxid<br />
zur Bestimmung <strong>von</strong> Pflanzenbehandlungsmitteln<br />
<strong>und</strong> anderen Bestandteilen<br />
Abschlußbericht<br />
M. Anastassiades<br />
15. Nov. 1995 bis 15. Aug. 1998<br />
Chemisches- <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Inhaltsverzeichnis<br />
0. ZUSAMMENFASSUNG 6<br />
1. EINLEITUNG 9<br />
1.1 ZIELSETZUNG 9<br />
1.2 APPARATIVE VORAUSSETZUNGEN 9<br />
1.3 SFE ALS ALTERNATIVE ZU HERKÖMMLICHEN EXTRAKTIONSVERFAHREN 9<br />
2. DAS EXTRAKTIONSVERFAHREN 11<br />
2.1 EINFÜHRUNG IN DIE SFE 11<br />
2.2 PHYSIKALISCHE GRUNDLAGEN DES VERFAHRENS 13<br />
2.3 MÖGLICHKEITEN ZUR OPTIMIERUNG VON SFE-EXTRAKTIONEN 14<br />
2.3.1 DIE ROLLE DER TEMPERATUR 15<br />
2.3.2 DIE ROLLE DES DRUCKES 15<br />
2.3.3 DIE ROLLE DER MATRIX 15<br />
2.3.4 DIE ROLLE VON MODIFIERN 16<br />
2.4 AUFBAU EINES SFE-EXTRAKTORS 16<br />
2.5 ABLAUF EINER EXTRAKTION 17<br />
2.6 ENTWICKLUNG EINER SFE-METHODE 18<br />
2.6.1 PROBENVORBEREITUNG 18<br />
2.6.2 GERÄTEEINSTELLUNGEN - OPTIMIERUNG DER EXTRAKTIONSBEDINGUNGEN 19<br />
3. APPLIKATIONEN 20<br />
3.1 ANALYTIK VON PFLANZENSCHUTZMITTELRÜCKSTÄNDEN IN OBST UND GEMÜSE 20<br />
3.1.1 EINLEITUNG 20<br />
3.1.2 OPTIMIERUNG DER MEßBEDINGUNGEN 22<br />
3.1.2.1 Wahl des Einspritz- <strong>und</strong> Detektionsystems 22<br />
3.1.2.2 Einflüsse des Injektionssystems <strong>und</strong> „Matrixeinflüsse“ 24<br />
3.1.2.3 Berücksichtigung der „Matrixeinflüsse“ bei der Bestimmung 29<br />
3.1.3 OPTIMIERUNG DER PROBENVORBEREITUNG 32<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
2
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.3.1 Zerkleinerung (Erzeugung repräsentativer Teilproben) 32<br />
3.1.3.2 Entfernung bzw. Immobilisierung <strong>von</strong> Wasser 35<br />
3.1.3.2.1 Wasserentfernung durch Gefriertrocknung 35<br />
3.1.3.2.2 Wasserbindung durch Adsorbentien 35<br />
3.1.4 SFE-MULTIMETHODEN FÜR PESTIZIDE IN OBST UND GEMÜSE 36<br />
3.1.4.1 Optimierung der <strong>Extraktion</strong>sbedingungen 36<br />
3.1.4.2 Durchführung der Multimethode 39<br />
3.1.4.3 Wiederfindungsversuche 41<br />
3.1.4.3.1 Vorgehensweise bei Dotierungen 41<br />
3.1.4.3.2 Wiederfindungen mit HP 7680T 41<br />
3.1.4.3.3 Wiederfindungen mit ISCO SFX 3560 46<br />
3.1.4.4 Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen 47<br />
3.1.4.5 Methodenvergleich 48<br />
3.1.4.6 Matrixbezogene Multimethoden 51<br />
3.1.4.6.1 Pestizide in Zitrusfrüchten 51<br />
3.1.4.6.2 Pestizide in Kernobst 54<br />
3.1.4.6.3 Pestizide in Beerenobst 55<br />
3.1.4.6.4 Pestizide in Tafeltrauben 56<br />
3.1.4.7 Einflüsse verschiedener Parameter auf die <strong>Extraktion</strong>sausbeuten 59<br />
3.1.4.7.1 Einfluß der Zerkleinerung auf die Probenhomogenität 59<br />
3.1.4.7.2 Einfluß der Polarität der Analyten auf die Extrahierbarkeit 59<br />
3.1.4.7.3 Einfluß des Wassergehaltes auf die Extrahierbarkeit unpolarer Analyten 60<br />
3.1.4.7.4 Abbau <strong>von</strong> Pestiziden während der Lagerung im Autosampler 62<br />
3.1.5 ENTWICKLUNG VON SCHNELLEN BESTIMMUNGSMETHODEN FÜR SPEZIELLE<br />
PESTIZIDKLASSEN MIT ANALYTISCHEN DEFIZITEN 64<br />
3.1.5.1. Einleitung 64<br />
3.1.5.2 Naßchemische Untersuchungen im Vorfeld 65<br />
3.1.5.2.1 Rolle des pH-Wertes bei <strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong> Flüssig-Flüssig-Verteilung 65<br />
3.1.5.2.2 Wechselwirkungen <strong>von</strong> Wirkstoffen mit Oberflächen 65<br />
3.1.5.3 Pestizide mit basischen Eigenschaften 70<br />
3.1.5.3.1 Einfluß des pH-Wertes auf die Extrahierbarkeit (vgl. Kap. 3.1.4.7.2) 70<br />
3.1.5.3.2 Carbendazim, Benomyl <strong>und</strong> Thiophanat-Methyl 73<br />
3.1.5.3.2.1 Umwandlung <strong>von</strong> Benomyl zu Carbendazim 74<br />
3.1.5.3.2.2 Thiophanat-Methyl 76<br />
3.1.5.3.2.3 Derivatisierung <strong>von</strong> Carbendazim mit PFB-Br im GC-Vial 81<br />
3.1.5.3.2.4 Bestimmung mittels GC-MSD 81<br />
3.1.5.3.2.5 Validierung 82<br />
3.1.5.3.2.6 <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> „gewachsenen“ Carbendazim-Rückständen aus<br />
Keltertrauben 83<br />
3.1.5.3.2.7: SFE- <strong>und</strong> DFG-Methode zur Bestimmung der Carbendazim-Gruppe im<br />
Kostenvergleich 84<br />
3.1.5.4 Saure Pestizide 86<br />
3.1.5.4.1 Einführung 86<br />
3.1.5.4.2 2,4-D-Rückstände in Zitrusfrüchten 86<br />
3.1.5.4.3 <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> freiem 2,4-D 87<br />
3.1.5.4.4 Freisetzung <strong>von</strong> geb<strong>und</strong>enen 2,4-D-Rückständen 87<br />
3.1.5.4.5 Derivatisierungsmöglichkeiten <strong>von</strong> Phenoxyalkancarbonsäuren 89<br />
3.1.5.4.6 Bestimmung mittels GC-MSD 92<br />
3.1.5.4.7 Validierung 93<br />
3.1.5.4.8 Behandlung <strong>von</strong> Zitronen mit 2,4-D <strong>und</strong> Lagerungsversuch 94<br />
3.1.5.4.9 Freisetzung <strong>von</strong> geb<strong>und</strong>enem 2,4-D aus Zitrusfrüchten bei simulierter<br />
Verdauung <strong>und</strong> simulierter Verarbeitung 97<br />
3.1.5.5 N-Methyl-Carbamate 100<br />
3.1.5.5.1 Einführung 100<br />
3.1.5.5.1.1 Analytik 103<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
3
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.5.5.2 Bestimmung <strong>von</strong> N-Methyl-Carbamaten nach <strong>Extraktion</strong> mittels SFE 103<br />
3.1.5.5.2.1 Übersicht 103<br />
3.1.5.5.2.2 <strong>Extraktion</strong> mit SFE 105<br />
3.1.5.5.2.3 Direkte Bestimmung mittels GC-MSD (KAS3-Gerstel) 105<br />
3.1.5.5.2.4 Bestimmung mittels GC-MSD nach Derivatisierung 106<br />
3.1.5.5.2.5 Bestimmung mittels LC-MSD 108<br />
3.1.5.5.2.6 Wiederfindungen 113<br />
3.1.5.5.2.7 Abbau in der <strong>Extraktion</strong>shülse 114<br />
3.1.5.6 Organozinn-Pestizide 117<br />
3.1.5.6.1 Einleitung 117<br />
3.1.5.6.2 <strong>Extraktion</strong> mit SFE 119<br />
3.1.5.6.3 Optimierung der Derivatisierung mit Grignard-Reagenz 119<br />
3.1.5.6.4 Bestimmung mittels GC-MSD 124<br />
3.1.5.6.5 Bestimmung mittels LC-MSD (API-Elektrospray) 127<br />
3.1.5.6.6 Wiederfindungsversuche 129<br />
3.1.6 BEISPIELE AUS DER PRAXIS DER LEBENSMITTELÜBERWACHUNG 131<br />
3.1.6.1 Bestimmung <strong>von</strong> Pyrimethanil <strong>und</strong> Diethofencarb in Keltertrauben 131<br />
3.1.6.2 Untersuchung <strong>von</strong> Carbendazim in Obst <strong>und</strong> Gemüse 133<br />
3.1.6.3 Untersuchung <strong>von</strong> 2,4-D in Zitrusfrüchten 136<br />
3.1.7 UNTERSUCHUNG VON RINGVERSUCHSPROBEN 137<br />
3.1.7.1 European Commission´s Proficiency Tests on Pesticide Residues in Fruit and<br />
Vegetables 1996/1997 137<br />
3.1.7.1.1 Proficiency Test I 137<br />
3.1.7.1.2 Proficiency Test II 139<br />
3.2 EINSATZ DER SFE IN DER ANALYTIK VON BEDARFSGEGENSTÄNDEN 141<br />
3.2.1 EINLEITUNG 141<br />
3.2.2 DI-ISOPROPYL-NAPHTHALIN IN PAPIER 142<br />
3.2.2.1 Einführung 142<br />
3.2.2.2 Bestimmungsverfahren 142<br />
3.2.2.2.1 naßchemisches Verfahren 142<br />
3.2.2.2.2 <strong>Extraktion</strong> mittels SFE 142<br />
3.2.2.2.3 Bestimmung mittels GC/MSD 143<br />
3.2.2.3 <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Proben aus dem Handel 146<br />
3.2.3 PCP (PENTACHLORPHENOL) AUS HOLZ UND TEXTILIEN 149<br />
3.2.3.1 Einführung 149<br />
3.2.3.2 Bestimmung <strong>von</strong> PCP 149<br />
3.2.3.2.1 naßchemisches Verfahren 149<br />
3.2.3.2.2 SFE-Methode 149<br />
3.2.3.2.2.1 Probenaufarbeitung 149<br />
3.2.3.2.2.2 <strong>Extraktion</strong> mit ISCO SFX 3560 150<br />
3.2.3.2.2.3 Derivatisierung mit PFB-Br 150<br />
3.2.3.2.3 Wiederfindungen <strong>und</strong> Untersuchung PCP-haltiger Seide 151<br />
3.2.3.2.4 Optimierung der <strong>Extraktion</strong> 151<br />
3.2.3.3 Untersuchung <strong>von</strong> Planproben 153<br />
3.2.3.4 Fazit 153<br />
3.2.4 EXTRAKTION VON ANTIOXIDANTIEN AUS KUNSTSTOFF 154<br />
3.2.4.1 Einführung 154<br />
3.2.4.2 Bestimmung <strong>von</strong> Antioxidantien 154<br />
3.2.4.2.1 naßchemisches Verfahren 154<br />
3.2.4.2.2 SFE-Methode 154<br />
3.2.4.2.2.1 Probeneinbringung in die SFE-Hülse 154<br />
3.2.4.2.2.2 <strong>Extraktion</strong> mit ISCO SFX 3560 155<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
4
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.2.4.2.3 Untersuchung <strong>von</strong> Proben mit bekannter Rezeptur 155<br />
3.2.4.2.3.1 untersuchte Antioxidantien 155<br />
3.2.4.2.3.2 Probenmaterial 156<br />
3.2.4.2.3.3 Untersuchungsergebnisse 156<br />
3.2.4.2.3.4 Variation der SFE-Parameter 157<br />
3.2.4.2.4 Fazit 157<br />
4. SCHLUßFOLGERUNGEN 159<br />
4.1 BEWERTUNG DER SFE ALS EXTRAKTIONSVERFAHREN 159<br />
4.2 BEWERTUNG DER VERWENDETEN EXTRAKTIONSGERÄTE 160<br />
4.3 ALLGEMEINE ANALYTISCHE ERKENNTNISSE 161<br />
4.4 AUSBLICK 161<br />
5. ABKÜRZUNGEN 163<br />
6. LITERATUR 166<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
5
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Problemstellung<br />
0. ZUSAMMENFASSUNG<br />
Die amtliche Lebensmittelüberwachung steht ständig vor neuen analytischen Herausforderungen<br />
(neue Wirkstoffe <strong>und</strong> Kontaminanten, Monitoring-Programme). Deshalb<br />
besteht bei den Untersuchungseinrichtungen zunehmend Bedarf an schnellen,<br />
kostengünstigen <strong>und</strong> automatisierten Analysenverfahren. Aus wirtschaftlichen, ges<strong>und</strong>heitlichen<br />
<strong>und</strong> ökologischen Gründen sind die Laboratorien zudem bemüht, den<br />
Lösungsmittelverbrauch soweit wie möglich zu senken.<br />
Ziel<br />
Die Möglichkeiten <strong>und</strong> Grenzen der SFE (Supercritical Fluid Extraction) als <strong>Extraktion</strong>sverfahren<br />
im Bereich der Lebensmittelanalytik sollten untersucht werden. Dieses<br />
Verfahren, bei dem das zu untersuchende Probenmaterial, statt wie herkömmlich mit<br />
organischen Lösungsmitteln, mit überkritischem Kohlendioxid extrahiert wird, ist erst<br />
seit wenigen Jahren durch die Entwicklung entsprechender automatisierter Geräte in<br />
Laboratorien einsetzbar. Für bestimmte analytische Fragestellungen wie z.B. Pestizidrückstände<br />
in Obst <strong>und</strong> Gemüse <strong>und</strong> Additive <strong>und</strong> Verunreinigungen in <strong>Bedarfsgegenständen</strong><br />
sollten Methoden entwickelt werden, die im Vergleich zu den<br />
herkömmlichen schneller sind, einen geringeren Lösungsmittelverbrauch haben,<br />
weniger manuelle Arbeitsschritte benötigen <strong>und</strong> dadurch wirtschaftlicher sind.<br />
Vorgehensweise<br />
Zunächst wurden Versuche zur Optimierung der Probenvorbereitung durchgeführt. Da<br />
bei der SFE nur geringe Probenmengen eingesetzt werden können, ist eine gründliche<br />
aber dennoch schonende Feinzerkleinerung des Probenmaterials erforderlich. Um eine<br />
möglichst effiziente aber dennoch selektive <strong>Extraktion</strong> zu erreichen, wurden die SFE-<br />
Geräteparameter wie <strong>Extraktion</strong>szeit, -druck, -temperatur <strong>und</strong> -flußrate variiert. Um auf<br />
eine aufwendige Reinigung der Extrakte verzichten zu können, wurden selektive<br />
Meßverfahren eingesetzt <strong>und</strong> optimiert. Für bestimmte Substanzen wurden<br />
Derivatisierungsmethoden entwickelt, <strong>und</strong> so eine empfindlichere <strong>und</strong> selektivere<br />
Messung erzielt. Die entwickelten SFE-Methoden wurden validiert <strong>und</strong> die erzielten<br />
Ergebnisse mit denen herkömmlicher Methoden verglichen.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
6
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Ergebnis<br />
1. Bei <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Obst <strong>und</strong> Gemüse mittels SFE ist auf den Wassergehalt der<br />
eingesetzten Proben zu achten, da Wasser sowohl den <strong>Extraktion</strong>sprozeß positiv wie<br />
negativ beeinflussen als auch ggf. das Gerät beschädigen kann. Durch Vermengung<br />
der Proben mit speziellen Adsorbentien (z.B. auf Silikatbasis) konnte der<br />
Feuchtigkeitsgrad eingestellt werden.<br />
2. Es wurden Wiederfindungsversuche für mehr als 120 verschiedene Pestizide<br />
durchgeführt. Für fast alle der untersuchten Stoffe wurden Wiederfindungen<br />
zwischen 70 <strong>und</strong> 110 %, in der Regel zwischen 80 <strong>und</strong> 95 % erreicht. Für einige<br />
ausgewählte Verbindungen wurden die Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen nach<br />
dem DFG Eichgeradenverfahren ermittelt. Bei Mehrfachbestimmungen <strong>von</strong> Proben<br />
aus dem Handel wurde eine gute Wiederholbarkeit (Variationskoeffizienten meist<br />
zwischen 2 <strong>und</strong> 6 %) festgestellt. Die mit Hilfe der entwickelten SFE-Methoden<br />
erzielten Untersuchungsergebnisse <strong>von</strong> Proben aus dem Handel stimmen mit den<br />
Ergebnissen herkömmlichen Verfahren gut überein. Die gewonnenen Ergebnisse<br />
zeigen, daß die SFE zur Routineanalytik <strong>von</strong> Pestizidrückständen in Obst <strong>und</strong><br />
Gemüse hervorragend eingesetzt werden kann, dies hat sich auch bei einer<br />
Laborvergleichsuntersuchung gezeigt (EU Proficiency Test I <strong>und</strong> II 1996,1997).<br />
3. Neben den Einstellungen des <strong>Extraktion</strong>sgerätes wurde auch der Einfluß weiterer<br />
analytischer Parameter auf die Extrahierbarkeit verschiedener Analyten am Beispiel<br />
ausgesuchter Pestizide untersucht.<br />
3.1 Polarität der Analyten: Da überkritisches Kohlendioxid ein recht unpolares<br />
Lösungsmittel ist, ist es gut zur <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> unpolaren bis mittelpolaren<br />
Pestiziden geeignet. Polarere Pestizide werden dagegen nur unvollständig<br />
extrahiert.<br />
3.2 pH-Wert: Bei Verbindungen mit sauren oder basischen Eigenschaften kann die<br />
Extrahierbarkeit bedeutend verbessert werden, wenn der pH-Wert der zu<br />
extrahierenden Proben entsprechend alkalisch oder sauer eingestellt wird (Bsp.<br />
Carbendazim <strong>und</strong> 2,4-D).<br />
3.3 Feuchtigkeitsgehalt: Bei unpolaren Pestiziden spielt der Feuchtigkeitsgehalt der<br />
Probe eine wichtige Rolle. Mit zunehmendem Wasseranteil werden für diese<br />
Substanzen schlechtere Wiederfindungen erzielt. Durch Zugabe <strong>von</strong> größeren<br />
Mengen Adsorbens können solche Substanzen wesentlich besser extrahiert werden<br />
(Bsp. Pyrethroide, chlororganische Pestizide).<br />
3.4 Abbau: Es wurde festgestellt, daß einige Pestizide einen signifikanten Abbau<br />
zeigen, wenn die <strong>Extraktion</strong>shülsen bei Raumtemperatur gelagert werden. Um<br />
diesen Abbau zu minimieren, sollten Proben, die solche empfindlichen Stoffe enthalten,<br />
bis zur <strong>Extraktion</strong> im Gefrierschrank aufbewahrt <strong>und</strong> erst kurz vor der<br />
<strong>Extraktion</strong> in den Probengeber eingestellt werden.<br />
4. Umfassende Untersuchungen wurden auch im Bereich der Messung durchgeführt.<br />
Für viele Substanzen ist eine Kalibrierung nach dem Standardadditionsverfahren<br />
notwendig, da anderenfalls infolge der Matrixeinflüsse falsche Ergebnisse erzielt<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
7
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
werden. Für einige Verbindungen, deren gaschromatographische Bestimmung<br />
Schwierigkeiten bereitet, wurden einfach durchzuführende Derivatisierungsmethoden<br />
entwickelt, die direkt nach der SFE-<strong>Extraktion</strong> in den Vorlagegefäßen durchgeführt<br />
werden können (Bsp. N-Methyl-Carbamate, Carbendazim, Thiabendazol, Organo-<br />
Zinn-Verbindungen).<br />
5. Im Bereich der Bedarfsgegenstände wurden Methoden zur <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong><br />
Pentachlorphenol aus Holz- <strong>und</strong> Stoffproben sowie <strong>von</strong> Di-Isopropyl-Naphthalin aus<br />
Recycling-Papier entwickelt. Desweiteren wurden Additive mit antioxidativer Wirkung<br />
aus Kunststoffen extrahiert, <strong>und</strong> dabei mit herkömmlichen Methoden vergleichbare<br />
Ergebnisse erzielt.<br />
Konsequenz für die Praxis<br />
Die erarbeiteten Methoden wurden noch während der Forschungsarbeiten in der Praxis<br />
der amtlichen Lebensmittelüberwachung erprobt <strong>und</strong> eingesetzt. Verschiedene<br />
Pestizide, die bisher routinemäßig nicht erfaßt wurden, konnten somit als Rückstände in<br />
<strong>Lebensmitteln</strong> festgestellt werden. Mit SFE-Methoden wurde 1996 <strong>und</strong> 97 erstmalig in<br />
größerem Umfang auf Rückstände der Carbendazim-Gruppe in Obst <strong>und</strong> Gemüse <strong>und</strong><br />
auf Rückstände an 2,4-D in Zitrusfrüchten untersucht. Damit wurde ein wichtiger Beitrag<br />
zur Beschreibung der Rückstandssituation dieser Stoffe geleistet.<br />
Die erarbeiteten Multimethoden erfordern einen geringen Arbeitsaufwand <strong>und</strong><br />
ermöglichen einen hohen Probendurchsatz. Daher bietet sich die Möglichkeit die SFE<br />
für routinemäßige Pestizidrückstandsuntersuchungen z.B. für Monitoringprogramme<br />
einzusetzen.<br />
Den durchgeführten Untersuchungen zufolge kann die SFE auch im Bereich der<br />
Bedarfsgegenständeanalytik sehr erfolgreich eingesetzt werden, wie am Beispiel <strong>von</strong><br />
PCP in Holz <strong>und</strong> Di-Isopropyl-Naphthalin in Papier gezeigt wurde.<br />
Bisherige Veröffentlichungen:<br />
• Bestimmung <strong>von</strong> Carbendazim, Benomyl, Thiophanat-Methyl <strong>und</strong> 2,4-D in pflanzlichen<br />
Proben nach <strong>Extraktion</strong> mit überkritischem Kohlendioxid<br />
Lebensmittelchemie 52 (1998) 13 <strong>und</strong> Lebensmittelchemie 52 (1998) 74<br />
• Analysis of Carbendazim/Benomyl, Thiophanate Methyl and 2,4-D in Fruits and<br />
Vegetables after Supercritical Fluid Extraction<br />
Journal of Chromatography A 825 (1998) 45-54<br />
• Analysis of Several N-Methyl-O-Aryl-Carbamates in Fruits and Vegetables after<br />
Supercritical Fluid Extraction (SFE)<br />
9th IUPAC International Congress - Pesticide Chemistry, Books of Abstracts, Volume<br />
II<br />
• Analysis of Pesticide Residues in Fruits and Vegetables by SFE and GC-MSD / LC-<br />
MSD<br />
Tagungsband Int. SFE/SFC/XSE-Forum, Siegen 1998<br />
Schlagworte: SFE, Rückstandsanalytik, Lebensmittel, Bedarfsgegenstände<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
8
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
1.1 ZIELSETZUNG<br />
1. EINLEITUNG<br />
Erste Versuche mit der SFE an der CLUA Stuttgart Anfang 1995 [4], sowie einzelne<br />
Veröffentlichungen [1,2] ließen die vielfältigen Möglichkeiten, die die SFE im Bereich<br />
der Lebensmittelanalytik <strong>und</strong> insbesondere der Rückstandsanalytik bietet, vermuten.<br />
Um diese potentiellen Möglichkeiten zu konkretisieren, wurde im Frühsommer 1995 ein<br />
Antrag auf Forschungsmittel mit dem Titel:<br />
„<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem<br />
Kohlendioxid zur Bestimmung <strong>von</strong> Pflanzenbehandlungsmitteln <strong>und</strong><br />
anderen Bestandteilen“<br />
gestellt.<br />
Im Juli 1995 wurde der Antrag genehmigt:<br />
Die Chemische Landesuntersuchungsanstalt Stuttgart wird gebeten, ein<br />
Forschungsprojekt zur Überprüfung der Anwendbarkeit der „<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong><br />
<strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem Kohlendioxid<br />
zur Bestimmung <strong>von</strong> Pflanzenbehandlungsmitteln <strong>und</strong> anderen Bestandteilen“<br />
durchzuführen. Im Rahmen dieses Projekts soll in einer wissenschaftlichen Arbeit<br />
untersucht werden, inwieweit die <strong>Extraktion</strong> mit überkritischem Kohlendioxid in der<br />
Praxis der Untersuchungen im Rahmen der Lebensmittelüberwachung eingesetzt<br />
werden kann, um<br />
• umweltbelastende Lösungmittel zu vermeiden,<br />
• durch Automatisierung Einsparungen zur erzielen,<br />
• Stoffe aus <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> zu extrahieren.<br />
1.2 APPARATIVE VORAUSSETZUNGEN<br />
Für die Durchführung der SFE-<strong>Extraktion</strong>en stand ein automatisiertes Gerät der Fa.<br />
HP (7680T) zur Verfügung. Im Verlauf des Projektes stellte die Fa. ISCO einen<br />
weiteren Extraktor zur Verfügung. Zur Bestimmung standen Gaschromatographen<br />
mit verschiedenen Detektortypen sowie ein HPLC-DAD zur Verfügung. Gegen Ende<br />
des Projektes war es möglich einige Messungen mit einem LC-MSD bei der Fa. HP<br />
durchzuführen.<br />
1.3 SFE ALS ALTERNATIVE ZU HERKÖMMLICHEN EXTRAKTIONSVERFAHREN<br />
Seit einigen Jahren werden <strong>von</strong> verschiedenen Herstellern Geräte angeboten, die eine<br />
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Proben mit überkritischem Kohlendioxid im analytischen Maßstab<br />
ermöglichen. Die günstigen physikalischen <strong>und</strong> physikalisch-chemischen Eigenschaften<br />
des überkritischen Kohlendioxids machen es möglich, <strong>Extraktion</strong>en schnell <strong>und</strong> selektiv<br />
durchzuführen. Die SFE (Supercritical Fluid Extraction) entwickelt sich damit zu einer<br />
attraktiven Alternative zu herkömmlichen <strong>Extraktion</strong>smethoden.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
9
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Herkömmliche Lösungsmittel-<strong>Extraktion</strong>en liefern in der Regel stark mit Matrixbestandteilen<br />
verunreinigte Extrakte. Daher ist oft, vor der Bestimmung an einem<br />
chromatographischen System, eine aufwendige Reinigung der Extrakte erforderlich.<br />
Dies ist stets mit einem hohen Arbeits-, Zeit- <strong>und</strong> Kostenaufwand verb<strong>und</strong>en. Im<br />
Gegensatz dazu liefert die SFE Extrakte, die in der Regel ohne weiteres für<br />
chromatographische Bestimmungen eingesetzt werden können. Im Vergleich zu den<br />
herkömmlichen Methoden liegen die Vorteile der SFE vor allem im hohen Probendurchsatz,<br />
sowie bei der Einsparung <strong>von</strong> Lösungsmitteln <strong>und</strong> Personalkosten. Die<br />
Probenaufarbeitung ist weitgehend automatisiert <strong>und</strong> erfordert, im Gegensatz zu den<br />
herkömmlichen Aufarbeitungsmethoden, nur wenig manuelle Arbeitsschritte. Dies<br />
erleichtert die Dokumentation des Analysengangs <strong>und</strong> dürfte zudem zu einer Verbesserung<br />
der Vergleichbarkeit zwischen Laboratorien führen. Der extrem geringe<br />
Lösungsmittelbedarf macht die SFE auch unter dem Aspekt des Umweltschutzes<br />
interessant.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
10
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
2.1 EINFÜHRUNG IN DIE SFE<br />
2. DAS EXTRAKTIONSVERFAHREN<br />
SFE (Supercritical Fluid <strong>Extraktion</strong>) ist eine <strong>Extraktion</strong>sverfahren, bei dem die zu<br />
untersuchenden Proben unter Einsatz eines überkritischen Fluids (meist Kohlendioxid,<br />
CO2) als <strong>Extraktion</strong>smittel extrahiert werden.<br />
Als überkritische Fluide werden Substanzen im überkritischen Zustand bezeichnet.<br />
Dieser Zustand kann erreicht werden, wenn beide kritische Daten (kritische Temperatur<br />
<strong>und</strong> kritischer Druck) gleichzeitig überschritten werden. Beim Kohlendioxid liegt<br />
beispielsweise die kritische Temperatur bei 31,1 °C <strong>und</strong> der kritische Druck bei 73,7<br />
bar.<br />
Überkritische Fluide sind weder Gase noch Flüssigkeiten. Ihre physikalischen <strong>und</strong><br />
physikalisch-chemischen Eigenschaften können sowohl mit denen <strong>von</strong> Gasen als auch<br />
mit denen <strong>von</strong> Flüssigkeiten verglichen werden. Aufgr<strong>und</strong> ihrer hohen Dichte besitzen<br />
überkritische Fluide ähnlich gute Solvenseigenschaften (Löseeigenschaften) wie<br />
Flüssigkeiten. Geringe Viskositäten <strong>und</strong> hohe Diffusionskraft verleihen überkritischen<br />
Fluiden für <strong>Extraktion</strong>en günstige gasähnliche Transporteigenschaften (Mobilität). Wie<br />
Gase haben überkritische Fluide ein gutes Kompressionsverhalten. Durch Änderungen<br />
des Druckes <strong>und</strong> der Temperatur kann die Dichte, <strong>und</strong> somit das damit verb<strong>und</strong>ene<br />
Lösungsvermögen, über weite Bereiche variiert werden.<br />
<strong>Extraktion</strong>en mit überkritischen Fluiden werden schon seit längerer Zeit großtechnisch<br />
betrieben. Einige Beispiele hierfür sind die Entkoffeinierung <strong>von</strong> Kaffee, die schonende<br />
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> ätherischen Ölen, die Reinigung <strong>von</strong> Medikament-Präparaten, die<br />
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Hopfen, die Entölung <strong>von</strong> Lecithin, die <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Erdölprodukten<br />
<strong>und</strong> anderes mehr [20]. Milde <strong>und</strong> selektive <strong>Extraktion</strong>sbedingungen führen zu reineren<br />
<strong>und</strong> qualitativ höherwertigen Extrakten als bei den herkömmlichen Verfahren. Dies<br />
macht die SFE auch für den Einsatz im analytischen Bereich interessant.<br />
Seit einigen Jahren bieten verschiedene Hersteller SFE-<strong>Extraktion</strong>sgeräte an, die für<br />
analytische Zwecke geeignet sind.<br />
Ähnlich wie bei <strong>Extraktion</strong>en mit Flüssigkeiten (Soxhlet) wird die Probe in eine Hülse<br />
gebracht <strong>und</strong> mit dem <strong>Extraktion</strong>smittel (hier das Fluid) extrahiert. Da im Unterschied zu<br />
den klassischen <strong>Extraktion</strong>en mit Flüssigkeiten unter relativ hohen Drucken gearbeitet<br />
wird, muß die zu extrahierende Probe in eine druckfeste Spezialhülse (mit einer HPLC-<br />
Säule vergleichbar) gebracht werden.<br />
Das mit Extrakten aus der Probe beladene Fluid wird an einer speziellen Vorrichtung<br />
(Restriktor) schlagartig auf Atmosphärendruck gebracht. Das Kohlendioxid wird<br />
gasförmig <strong>und</strong> entweicht <strong>und</strong> die Extrakte schlagen sich auf einer gekühlten Falle<br />
nieder. Mit einem flüssigen Lösungsmittel werden die Extrakte <strong>von</strong> der Falle in ein<br />
Vorlagegefäß eluiert. Bei einigen Geräten taucht der Restriktor direkt in eine Lösungs-<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
11
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
mittelvorlage ein. Die auf diese Weise erhaltene extrakthaltige Lösung kann meist direkt<br />
zur chromatographischen Bestimmung eingesetzt werden.<br />
Das analytische Laboratorium <strong>von</strong> heute steht unter ständigem Druck, seinen Probendurchsatz<br />
zu vergrößern, seine Betriebskosten zu senken <strong>und</strong> anfallende Abfälle zu<br />
reduzieren. Die Zuverlässigkeit, Exaktheit <strong>und</strong> Reproduzierbarkeit der analytischen<br />
Methoden muß dabei erhalten bleiben oder sogar verbessert werden.<br />
In der Vergangenheit wurde, sowohl seitens der Forschung als auch der Anwender in<br />
die Automatisierung <strong>und</strong> Verbesserung chromatographischer Trennmöglichkeiten,<br />
sowie in die Verbesserung der Empfindlichkeit <strong>und</strong> der Auswertungsmethoden <strong>von</strong><br />
Detektorsignalen viel investiert. Zur Optimierung <strong>und</strong> Automatisierung der Probenaufbereitung<br />
wurde bisher jedoch nur wenig geleistet.<br />
Ein Blick auf die heute angewendeten Methoden in der Rückstandsanalytik zeigt aber,<br />
daß der größte Arbeitsaufwand <strong>und</strong> der größte Materialverbrauch gerade in diesem<br />
Bereich (Probenaufbereitung) liegt. Klassische <strong>Extraktion</strong>smethoden zeichnen sich<br />
durch eine Vielzahl schwieriger manueller Arbeitsschritte aus (z.B. Zweiphasenextraktionen,<br />
Einengen <strong>von</strong> Lösungen mit Rotationsverdampfern, säulenchromatographische<br />
Reinigungen). Solche Arbeitsschritte bei der Probenaufarbeitung sind in der<br />
Regel sehr aufwendig <strong>und</strong> müssen, um den heutigen Anforderungen zu entsprechen,<br />
durch zuverlässigere automatisierbare Prozesse ersetzt werden.<br />
Die SFE entwickelt sich zu einer interessanten Alternative zu den klassischen<br />
<strong>Extraktion</strong>sverfahren, die mit organischen Lösungsmitteln arbeiten. Bei der SFE sind<br />
viele Arbeitsschritte automatisiert worden (<strong>Extraktion</strong>, z.T. auch Clean-up, Aufnahme<br />
der Extrakte in das für die chromatographischen Prozesse geeignete Lösungsmittel),<br />
wodurch sich erhebliche Raum-, Arbeitszeit- <strong>und</strong> Kostenersparnisse ergeben [5,6,15].<br />
Mit Hilfe der SFE kann auch der hohe Verbrauch an Lösungsmitteln, der derzeit bei der<br />
Rückstandsanalytik anfällt, reduziert werden. Zum einem wird die Exposition des<br />
Laborpersonals mit den oft ges<strong>und</strong>heitlich bedenklichen Lösungsmitteln vermieten, zum<br />
anderen werden die Probleme, die bei der umweltgerechten Lösungsmittel-Entsorgung<br />
bzw. der Rückgewinnung auftreten, minimiert. Dies macht die SFE auch unter dem<br />
Aspekt des Umweltschutzes attraktiv [12].<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
12
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
2.2 PHYSIKALISCHE GRUNDLAGEN DES VERFAHRENS<br />
Stoffe können in verschiedenen Aggregatszuständen vorliegen: gasförmig, flüssig, fest<br />
<strong>und</strong> überkritisch. Diese Zustände können durch Variation <strong>von</strong> Druck <strong>und</strong> Temperatur<br />
ineinander übergehen, siehe Abb. 2.2-1 [21].<br />
Abb. 2.2-1: Phasendiagramm <strong>von</strong> Kohlendioxid<br />
Druck [P]<br />
Pc=7,3 MPa<br />
1= Schmelzkurve<br />
2= Sublimationskurve<br />
3= Verdampfungskurve<br />
fest<br />
2<br />
1<br />
flüssig<br />
3<br />
gasförmig<br />
überkritisches<br />
Fluid<br />
kritischer<br />
Punkt<br />
Tc=31,1°C Temperatur [T]<br />
Entlang der Verdampfungskurve koexistieren der flüssige <strong>und</strong> der gasförmige Zustand.<br />
Bewegt man sich entlang dieser Kurve, beobachtet man für CO2 bei einem Druck <strong>von</strong><br />
73,7 bar (kritischer Druck) <strong>und</strong> einer Temperatur <strong>von</strong> 31,1°C (kritische Temperatur) das<br />
Verschwinden der Phasengrenze. Bei diesem Punkt erreichen die beiden Phasen<br />
„flüssig“ <strong>und</strong> „gasförmig“ die gleiche Dichte <strong>und</strong> vermischen sich zu einer einzigen<br />
Phase. Dieser Punkt, der im P/T-Diagramm das Ende der Verdampfungskurve darstellt,<br />
wird als kritischer Punkt bezeichnet. Der kritische Druck <strong>und</strong> die kritische Temperatur<br />
sind charakteristische Stoffkonstanten. Zur Erreichung des überkritischen Zustandes<br />
müssen beide Größen (sowohl die kritische Temperatur als auch der kritische Druck)<br />
überschritten werden. Eine Substanz im überkritischen Zustand ist weder flüssig noch<br />
gasförmig, sie wird im allgemeinen als überkritisches Fluid bezeichnet. Temperatur- <strong>und</strong><br />
Druck-Veränderungen überhalb der kritischen Daten führen lediglich zu Änderungen der<br />
Dichte, können also nicht wie bei Flüssigkeiten <strong>und</strong> Gasen zu Phasenumwandlungen<br />
führen.<br />
Überkritische Fluide zeigen interessante physikalische <strong>und</strong> physikalisch-chemische<br />
Eigenschaften (siehe Tab. 2.2-1). Die Dichte überkritischer Fluide ist größenordnungsmäßig<br />
vergleichbar mit der <strong>von</strong> flüssigen Lösungsmitteln. Sie zeichnen sich<br />
deshalb durch ein hohes Lösungsvermögen aus, das teils vergleichbar, teils größer ist<br />
als das <strong>von</strong> flüssigen Lösungsmitteln. Andererseits haben überkritische Fluide im<br />
Vergleich zu Flüssigkeiten viel höhere Diffusionskoeffizienten <strong>und</strong> niedrigere<br />
Viskositäten. Das Penetrationsvermögen <strong>und</strong> die Transporteigenschaften (Mobilität) <strong>von</strong><br />
überkritischen Fluiden sind somit in etwa vergleichbar mit denen <strong>von</strong> Gasen. Diese<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
13
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Eigenschaften machen überkritischen Fluide als <strong>Extraktion</strong>smittel außerordentlich<br />
interessant.<br />
Tab. 2.2-1: Gegenüberstellung der physikalischen Eigenschaften [21].<br />
Aggregatszustände Dichte Diffusionskoeffizient<br />
(g/ml)<br />
(cm 2 Viskosität<br />
/s)<br />
(Ns/m 2 )<br />
Gase 10 -4 - 10 -3 ca. 10 -1 ca. 10 -4<br />
überkritische Fluide 0,1 - 1 10 -3 - 10 -4 10 -3 - 10 -4<br />
Flüssigkeiten 0,6 - 1,4 ca. 10 -5 ca. 10 -2<br />
Bisher wurden bereits einige Fluide für die SFE erprobt: Kohlendioxid, Ammoniak,<br />
Stickstoffmonoxid, Pentan, Freone <strong>und</strong> andere mehr. Von diesen hat sich jedoch nur<br />
das überkritische Kohlendioxid für den Routineeinsatz im Laboratorium bewährt.<br />
Kohlendioxid bietet einige Vorteile: es ist leicht in den überkritischen Zustand überführbar<br />
(vgl. Tab. 2.2-2), zeigt ein recht gutes Lösungsvermögen <strong>und</strong> wird in einem<br />
hohen Reinheitsgrad zu einem relativ günstigen Preis angeboten. Es ist einfach zu<br />
handhaben, ungiftig <strong>und</strong> umweltfre<strong>und</strong>lich. Kohlendioxid ist außerdem im Gegensatz zu<br />
Wasser oder Ammoniak chemisch inert.<br />
Tab. 2.2-2: Kritische Daten verschiedener Stoffe [22]<br />
Fluid kritische Temperatur Tc (°C) kritischer Druck Pc (MPa)<br />
CHF3 25,9 4,83<br />
CClF3 28,8 3,92<br />
CO2 31,1 7,37<br />
N2O 36,4 7,24<br />
NH3 132,2 11,27<br />
n-Pentan 196,6 4,22<br />
CH3OH 239,4 8,09<br />
H2O 374,1 22,04<br />
2.3 MÖGLICHKEITEN ZUR OPTIMIERUNG VON SFE-EXTRAKTIONEN<br />
Das Lösungsvermögen ist <strong>von</strong> der Dichte des Fluids abhängig. Diese kann durch<br />
Variation des Druckes <strong>und</strong> der Temperatur eingestellt werden. Bei höheren Dichten<br />
werden die <strong>Extraktion</strong>seigenschaften verbessert.<br />
Je dichter ein überkritisches Fluid ist, desto effektiver kann es die elektrostatischen<br />
Wechselwirkungen zwischen Ionen abschirmen <strong>und</strong> abschwächen. Dies erklärt die<br />
bessere Löslichkeit <strong>von</strong> polaren Substanzen bei hohen Dichten.<br />
Da überkritisches Kohlendioxid relativ unpolare Eigenschaften besitzt (je nach Dichte in<br />
der Größenordnung <strong>von</strong> Hexan bis Dichlormethan) kann es gut unpolare bis<br />
mittelpolare Substanzen lösen. Große polare Moleküle wie Zucker oder Proteine lösen<br />
sich kaum <strong>und</strong> sind daher nicht extrahierbar.<br />
Eine zentrale Rolle bei SFE spielen die Einflüsse der Matrix. Das <strong>Extraktion</strong>smedium<br />
muß die zu extrahierenden Substanzen nicht nur lösen können, es muß auch die<br />
Wechselwirkungen zwischen den aktiven Stellen der Matrix <strong>und</strong> den Analyten<br />
überwinden können.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
14
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Im folgenden werden die Einflüsse einiger wichtiger Parameter auf die <strong>Extraktion</strong> näher<br />
erläutert.<br />
2.3.1 Die Rolle der Temperatur<br />
Die <strong>Extraktion</strong>skinetik wird im wesentlichen durch Diffusions- <strong>und</strong> Desorptionsprozesse<br />
limitiert. Bei höheren Temperaturen ist die <strong>Extraktion</strong>skinetik stark verbessert. Moleküle<br />
besitzen eine höhere kinetische Energie (Mobilität) <strong>und</strong> intermolekulare<br />
Wechselwirkungen können besser überw<strong>und</strong>en werden, dadurch werden Diffusions-<br />
<strong>und</strong> Desorptionsprozesse erleichtert <strong>und</strong> die <strong>Extraktion</strong>szeiten verkürzt. Allerdings<br />
werden, um die Dichte hoch zu halten <strong>und</strong> damit die Lösefähigkeit aufrecht zu erhalten,<br />
höhere Drücke benötigt. Die einsetzbare Temperatur ist somit vom maximal einsetzbaren<br />
Druck des Fluidextraktors abhängig. Meist sind aber die thermische Stabilität der<br />
zu extrahierenden Substanzen oder die Menge der mitextrahierbaren Begleitstoffe die<br />
Faktoren, die die <strong>Extraktion</strong>stemperatur limitieren.<br />
2.3.2 Die Rolle des Druckes<br />
Bei gleichbleibender Temperatur führt eine Erhöhung des Druckes zu einer Dichteerhöhung<br />
<strong>und</strong> somit auch zu einer Verbesserung der Lösungseigenschaften des Fluids.<br />
Bei höheren Dichten verliert das überkritische Kohlendioxid allerdings an Diffusionskraft<br />
<strong>und</strong> wird viskoser, wodurch die <strong>Extraktion</strong>skinetik verschlechtert wird.<br />
Es wird ersichtlich, daß hier viele gegenläufige Faktoren eine Rolle spielen. Diese<br />
müssen für das jeweilige Problem richtig abgewogen werden, um optimale Ergebnisse<br />
zu erzielen.<br />
2.3.3 Die Rolle der Matrix<br />
Eine zentrale Rolle bei <strong>Extraktion</strong>en mit überkritischem Kohlendioxid spielt die Matrix.<br />
Wechselwirkungen zwischen dem Analyten <strong>und</strong> der Matrix erschweren die <strong>Extraktion</strong><br />
<strong>und</strong> erfordern schärfere <strong>Extraktion</strong>sbedingungen. Die Teilchengröße <strong>und</strong> Oberflächenbeschaffenheit<br />
der zu extrahierenden Partikel spielt auch eine Rolle. In den Partikeln<br />
eingeschlossene, <strong>und</strong> dadurch schwer zugängliche Analyten erfordern höhere<br />
<strong>Extraktion</strong>szeiten <strong>und</strong> eine starke Diffusionskraft des Fluids.<br />
Ein zu hoher Gehalt an mobilem Wasser in der Matrix bringt Schwierigkeiten (auch<br />
gerätetechnischer Art, siehe Kap. 3.1.3.2.) mit sich. Das Wasser kann jedoch durch den<br />
Einsatz <strong>von</strong> Adsorbentien mit großer Oberfläche wie z.B. Diatomeenerden physikalisch<br />
geb<strong>und</strong>en werden, wodurch sich gleichzeitig die zur <strong>Extraktion</strong> bestimmten Stoffe leicht<br />
zugänglich über eine große Oberfläche verteilen.<br />
Die Wechselwirkungen zwischen dem Analyten <strong>und</strong> der Matrix können durch den<br />
Einsatz geringer Mengen an Lösungsmitteln (sog. Modifiern) geschwächt werden.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
15
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
2.3.4 Die Rolle <strong>von</strong> Modifiern<br />
Modifier sind in der Regel organische Lösungsmittel (z.B. Methanol, Acetonitril, Aceton),<br />
die entweder direkt der Matrix oder auch in einer Mischkammer dem überkritischen<br />
Fluid zugemischt werden.<br />
Durch Modifier kann die Lösungskraft des Fluids beeinflußt werden, z.B. hat ein mit<br />
Methanol modifiziertes CO2-Fluid eine größere Polarität als reines CO2-Fluid. Polarere<br />
Substanzen werden dadurch besser solvatisiert [8].<br />
Die Wirkung <strong>von</strong> Modifiern beschränkt sich nicht nur auf die Verbesserung der<br />
Löslichkeit <strong>von</strong> Verbindungen, sondern auch auf die Überwindung <strong>von</strong> Wechselwirkungen<br />
zwischen Matrix <strong>und</strong> Analyten. Dies ist insbesondere im Bereich der<br />
Spurenanalytik interessant, da hier die Löslichkeit meist nicht der begrenzende Faktor<br />
ist. Modifier wie Methanol <strong>und</strong> Wasser können aktive polare Zentren der Matrix, die mit<br />
polaren Molekülen wechselwirken können, maskieren, wodurch die <strong>Extraktion</strong> dieser<br />
Stoffe erleichtert wird.<br />
Da durch den Zusatz <strong>von</strong> Modifiern die Löslichkeit <strong>von</strong> polaren Stoffen erhöht wird,<br />
werden Extrakte erhalten, die in der Regel mit erheblich mehr störenden Matrixkomponenten<br />
belastet sind, die <strong>Extraktion</strong>sselektivität nimmt demnach ab [1]. Viele<br />
Autoren, die Untersuchungen zu diesem Thema durchgeführt haben, berichten, daß ein<br />
Zusatz <strong>von</strong> Modifiern oft keine Verbesserung der <strong>Extraktion</strong>sausbeuten bewirkt [1].<br />
2.4 AUFBAU EINES SFE-EXTRAKTORS<br />
Allen SFE-Geräten gemeinsam ist eine Pumpe zum Verdichten des Kohlendioxids, eine<br />
beheizbare <strong>Extraktion</strong>skammer in der die Probe extrahiert wird, ein für die Expansion<br />
des Fluids zuständiger, sog. Restriktor <strong>und</strong> eine Vorrichtung zur Sammlung der<br />
Extrakte (Falle)(siehe Abb. 2.2-2).<br />
Die wesentlichen Unterschiede zwischen Geräten verschiedener Anbieter liegen in der<br />
Art der Falle (fest oder flüssig) <strong>und</strong> in der Art der Fluid-Expansion (Restriktor) aber auch<br />
in der Höhe des maximal einsetzbaren Druckes.<br />
Die <strong>Extraktion</strong>shülsen (thimbles) sind druckfeste Behälter, in welche die Proben<br />
eingefüllt werden. Sie bestehen aus einem Edelstahlrohr, das mit zwei speziellen<br />
Schraubkappen verschlossen wird. Diese Kappen sind mit einem Ventil versehen durch<br />
das das überkritische Fluid in die Hülsen geleitet wird. Bei Geräten, bei denen in der<br />
Hülse <strong>und</strong> dem sie umgebenden Raum (<strong>Extraktion</strong>skammer) der gleiche Druck<br />
vorherrscht (z.B. Extraktoren der Fa. ISCO) können wesentlich kostengünstigere<br />
Hülsen aus Kunststoffmaterial verwendet werden.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
16
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 2.2-2: Schematischer Aufbau eines SFE-Extraktors mit Festphasenfalle<br />
CO2<br />
Modifier<br />
Thimble<br />
Nozzle<br />
ODS<br />
Solvent<br />
Vial<br />
Der Restriktor (nozzle) ist das Kernstück des Extraktors. Hierbei handelt sich um eine<br />
Kapillare oder ein Ventil durch die/das das überkritische Fluid entweicht. Er ist<br />
beheizbar, um die bei der Expansion des Kohlendioxids entstehende Kälte (Joule-<br />
Thompson-Effekt) zu kompensieren <strong>und</strong> somit Kondensationen oder das Gefrieren <strong>von</strong><br />
Stoffen (z.B. Fett oder Wasser) <strong>und</strong> damit Verstopfungen zu vermeiden. Es gibt<br />
statische <strong>und</strong> variable Restriktoren. Der Vorteil variabler Restriktoren ist, daß sie den<br />
Gasfluß unabhängig vom eingesetzten <strong>Extraktion</strong>sdruck regeln können.<br />
Die Fallen (traps) verschiedener Geräte zeigen ebenfalls prinzipielle Unterschiede. Bei<br />
der On-line-SFE, bei der dem <strong>Extraktion</strong>svorgang direkt ein chromatographischer<br />
Vorgang nachgeschaltet ist, werden die Extrakte am Säulenanfang der chromatographischen<br />
Säule aufgefangen [23]. Bei flüssigen Fallen werden die Substanzen direkt<br />
in ein Vorlagegefäß, das ein Lösungsmittel enthält, geleitet. Dies kann bei der<br />
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> leichtflüchtigen Stoffen nützlich sein. Bei den Festphasenfallen werden<br />
die Extrakte in einer gekühlten Festphasenfalle mit großer Oberfläche aufgefangen. Die<br />
Extrakte werden dann <strong>von</strong> der Falle mit einem organischen Lösungsmittel in eine<br />
Vorlage eluiert. Der Vorteil dieser Fallen besteht darin, daß man durch gezielte Wahl<br />
des Festphasenmaterials <strong>und</strong> der Elutionsmittel eine Fraktionierung der Extrakte <strong>und</strong><br />
somit einen zusätzlichen Reinigungseffekt erzielen kann.<br />
2.5 ABLAUF EINER EXTRAKTION<br />
Das Kohlendioxid wird mit Hilfe einer Pumpe <strong>und</strong> einer Heizeinrichtung auf den nötigen<br />
Druck <strong>und</strong> die nötige Temperatur gebracht. In überkritischem Zustand gelangt es dann<br />
in die beheizbare <strong>Extraktion</strong>szelle, in der sich die Probe befindet. Hier findet die<br />
<strong>Extraktion</strong> statt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
17
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Es wird zwischen statischer <strong>und</strong> dynamischer <strong>Extraktion</strong> unterschieden. Bei der<br />
statischen <strong>Extraktion</strong> findet kein Fluß statt. Die Probenmatrix wird mit dem <strong>Extraktion</strong>sfluid<br />
unter bestimmten Bedingungen (Druck, Temperatur) durchdrängt<br />
(„eingeweicht“). Bei der dynamischen <strong>Extraktion</strong> findet ein Fluß statt. Die Probe wird<br />
<strong>von</strong> dem Fluid unter vordefinierten Bedingungen durchflossen <strong>und</strong> somit extrahiert.<br />
Nachdem das Fluid die <strong>Extraktion</strong>skammer verlassen hat, erfolgt im Restriktor eine<br />
Expansion, das überkritische Fluid wird in den gasförmigen Aggregatzustand überführt<br />
<strong>und</strong> verliert dabei seine Lösekraft. Somit kommt es zu einer Präzipitation der Extrakte<br />
im Restriktor selbst <strong>und</strong> in der nachgeschalteten Falle. Bei Festphasenfallen werden die<br />
ausgefallenen Substanzen mit einem Lösungsmittel (etwa 1-1,5 ml) in eine Vorlage<br />
eluiert. Dabei wird auch der Restriktor mit durchflossen. Hierbei werden sowohl die<br />
Falle als auch der Restriktor beheizt. Die Temperatur darf hier nicht zu hoch sein, um zu<br />
vermeiden, daß thermolabile Komponenten zersetzt werden oder daß das<br />
Lösungsmittel bereits verdampft. Es folgt eine Nachreinigung des Restriktors <strong>und</strong> der<br />
Falle mit einer größeren Menge an Lösungsmittel (ca. 5 ml). Das Gerät ist dann für<br />
einen erneuten <strong>Extraktion</strong>svorgang bereit.<br />
2.6 ENTWICKLUNG EINER SFE-METHODE<br />
Bei der Entwicklung einer SFE-Methode ist die Optimierung mehrerer Parameter,<br />
sowohl im Bereich der Geräteeinstellung, als auch im Bereich der Probenvorbehandlung<br />
notwendig.<br />
Die Extrahierbarkeit <strong>von</strong> Stoffen aus der Matrix ist <strong>von</strong> vielen, oft gegenläufigen<br />
Faktoren abhängig, die gegeneinander abgewogen werden müssen.<br />
2.6.1 Probenvorbereitung<br />
Die Probenvorbereitung muß sich vor allem nach der zu extrahierenden Matrix, aber<br />
auch nach den zu extrahierenden Analyten richten. Es muß so verfahren werden, daß<br />
bei möglichst wenig Verlusten eine für die Gesamtprobe repräsentative <strong>und</strong> zudem<br />
leicht extrahierbare Teilprobe erhalten wird.<br />
Bei Proben mit hohem Gehalt an mobilem Wasser muß dieses entweder entfernt oder<br />
ausreichend immobilisiert werden.<br />
Im folgenden werden beispielhaft für verschiedenen Fragestellungen mögliche<br />
Probenvorbereitungen aufgelistet:<br />
• Pestizide <strong>und</strong> andere organische Kontaminanten aus Wasserproben können an<br />
einer Festphasenfalle (z.B. RP-C18) adsorbiert werden. Diese Falle kann dann<br />
mittels SFE extrahiert werden.<br />
• Andere flüssige Proben, in denen höhere Rückstandskonzentrationen (als in Wasser)<br />
zu erwarten sind, wie z.B. Säfte oder Wein können mit einem Adsorbens (z.B.<br />
Hydromatrix) vermengt werden <strong>und</strong> dann mit der SFE extrahiert werden.<br />
• Obst <strong>und</strong> Gemüseproben werden nach einer Zerkleinerung ebenfalls mit einem<br />
wasserbindenden Adsorbens versetzt.<br />
• Proben mit hohem Fettgehalt (z.B. Ölsamen, Schokolade, Öle) bereiten oft<br />
Schwierigkeiten bei der SFE. Große Mengen an mitextrahiertem Fett können zu<br />
Überladungen der Falle <strong>und</strong> zu Verstopfungen führen. Es besteht prinzipiell die<br />
Möglichkeit, das Fett durch gezielte Wahl der <strong>Extraktion</strong>sbedingungen <strong>von</strong> der Probe<br />
abzutrennen, um bei einer darauffolgenden <strong>Extraktion</strong> die erwünschten Stoffe<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
18
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
selektiver zu erhalten (fraktionierte <strong>Extraktion</strong>). Bei diesem Verfahren muß jedoch<br />
meist mit Verlusten an Analyten gerechnet werden.<br />
• Halbflüssige <strong>und</strong> pasteuse Proben mit hohem Zuckergehalt (z.B. Honig) bereiten<br />
ebenfalls Schwierigkeiten, da die zu extrahierenden Analyten abgeschirmt werden<br />
können. Um eine möglichst optimale <strong>Extraktion</strong> zu gewährleisten, <strong>und</strong> die<br />
<strong>Extraktion</strong>soberfläche zu vergrößern müssen derartige Proben durch Vermengung<br />
z.B. mit Seesand oder Papier aufgelockert werden.<br />
• Trockene Proben (wie z.B. Mehle, Getreideerzeugnisse) müssen gegebenenfalls<br />
mit Modifiern (z.B. Wasser oder Methanol) angefeuchtet werden, um eine <strong>Extraktion</strong><br />
der Wirkstoffe zu erleichtern. Sehr fein zerkleinerte, pulverisierte Proben müssen vor<br />
der <strong>Extraktion</strong> aufgelockert werden (z.B. mit Seesand) um den Fluß des Fluids zu<br />
erleichtern.<br />
Eine wesentliche Rolle bei der <strong>Extraktion</strong> spielen auch die zu extrahierenden Analyten.<br />
Ist der Analyt wegen schlechter Löslichkeit im Fluid oder aufgr<strong>und</strong> <strong>von</strong><br />
Wechselwirkungen mit der Matrix nicht leicht extrahierbar, kann gegebenenfalls durch<br />
Zugabe <strong>von</strong> Modifiern in die <strong>Extraktion</strong>shülse die <strong>Extraktion</strong> verbessert werden.<br />
Gegebenenfalls besteht die Möglichkeit die Analyten direkt innerhalb der<br />
<strong>Extraktion</strong>shülse zu derivatisieren <strong>und</strong> sie dadurch in eine leichter extrahierbare Form<br />
zu überführen (in-situ-Derivatisierungen [13,14]).<br />
Eigene Untersuchungen zur Optimierung der Probenvorbereitung im Bereich der<br />
Pestizidanalytik werden in Kap. 3.1.3 dargestellt.<br />
2.6.2 Geräteeinstellungen - Optimierung der <strong>Extraktion</strong>sbedingungen<br />
Die theoretischen Überlegungen zur Optimierung <strong>von</strong> <strong>Extraktion</strong>sbedingungen sind in<br />
Kapitel 2.3 dargestellt. Das Verständnis der physikalischen <strong>und</strong> physikalischchemischen<br />
Zusammenhänge, die bei den <strong>Extraktion</strong>en eine Rolle spielen, ist zwar<br />
hilfreich bei der Entwicklung <strong>von</strong> <strong>Extraktion</strong>smethoden, da diese jedoch sehr komplex<br />
sind, spielt die Erfahrung eine genauso große Rolle. Die optimalen <strong>Extraktion</strong>sbedingungen<br />
für Stoffe aus komplexen Matrizes müssen daher oft experimentell<br />
ermittelt werden.<br />
Die wichtigsten Geräte-Parameter, die variiert werden können sind:<br />
1. <strong>Extraktion</strong>stemperatur, <strong>Extraktion</strong>sdruck (bzw. Dichte),<br />
2. <strong>Extraktion</strong>sflußrate,<br />
3. <strong>Extraktion</strong>szeit,<br />
4. Zumischung <strong>von</strong> Modifiern zum Fluid (auch direkt in die <strong>Extraktion</strong>shülse),<br />
5. Festphasenfalle (Material <strong>und</strong> Temperatureinstellung bei der <strong>Extraktion</strong>),<br />
6. Elutionsparameter nach der <strong>Extraktion</strong> (Wahl der Lösungsmittel,<br />
Temperatureinstellung <strong>von</strong> Festphasenfalle <strong>und</strong> Restriktor).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
19
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3. APPLIKATIONEN<br />
3.1 ANALYTIK VON PFLANZENSCHUTZMITTELRÜCKSTÄNDEN IN OBST UND<br />
GEMÜSE<br />
3.1.1 Einleitung<br />
Der Einsatz <strong>von</strong> Pflanzenschutzmitteln ist in der modernen Landwirtschaft nicht mehr<br />
wegzudenken. Gemäß Pflanzenschutzgesetz sind „ ... Pflanzenschutzmittel ... dazu<br />
bestimmt, Pflanzen oder Pflanzenerzeugnisse vor Schadorganismen oder Krankheiten<br />
zu schützen „ [34]. Weltweit sind schätzungsweise 500-600 verschiedene Wirkstoffe im<br />
Einsatz, die entsprechend ihrer Wirkung in verschiedene Gruppen eingeteilt werden<br />
können [92,89] (siehe Tab. 3.1.1-1).<br />
Tab. 3.1.1-1: Einteilung <strong>von</strong> Pflanzenschutzmitteln nach ihrer Wirkung<br />
Gruppe Wirkung Einige Vertreter<br />
Herbizide gegen Unkräuter Phenoxyalkancarbonsäuren, Triazine,<br />
Uronsäurederivate<br />
Fungizide gegen Pilze Dithiocarbamate, Benzimidazole, Triazole<br />
Insektizide gegen Insekten Carbamate, Pyrethroide,<br />
Organophosphorsäureester<br />
Synergisten potenzieren die Wirkung <strong>von</strong><br />
Insektiziden<br />
Piperonylbutoxid<br />
Akarizide gegen Milben Carbamate, Pyrethroide, Zinnorganische<br />
Verbindungen<br />
Nematizide gegen Nematoden Organophosphorsäureester<br />
Molluskizide gegen Schnecken Metaldehyd<br />
Rodentizide gegen Nagetiere<br />
Kumarinderivate<br />
Zu den Pflanzenschutzmitteln werden im allgemeinem auch Wachstumsregulatoren <strong>und</strong><br />
Keimhemmungsmittel gezählt.<br />
Die Anwendung <strong>von</strong> Pflanzenschutzmitteln ist gesetzlich geregelt. Ihre Zulassung in der<br />
B<strong>und</strong>esrepublik Deutschland erfolgt durch die Biologische B<strong>und</strong>esanstalt für Land- <strong>und</strong><br />
Forstwirtschaft (BBA). Eine Zulassung erfolgt nur dann, wenn „das Pflanzenschutzmittel<br />
bei bestimmungsgemäßer <strong>und</strong> sachgerechter Anwendung ... keine schädlichen<br />
Auswirkungen auf die Ges<strong>und</strong>heit <strong>von</strong> Mensch <strong>und</strong> Tier hat, die nach dem Stande der<br />
wissenschaftlichen Erkenntnisse nicht vertretbar sind“ [34].<br />
Mit der Zulassung wird die Anwendung geregelt <strong>und</strong> gegebenenfalls werden einzuhaltende<br />
Wartezeiten festgesetzt. Trotz Einhaltung der festgelegten Wartezeiten<br />
zwischen Einsatz der Pestizide <strong>und</strong> Ernte können noch Rückstände der Pflanzenschutzmittel<br />
im Endprodukt verbleiben. Zum Schutz der Verbraucher werden in der<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
20
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Rückstandshöchstmengenverordnung (RHmV) für alle Pflanzenschutzmittel maximal<br />
zulässige Gehalte (Höchstmengen) festgesetzt [34]. Die Einhaltung der festgelegten<br />
Höchstmengen muß durch geeignete Analysenmethoden kontrolliert werden. Dies ist<br />
Aufgabe der amtlichen Lebensmittelüberwachung. Darüber hinaus werden b<strong>und</strong>esweit<br />
im Rahmen des nationalen Monitoring-Programmes Daten zu Rückständen in<br />
<strong>Lebensmitteln</strong> gesammelt <strong>und</strong> ausgewertet, um u.a. zeitliche Trends festzustellen <strong>und</strong><br />
die Aufnahme <strong>von</strong> Pflanzenschutzmitteln durch den Verbraucher über die Nahrung<br />
abzuschätzen.<br />
Zur Analytik werden überwiegend Multimethoden eingesetzt, die eine große Anzahl an<br />
Wirkstoffen erfassen können [3]. Da sich Pflanzenschutzmittel in ihren Eigenschaften<br />
(z.B. Polarität) sehr stark unterscheiden, ist es jedoch nicht möglich alle Stoffe mit einer<br />
einzigen Methode zu erfassen. Zur Erfassung bestimmter Wirkstoffe oder<br />
Wirkstoffgruppen sind Einzelbestimmungs-Methoden erforderlich, da sie z.B. aufgr<strong>und</strong><br />
ihrer hohen Polarität oder geringen Stabilität nicht mit den Multimethoden erfaßbar sind.<br />
Die derzeit üblichen Multimethoden beinhalten folgende Arbeitsschritte: Zerkleinerung,<br />
<strong>Extraktion</strong>, Clean-up, ggf. Derivatisierung <strong>und</strong> Messung <strong>und</strong> sind in der Regel sehr<br />
arbeitsaufwendig [3].<br />
Pestizidrückstandslaboratorien stehen ständig vor neuen Aufgaben <strong>und</strong> Herausforderungen<br />
(neue Wirkstoffe, Qualitätssicherungsmaßnahmen, Absenkung der<br />
Nachweisempfindlichkeit, Monitoring-Programme). Deshalb besteht großes Interesse<br />
an schnellen, kostengünstigen <strong>und</strong> automatisierten Analysenverfahren, um die Analytik<br />
effizienter zu gestalten. Möglichkeiten hierzu bietet die SFE, die sich zur <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong><br />
mittel- bis unpolaren Pestiziden anbietet.<br />
Der Einsatz der SFE in der Pestizidanalytik würde viele Vorteile mit sich bringen, da die<br />
<strong>Extraktion</strong> automatisiert abläuft <strong>und</strong> durch eine selektive <strong>Extraktion</strong> auf eine Reinigung<br />
der Extrakte verzichten werden könnte. <strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong> Nachreinigung sind in der Regel<br />
die arbeitsintensivsten Schritte im Bereich der Rückstandsanalytik.<br />
Besonders attraktiv ist die Entwicklung <strong>von</strong> SFE-Multimethoden zur gleichzeitigen<br />
<strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong> Bestimmung <strong>von</strong> mehreren Pestiziden. Die Entwicklung <strong>von</strong> Methoden<br />
zur Bestimmung einzelner Pestizide oder Pestizidklassen ist jedoch ebenfalls sehr<br />
wichtig, da gerade in diesen Fällen die herkömmliche Analytik sehr arbeitsaufwendig ist<br />
<strong>und</strong> in der Praxis oft selten durchgeführt wird. Im Rahmen dieser Arbeit wurden eine<br />
SFE-Multimethode sowie verschiedene Einzelbestimmungsmethoden entwickelt.<br />
Eine Schlüsselstellung bei jeder Methodenentwicklung nehmen die Probenvorbereitung<br />
<strong>und</strong> die Messung ein.<br />
Die Sicherstellung einer ausreichend guten Meßgenauigkeit ist bei der Entwicklung<br />
analytischer Verfahren <strong>von</strong> hoher Priorität. Nur anhand zuverlässiger Meßergebnisse<br />
kann die Optimierung vorausgehender analytischen Teilschritte effektiv gestaltet<br />
werden.<br />
Durch die Optimierung der Probenvorbereitung wird gewährleistet, daß die zu untersuchenden<br />
Teilproben für die Gesamtprobe repräsentativ sind.<br />
Demnach sind diese beiden Arbeitsschritte bei der Entwicklung analytischer Methoden<br />
<strong>von</strong> großer Wichtigkeit <strong>und</strong> müssen vorrangig optimiert werden.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
21
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.2 Optimierung der Meßbedingungen<br />
3.1.2.1 Wahl des Einspritz- <strong>und</strong> Detektionsystems<br />
Als Bestimmungssystem wurde ein GC/MSD gewählt. GC/MSD-Systeme werden<br />
wegen ihrer vielfältigen Vorteile immer verbreiteter im Bereich der Rückstandsanalytik<br />
eingesetzt. MS-Detektoren bieten im Gegensatz zu den herkömmlich EC-, NP-, FP-<br />
Detektoren eine universelle <strong>und</strong> gleichzeitig sehr spezifische Detektionsmöglichkeit, je<br />
nach Modus. Durch die hohe Aussagekraft, der durch die Massenspektrometrie<br />
gelieferten Daten, wird die Unsicherheit bei der Identifizierung <strong>von</strong> Substanzen<br />
minimiert. Die im SIM-Modus, durch die gezielte Registrierung bestimmter Massen<br />
erreichbare, recht hohe Detektionsempfindlichkeit, genügt den Anforderungen der<br />
Lebensmittelanalytik in den allermeisten Fällen. Da die Messung mit Hilfe des GC/MSD<br />
besonders selektiv erfolgen kann, kann meist auf eine Reinigung der Extrakte (Cleanup)<br />
verzichtet werden.<br />
Für die Identifizierung unbekannter Verbindungen im Chromatogramm können, die im<br />
SCAN-Modus aufgenommenen Massenspektren mit Hilfe eines Suchprogramms<br />
(automatische Bibliotheksuche) mit den Spektren mehrerer Tausend Verbindungen<br />
verglichen werden. Die Zuordnung <strong>von</strong> Massenspektren unbekannter Peaks zu<br />
Substanzen anhand der Vorlagen der Spektrenbibliothek ist jedoch, selbst bei ausreichender<br />
Abtrennung der Substanz <strong>von</strong> Begleitstoffen, nicht immer einfach. Bei<br />
Substanzen, die in geringer Konzentration vorliegen, werden die Massenspektren vom<br />
Untergr<strong>und</strong>rauschen oft derart verfälscht, daß eine Identifizierung des Spektrums sehr<br />
erschwert wird oder kaum möglich ist (vgl. Abb. 3.1.2-1, 1µl).<br />
In diesen Fällen ist es vorteilhaft eine größere Menge an Extrakt einzuspritzen (vgl.<br />
Abb. 3.1.2-1, 5µl). Ein zu starkes Einengen <strong>von</strong> Probenextrakten sollte vermieden<br />
werden, da es häufig zu einem Ausfallen <strong>von</strong> mitextrahierten Begleitstoffen kommt,<br />
wobei Wirkstoffe mitgerissen werden können <strong>und</strong> zudem die Gefahr besteht, daß<br />
Pestizide sich teilweise verflüchtigen.<br />
Im SIM-Modus ist eine gezielte Aufnahme ausgewählter Massen mit höherer<br />
Empfindlichkeit möglich. Durch eine geeignete Auswahl dieser Massen können durch<br />
begleitende Stoffe verursachte Störungen meist ausgeschaltet werden. Auch die<br />
Bestimmungsgrenzen im SIM-Modus können durch den Einsatz höherer Mengen des<br />
Extraktes verbessert werden, da das Verhältnis <strong>von</strong> Peakhöhe zu Untergr<strong>und</strong>rauschen<br />
günstiger wird (vgl. Abb. 3.1.2-2).<br />
Größere Volumina bis z.B. 10 µl können mit einem Kaltaufgabesystem (KAS) als<br />
Injektionssystem aufgegeben werden, das die Möglichkeit einer Lösungsmittelausblendung<br />
bietet. Durch Verwendung eines KAS (Fa. Gerstel) konnten die Nachweis-<br />
<strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen deutlich erniedrigt werden. Die Verwendung des KAS als<br />
Injektionssystem bietet noch weitere Vorteile: Durch die Aufgabe der Probe in ein kaltes<br />
Injektionssystem werden die Analyten im Vergleich zu anderen Injektionsmöglichkeiten<br />
thermisch weniger belastet. Der Großteil der schwerflüchtige Begleitstoffe aus dem<br />
Probenextrakt verbleiben in dem etwa 10 cm langen Injektionsliner. Dadurch wird die<br />
analytische Säule geschont. In der Praxis ist ein regelmäßiges Austauschen der<br />
Injektionsliner erforderlich, da Verschmutzungen an der Oberfläche mit Analyten<br />
unerwünschte Wechselwirkungen eingehen können (siehe Kap. 3.1.2.2).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
22
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.2-1: Massenspektren <strong>von</strong> Malathion in einem Clementinen-Extrakt<br />
(0,5 g/ml) bei verschiedenen Injektionsvolumina, Malathion 0,25 ng/µl<br />
Ab<strong>und</strong>ance<br />
750<br />
700<br />
650<br />
600<br />
550<br />
500<br />
450<br />
400<br />
350<br />
300<br />
250<br />
200<br />
150<br />
100<br />
50<br />
Ab<strong>und</strong>ance<br />
0<br />
m/z--><br />
16000<br />
14000<br />
12000<br />
10000<br />
8000<br />
6000<br />
4000<br />
2000<br />
0<br />
m/z--><br />
7000<br />
6000<br />
5000<br />
4000<br />
3000<br />
2000<br />
69<br />
69 79<br />
83<br />
63 79<br />
93<br />
97<br />
111<br />
Scan 485 (15.505 min): 0802007.D<br />
80 100 120 140 160 180 200 220 240 260 280<br />
111<br />
125<br />
127<br />
125<br />
127<br />
143<br />
149<br />
158<br />
158<br />
173<br />
173<br />
187<br />
201<br />
185 199<br />
207<br />
229<br />
211 229<br />
243<br />
255<br />
243 256<br />
261<br />
276<br />
271<br />
80 100 120 140 160 180 200 220 240 260 280<br />
93<br />
143<br />
158<br />
1000<br />
100<br />
211<br />
256<br />
285<br />
0<br />
m/z--><br />
60 80 100 120 140 160<br />
184 199<br />
180 200<br />
227238<br />
220 240<br />
286<br />
271<br />
260 280<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
1 µl<br />
5 µl<br />
Vergleichsspektrum aus der<br />
Spektrenbibliothek (HPPest)<br />
285<br />
287<br />
23
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.2-2: Nachweis <strong>von</strong> Brompropylat bei unterschiedlichen Injektions<br />
volumina (GC/MSD-SIM-Modus) 0,5 g Orangenextrakt/ml,<br />
nach der GPC<br />
96<br />
94<br />
92<br />
90<br />
88<br />
86<br />
84<br />
82<br />
80<br />
78<br />
76<br />
74<br />
72<br />
70<br />
68<br />
66<br />
64<br />
62<br />
60<br />
58<br />
56<br />
54<br />
1µl<br />
Brompropylat<br />
1,5 pg<br />
52<br />
50<br />
Time--><br />
21.20 21.40 21.60 21.80 22.00 22.20 22.40 22.60 22.80<br />
50<br />
Time--><br />
21.20 21.40 21.60 21.80 22.00 22.20 22.40 22.60 22.80<br />
130<br />
125<br />
120<br />
115<br />
110<br />
105<br />
100<br />
95<br />
90<br />
85<br />
80<br />
75<br />
70<br />
65<br />
60<br />
55<br />
3µl<br />
Brompropylat<br />
4,5 pg<br />
Bei Betrachtung der Abb. 3.1.2-2 fällt eine überproportionale Zunahme der Peakfläche<br />
des Brompropylat bei Einspritzung eines höheren Volumens auf. Die Gründe hierfür<br />
liegen zum einen an der Verbreiterung der Peaks, wodurch Anteile des Analyten im<br />
Untergr<strong>und</strong>rauschen verschwinden <strong>und</strong> zum anderen an Abbauvorgängen,<br />
insbesondere im Injektionssystem. Diese Effekte fallen bei niedrigen Konzentrationen<br />
stärker ins Gewicht. Dieser Sachverhalt wird im folgenden Kapitel näher erläutert.<br />
3.1.2.2 Einflüsse des Injektionssystems <strong>und</strong> „Matrixeinflüsse“<br />
Bei der gaschromatographischen Bestimmung einiger Substanzen wird das Verhältnis<br />
zwischen der in das GC-System eingebrachten Substanzmenge <strong>und</strong> dem<br />
resultierenden Detektorsignal durch verschiedene Faktoren stark beeinflußt. Es ist z.B.<br />
seit langem bekannt, daß das Lösungsmittel, in dem die zu messende Probe gelöst ist,<br />
einen Einfluß auf die Bestimmung haben kann („Lösungsmitteleinflüsse“).<br />
Der Zustand der mit der Probe in Kontakt kommenden Flächen des jeweiligen Einspritzsystems<br />
hat ebenfalls einen großen Einfluß. Die Probe wird z.B. bei einer split/splitless-<br />
Injektion oder bei einem KAS primär in einen durch Silylierung oberflächlich<br />
desaktivierten Injektionsliner eingespritzt. Der „Aktivitätsgrad“ der Oberfläche des<br />
Injektionsliners nimmt mit zunehmender Benutzungsdauer zu, da durch Abspaltung <strong>von</strong><br />
Silylresten freie Silanol-Gruppen entstehen. Die Oberflächen <strong>von</strong> Injektionsliner <strong>und</strong><br />
Vorsäule werden <strong>von</strong> Einspritzung zu Einspritzung immer mehr mit einem Film<br />
schwerflüchtiger Verbindungen belegt. Diese „Schmutzbeläge“ weisen ebenfalls eine<br />
„aktive“ Oberfläche auf. Substanzen können mit diesen aktiven Stellen im<br />
Injektionssystem in Wechselwirkung treten, wodurch Abbaureaktionen quasi katalysiert<br />
werden.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
24
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Bei zahlreichen Stoffen wie Dicofol, Captan, Folpet <strong>und</strong> einigen N-Methyl-Carbamaten<br />
machen sich die beschriebenen Effekte nachweislich in Form eines Abbaus bemerkbar.<br />
Die Bildung ihrer Abbauprodukte (p,p’-Dichlorbenzophenon, Tetrahydrophthalimid,<br />
Phthalimid <strong>und</strong> die korrespondierenden Phenole der N-Methyl-Carbamate) nimmt mit<br />
dem Benutzungs- <strong>und</strong> Verschmutzungsgrad des Injektionssystems zu. Zum Beispiel<br />
wurde beobachtet, daß die Verbindung Azinphos-Methyl nach längerem Gebrauch des<br />
Injektionsliners kaum mehr detektierbar ist.<br />
Die Wechselwirkung zwischen diesem „Schmutzbelag“ <strong>und</strong> verschiedenen Verbindungen<br />
bewirkt eine unerwünschte Retention <strong>und</strong> macht sich auch in der Peakform z.B.<br />
bei Thiabendazol, Imazalil <strong>und</strong> Prochloraz als Tailing deutlich bemerkbar (vgl. Abb.<br />
3.1.5-28 in Kap. 3.1.5.5.2.3). Dieses Tailing ist um so ausgeprägter je stärker der<br />
Verschmutzungsgrad des Injektionssystems <strong>und</strong> der Vorsäule ist.<br />
Matrixeinflüsse:<br />
Eine wesentliche Rolle spielen aber auch die Art <strong>und</strong> Konzentration der in der Probelösung<br />
befindlichen Matrixbestandteile [vgl. 27,28]. Es wurde beispielsweise festgestellt,<br />
daß ein mit Thiabendazol versetzter Probenextrakt wesentlich höhere Signale<br />
erbrachte, als eine Lösung dieses Stoffes in reinem Lösungsmittel, obwohl beide<br />
Lösungen die gleiche Konzentration an Thiabendazol aufwiesen <strong>und</strong> gleiche chromatographische<br />
Bedingungen vorlagen [29].<br />
Matrixbestandteile in den Probeextrakten wirken offenbar „schützend“ auf die Wirkstoffe,<br />
in dem sie aktive Stellen im Injektionssystem besetzen. In Abb. 3.1.2-3 wird die<br />
„Schutzwirkung“ der Matrix am Beispiel der Substanz Dicofol verdeutlicht. Auffällig ist,<br />
daß bei Anwesenheit <strong>von</strong> Matrix die Zersetzung <strong>von</strong> Dicofol zu p,p´-Dichlorbenzophenon<br />
in erheblich kleinerem Umfang abläuft.<br />
Es wurde untersucht, in welchem Maße die Bestimmung verschiedener Wirkstoffe<br />
durch die oben beschriebenen Effekte beeinflußt wird. Hierzu wurden Kalibrierungen in<br />
reinem Lösungsmittel <strong>und</strong> in Lösungen mit unterschiedlichem Matrixanteil erstellt <strong>und</strong><br />
verglichen. Wie aus Tab. 3.1.2-1 zu entnehmen ist, spielen für viele der Stoffe (unter<br />
den genannten Bedingungen) „Matrixeinflüsse“ eine vernachlässigbare Rolle (vgl. Abb.<br />
3.1.2-4, Ethion). Bei anderen Stoffen dagegen können diese Effekte bei der<br />
Quantifizierung der Rückstände auf keinen Fall außer acht gelassen werden (vgl. Abb.<br />
3.1.2-4, Azinphos-Methyl). Derartige „Matrixeinflüsse“ auf die gaschromatographische<br />
Bestimmung <strong>von</strong> Wirkstoffen wurden sowohl bei den Extrakten der DFG-Methoden S8<br />
oder S19 als auch bei den SFE-Extrakten festgestellt. In der Regel zeigen die<br />
ungereinigten Extrakte der klassischen (naßchemischen) Aufarbeitungsmethoden viel<br />
stärkere Matrixeffekte als SFE-Extrakte, während die über Gelpermeationschromatographie<br />
(GPC) gereinigten Extrakte in etwa vergleichbare Effekte zeigen.<br />
Die Ergebnisse dieser Untersuchungen zum Einfluß der Matrix bei der gaschromatographischen<br />
Bestimmung wurden in [29] veröffentlicht.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
25
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.2-3: Matrixeinflüsse, thermisch bedingter Abbau des Dicofols im<br />
Injektionssystem<br />
FlV<br />
FlV<br />
4,5<br />
4<br />
3,5<br />
3<br />
2,5<br />
2<br />
1,5<br />
1<br />
0,5<br />
0<br />
0,3<br />
0,25<br />
0,2<br />
0,15<br />
0,1<br />
0,05<br />
0<br />
Dicofol<br />
Matrix-Eichung<br />
Lösungsmittel-Eichung<br />
0 2 4 6 8 10<br />
p,p´- Dichlorbenzophenon<br />
Lösungsmittel-Eichung<br />
Matrix-Eichung<br />
Konzentration [µg/ml]<br />
0 2 4 6 8 10<br />
Konzentration [µg/ml]<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
Cl<br />
Cl<br />
HO CCl3<br />
Dicofol<br />
O<br />
CHCl3<br />
Cl<br />
p,p´-Dichlorbenzophenon<br />
26<br />
Cl
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.2-4: Matrixeinflüsse am Beispiel Ethion <strong>und</strong> Azinphos-Methyl<br />
FlV<br />
FlV<br />
7<br />
6<br />
5<br />
4<br />
3<br />
2<br />
1<br />
0<br />
2,5<br />
1,5<br />
0,5<br />
Ethion<br />
Matrix-Eichung<br />
Lösungsmittel-Eichung<br />
0 2 4 6 8 10<br />
Konzentration<br />
2<br />
1<br />
0<br />
Azinphos-Methyl<br />
Matrix-Eichung<br />
Lösungsmittel-Eichung<br />
0 2 4 6 8 10<br />
Konzentration<br />
CH3CH2O<br />
CH3CH2O P<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
S<br />
O<br />
S S P<br />
N<br />
N N<br />
Ethion<br />
S<br />
S<br />
S P<br />
Azinphos-Methyl<br />
OCH2CH3<br />
OCH2CH3<br />
OCH3<br />
OCH3<br />
27
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.2-1: Auftreten <strong>von</strong> „Matrixeinflüssen“, GC/MSD (Säule HP5, 30 m),<br />
Injektor: KAS, silylierter Glasliner, Einspritzmenge 3 µl [29]<br />
Matrix - <strong>und</strong> Lösungsmittel-Eichungen im Vergleich<br />
Substanz<br />
vor der GPC:<br />
Matrixkonzentration<br />
0,6 g Zitrone/ml<br />
Wirkstoffkonzentration in<br />
mg/kg bez. auf Frucht<br />
nach der GPC:<br />
Matrixkonzentration<br />
1,25 g Zitrone/ml<br />
Wirkstoffkonzentration in<br />
mg/kg bez. auf Frucht<br />
0,2 0,4 1 4 0,1 0,25 0,5 1,0 3,5<br />
Azinphos-Methyl +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++ +++<br />
Bromacil + +<br />
Brompropylat +++ +++ ++ 0 ++ ++ ++ + 0<br />
Carbaryl + +<br />
Chlorfenvinphos 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Chlorfenson 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Chlorpyrifos 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Chlorpyrifos-Methyl 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Chlorthalonil ++ + 0 0 + 0 0 0 0<br />
Diazinon 0 0 0 0 - - 0 0 0<br />
Dichlofluanid 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Dichloran 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Dicofol +++ +++ +++ ++ +++ +++ +++ +++ ++<br />
Dimethoat ++ ++ 0 0 ++ ++ + 0 0<br />
Endosulfan (-beta) 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Endosulfan (-alpha) 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Endosulfansulfat + + 0 0 + 0 0 0 0<br />
Ethion 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Fenarimol + 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Fenitrothion ++ + + 0 + + 0 0 0<br />
Fenpropimorph - - 0 0 0 0 0 0 0<br />
Fenthion - - - - - - - - 0<br />
Fonofos 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Imazalil* +++ +++ +++ +<br />
Malathion + 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Mecarbam + 0 0 0 + 0 0 0 0<br />
Metalaxyl 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Methidathion ++ + + 0 + + + 0 0<br />
Myclobutanil + 0 0 0 + + + 0 0<br />
Orthophenylphenol ++ + 0 0 + 0 0 0 0<br />
p,p´-Dichlorbenzophenon --- --- --- --- --- --- --- --- ---<br />
Parathion 0 0<br />
Parathion-Methyl ++ ++ 0 0 + 0 0 0 0<br />
Pirimiphos-Methyl 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Prochloraz +++ ++ +<br />
Procymidon 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Propiconazol + + 0<br />
Pyridaphenthion 0 0<br />
Quinalphos 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Tetradifon 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Thiabendazol +++ +++ +++ +++<br />
Tolylfluanid + + 0 0 0 0 0 0 0<br />
Vinclozolin 0 0 0 0 0 0 0 0 0<br />
Verhältnis <strong>von</strong> Eichung auf Matrix zu Eichung in reinem Lösungsmittel in %: --- = unter 20% ,<br />
- = 75-89% , 0 = 90-112% , + = 113-124% , ++ = 125-150% , +++ = über 150%<br />
Die Auswertung erfolgte über zwei interne Standards.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
28
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.2.3 Berücksichtigung der „Matrixeinflüsse“ bei der<br />
Bestimmung<br />
Die Verwendung <strong>von</strong> „Eichungen auf Matrix“ ist zur korrekten Quantifizierung <strong>von</strong><br />
Substanzen, bei denen deutliche „Matrixeinflüsse“ auftreten, unumgänglich. Eine<br />
Möglichkeit hierfür sind „externe Matrix-Eichungen“ d.h. zur Kalibrierung werden<br />
matrixhaltige Standards verwendet. In diesem Fall muß für jede zu untersuchende<br />
Probe eine gleichartige, pestizidfreie Blindprobe aufgearbeitet werden. Die Eichlösungen<br />
werden durch Zusatz der entsprechenden Wirkstoffe zu den Extrakten der<br />
Blindprobe hergestellt. Um „Matrixeinflüsse“ auszugleichen, muß darauf geachtet<br />
werden, daß Eichlösungen <strong>und</strong> Probenextrakt in etwa die gleiche Konzentration an<br />
Matrix aufweisen.<br />
Eine weitere Möglichkeit sind „innere Eichungen“ nach dem Standardadditionsverfahren.<br />
Dazu wird der Probenextrakt in mehrere Aliquote geteilt, die mit den entsprechenden<br />
Wirkstoffen in unterschiedlichen Mengen dotiert werden (parallele<br />
Standardaddition, vgl. Abb. 3.1.2-5).<br />
Abb. 3.1.2-5: Prinzip der “inneren Eichung“ nach einer Aliquotierung<br />
(„parallele“ Standardaddition)<br />
Probenextrakt<br />
(mit internem Standard)<br />
Aliquotierung<br />
Aliquot 1 Aliquot 2 Aliquot 3 Aliquot 4<br />
Standardaddition Standardaddition Standardaddition<br />
Volumenausgleich Volumenausgleich Volumenausgleich Volumenausgleich<br />
Meßlösung 1 Meßlösung 2<br />
Meßlösung 3<br />
29<br />
Meßlösung 4<br />
Messung Messung Messung Messung<br />
Kalibrierung<br />
Vorteilhaft bei diesem Verfahren ist, daß eine zusätzliche Aufarbeitung <strong>von</strong> pestizidfreier<br />
Matrix, die <strong>von</strong> der Probenmatrix mehr oder weniger abweichen kann (Sorte,<br />
Reifegrad, Schalen- u/o Kernanteil), entfällt. Abb. 3.1.2-6 zeigt das Prinzip einer solchen<br />
Kalibrierung <strong>und</strong> Abb. 3.1.2-7 eine Kalibrierung am Beispiel Imazalil.<br />
Abb. 3.1.2-6: „Innere Eichung“ nach dem Standardadditionsverfahren<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Flächenverhältnis<br />
Analyt/ISTD<br />
|x|<br />
zugegebene Menge an Analyt (Aufstockung)<br />
|x|: Absolute Menge an Analyt im Probenextrakt vor der Dotierung (y=0)<br />
Abb. 3.1.2-7: „Innere Eichung“ („parallele“ Standardaddition)<br />
beispielhaft für Imazalil in Orangenextrakt<br />
200<br />
180<br />
160<br />
140<br />
120<br />
100<br />
80<br />
60<br />
40<br />
20<br />
0<br />
ermittelte Gehalte:<br />
über innere Eichung: 0,83 ppm<br />
über Lösungsmitteleichung: 1,9 ppm<br />
<strong>und</strong>otiert<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
y = 233,82x + 57,882<br />
R 2 = 0,9997<br />
0 0,1 0,2 0,3 0,4 0,5 0,6<br />
zudotierte Menge an Imazalil in µg pro 0,3 g Probenaliquot<br />
In Anbetracht der geringen Probenmenge, die bei der SFE extrahiert wird, ist diese Art<br />
der inneren Eichung, bei der Aliquotierungen vorgenommen werden, häufig nicht<br />
praktikabel. „Innere Eichungen“ nach dem Standardadditionsverfahren können aber<br />
auch ohne eine Aliquotierung erstellt werden, in dem die gleiche Probelösung mehrfach<br />
mit Standard aufgestockt <strong>und</strong> gemessen wird. Die Tatsache, daß die Matrixeffekte nach<br />
jeder Standardzugabe verringert werden (Matrixkonzentration nimmt ab) bleibt hier<br />
allerdings unberücksichtigt, weshalb es wichtig ist kleine Volumina zu dotieren<br />
(vergleiche Abb. 3.1.2-8).<br />
30
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.2-8: Prinzip der „inneren Eichung“ (Standardadditionsverfahren)<br />
Probelösung<br />
(mit ISTD)<br />
Messung<br />
Standardaddition<br />
Messung Erstellung einer<br />
Kalibrierung<br />
Standardaddition<br />
Messung<br />
In der Regel zeigen Eichungen auf Matrix im Vergleich zu den entsprechenden<br />
„Lösungsmittel-Eichungen“ eine deutlich bessere Linearität.<br />
Zur Minimierung gerätebedingter Effekte, ist auf jeden Fall der regelmäßige Austausch<br />
des Injektionsliners <strong>und</strong>/oder der Vorsäule zu empfehlen. Damit möglichst gleiche<br />
Gerätebedingungen bei der Bestimmung vorliegen, empfiehlt es sich, die zu vergleichenden<br />
Lösungen (Probelösung <strong>und</strong> Eichlösung) in kleinem zeitlichen Abstand zu<br />
chromatographieren.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
31
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.3 Optimierung der Probenvorbereitung<br />
3.1.3.1 Zerkleinerung (Erzeugung repräsentativer Teilproben)<br />
Ziel der Probenvorbereitung ist es, Teilproben zu erhalten, die für die Gesamtprobe<br />
repräsentativ sind. Hierbei muß jedoch darauf geachtet werden, daß die Verluste <strong>von</strong><br />
Substanzen durch Abbauvorgänge so gering wie möglich gehalten werden. Geeignete<br />
Probenvor- <strong>und</strong> aufbereitungsstrategien sind daher erforderlich.<br />
Da bei der SFE relativ wenig Probemenge pro Versuch eingesetzt wird (z.B. bis zu ca. 3<br />
g bei Verwendung des HP 7680 Extraktors), muß besonders darauf geachtet werden,<br />
daß die eingesetzten Obst- <strong>und</strong> Gemüseproben gut homogenisiert werden. Bei einigen<br />
Matrizes wie Salaten, Kernobst <strong>und</strong> Erdbeeren bereitet dies in der Regel keine<br />
Probleme. Bei anderen Proben ist jedoch die Erzielung einer ausreichenden<br />
Homogenität schwieriger. Zum Beispiel werden bei Trauben mit den üblichen Zerkleinerungsmethoden<br />
die Schalen, auf denen sich oberflächlich aufgebrachte Wirkstoffe<br />
zum Großteil befinden, nicht in dem gewünschten Grad zerkleinert, wodurch bei<br />
Gehaltsbestimmungen zwangsläufig hohe statistische (zufällige) Fehler auftreten (vgl.<br />
Kap. 3.1.4.7.1).<br />
Während der Probenvorbereitung (Grob- <strong>und</strong> Feinzerkleinerung) treten in größerem<br />
oder kleineren Umfang Wirkstoffverluste auf. Durch die Feinzerkleinerung der Probe<br />
wird die Kompartimentierung der Zellen aufgehoben, wodurch Enzyme, die für Abbauvorgänge<br />
verantwortlich sind, freigesetzt werden. Darüber hinaus wird sauerstoffhaltige<br />
Luft in die Matrix eingeschlagen. Verschiedene enzymatische <strong>und</strong> chemische<br />
Reaktionen (auch Verknüpfungsreaktionen mit Matrixbestandteilen) werden dadurch<br />
ermöglicht oder begünstigt. Zudem kann die bei dem Feinzerkleinerungsprozeß<br />
freigesetzte Wärme zu einer Beschleunigung <strong>von</strong> Abbauprozessen führen.<br />
Bei den Abbauvorgängen im zerkleinerten Probenmaterial spielen enzymatisch<br />
katalysierten Reaktionen (Oxidationen, Hydrolysen u.a.) eine wichtige Rolle. Um solche<br />
Reaktionen zu vermeiden, muß die Aktivität der Enzyme so weit wie möglich<br />
unterdrückt oder ausgeschaltet werden.<br />
Enzyme sind biochemische Katalysatoren. Ihre Aktivitäten hängen stark <strong>von</strong> den<br />
vorherrschenden Bedingungen im Reaktionsmedium ab. So zeigen z.B. viele Enzyme<br />
bei Verringerung des verfügbaren Wassers (aw-Wert), z.B. durch Zusatz <strong>von</strong> Salzen,<br />
einen Aktivitätsrückgang. Oxidasen zeigen in der Regel ein pH-Optimum im neutralen<br />
pH-Bereich. Unterhalb pH=3 werden Phenolasen irreversibel denaturiert. Ähnliches gilt<br />
auch für Temperaturen oberhalb 85°C (Blanchieren). Solch drastische Bedingungen<br />
können aber nicht zum Schutz der Proben vor enzymatischer Oxidation angewendet<br />
werden, ohne die Zersetzung empfindlicher Pestizide befürchten zu müssen.<br />
Desweiteren ist es theoretisch möglich unerwünschte enzymatische Reaktionen z.B.<br />
durch Vergiftung <strong>von</strong> Enzymen zu unterdrücken (z.B. bei Oxidasen durch<br />
Komplexierung des Kupfers im aktiven Zentrum mit EDTA, Sulfid oder Zitronensäure).<br />
Enzymatische <strong>und</strong> chemische Oxidationen können z.B. durch Zusatz antioxidativ<br />
wirksamer Stoffe, wie zum Beispiel Ascorbinsäure oder Schwefeldioxid unterdrückt<br />
werden.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
32
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Die Anwendbarkeit <strong>von</strong> Antioxidantien, Enzymvergiftern, Säuren <strong>und</strong> Salzen wurde im<br />
Rahmen dieser Arbeit allerdings nicht näher untersucht.<br />
Ein eleganter Weg Oxidationen zu vermeiden ist, die Verdrängung der sauerstoffhaltigen<br />
Luft in der Probe durch Trockeneis oder flüssigem Stickstoff, wobei gleichzeitig<br />
die Probe auch gekühlt wird [2,128].<br />
Durch Einhaltung niedriger Temperaturen werden chemische <strong>und</strong> enzymatische<br />
Prozesse, die zu einem Wirkstoffabbau führen können, erheblich verlangsamt.<br />
Eine sehr einfache Möglichkeit die Temperaturen während der Zerkleinerung tief zu<br />
halten ist die Proben in gefrorenem Zustand feinzuzerkleinern. Diese Vorgehensweise<br />
ist sehr einfach durchzuführen <strong>und</strong> hat sich als sehr vorteilhaft auch im Hinblick auf den<br />
Zerkleinerungsgrad erwiesen. Die Zerkleinerung wird durch die Eiskristalle in den Zellen<br />
unterstützt. Das Material ist nach der Feinzerkleinerung in der Regel ausreichend<br />
homogen <strong>und</strong> befindet sich noch in gefrorenem Zustand. Eine Separierung der<br />
wäßrigen (Saft) <strong>von</strong> der festen Phase (Zellwände) findet praktisch nicht statt. Die<br />
zerkleinerten Proben lassen sich schnell wieder tiefgefrieren. Auf diese Weise wird in<br />
der Regel eine bedeutend bessere Homogenität erreicht als bei einer Zerkleinerung der<br />
Proben bei Raumtemperatur. Dies wurde am Beispiel einer Traubenprobe gezeigt<br />
(siehe Tab. 3.1.3-1 <strong>und</strong> Abb. 3.1.3-1).<br />
Die bessere Homogenität macht sich auch in der geringeren Streuung der Analysenwerte<br />
bei der gefroren zerkleinerten Traubenprobe bemerkbar (siehe auch Kap.<br />
3.1.4.7.1).<br />
Tab. 3.1.3-1: Auswirkungen unterschiedlicher Zerkleinerungsarten<br />
(vgl. Abb. 3.1.3-1).<br />
Zustand der Beobachtungen nach der Feinzerkleinerung<br />
Probe vor der Zerkleinerungs- Durchmesser der Zustand der Sonstiges<br />
Feinzerkleinerung dauer Schalenfragmente Kerne<br />
„frisch“ etwa 40 s etwa 0,5-1 cm meist ganz größere<br />
Fruchtfleischstücke<br />
noch vorhanden<br />
tiefgefroren etwa 15 s etwa 0,5-3 mm zerkleinert Fruchtfleisch fein<br />
verteilt, zahlreiche<br />
Luftbläschen<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
33
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.3-1: „frisch“ <strong>und</strong> tiefgefroren zerkleinerte Trauben „Alphonse Lavallee“<br />
(vgl. Tab. 3.1.2-1)<br />
„frisch“ zerkleinert<br />
Abbildungs-Maßstab 1:1<br />
tiefgefroren zerkleinert<br />
Abbildungs-Maßstab 1:1<br />
Der höhere Zerkleinerungsgrad der durch die Zerkleinerung in tiefgefrorenem Zustand<br />
erreicht wird, wirkt sich auch positiv auf die Extrahierbarkeit aus. Bei einem<br />
entsprechenden Versuch wurden aus einer gefroren zerkleinerten Orange bedeutend<br />
bessere Ausbeuten der Fungizide Imazalil <strong>und</strong> Thiabendazol erzielt. Die unterschiedlich<br />
zerkleinerten Orangenproben wurden je zwei Mal extrahiert (erster <strong>Extraktion</strong>sschritt mit<br />
Aceton:Wasser 3:1, pH 3-4, zweiter <strong>Extraktion</strong>sschritt mit Aceton:Wasser 4:1, pH∼9,5).<br />
Während bei der zweiten <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> frisch zerkleinerten Proben noch beträchtliche<br />
10-15 % dieser Wirkstoffe erfaßt wurden, wurden bei gefroren zerkleinerten Proben nur<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
34
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
noch 4-7 % gef<strong>und</strong>en [vgl. 29]. Die verbesserte <strong>Extraktion</strong> der gefroren zerkleinerten<br />
Orange war darüber hinaus auch an der deutlich geringeren Farbintensität, die der<br />
extrahierte Filterkuchen nach der ersten <strong>Extraktion</strong> aufwies, erkennbar.<br />
3.1.3.2 Entfernung bzw. Immobilisierung <strong>von</strong> Wasser<br />
Obst- <strong>und</strong> Gemüseproben haben einen hohen Gehalt an Wasser. Dieses Wasser muß<br />
vor der SFE-<strong>Extraktion</strong> geb<strong>und</strong>en oder entfernt werden. Zur Entfernung oder<br />
Immobilisierung <strong>von</strong> Wasser werden in der Literatur verschiedene Vorgehensweisen<br />
beschrieben wie z.B. Gefriertrocknung [40], die Verwendung <strong>von</strong> chemischen Trockenmitteln<br />
wie Magnesiumsulfat, Natriumsulfat [8,41,42] <strong>und</strong> der Zusatz <strong>von</strong> Wasser<br />
adsorbierenden Materialien, die eine große Oberfläche besitzen <strong>und</strong> dadurch in der<br />
Lage sind, große Mengen an Wasser physikalisch zu binden. Durch die Vermengung<br />
der Probe mit dem Adsorbens kommt es zu einer starken Oberflächenvergrößung,<br />
wodurch die <strong>Extraktion</strong> erleichtert wird [1,2,12,9].<br />
3.1.3.2.1 Wasserentfernung durch Gefriertrocknung<br />
Die Gefriertrocknung ist eine relativ schonende Methode, einer Probe Wasser zu<br />
entziehen <strong>und</strong> die Probe aufzukonzentrieren. Dadurch ist es theoretisch möglich, mehr<br />
Probe für die <strong>Extraktion</strong> einzusetzen <strong>und</strong> somit die Nachweisgrenzen herabzusetzen.<br />
Der Trocknungsvorgang dauert jedoch einige St<strong>und</strong>en. Bei Proben mit relativ viel<br />
Zucker wie z.B. Südfrüchten bilden sich karamelartige, pasteuse Massen, die den<br />
Trocknungsvorgang verzögern <strong>und</strong> ggf. Rückstände einschließen. Getrocknete Proben<br />
nehmen schnell Luftfeuchtigkeit auf, so daß ihre Handhabung Sorgfalt verlangt.<br />
Desweiteren bestehen Bedenken, daß es unter den Bedingungen der Gefriertrocknung<br />
zu einer Verflüchtigung <strong>von</strong> Wirkstoffen kommen kann.<br />
Die Gefriertrocknung ist nach unserer Erfahrung mit einem großen Arbeitsaufwand<br />
verb<strong>und</strong>en <strong>und</strong> bringt keine entscheidenden Vorteile.<br />
3.1.3.2.2 Wasserbindung durch Adsorbentien<br />
Zur Wasserbindung werden verschiedene Adsorbentien auf Basis <strong>von</strong> Diatomeenerde<br />
eingesetzt, die natürlicherweise eine sehr große Oberfläche aufweisen (z.B. Hydromatrix<br />
(Varian), Kieselgur, Celite) [1,2,12].<br />
Die vorzerkleinerte <strong>und</strong> homogenisierte Obst- oder Gemüseprobe wird hierbei in einem<br />
bestimmten Verhältnis (z.B. 2,5:2) mit einem Adsorbens vermengt. Aliquote des<br />
homogenen Gemisches werden in <strong>Extraktion</strong>shülsen gefüllt <strong>und</strong> bis zur <strong>Extraktion</strong><br />
tiefgefroren aufbewahrt.<br />
Diese Art der Probenvorbereitung ist einfach durchzuführen, erfordert wenige<br />
Arbeitsschritte <strong>und</strong> ermöglicht eine effiziente <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Rückständen.<br />
Versuche haben gezeigt, daß das Mischungsverhältnis <strong>von</strong> Probe zu Adsorbens einen<br />
großen Einfluß auf die Extrahierbarkeit <strong>von</strong> unpolaren Analyten hat (vgl. hierzu Kap.<br />
3.1.4.7.3 <strong>und</strong> 3.1.7.1).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
35
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.4 SFE-Multimethoden für Pestizide in Obst <strong>und</strong> Gemüse<br />
Eine Multimethode ist in der Regel nur ein Kompromiß. Nicht alle Substanzen sind unter<br />
den ausgearbeiteten Bedingungen optimal extrahierbar. Verluste <strong>von</strong> Substanzen<br />
werden oft bewußt in Kauf genommen, um ein möglichst gutes Gesamtergebnis bei<br />
einem angemessenen Aufwand zu erzielen.<br />
In Rahmen dieser Arbeit wurde eine SFE-Multimethode zur Aufarbeitung <strong>von</strong> Obst- <strong>und</strong><br />
Gemüseproben ausgearbeitet. Sehr hilfreich für die Entwicklung dieser Methode waren<br />
die Arbeiten <strong>von</strong> Lehotay et al [1,2]. Im folgenden werden Versuche zur Optimierung der<br />
<strong>Extraktion</strong>sbedingungen vorgestellt.<br />
3.1.4.1 Optimierung der <strong>Extraktion</strong>sbedingungen<br />
Selbst bei hoher CO2-Dichte weisen SFE-Extrakte <strong>von</strong> Obst <strong>und</strong> Gemüse noch eine<br />
relativ hohe Reinheit auf. Daher wurden bei der Methodenoptimierung nur Dichtebereiche<br />
<strong>von</strong> >0,85 g/ml ausgewählt.<br />
Prinzipiell ist es möglich durch die Einstellung einer geringeren Dichte, <strong>Extraktion</strong>en<br />
selektiver zu gestalten. Dies war jedoch bei den Applikationen im Bereich der<br />
Pestizidrückstandsanalytik nicht erforderlich.<br />
Selbst als die SFE-<strong>Extraktion</strong>en bei relativ drastische <strong>Extraktion</strong>sbedingungen<br />
durchgeführt wurden, waren im allgemeinen die gewonnenen Extrakte in ihrer Reinheit<br />
mit den Extrakten herkömmlicher Multimethoden vergleichbar obwohl bei diesen z.T.<br />
sehr arbeits- <strong>und</strong> zeitaufwendige Clean-up Arbeitsschritte durchgeführt werden (siehe<br />
hierzu auch Abb. 3.1.4-1).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
36
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.4-1: MSD-Chromatogramme eines SFE-Extraktes <strong>und</strong> eines DFG S8-<br />
Extraktes [3] aus Birnen im Vergleich (SCAN-Modus)<br />
(SFE-Bedingungen siehe Anlage1)<br />
Ab<strong>und</strong>ance<br />
1400000<br />
1300000<br />
1200000<br />
1100000<br />
1000000<br />
900000<br />
800000<br />
700000<br />
600000<br />
500000<br />
400000<br />
300000<br />
200000<br />
100000<br />
0<br />
Time--><br />
Ab<strong>und</strong>ance<br />
1200000<br />
1100000<br />
1000000<br />
900000<br />
800000<br />
700000<br />
600000<br />
500000<br />
400000<br />
300000<br />
0<br />
Time--><br />
11.39<br />
12.41<br />
13.20<br />
13.26<br />
12.87<br />
12.83<br />
12.13<br />
11.28<br />
12.63<br />
11.39<br />
14.45<br />
TIC: 0301001.D<br />
Birne, SFE-Extrakt 2g/ml Acetonitril, 1 µl in KAS, SCAN<br />
Diphenylamin<br />
Fettsäuren<br />
15.41<br />
15.29<br />
14.93<br />
16.94<br />
16.85<br />
Fettsäuren<br />
17.37 17.67 17.75<br />
17.31<br />
17.21<br />
Procymidon<br />
Fettsäuren<br />
ISTD<br />
20.99<br />
Iprodion<br />
21.74<br />
Phthalat<br />
Phosalon<br />
12.00 14.00 16.00 18.00 20.00 22.00 24.00<br />
12.41<br />
Diphenylamin<br />
13.20<br />
200000<br />
10.24 10.37<br />
10000010.42<br />
11.28<br />
13.26<br />
15.42<br />
12.76 13.23<br />
12.88<br />
12.83 14.45<br />
12.13<br />
11.66 12.01 12.05<br />
11.89 11.96 12.24 12.72<br />
12.5313.46<br />
14.93<br />
14.51<br />
14.70 15.29 15.56<br />
TIC: 0401002.D<br />
Birne, S8-Extrakt 2g/ml Isooktan, 1 µl in KAS, SCAN<br />
Fettsäuren<br />
16.94<br />
16.85<br />
Fettsäuren<br />
Procymidon<br />
17.77<br />
17.67<br />
17.04 17.21<br />
(KAS= Kaltaufgabesystem)<br />
Fettsäuren<br />
ISTD<br />
20.99<br />
Iprodion<br />
21.75<br />
Phthalat<br />
23.41<br />
23.59<br />
Phosalon<br />
12.00 14.00 16.00 18.00 20.00 22.00 24.00<br />
Um festzustellen, wie sich eine Veränderung der <strong>Extraktion</strong>sparameter (Temperatur,<br />
Druck, Dichte, Modifier) auf die <strong>Extraktion</strong>sausbeuten auswirkt, wurde eine mit<br />
Hydromatrix im Verhältnis 3:2 vermengte Salatprobe bei unterschiedlichen Bedingungen<br />
extrahiert.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
37
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.4-1: Untersuchungsergebnisse eine Salatprobe bei Variation der<br />
<strong>Extraktion</strong>sparameter<br />
<strong>Extraktion</strong>sbedingungen ermittelte Gehalte<br />
in mg/kg<br />
Modifier<br />
Temperatur Druck Dichte Procymidon Oxadixyl direkt in die<br />
(°C) (bar) (g/ml)<br />
<strong>Extraktion</strong>shülse<br />
45 376 0,93 0,021 0,027<br />
50 350 0,9 0,025 0,032<br />
55 347 0,88 0,022 0,029<br />
60 329 0,85 0,026 0,031<br />
50 350 0,9 0,022 0,020 0,5 ml Methanol<br />
55 347 0,88 0,021 0,030 0,5 ml Methanol<br />
60 329 0,85 0,020 0,025 0,2 ml Methanol<br />
60 329 0,85 0,024 0,029 0,5 ml Methanol<br />
Wie in Tab. 3.1.4-1 ersichtlich, ließen sich durch die Variation der aufgeführten<br />
Parameter keine signifikanten Unterschiede bei den <strong>Extraktion</strong>sausbeuten der Pestizide<br />
feststellen. Die Abweichungen liegen innerhalb der üblichen analytischen Streubereiche<br />
[18].<br />
Variation des Elutionsmittels der Festphasenfalle:<br />
Bei Verwendung des HP-Gerätes werden die Extrakte auf einer Festphasenfalle (z.B.<br />
ODS) aufgefangen. Nach der <strong>Extraktion</strong> werden sie mit Hilfe eines organischen<br />
Lösungsmittels aus der Festphasenfalle in ein 1,5-ml Vorlagegläschen eluiert. Dabei<br />
kann die Falle beheizt werden. Um die gewünschten Analyten in das 1,5 ml Vorlagegläschen<br />
zu eluieren, ist es wichtig ein Lösungsmittel auszuwählen das gute Lösungseigenschaften<br />
aufweist.<br />
In einem Versuch wurden die Lösungsmittel Acetonitril <strong>und</strong> Methanol diesbezüglich miteinander<br />
verglichen (siehe Tab. 3.1.4-2).<br />
Unpolare Lösungsmittel wie Isooctan wurden nicht in den Versuch miteinbezogen, da<br />
sie das nach der <strong>Extraktion</strong> oft etwas feuchte Festphasenmaterial nicht benetzen<br />
können.<br />
Auch bei diesem Versuch lagen die Unterschiede in den erzielten Ergebnissen innerhalb<br />
der üblichen analytischen Streubreite (siehe Tab. 3.1.4-2).<br />
Acetonitril ist prinzipiell wegen seines höheren Siedepunktes <strong>und</strong> der geringeren<br />
Polarität besser für die Gaschromatographie geeignet als Methanol.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
38
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.4-2: Vergleich <strong>von</strong> Acetonitril <strong>und</strong> Methanol als Elutionslösungsmittel,<br />
extrahierte Probe: Salat<br />
Pestizid<br />
Lösungsmittel<br />
(in mg/kg)<br />
Dimethoat Vinclozolin Procymidon Oxadixyl Benalaxyl<br />
Methanol 0,53 0,82 2,7 0,70 0,008<br />
0,54 0,89 2,76 0,76 0,006<br />
0,61 0,98 2,95 0,88 0,010<br />
0,66 1,16 3,21 0,85 0,010<br />
Mittelwert<br />
0,59 0,96 2,91 0,80 0,009<br />
Acetonitril 0,57 1,31 3,35 0,78 0,007<br />
0,57 1,17 3,00 0,77 0,008<br />
0,57 1,21 3,05 0,73 0,008<br />
0,61 1,00 2,62 0,78 0,008<br />
Mittelwert<br />
0,58 1,17 3,01 0,77 0,008<br />
Gesamt-Mittelwert (n=8) 0,58 1,07 2,96 0,78 0,008<br />
Variationskoeffizient<br />
in %<br />
7,3 15,9 8,6 7,5 16,7<br />
3.1.4.2 Durchführung der Multimethode<br />
In Abb. 3.1.4-2 sind schematisch die Arbeitsschritte der ausgearbeiteten SFE-<br />
Multimethode aufgeführt. Eine detaillierte Analysenvorschrift findet sich in Anlage 1<br />
(Code 100E3101). Die allermeisten Obst- <strong>und</strong> Gemüsesorten können nach diesem<br />
Verfahren aufgearbeitet werden. Je nach Matrix können geringfügige Abweichungen<br />
<strong>von</strong> diesem Schema erforderlich sein (vgl. Kap. 2.6.2).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
39
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.4-2: Durchführungsschema der Multimethode (siehe auch Anlage 1)<br />
Analyse mit<br />
LC/MS<br />
<strong>Extraktion</strong>sbedingungen:<br />
SFE-Parameter für HP 7680T:<br />
Probenvorbereitung<br />
ggf. pH-Wert-Einstellung<br />
Probe mit Hydromatrix vermischen<br />
(Verhältnis: z.B. 3:2,5)<br />
ein Aliquot in die <strong>Extraktion</strong>shülse füllen<br />
Supercritical Fluid Extraction (SFE)<br />
• <strong>Extraktion</strong>sdruck: 329 bar, Temperatur: 55°C<br />
• Dichte: 0,89 g/ml<br />
• statische <strong>Extraktion</strong>: 2 min<br />
• dynamische <strong>Extraktion</strong>: 25 min<br />
• CO2-Fluß: 1,8 ml/min<br />
• Fallenmaterial: ODS, 10°C während der <strong>Extraktion</strong><br />
• Elutions-Lösungsmittel: Acetonitril<br />
ggf.<br />
Derivatisierung<br />
GC/MSD Analyse<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
40
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
SFE-Parameter für ISCO SFX 3560:<br />
• <strong>Extraktion</strong>sdruck: 330 bar, Temperatur: 55°C<br />
• Dichte: 0,89 g/ml<br />
• statische <strong>Extraktion</strong>: 2 min<br />
• dynamische <strong>Extraktion</strong>: 25 min<br />
• CO2-Fluß: 1,8 ml/min<br />
• Lösungsmittel in der Vorlage: 10 ml Aceton:Acetonitril (4:1)<br />
• Temperatur der Vorlage: 0°C<br />
3.1.4.3 Wiederfindungsversuche<br />
3.1.4.3.1 Vorgehensweise bei Dotierungen<br />
Für Wiederfindungsversuche wurde unbehandeltes Probenmaterial zerkleinert <strong>und</strong><br />
portionsweise (z.B. 3 g oder 2,5 g) in 50 ml Bechergläser (hohe Form) eingewogen.<br />
Anschließend wurde mit den Standardlösungen in Aceton dotiert. Die Konzentration<br />
der Standardlösungen wurde so gewählt, daß bis max. 200 µl der Lösung zugegeben<br />
werden mußten. Nach Zugabe <strong>von</strong> z.B. 2 g Hydromatrix wurde der Ansatz intensiv<br />
mit einem Spatel vermischt, für einige Minuten zur Verdampfung des Lösungsmittels<br />
stehen gelassen <strong>und</strong> quantitativ in die <strong>Extraktion</strong>shülse überführt.<br />
Auf ähnliche Art <strong>und</strong> Weise wurden weitere Probenaliquote mit der gleichen Menge<br />
reinen Acetons versetzt <strong>und</strong> wie oben beschrieben weiter aufgearbeitet. Die daraus<br />
erhaltenen Extrakte dienten zur Herstellung <strong>von</strong> „Matrix-Eichungen“.<br />
Wenn eine pH-Wert Einstellung nötig war, wurde zunächst das Probenmaterial auf<br />
den gewünschten pH-Wert eingestellt (z.B. durch Zugabe <strong>von</strong> 50 %iger K2CO3-<br />
Lösung) <strong>und</strong> wie oben beschrieben weiter verfahren.<br />
Bei flüssigen Proben wie Orangensaft wurden auch größere Probenmengen dotiert<br />
<strong>und</strong> mit Hydromatrix im entsprechenden Verhältnis vermischt. In die <strong>Extraktion</strong>shülsen<br />
wurden dann Aliquote dieser Mischung eingewogen. Diese Vorgehensweise<br />
bereitete bei zerkleinertem Obst <strong>und</strong> Gemüse Probleme, da keine ausreichende<br />
Homogenität erzielt werden konnte.<br />
3.1.4.3.2 Wiederfindungen mit HP 7680T<br />
Für die Durchführung <strong>von</strong> Wiederfindungsversuchen wurde zunächst eine Mischung<br />
<strong>von</strong> Pestiziden aus unterschiedlichen Pestizidklassen zusammengestellt. Die Dotierung<br />
erfolgte auf pestizidfreie Apfelmus-Matrix (Dotierung 0,5 µg pro 3 g Probe,<br />
entsprechend 0,167 ppm). Die hierbei erzielten Wiederfindungen <strong>und</strong> Variationskoeffizienten<br />
sind in Tab. 3.1.4-3 angegeben.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
41
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.4-3: Wiederfindungen verschiedener Pestizde mit der SFE-Multimethode<br />
Probe: Apfelmus, Dotierung: 0,5µ/Ansatz (0,167 ppm)<br />
Extraktor: HP 7680T<br />
Pestizid Ansatz Ansatz Ansatz Ansatz MittelWiederVariations- 1 2 3 4 wertfindungkoeffizient Wiederfindungen<br />
Sollwert 0,5µg/3g Ansatz<br />
[%] [%]<br />
HCB 0,478 0,474 0,492 0,479 0,481 96 1,4<br />
Carbofuran 0,504 0,495 0,478 0,486 0,491 98 2,0<br />
Dimethoat 0,492 0,497 0,429 0,490 0,477 95 5,8<br />
Pirimicarb 0,513 0,514 0,496 0,480 0,501 100 2,8<br />
Thiabendazol 0,159 0,157 0,172 0,144 0,158 32 6,3<br />
p,p-DDE 0,448 0,446 0,440 0,421 0,439 88 2,4<br />
Cyproconazol 0,502 0,488 0,486 0,517 0,498 100 2,5<br />
Iprodion 0,480 0,479 0,497 0,500 0,489 98 2,0<br />
Azinphos-Methyl 0,493 0,460 0,494 0,488 0,484 97 2,9<br />
Fenarimol 0,459 0,461 0,472 0,499 0,473 95 3,4<br />
Permethrin 0,429 0,414 0,421 0,405 0,417 83 2,1<br />
Analysenmethode: siehe Anhang 1<br />
Mit Ausnahme <strong>von</strong> Thiabendazol wurden für die extrahierten Substanzen sehr gute<br />
Wiederfindungen erzielt. Es ist zu beachten, daß Thiabendazol zwei basische Stickstoffatome<br />
in seinem Molekül aufweist <strong>und</strong> aus diesem Gr<strong>und</strong> eine <strong>Extraktion</strong> unter<br />
sauren Bedingungen, wie sie in Apfelmus vorliegen, erschwert ist (siehe Kap. 3.1.4.7.2<br />
<strong>und</strong> 3.1.5.3.1). Zudem wurde festgestellt, daß die Elution <strong>von</strong> Thiabendazol <strong>von</strong> der<br />
Festphasenfalle in die Vorlage vermutlich wegen Wechselwirkungen mit freien Silanol-<br />
Gruppen an der Oberfläche des ODS-Fallenmaterials ebenfalls erschwert ist (vgl. hierzu<br />
Kap. 3.1.5.2.2, Wechselwirkung <strong>von</strong> Wirkstoffen mit Oberflächen). Zu berücksichtigen<br />
ist hier auch die geringe Löslichkeit, die Thiabendazol in Acetonitril hat.<br />
In Tab. 3.1.4-4 werden die Wiederfindungsraten <strong>und</strong> Variationskoeffizienten (n=5) für<br />
zahlreichen Verbindungen angegeben die auf pestizidfreie Pfirsich-Martix dotiert<br />
wurden (Dotierung: 0,5 µg pro 3 g entsprechend 0,167 ppm).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
42
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.4-4: Wiederfindungen verschiedener Pestizde mit der SFE-Multimethode<br />
Probe: Pfirsich, Dotierung 0,5µ/Ansatz (0,167 ppm)<br />
Extraktor: HP 7680T<br />
Pestizid Wiederfindung<br />
Mittelwert<br />
%<br />
Variationskoeffizient<br />
in %<br />
Nachweisgrenze<br />
(3-faches<br />
Gr<strong>und</strong>linienrauschen)<br />
in ppm<br />
Azinphos-Ethyl 86,3 3,2 0,015<br />
Azinphos-Methyl 77,1 6,8 0,02<br />
Benalaxyl 94,7 3,4 0,013<br />
Binapacryl 90,9 3,8 0,013<br />
Biphenthrin 87,0 4,4 0,005<br />
Biphenyl 86,4 5,5 0,005<br />
Bitertanol 86,8 3,6 0,006<br />
Bromazil 80,3 5,7 0,02<br />
Bromophos 94,7 2,7 0,005<br />
Bromophos-Ethyl 108,8 4,3 0,005<br />
Brompropylat 85,2 5,5 0,005<br />
Bupirimat 90,8 7,7 0,025<br />
Buprofezin 90,3 4,6 0,01<br />
Carbaryl 79,0 7,0 0,005<br />
Carbofuran 88,8 2,9 0,005<br />
Chinomethionat 93,7 1,6 0,005<br />
Chlorfenvinphos 95,5 5,9 0,005<br />
Chlorpyrifos 85,9 4,2 0,005<br />
Chlorpyrifos-Methyl 82,9 5,0 0,005<br />
Chlorthalonil 90,9 2,9 0,005<br />
Chlozolinat 94,0 2,2 0,01<br />
Cyfluthrin 103,8 4,0 0,02<br />
Cyhalothrin lambda 81,8 6,3 0,02<br />
Cypermethrin 83,4 6,5 0,04<br />
Cyproconazol 89,1 3,9 0,005<br />
Deltamethrin 71,6 10,2 0,04<br />
Demeton-S-Methyl 83,8 11,4 0,02<br />
Demeton-S-Methyl-Sulfon 64,5 4,2 0,02<br />
Diazinon 84,6 5,5 0,005<br />
Dichlofluanid 76,5 6,8 0,005<br />
Dichloran 83,5 3,2 0,01<br />
p,p-Dichlorbenzophenon* 112,3 24,9<br />
Dicofol* 66,4 5,9 0,04<br />
Dicofol o,p 96,3 9,3 0,007<br />
Dieldrin 108,5 6,3 0,015<br />
Diethofencarb 105,8 1,3 0,005<br />
Dimethoat 81,8 5,2 0,04<br />
Diniconazol 96,3 1,6 0,01<br />
Dioxathion 85,4 5,7 0,008<br />
Diphenylamin 82,7 6,7 0,005<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
43
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Pestizid Mittelwert<br />
in %<br />
Variationskoeffizient<br />
in %<br />
Nachweisgrenze<br />
(3-faches<br />
Gr<strong>und</strong>linienrauschen)<br />
in ppm<br />
Disulfoton 70,3 2,1 0,01<br />
Endosulfan alpha 87,6 5,7 0,02<br />
Endosulfan beta 90,7 2,8 0,02<br />
Endosulfansulfat 117,8 4,1 0,006<br />
Endrin 88,8 4,0 0,01<br />
Ethion 89,3 6,4 0,005<br />
Fenarimol 94,0 3,5 0,025<br />
Fenchlorfos 95,8 1,8 0,005<br />
Fenitrothion 84,9 3,5 0,006<br />
Fenoxycarb 97,2 5,5 0,013<br />
Fenpropathrin 86,5 4,0 0,01<br />
Fenpropimorph 87,8 3,1 0,005<br />
Fenson 89,0 4,2 0,007<br />
Fenthion 86,6 5,0 0,005<br />
Fenthionsulfoxid 85,4 2,3 0,01<br />
Fenvalerat** 118,6 13,1 0,05<br />
Flusilazol 82,8 5,1 0,005<br />
Folpet 67,3 8,0 0,005<br />
Fonofos 91,3 5,4 0,005<br />
Hexaconazol 93,8 3,5 0,01<br />
Hexythiazox 80,8 10,0 0,1<br />
Imazalil 73,4 9,7 0,08<br />
Iprodion 79,3 4,2 0,015<br />
Lindan 94,4 1,6 0,005<br />
Malaoxon 94,4 6,3 0,005<br />
Malathion 86,7 2,8 0,007<br />
Mecarbam 91,4 7,1 0,015<br />
Metalaxyl 92,9 1,7 0,01<br />
Metazachlor 99,3 1,9 0,02<br />
Methidathion 87,9 2,9 0,01<br />
Methiocarb 96,2 5,5 0,015<br />
Mevinphos 85,4 2,4 0,01<br />
Myclobutanil 83,8 1,7 0,033<br />
Nuarimol 88,8 4,4 0,03<br />
Omethoat*** 9,0 14,7 -<br />
Orthophenylphenol 89,3 4,8 0,005<br />
Oxadixyl 90,7 5,5 0,025<br />
Parathion 82,6 4,7 0,005<br />
Parathion-Methyl 86,1 4,9 0,01<br />
Penconazol 86,3 3,1 0,005<br />
Permethrin 106,7 3,7 0,01<br />
Phosalon 78,4 4,7 0,007<br />
Phosmet 83,2 6,9 0,005<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
44
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Pestizid Mittelwert<br />
in %<br />
Nachweisgrenze<br />
(3-faches<br />
Gr<strong>und</strong>linienrauschen)<br />
in ppm<br />
Pirimicarb 81,9 3,2<br />
0,005<br />
Pirimiphos-Methyl 93,2 2,8 0,005<br />
Prochloraz 71,7<br />
Variationskoeffizient<br />
in %<br />
16,5 0,1<br />
Procymidon 83,9 5,2 0,005<br />
Profenofos 92,6 3,5 0,005<br />
Propargit 72,0 5,4 0,013<br />
Propiconazol 84,6 3,4 0,01<br />
Propoxur 88,6 3,2 0,007<br />
Propyzamid 92,3 1,6 0,005<br />
Prothiophos 89,3 3,0 0,005<br />
Pyrazophos 85,3 3,3 0,01<br />
Pyrifenox 1 88,2 3,5<br />
0,015<br />
Pyrifenox 2 84,4 5,9 0,01<br />
Pyrimethanil 90,8 2,7 0,005<br />
Quinalphos 83,3 4,7 0,015<br />
Quintozen 85,8 1,8 0,01<br />
Tebuconazol** 130,0 2,5 0,05<br />
Tebufenpyrad 89,6 2,8 0,005<br />
Tecnazen 88,4 1,2 0,005<br />
Tetradifon 83,2 5,4 0,007<br />
Tetramethrin 86,7 3,7 0,005<br />
Thiabendazol 70,8 9,5 0,015<br />
Tolclofos-Methyl 95,6 1,7 0,005<br />
Tolylfluanid 78,4 5,5 0,005<br />
Triadimefon 91,1 4,2 0,013<br />
Triadimenol 92,9 3,4 0,01<br />
Triazophos 90,2 2,5 0,02<br />
Vinclozolin 83,3 4,6 0,005<br />
Analysenmethode: siehe Anlage 1<br />
* Dicofol wird im Injektor teilweise zu p,p’-Dichlorbenzophenon abgebaut<br />
** gestört<br />
*** hohe Polarität<br />
Im Bereich der Pestizidrückstandsanalytik gilt eine Methode als für einen Stoff geeignet,<br />
wenn die Wiederfindung im Bereich zwischen 70 <strong>und</strong> 110 % liegt. Bei den hier<br />
aufgeführten Stoffen wurde dies lediglich für Omethoat <strong>und</strong> Demeton-S-Methyl-Sulfon<br />
nicht erreicht.<br />
Bei den Stoffen Folpet <strong>und</strong> Dicofol u.a. kommt es, je nach Zustand des Injektionssystems<br />
zu Zersetzungen. Hier ist nicht die <strong>Extraktion</strong>, sondern die Bestimmung<br />
problematisch.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
45
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.4.3.3 Wiederfindungen mit ISCO SFX 3560<br />
Einer pestizidfreien Karottenprobe wurde eine Mischung <strong>von</strong> Pestiziden zudotiert (0,167<br />
ppm). Pro <strong>Extraktion</strong>sansatz wurden je 3 g Probe eingesetzt, die mit 2,5 g Hydromatrix<br />
vermengt wurden. Die folgende Tab. 3.1.4-5 gibt die erzielten Wiederfindungen <strong>und</strong><br />
Variationskoeffizienten an.<br />
Tab. 3.1.4-5: Wiederfindungen verschiedener Pestizde mit der SFE-Multimethode<br />
Probe: Karotte, Dotierung: 0,5µ/Ansatz (0,167 ppm)<br />
Extraktor: ISCO SFX-3560<br />
Pestizid Ansatz Ansatz Ansatz Mittelwert mittlere Variations-<br />
1 2 3<br />
Wieder- koeffizient<br />
Wiederfindung in µg/3g Ansatz findung [%]<br />
(Sollwert 0,5)<br />
HCB 0,454 0,420 0,444 0,439 88 4,0<br />
Carbofuran 0,473 0,462 0,464 0,466 93 1,3<br />
Dimethoat 0,513 0,519 0,531 0,521 104 1,8<br />
Pirimicarb 0,479 0,454 0,464 0,466 93 2,7<br />
Thiabendazol 0,363 0,331 0,369 0,354 71 5,8<br />
p,p-DDE 0,446 0,426 0,451 0,441 88 3,0<br />
Cyproconazol 0,487 0,441 0,450 0,459 92 5,3<br />
Iprodion 0,452 0,425 0,449 0,442 88 3,3<br />
Azinphos-Methyl 0,495 0,447 0,505 0,482 97 6,4<br />
Fenarimol 0,421 0,448 0,466 0,445 89 5,1<br />
Permethrin 0,444 0,414 0,439 0,432 87 3,7<br />
Probe/Hydromatrix 3 g : 2,5 g<br />
Extraktor: ISCO SFX 3560, <strong>Extraktion</strong>sbedingungen: siehe Kap. 3.1.4.2<br />
Bestimmung GC/MSD: siehe Anlage 1<br />
Die hierbei erzielten Wiederfindungen liegen, wie auch bei Verwendung des Extraktors<br />
der Fa. HP, sehr hoch (vgl. Tab. 3.1.4.-3). Bei Thiabendazol ist allerdings hier eine<br />
höhere Wiederfindungsrate erzielt worden. Dies läßt sich zum einen begründen durch<br />
den höheren pH-Wert den die Karottenmatrix im Vergleich zur Apfelmusmatrix hat <strong>und</strong><br />
zum anderen durch die Tatsache, daß beim ISCO- Extraktor die Extrakte direkt in eine<br />
flüssige Phase eingeleitet werden.<br />
Da Carbendazim nicht direkt gaschromatographisch bestimmbar ist, wurde nach der<br />
<strong>Extraktion</strong> eine Derivatisierung mit Pentafluorbenzylbromid durchgeführt. Bei dieser<br />
Reaktion werden auch Thiabendazol <strong>und</strong> Carbofuran umgesetzt (siehe Tab. 3.1.4-6).<br />
Auffällig ist, daß bei Thiabendazol die ermittelte Wiederfindung <strong>von</strong> 71 % ohne<br />
Derivatisierung auf 59 % nach der Derivatisierung gesunken ist. Die Gründe für diese<br />
Abnahme liegen nicht bei der Derivatisierung sondern eher an der Neigung des<br />
Thiabendazols sich an Oberflächen zu adsorbieren. Eine Abnahme der Konzentration<br />
<strong>von</strong> Thiabendazol in Lösungen mit fortschreitender Zeit wurde häufiger festgestellt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
[%]<br />
46
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.4-6: Wiederfindungen nach Derivatisierung mit PFB-Br<br />
Pestizid Ansatz Ansatz Ansatz Mittelwert mittlere Variations-<br />
1 2 3<br />
Wieder- koeffizient<br />
Wiederfindung in µg/3g Ansatz findung [%]<br />
(Sollwert 0,5)<br />
[%]<br />
Carbofuran 0,461 0,434 0,440 0,445 89 3,2<br />
Thiabendazol 0,288 0,288 0,302 0,293 59 2,8<br />
Carbendazim 0,411 0,423 0,453 0,429 86 5,0<br />
Probe/Hydromatrix 3 g : 2,5 g<br />
Extraktor: ISCO SFX 3560, <strong>Extraktion</strong>sbedingungen: siehe Kap. 3.1.4.2<br />
Bestimmung GC/MSD: siehe Anlage 1<br />
3.1.4.4 Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen<br />
Wie in Tab. 3.1.4-4 bereits dargestellt, wurden die Nachweisgrenzen für eine Vielzahl<br />
<strong>von</strong> Stoffen abgeschätzt (3-faches Gr<strong>und</strong>linien-Rauschen). Für einige ausgewählte<br />
Stoffe aus verschiedenen Stoffgruppen wurden die Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen<br />
nach dem DFG-Eichgeradenverfahren ermittelt (siehe Tab. 3.1.4-7). Hierzu<br />
wurden Wiederfindungsversuche bei vier verschiedenen Konzentrationen jeweils 4 mal<br />
durchgeführt (16 Aufarbeitungen) [80]. Die Dotierungen erfolgten auf Apfelmatrix, wobei<br />
die niedrigste dotierte Konzentration im Bereich der erwarteten Nachweisgrenze lag <strong>und</strong><br />
die höchste ein Zehnfaches hier<strong>von</strong> [81].<br />
Tab. 3.1.4-7: Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen nach DFG [82]<br />
Pestizid<br />
NG (µg/kg) BG (µg/kg) kleinste **<br />
Höchstmenge [34]<br />
(µg/kg)<br />
Azinphos-Methyl 8 12 50<br />
Carbofuran 5 8 200<br />
Cyproconazol 3 8 50<br />
Dimethoat 8 14 50<br />
Fenarimol 9 13 20<br />
Thiabendazol* 6 11 10<br />
Permethrin 6 13 50<br />
Iprodion 11 16 20<br />
HCB 9 16 10<br />
Pirimicarb 8 13 50<br />
p,p´-DDE<br />
Probe/Hydromatrix 3 g : 2,5 g<br />
5 8 50<br />
Extraktor: ISCO SFX 3560, <strong>Extraktion</strong>sbedingungen: siehe Kap. 3.1.4.2<br />
Bestimmung GC/MSD: siehe Anlage 1<br />
*nach Derivatisierung mit PFB-Br, **für Säuglingsnahrung 10 µg/kg<br />
Diese Ergebnisse zeigen, daß die SFE erfolgreich in einem Rückstandslaboratorium zur<br />
routinemäßigen Pestizidanalytik eingesetzt werden kann.<br />
Eine detaillierte Analysenvorschrift zur Bestimmung <strong>von</strong> Pestiziden in Obst <strong>und</strong><br />
Gemüse befindet sich im Anlage 1 (Code 100E3101).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
47
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.4.5 Methodenvergleich<br />
Um die hier vorgestellte SFE-Multimethode (siehe Anlage 1) mit den herkömmlichen in<br />
der Routineanalytik eingesetzten Multimethoden (DFG-S8 <strong>und</strong> DFG-S19) zu<br />
vergleichen, wurden zahlreiche Proben aus dem Handel parallel untersucht. Die<br />
Ergebnisse sind in Anlage 5 tabellarisch dargestellt.<br />
Aus den Ergebnissen wird ersichtlich, daß durch SFE-<strong>Extraktion</strong> für fast alle Wirkstoffe,<br />
mit den DFG-Methoden vergleichbare Ergebnisse erzielt werden.<br />
Für die zum Teil unterschiedlichen Ergebnisse kommen zusätzlich zu den Unterschieden<br />
bei den <strong>Extraktion</strong>sausbeuten auch weitere Ursachen in Frage:<br />
1. Analytische Sreubreite:<br />
Insbesondere bei Einfach- aber auch bei Doppelbestimmungen ist die statistische<br />
Sicherheit gering. Bei geringen Gehalten ist die analytische Streubreite sehr hoch. Im<br />
allgemeinen wird bei der gängigen Rückstandsanalytik <strong>von</strong> Pestiziden eine<br />
Streubreite <strong>von</strong>:<br />
100 % bei Meßwerten <strong>von</strong> 0,01 mg/kg,<br />
50 % bei Meßwerten <strong>von</strong> 0,1 mg/kg <strong>und</strong><br />
25 % bei Meßwerten <strong>von</strong> 1 mg/kg<br />
angegeben [18]. Diese Größenordnung hat sich oft bei Ringversuchen bestätigt.<br />
2. Inhomogenitäten der Proben (vgl. Kap. 3.1.4.7.1 <strong>und</strong> 3.1.3.1)<br />
3. Fehlerquellen bei der Messung z.B. durch Matrixeffekte (vgl. Kap. 3.1.2.2).<br />
Bedingt durch die analytische Streuung sind einzelne Analysenergebnisse stets mit<br />
einer Unsicherheit behaftet. Um diese Unsicherheit zu verringern werden Mehrfachbestimmungen<br />
durchgeführt <strong>und</strong> Mittelwerte gebildet. Aus diesem Gr<strong>und</strong> wurde eine<br />
Erdbeerprobe aus dem Handel mehrfach untersucht. Insgesamt wurden 5 Untersuchungen<br />
nach DFG-S8 <strong>und</strong> 12 Untersuchungen mit SFE gemacht. Die Untersuchungsergebnisse<br />
sind in Tab. 3.1.4-8 aufgelistet.<br />
5-fach-Bestimmung nach der DFG-S8 Methode:<br />
Die DFG-S8-Methode wurde in einer leicht abgewandelten Form wie folgt durchgeführt:<br />
50 g zerkleinerte Probe werden mit Aceton (Endvolumen 200ml) am Ultra-Turrax<br />
homogenisiert. Der Extrakt wird durch eine Nutsche filtriert. Ein Aliquot (40 ml) des<br />
filtrierten Acetonextraktes wird mit 5 ml gesättigter Natriumchloridlösung <strong>und</strong> 50 ml<br />
Wasser versetzt <strong>und</strong> zwei mal mit je 10 ml Dichlormethan ausgeschüttelt. Die vereinigten<br />
Dichlormethanphasen werden mit Natriumsulfat getrocknet <strong>und</strong> am<br />
Rotationsverdampfer eingeengt. Der eingeengte Extrakt wird in 10 ml Cyclohexan/Essigester<br />
(1:1) aufgenommen. Ein Aliquot da<strong>von</strong> (4 ml) wird gelpermeationschromatographisch<br />
(GPC) gereinigt. Das Eluat wird an der Rotationszentrifuge eingeengt<br />
in Isooctan (mit ISTD) aufgenommen <strong>und</strong> zur Chromatographie verwendet.<br />
Die bei diesem Methodenvergleich erzielten Ergebnisse werden in Tab. 3.1.4-8 sowie in<br />
den Abb. 3.1.4-3 <strong>und</strong> 3.1.4-4 aufgeführt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
48
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.4-8: Ergebnisse des Methodenvergleiches DFG-S8 (mod.) <strong>und</strong><br />
SFE-Multimethode<br />
Pestizid Mittelwerte Standard-<br />
Variationsabweichungen<br />
koeffizienten<br />
SFE S8 SFE S8 SFE S8*<br />
α-Endosulfan 0,009 0,009 0,0013 0,0009 17% 10%<br />
β-Endosulfan 0,023 0,020 0,0029 0,001 13% 5%<br />
Endosulfansulfat 0,027 0,024 0,0033 0,001 12% 4,2%<br />
Metalaxyl 0,106 0,082 0,0067 0,005 6% 6,1%<br />
*Alle 5 Bestimmungen mit der DFG-S8-Methode wurden nebeneinander aufgearbeitet (keine echten<br />
Wiederholbestimmungen)<br />
Abb. 3.1.4-3: Mehrfachbestimmung einer Erdbeerprobe mit der SFE-Multimethode<br />
0,14<br />
0,12<br />
0,1<br />
0,08<br />
0,06<br />
0,04<br />
0,02<br />
0<br />
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 MW<br />
Nummer des Versuchs<br />
Metalaxyl<br />
Endosulfansulfat<br />
ß-Endosulfan<br />
a-Endosulfan<br />
49<br />
Mittelwerte in ppm<br />
Metalaxyl 0,106<br />
a-Endosulfan 0,009<br />
ß-Endosulfan 0,023<br />
Endosulfansulfat 0,027<br />
Abb. 3.1.4-4: Mehrfachbestimmung einer Erdbeerprobe mit der DFG-S8-Methode<br />
mg/kg<br />
0,14<br />
0,12<br />
0,1<br />
0,08<br />
0,06<br />
0,04<br />
0,02<br />
0<br />
1 2 3 4<br />
5<br />
Nummer des Versuchs<br />
6 MW<br />
Metalaxyl<br />
Endosulfansulfat<br />
ß-Endosulfan<br />
a-Endosulfan<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
Mittelwerte in ppm<br />
Metalaxyl 0,082 mg/kg<br />
a-Endosulfan 0,009<br />
ß-Endosulfan 0,020<br />
Endosulfansulfat 0,024
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
In Tab. 3.1.4-9 werden die einzelnen Arbeitsschritte die bei der SFE-Multimethode<br />
(siehe Anlage 1) <strong>und</strong> der DFG S8 Methode anfallen, gegenübergestellt.<br />
Tab. 3.1.4-9: Gegenüberstellung der DFG-S8 <strong>und</strong> der SFE-Methode:<br />
SFE<br />
DFG S8 (modifiziert)<br />
Arbeitsschritte:<br />
• Probenzerkleinerung <strong>und</strong><br />
• Probenzerkleinerung <strong>und</strong><br />
Homogenisierung<br />
Homogenisierung<br />
• einwiegen<br />
• einwiegen<br />
• Zugabe <strong>von</strong> Adsorbens<br />
• mit Aceton homogenisieren<br />
• Einfüllen in die <strong>Extraktion</strong>shülse<br />
• Aliquotierung<br />
• Vorlage mit ISTD-Lösung versetzen • Kochsalzlösung zugeben<br />
• <strong>Extraktion</strong><br />
• mit Dichlormethan ausschütteln<br />
• Chromatographie<br />
• mit Natriumsulfat trocknen<br />
• am Rotationsverdampfer konzentrieren<br />
• in 10 ml Ethylacetat/Cyclohexan<br />
aufnehmen<br />
• Gelpermeationschromatographie<br />
• Lösungsmittel entfernen<br />
• mit ISTD-Lösung aufnehmen<br />
• Chromatographie<br />
Chemikalienverbrauch:<br />
40 g hochreines Kohlendioxid<br />
techn. Kohlendioxid zur Kühlung der Falle<br />
3 g Hydromatrix<br />
6,5 ml Acetonitril<br />
5 ml Cyclohexan: Ethylacetat 1:1<br />
Arbeitszei für Aufarbeitung:<br />
4 St<strong>und</strong>en/12 Proben<br />
200 ml Aceton<br />
20 ml Dichlormethan<br />
300 ml Cyclohexan/Essigester (1:1)<br />
Natriumsulfat<br />
Natriumchlorid<br />
Arbeitszeit für Aufarbeitung:<br />
16 St<strong>und</strong>en/12 Proben<br />
Der Vergleich zeigt, daß die Vorteile der SFE vor allem in der Effizienz <strong>und</strong> der<br />
Einsparung <strong>von</strong> Lösungsmitteln <strong>und</strong> Personalkosten liegen.<br />
Die wenigen Arbeitsschritte <strong>und</strong> die weitgehende Automatisierung bei der SFE<br />
minimieren die Fehlerquellen <strong>und</strong> müßten zu einer besseren Vergleichbarkeit<br />
zwischen Laboratorien führen.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
50
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.4.6 Matrixbezogene Multimethoden<br />
Unsere Erfahrungen der letzten Jahre haben gezeigt, daß in die Praxis der Lebensmittelüberwachung<br />
die Entwicklung <strong>und</strong> Verwendung <strong>von</strong> matrixbezogenen Multimethoden<br />
viele Vorteile hat. Eine matrixbezogene Multimethode berücksichtigt ggf. die<br />
Eigenheiten der betreffenden Matrix (pH-Wert, Wasser- <strong>und</strong> Fettgehalt) <strong>und</strong> zielt nur auf<br />
Stoffe ab, die in dieser Matrix zu erwarten sind. Die selektive Erfassung der<br />
betreffenden Pestizide wird durch die Verwendung eines GC/MSD im SIM-Modus als<br />
Bestimmungssystem ermöglicht.<br />
Um festzustellen, welche Wirkstoffe für die einzelnen Probenarten relevant sind, wurden<br />
Daten aus Jahresberichten <strong>von</strong> Untersuchungseinrichtungen der B<strong>und</strong>esrepublik<br />
Deutschland, Monitoring-Daten verschiedener Staaten sowie Literaturangaben<br />
ausgewertet. Darüber hinaus wurden z.B. aus dem INTERNET Anwendungsempfehlungen<br />
<strong>und</strong> Angaben zu angewendeten Pestizidmengen gesammelt.<br />
Die Anwendung <strong>von</strong> matrixbezogenen analytischen Verfahren ermöglicht ein zielgerichteteres<br />
<strong>und</strong> dadurch effektiveres Arbeiten, da der Umfang der Untersuchungen<br />
auf Stoffe begrenzt wird, die für die jeweilige Matrix relevant sind. Auch im Hinblick auf<br />
die Qualitätssicherung hat diese Vorgehensweise Vorteile, da die Methodenvalidierung<br />
nur für die relevanten Stoff-Matrix-Kombinationen erfolgen muß.<br />
Für folgende Matrizes wurden spezifische Bestimmungsmethoden entwickelt <strong>und</strong><br />
teilweise validiert: Trauben, Kernobst, Zitrusfrüchte <strong>und</strong> Beerenobst.<br />
3.1.4.6.1 Pestizide in Zitrusfrüchten<br />
Zitrusfrüchte zählen zu den Obstsorten die weltweit am meisten konsumiert werden.<br />
Beim Anbau <strong>von</strong> Zitrusfrüchten werden üblicherweise mehrfach Pflanzenschutzmittel<br />
(überwiegend Fungizide <strong>und</strong> Insektizide) eingesetzt. Meist findet nach der Ernte auch<br />
eine Behandlung der Oberfläche mit Fungiziden statt. Die Früchte beinhalten daher oft<br />
eine Vielzahl unterschiedlicher Wirkstoffe. Bei Untersuchungen <strong>von</strong> Zitrusfrüchten im 2.<br />
Halbjahr 1996 am CVUA Stuttgart wurde eine mittlere Anzahl <strong>von</strong> 6,0 verschiedenen<br />
Wirkstoffen pro Probe festgestellt [29].<br />
Die in Zitrusfrüchten vorkommenden Wirkstoffe unterscheiden sich zum Teil erheblich in<br />
ihrem chemischen Verhalten, so daß derzeit zu ihrer Erfassung der Einsatz mehrerer<br />
analytischer Verfahren notwendig ist [vgl. 29]. Diese Verfahren sind z.T. sehr zeit- <strong>und</strong><br />
arbeitsaufwendig <strong>und</strong> benötigen hohe Mengen an organischen Lösungsmitteln.<br />
Ein Ersatz einiger dieser Methoden durch weitgehend automatisierte SFE-Methoden<br />
würde viele Vorteile mit sich bringen. Dies wurde am Beispiel 2,4-D <strong>und</strong> Carbendazim<br />
gezeigt (siehe Kap. 3.1.5.4.2 <strong>und</strong> 3.1.5.3.2). Diese bei Zitrusfrüchten (2,4-D) <strong>und</strong> Obst<br />
allgemein (Carbendazim) häufig angewendeten Verbindungen lassen sich mit Hilfe der<br />
SFE bedeutend schneller <strong>und</strong> einfacher als mit den derzeit gebräuchlichen naßchemischen<br />
Einzelbestimmungs-Methoden bestimmen.<br />
Um festzustellen, inwieweit sich die für Zitrusfrüchte relevanten Stoffe auch mittels SFE<br />
erfassen lassen, wurden Wiederfindungsversuche durchgeführt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
51
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Die erzielten Wiederfindungsraten werden in Tab. 3.1.4-10 <strong>und</strong> in Abb. 3.1.4-5 aufgeführt.<br />
Zum Vergleich sind in Abb. 3.1.4-5 auch die entsprechenden Daten einer<br />
kürzlich in unserem Hause entwickelten naßchemischen Methode [29] mit aufgeführt.<br />
Tab. 3.1.4-10: Wiederfindung <strong>von</strong> Stoffen aus dotierten Orangen (n=5)<br />
Wiederfindung in % Variationskoeffizienten %<br />
Pestizid SFE naßchemisch SFE naßchemisch<br />
(0,167 ppm) nach [29]<br />
(0,25 ppm)<br />
nach [29]<br />
Biphenyl 94 85 3,5 6,5<br />
Brompropylat 70 91 6,9 3,1<br />
Chlorfenvinphos 79 87 6 3,9<br />
Chlorpyriphos-Methyl 82 96 5,8 5,1<br />
Diazinon 84 89 4,1 5,2<br />
Dichloran 90 70 17,4 8,1<br />
Dicofol* 81 95 9,9 5<br />
Dimethoat 87 84 9,1 9,9<br />
α-Endosulfan 71 90 6,8 5,1<br />
ß-Endosulfan 92 91 4,8 4,7<br />
Endosulfansulfat 80 94 20,5 3,2<br />
Fenarimol 100 76 9,5 6,1<br />
Fenitrothion 72 90 6,4 4,8<br />
Fenthion 81 80 12,9 5,1<br />
Fonofos 95 100 7,7 3,9<br />
Mecarbam 90 92 10,1 4,6<br />
Metalaxyl 108 80 3,1 3,4<br />
Methidathion 76 87 14,1 5,4<br />
Myclobutanil 105 96 3,5 4,7<br />
Parathion 83 92 4,5 4,6<br />
Parathion-Methyl 96 89 12,2 4,2<br />
Pirimiphos-Methyl 74 84 5,4 9,8<br />
Prochloraz 92 106 3,6 5,3<br />
Procymidon 103 89 3,3 3,6<br />
Propiconazol 87 90 4,8 6,1<br />
Pyridaphenthion 99 82 11,6 6,4<br />
Quinalphos 79 89 4,5 5,1<br />
Tetradifon 84 94 4,4 3,4<br />
Vinclozolin 89 91 2,8 3,4<br />
Analysenmethode: siehe Anlage 1, Code: 100E3101<br />
Probe: gefroren zerkleinerte Orangen, Probenmenge 3g, Hydromatrix 1,5g<br />
Bestimmung: mittels GC/MSD<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
52
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.4-5: Wiederfindungen bei Dotierungsversuchen nach der SFE-Methode <strong>und</strong><br />
nach [29], dotierte Matrix: Orange (je n=5), Dotierungen 0,167 ppm (SFE),<br />
0,25 ppm (naßchemische Methode)<br />
Vinclozolin<br />
Tetradifon<br />
Quinalphos<br />
Pyridaphenthion<br />
Propiconazol<br />
Procymidon<br />
Prochloraz<br />
Pirimiphos-Methyl<br />
Parathion-Methyl<br />
Parathion<br />
Myclobutanil<br />
Methidathion<br />
Metalaxyl<br />
Mecarbam<br />
Fonofos<br />
Fenthion<br />
Fenitrothion<br />
Fenarimol<br />
Endosulfan-Sulfat<br />
b-Endosulfan<br />
a-Endosulfan<br />
Dimethoat<br />
Dicofol*<br />
Dichloran<br />
Diazinon<br />
Chlorpyriphos-Methyl<br />
Chlorfenvinphos<br />
Brompropylat<br />
Biphenyl<br />
0 35 70 105<br />
SFE naßchemisch [3]<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
53
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.4.6.2 Pestizide in Kernobst<br />
Äpfel <strong>und</strong> Birnen gehören zu den am meisten konsumierten Obstsorten in Deutschland.<br />
Während des Anbaus werden mehrfach Insektizide <strong>und</strong> Fungizide eingesetzt.<br />
Insbesondere Äpfel werden häufig über einen längeren Zeitraum unter klimatisierten<br />
Bedingungen gelagert. Vor der Einlagerung werden die Früchte oft durch Eintauchen in<br />
Lösungen, die Fungizide <strong>und</strong>/oder Bräunungsverhütungsmittel (z.B. Diphenylamin)<br />
enthalten, behandelt. Nach den Untersuchungen der letzten Jahre zeigt Kernobst eine<br />
vergleichsweise geringe Pestizidbelastung, wobei im allgemeinen in Birnen mehr<br />
Fungizide gef<strong>und</strong>en werden als in Äpfel.<br />
Zur Ermittlung der Wiederfindungen wurde jeweils 0,33 ppm der Wirkstoffe auf<br />
pestizidfreies Apfelmus dotiert. Die folgende Tab. 3.1.4-11 gibt die erzielten Wiederfindungen<br />
<strong>und</strong> Variationskoeffizienten für n=5 an.<br />
Tab. 3.1.4-11: ermittelte Wiederfindungen <strong>von</strong> Pestiziden aus dotiertem Apfelmus<br />
, Dotierungsmenge 0,33 ppm, <strong>Extraktion</strong>sgerät ISCO SFX 3560<br />
Pestizid Mittlere StandardVariations- Bemerkungen<br />
Wiederfindung abweichungkoeffizient in %<br />
in %<br />
Azinphos-Methyl 104,2 9,6 9,2<br />
Biphenthrin 76,1 3,2 4,2<br />
Brompropylat 91,0 4,5 4,9<br />
Captan 75,6 6,3 8,4 zersetzt sich im Injektor<br />
Carbaryl 97,0 3,3 3,4<br />
Chlorpyrifos 89,8 4,9 5,4<br />
Chlorpyrifos-Methyl 87,7 5,7 6,5<br />
Cyhalothrin lambda 81,4 5,1 6,3<br />
Cypermethrin 71,7 4,2 5,8<br />
Deltamethrin 71,0 6,3 8,8<br />
Diazinon 86,6 6,7 7,8<br />
Dichlofluanid 92,4 7,7 8,4<br />
Dicofol 70,8 17,3 24,4 zersetzt sich im Injektor<br />
Dimethoat 99,0 5,8 5,8<br />
Diphenylamin 108,0 17,4 16,1<br />
α-Endosulfan 88,9 4,8 5,4<br />
ß-Endosulfan 75,1 7,8 10,4<br />
Fenpropathrin 80,7 3,0 3,8<br />
Fenthion 84,6 5,0 6,0<br />
Fenvalerat 81,2 3,2 3,9<br />
Flusilazol 84,2 2,4 2,9<br />
Folpet 76,0 4,9 6,4<br />
Imazalil 89,4 8,0 9,0<br />
Iprodion 87,1 11,1 12,7 Zersetzung im Injektor<br />
Malathion 93,1 3,4 3,7<br />
Omethoat 14,7 1,4 9,3 hohe Polarität<br />
Parathion-Methyl 87,3 4,6 5,3<br />
Phosalon 93,3 4,7 5,0<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
54
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Pestizid Mittlere<br />
Wiederfindung<br />
in %<br />
Standardabweichung<br />
Variationskoeffizient<br />
in %<br />
Bemerkungen<br />
Phosmet 94,2 3,7 3,9<br />
Pirimicarb 98,2 5,2 5,3<br />
Procymidon 93,8 3,7 3,9<br />
Propargit 78,7 9,1 11,5<br />
Quinalphos 92,8 9,7 10,5<br />
Tetradifon 93,4 4,4 4,8<br />
Thiabendazol 43,8 5,5 12,6 pH-Wert nicht eingestellt<br />
Tolylfluanid 92,7 4,4 4,7<br />
Vinclozolin 90,8 6,1 6,7<br />
Probe/Hydromatrix 3 g : 2,5 g<br />
Extraktor: ISCO SFX 3560, <strong>Extraktion</strong>sbedingungen: siehe Kap. 3.1.4.2<br />
Bestimmung GC/MSD: siehe Anlage 1<br />
Während Dimethoat (Löslichkeit in Wasser 39,8 mg/L, Po/w 0,74 [136]) sich noch gut<br />
mittels SFE extrahieren läßt, sind die Wiederfindungen beim polareren Abbauprodukt<br />
Omethoat (Po/w -0,74 [136]) unbefriedigend.<br />
3.1.4.6.3 Pestizide in Beerenobst<br />
Beerenobst ist stark anfällig gegen Pilzbefall <strong>und</strong> wird daher häufig mehrfach mit<br />
Fungiziden behandelt. Neben der einheimischen Produktion, die im Frühsommer<br />
vermarktet wird, werden in den Monaten Januar bis April große Mengen Erdbeeren aus<br />
Marokko, Spanien <strong>und</strong> Italien importiert.<br />
In den letzten Jahren wurden in spanischen Erdbeeren eine ganze Reihe auch neuer<br />
Pestizide nachgewiesen.<br />
Für einige der vorkommenden Pestizide wurden Wiederfindungsversuche durchgeführt.<br />
Die Ergebnisse sind in Tab. 3.1.4-12 aufgeführt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
55
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.4-12: Wiederfindungen <strong>von</strong> Pestiziden aus dotierten Erdbeeren<br />
, Dotierungsmenge 0,33 ppm, <strong>Extraktion</strong>sgerät HP 7680T, (n=5)<br />
Pestizid Mittlere Wiederfindung Variationskoeffizient<br />
in %<br />
in %<br />
Chlorpyrifos-Methyl 93 10,2<br />
Cyfluthrin 63 7,2<br />
Cypermethrin 62 7,7<br />
Cyproconazol 97 1,4<br />
Dicofol 101 10,4<br />
Dimethoat 95 6,2<br />
α-Endosulfan 81 9,5<br />
ß-Endosulfan 95 9,1<br />
Endosulfansulfat 85 10,5<br />
Fenarimol 99 2,9<br />
Folpet 86 14,4<br />
Lindan 87 5,9<br />
Myclobutanil 101 2,6<br />
Pyrifenox 1 92 2,5<br />
Pyrifenox 2 93 2,7<br />
Procymidon 100 6,9<br />
Tolclofos-Methyl 93 9,2<br />
Analysenmethode: siehe Anlage 1<br />
3.1.4.6.4 Pestizide in Tafeltrauben<br />
Trauben werden mittlerweile über das ganze Jahr hinweg angeboten. Während<br />
europäische Ware hauptsächlich im Sommer <strong>und</strong> Herbst angeboten wird, werden in der<br />
restlichen Zeit die Früchte vor allem aus Südamerika <strong>und</strong> Südafrika importiert. Da<br />
Trauben anfällig gegen Schimmelbefall sind, werden sie häufig mehrfach mit<br />
Fungiziden behandelt. Insbesondere Trauben aus dem Mittelmeerraum (Türkei,<br />
Griechenland, Italien) weisen häufig Mehrfachrückstände auf.<br />
Für einige der vorkommenden Pestizide wurden Wiederfindungsversuche durchgeführt.<br />
Die Ergebnisse sind in Tab. 3.1.4-13 <strong>und</strong> tab. 3.1.4-14 aufgeführt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
56
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.4-13: Wiederfindungen <strong>von</strong> Pestiziden aus dotierten Trauben<br />
, Dotierungsmenge 0,167ppm, <strong>Extraktion</strong>sgerät ISCO SFX 3560<br />
Pestizid Mittlere StandardVariations- Wiederfindung abweichungkoeffizient in %<br />
in %<br />
Brompropylat 91,3 3,8 4,2<br />
Chlorpyrifos 86,6 2,7 3,1<br />
Chlorthalonil 85,9 4,8 5,6<br />
Chlozolinat 81,9 4,1 5,0<br />
Deltamethrin 65,4 9,5 14,6<br />
Dichlofluanid 82,1 3,1 3,8<br />
Diethofencarb 98,9 3,6 3,6<br />
Dimethoat 85,5 7,4 8,6<br />
Endosulfan, alpha 86,5 2,9 3,3<br />
Endosulfan, beta 86,3 4,6 5,3<br />
Endosulfansulfat 91,3 8,7 9,5<br />
Folpet 81,2 12,4 15,3<br />
Folpet Abbau 87,4 9,1 10,4<br />
Iprodion 86,3 6,8 7,9<br />
Iprodion Abbau 78,4 6,9 8,8<br />
L-Cyhalothrin 78,5 3,9 5,0<br />
Myclobutanil 84,7 5,0 5,9<br />
Oxadixyl 89,7 3,7 4,1<br />
Parathion-Methyl 79,9 4,8 6,0<br />
Penconazol 92,1 3,2 3,5<br />
Procymidon 93,2 2,9 3,1<br />
Pyrazophos 102,8 3,1 3,1<br />
Pyrimethanil 99,1 4,3 4,4<br />
Tebuconazol 89,6 6,1 6,8<br />
Tetradifon 89,5 4,4 4,9<br />
Tolylfluanid 87,3 2,7 3,1<br />
Triadimefon 91,8 4,9 5,3<br />
Triadimenol 102,8 4,4 4,3<br />
Vinclozolin 92,5 3,5 3,8<br />
Probe/Hydromatrix 3 g : 2,5 g<br />
Extraktor: ISCO SFX 3560, <strong>Extraktion</strong>sbedingungen: siehe Kap. 3.1.4.2<br />
Bestimmung GC/MSD: siehe Anlage 1<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
57
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.4-14: Wiederfindungen <strong>von</strong> Pestiziden aus dotierten Trauben<br />
Dotierungsmenge 0,6 ppm, <strong>Extraktion</strong>sgerät HP 7680T<br />
Pestizid Mittlere Standard- Variationskoeffizient<br />
Wiederfindung<br />
in %<br />
abweichung<br />
in %<br />
Brompropylat 87,5 28,6 5,5<br />
Chlorpyrifos 88,7 19,1 3,6<br />
Chlozolinat 95,1 32,8 5,7<br />
Cyhalothrin 74,0 15,6 3,5<br />
Diethofencarb 89,0 25,0 4,7<br />
Endosulfan, alpha 94,2 18,3 3,2<br />
Endosulfan, beta 96,9 23,4 4,0<br />
Endosulfansulfat 97,6 24,9 4,3<br />
Myclobutanil 95,4 5,7 1,0<br />
Oxadixyl 97,5 22,0 3,8<br />
Penconazol 92,3 26,0 4,7<br />
Procymidon 97,8 18,1 3,1<br />
Pyrimethanil 97,6 33,4 5,7<br />
Tebuconazol 76,2 14,9 3,3<br />
Tetradifon 74,8 31,0 6,9<br />
Tolylfluanid 65,0 46,2 11,9<br />
Triadimefon 95,5 30,5 5,3<br />
Triadimenol 97,9 16,3 2,8<br />
Vinclozolin 99,0 28,7 4,8<br />
Analysenmethode: siehe Anlage 1<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
58
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.4.7 Einflüsse verschiedener Parameter auf die<br />
<strong>Extraktion</strong>sausbeuten<br />
3.1.4.7.1 Einfluß der Zerkleinerung auf die Probenhomogenität<br />
Wegen der geringen Probenmenge, die bei der SFE eingesetzt werden kann, ist es<br />
erforderlich eine sehr gute Probenhomogenität zu erzielen, damit ein statistisch<br />
repräsentatives Ergebnis erzielt werden kann. Eine sehr gute Feinzerkleinerung <strong>und</strong><br />
damit auch Homogenität kann erreicht werden, wenn die grob zerkleinerte Teilprobe<br />
zunächst tiefgefroren <strong>und</strong> erst in gefrorenen Zustand feinzerkleinert wird (siehe auch<br />
Kap. 3.1.3.1).<br />
Dies wurde in folgendem Versuch demonstriert: Trauben mit Rückständen an<br />
Carbendazim wurden sowohl in frischem als auch in tiefgefrorenem Zustand zerkleinert.<br />
Die auf dieser Weise zerkleinerten Proben wurden je 7 mal extrahiert. Die dabei<br />
ermittelten Carbendazim-Gehalte waren nahezu gleich. Die gefroren zerkleinerte Probe<br />
wies jedoch eine wesentlich geringere Schwankung der Analysenergebnisse auf (vgl.<br />
Tab. 3.1.4-15)<br />
Tab. 3.1.4-15: Einfluß der Feinzerkleinerung auf die Probenhomogenität<br />
Matrix: Tafeltrauben (Alphonse Lavallee)<br />
„frisch“ zerkleinert gefroren zerkleinert<br />
Mittlerer<br />
Carbendazim-Gehalt<br />
Standardabweichung<br />
in %<br />
Analysenmethode: siehe Anlage 2<br />
1,76 mg/kg 1,73 mg/kg<br />
10,9 (n=7) 4,4 (n=7)<br />
3.1.4.7.2 Einfluß der Polarität der Analyten auf die Extrahierbarkeit<br />
Überkritisches Kohlendioxid ist ein recht unpolares Lösungsmittel <strong>und</strong> ist daher gut<br />
zur <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> unpolaren Analyten geeignet. Bei Gegenwart <strong>von</strong> Wasser in der<br />
Probe wirkt dieses als Modifier, so daß eine gute Extrahierbarkeit <strong>von</strong> mittelpolaren<br />
Pestiziden gegeben ist. Die <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Analyten mit hoher Polarität ist jedoch<br />
schwieriger. Dies hat sich bei verschiedenen Versuchen gezeigt. So ist zum Beispiel<br />
Dimethoat besser extrahierbar als Omethoat <strong>und</strong> Methomyl besser extrahierbar als<br />
das polarere Oxamyl. In der Reihe Methiocarb, Methiocarb-Sulfon <strong>und</strong> Methiocarb-<br />
Sulfoxid verschlechtert sich die Extrahierbarkeit mit zunehmender Polarität (siehe<br />
Tab. 3.1.5-34 in Kap. 3.1.5.5.2.6).<br />
Die Extrahierbarkeit <strong>von</strong> basischen Verbindungen ist bei niedrigen pH-Werten <strong>und</strong><br />
<strong>von</strong> sauren Verbindungen bei hohen pH-Werten schlecht, da unter diesen Bedingungen<br />
die Verbindungen zu einem Großteil ionisch vorliegen <strong>und</strong> daher eine hohe<br />
Polarität aufweisen.<br />
So entzieht sich z.B. die Substanz 2,4-D, die unter alkalischen Bedingungen fast<br />
ausschließlich als polares Anion vorliegt, der <strong>Extraktion</strong>. Unter sauren Bedingungen<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
59
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
dagegen liegt die leicht extrahierbare Säureform vor. Analoges gilt auch für weitere<br />
Substanzen wie z.B. Thiabendazol, Carbendazim <strong>und</strong> Imazalil, die unter sauren<br />
Bedingungen zu einem erheblichen Anteil als Kationen vorliegen. Diese Verbindungen<br />
lassen sich am besten im Alkalischen extrahieren (siehe auch Kap. 3.1.5.3.2).<br />
Wie in Abb. 3.1.4-6 ersichtlich, können auch bei <strong>Extraktion</strong>en mit überkritischem<br />
Kohlendioxid die <strong>Extraktion</strong>sausbeuten durch eine geeignete Einstellung des pH-Wertes<br />
verbessert werden (siehe auch Kap. 3.1.5.3.1 <strong>und</strong> 3.1.5.4.3).<br />
Abb. 3.1.4-6: Einfluß des pH auf die Extrahierbarkeit <strong>von</strong> 2,4-D <strong>und</strong> Carbendazim<br />
Recoveries (%)<br />
100<br />
80<br />
60<br />
40<br />
20<br />
0<br />
Carbendazim 2,4-D<br />
pH 2.5<br />
pH 4<br />
pH 7<br />
pH 9.5<br />
3.1.4.7.3 Einfluß des Wassergehaltes auf die Extrahierbarkeit unpolarer Analyten<br />
Hohe Wassergehalte behindern die <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> unpolaren Verbindungen wie<br />
Organochlorpestiziden <strong>und</strong> Pyrethroiden. Für diese Verbindungen können bessere<br />
Wiederfindungsraten erreicht werden, wenn die Proben mit mehr Adsorbens (Hydromatrix,<br />
Hymx) vermischt werden.<br />
Aus Abb. 3.1.4-7 wird ersichtlich, daß bei einigen Verbindungen mit zunehmendem<br />
Proben / Hydromatrix Verhältnis eine starke Abnahme der Wiederfindungen einhergeht.<br />
Insbesondere bei lipophilen Verbindungen mit sehr geringer Wasserlöslichkeit wie bei<br />
den Pyrethroiden (Löslichkeit in Wasser 1 - 500 µg/L [119]) sind diese Effekte stärker<br />
ausgeprägt als bei Verbindungen mit einer verhältnismäßig größeren Löslichkeit wie<br />
z.B. Lindan (7 mg/L) (siehe hierzu auch Kap. 3.1.7.1).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
60
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.4-7: Einfluß des Wassergehaltes auf die Extrahierbarkeit unpolarer<br />
Pestizide<br />
Recoveries %<br />
100<br />
80<br />
60<br />
40<br />
20<br />
0<br />
0.6 0.8 1.0 1.2 1.4 1.6<br />
Sample/Hymx<br />
Ratio<br />
Biphenthrin<br />
Deltamethrin<br />
Cyhalothrin<br />
Die Polarität des überkritischen Kohlendioxids nimmt mit steigendem Gehalt an<br />
gelöstem Wasser zu („modifier“-Wirkung <strong>von</strong> Wasser). Die Fähigkeit des Fluids<br />
lipophile Substanzen zu lösen nimmt somit mit steigendem Wassergehalt ab. Man<br />
könnte annehmen, daß dies die Ursache für die schlechtere Wiederfindung <strong>von</strong><br />
Cypermethrin ist. Die Löslichkeit <strong>von</strong> Wasser in überkritischem Kohlendioxid ist<br />
jedoch sehr gering (Sättigungskonzentration etwa 3 mg/g [11]). Zudem weist das auf<br />
der Oberfläche des Adsorbens verteilte Wasser eine sehr große Oberfläche auf, so<br />
daß eine rasche Gleichgewichtseinstellung (Sättigung) zu erwarten ist. Die<br />
Absättigung des überkritischen Kohlendioxids mit Wasser dürfte demnach kurz nach<br />
dem ersten Kontakt mit der wasserhaltigen Probe erfolgen. Ein unterschiedlicher Absättigungsgrad<br />
des Fluids kommt demnach als Ursache für den oben genannten<br />
Bef<strong>und</strong> eher nicht in Frage.<br />
Die ziemlich unpolaren Substanzen neigen dazu sich an unpolare Oberflächen wie<br />
Wachs-, Cutin- <strong>und</strong> Ölschichten zu adsorbieren. Es ist vorstellbar, daß beim Verreiben<br />
der Probe mit Hydromatrix solche lipophilen Bestandteile teilweise an der<br />
unregelmäßigen Oberfläche der Hydromatrix haften bleiben <strong>und</strong> dort mehr oder<br />
weniger <strong>von</strong> einer Wasserfilm überzogen <strong>und</strong> abgeschirmt werden. Die darin/darüber<br />
liegenden Wirkstoffe wären in diesem Fall für das lipophile <strong>Extraktion</strong>sfluid nur<br />
schwer zugänglich.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
Permethrin<br />
Cyfluthrin<br />
Cypermethrin<br />
Fenpropathrin<br />
Fenvalerat<br />
DDE<br />
Heptachlor<br />
Dieldrin<br />
Lindan<br />
61
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.4.7.4 Abbau <strong>von</strong> Pestiziden während der Lagerung im Autosampler<br />
Im Gegensatz zu herkömmlichen naßchemischen Analysenmethoden, bei denen die<br />
Proben in der Regel direkt nach ihrer Wägung extrahiert werden, lagern bei der SFE die<br />
aufgearbeiteten Proben oft mehrere St<strong>und</strong>en im Probengeber des <strong>Extraktion</strong>sgerätes<br />
bei Raumtemperatur.<br />
Bei zahlreichen Wiederfindungsversuchen hat sich gezeigt, daß oxidations- oder<br />
hydrolyseempfindliche Substanzen bereits abgebaut werden, wenn die <strong>Extraktion</strong> nicht<br />
unmittelbar nach der Probenvorbereitung erfolgt, sofern die Proben nicht bis dahin<br />
tiefgefroren werden. Abb. 3.1.4-8 <strong>und</strong> 3.1.4-9 zeigt das Abbauverhalten einiger dieser<br />
empfindlichen Verbindungen in zwei verschiedenen Matrizes auf.<br />
Abb. 3.1.4-8: Abbau <strong>von</strong> Pestiziden während der Lagerung in der <strong>Extraktion</strong>shülse<br />
Wiederfindung [%]<br />
Salat<br />
pH∼6<br />
110<br />
100<br />
90<br />
80<br />
70<br />
60<br />
50<br />
40<br />
30<br />
20<br />
10<br />
0<br />
Diazinon<br />
Dioxacarb<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
Disulfoton<br />
Ethiofencarb<br />
Tolylfluanid<br />
Chlozolinate<br />
Dichlofluanid<br />
Folpet<br />
16<br />
30<br />
8<br />
5<br />
Zeit (h)<br />
3<br />
0<br />
62
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.4-9: Abbau <strong>von</strong> Pestiziden während der Lagerung in der <strong>Extraktion</strong>shülse<br />
Wiederfindung [%]<br />
Trauben<br />
pH∼3,5<br />
110<br />
100<br />
90<br />
80<br />
70<br />
60<br />
50<br />
40<br />
30<br />
20<br />
10<br />
0<br />
Tolylfluanid<br />
Diazinon<br />
Dichlofluanid<br />
Fenvalerat<br />
Chlozolinate<br />
Folpet<br />
Disulfoton<br />
Ethiofencarb<br />
Dioxacarb<br />
20<br />
8<br />
Zeit (h)<br />
Wie Abb. 3.1.4-8 zeigt, ist die Matrix nicht ohne Einfluß. So wird zum Beispiel Dioxacarb<br />
unter sauren Bedingungen viel schneller abgebaut als unter neutralen Bedingungen<br />
(siehe hierzu Kap. 3.1.5.5.2.6). Um Abbauvorgänge vor der <strong>Extraktion</strong> möglichst zu<br />
vermeiden, ist es daher erforderlich die Proben bis zur <strong>Extraktion</strong> tiefgefroren<br />
aufzubewahren.<br />
Um die Möglichkeiten der Autosampler der SFE-Geräte nutzen zu können, müßten<br />
diese unbedingt kühlfähig sein.<br />
Die Ergebnisse dieser Untersuchungen wurden in [104] vorgestellt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
4<br />
0<br />
63
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.5 Entwicklung <strong>von</strong> schnellen Bestimmungsmethoden für<br />
spezielle Pestizidklassen mit analytischen Defiziten<br />
3.1.5.1. Einleitung<br />
Mit Hilfe der in Kap. 3.1.4 vorgestellten Multimethode kann eine Vielzahl <strong>von</strong><br />
Pestiziden bestimmt werden. Es gibt jedoch eine ganze Reihe <strong>von</strong> weiteren Verbindungen<br />
für die diese Methode nicht geeignet ist:<br />
Wegen zu geringer Wiederfindung:<br />
Als Ursachen für schlechte Wiederfindungen bei SFE-<strong>Extraktion</strong>en kommen verschiedene<br />
Faktoren in Betracht:<br />
• schlechte Extrahierbarkeit der Wirkstoffe (z.B. wegen zu hoher Polarität<br />
(siehe Kap. 3.1.4.7.2) <strong>und</strong>/oder starker Wechselwirkungen mit der Matrix)<br />
• schlechte Elution der präzipitierten Stoffe <strong>von</strong> der Festphasenfalle in die<br />
Vorlage (siehe Kap. 3.1.4.3 <strong>und</strong> Kap. 3.1.5.6.2)<br />
• Abbauvorgänge (vgl. Kap. 3.1.4.7.4 <strong>und</strong> Kap. 3.1.5.5.2.7).<br />
Wegen Problemen bei der Gaschromatographie:<br />
z.B. bei polaren Verbindungen wie Phenoxyalkancarbonsäuren (siehe Kap.<br />
3.1.5.4.2), Carbendazim (siehe Kap. 3.1.5.3.2) <strong>und</strong> thermolabilen Verbindungen wie<br />
z.B. N-Methyl-Carbamate (siehe Kap. 3.1.5.5) <strong>und</strong> Organo-Zinn-Verbindungen (siehe<br />
Kap. 3.1.5.6).<br />
Für eine Reihe <strong>von</strong> Verbindungen, die sich nicht mit der vorgestellten Multimethode<br />
bestimmen lassen, wurden im Rahmen dieser Arbeit spezielle SFE-Methoden<br />
entwickelt.<br />
Viele der Stoffe, die bei der SFE-<strong>Extraktion</strong> Probleme bereiten, sind auch bei den<br />
klassischen (naßchemischen) Verfahren bei der Aufarbeitung als „problematisch“<br />
aufgefallen. Zum Beispiel werden für die Stoffe Fenpropimorph, Imazalil <strong>und</strong><br />
Thiabendazol auch bei der DFG-S19 Multimethode [3] sehr geringe Ausbeuten erzielt.<br />
Um die Ursachen hierfür besser zu verstehen <strong>und</strong> eventuelle molekulare Zusammenhänge<br />
zu erkennen, wurden zunächst einige naßchemische Voruntersuchungen<br />
durchgeführt. Dabei sollte ein „Gefühl“ für die Eigenschaften der Wirkstoffe bezüglich<br />
Löslichkeit, Polarität <strong>und</strong> Affinität zu Oberflächen entwickelt werden. Die Erkenntnisse<br />
aus diesen Versuchen sollten bei der Entwicklung <strong>von</strong> SFE-<strong>Extraktion</strong>smethoden<br />
adaptiert werden, um die Wiederfindungen dieser Verbindungen zu verbessern.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
64
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.5.2 Naßchemische Untersuchungen im Vorfeld<br />
3.1.5.2.1 Rolle des pH-Wertes bei <strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong> Flüssig-Flüssig-Verteilung<br />
Homogenate pflanzlicher Proben weisen oft recht niedrige pH-Werte auf: z.B.<br />
Zitronen pH∼2,5, Grapefruit <strong>und</strong> Orangen pH∼3,3, Trauben, Steinobst <strong>und</strong> Kernobst<br />
pH 3 bis 4. Bei den derzeit in der Rückstandsanalytik gängigen Multimethoden wird<br />
der pH-Wert bei der <strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong> Flüssig-Flüssig-Verteilung nicht berücksichtigt.<br />
Unvollständige Extrahierbarkeit <strong>von</strong> sauren <strong>und</strong> basischen Verbindungen sind die<br />
Folge.<br />
Unter sauren Bedingungen liegen verschiedene Wirkstoffe mit basischen Stickstoffatomen<br />
zu einem nicht vernachlässigbaren Anteil in protonierter Form vor. Diese<br />
protonierten Wirkstoffanteile entziehen sich, aufgr<strong>und</strong> ihres polaren Charakters, der<br />
<strong>Extraktion</strong> in die organische Phase. Zur vollständigeren Erfassung derartiger<br />
Wirkstoffe wie Thiabendazol, Carbendazim <strong>und</strong> Imazalil (Formeln siehe Tab. 3.1.5-1)<br />
muß demnach die <strong>Extraktion</strong> bei höheren pH-Werten erfolgen.<br />
Bei der Aufarbeitung <strong>von</strong> dotierten Zitrusfruchtproben nach [29] wurde z.B. festgestellt,<br />
daß Thiabendazol <strong>und</strong> Imazalil bei der Flüssig-Flüssig-Verteilung nach den<br />
ersten zwei Verteilungsschritten (unter sauren Bedingungen) nur zu 10 bis 20 % in<br />
die organische Phase übergingen. Erheblich bessere Wiederfindungsraten wurden<br />
nach einer zusätzliche <strong>Extraktion</strong> im Alkalischen erzielt.<br />
Ein ähnliches Prinzip gilt auch bei der <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> sauer reagierenden Verbindungen.<br />
In diesem Fall sind saure Bedingungen für die <strong>Extraktion</strong> der Wirkstoffe<br />
günstiger. Dies ist z.B. bei der <strong>Extraktion</strong> der Phenoxyalkancarbonsäuren der Fall<br />
[29,19]. Die Einflüsse des pH-Wertes auf die Extrahierbarkeit einiger Wirkstoffe<br />
werden ausführlicher in [29] dargestellt.<br />
Eine andere Problematik liegt im Fall <strong>von</strong> Orthophenylphenol vor, das üblicherweise<br />
als Natrium-Salz zur Oberflächenbehandlung <strong>von</strong> Zitrusfrüchten eingesetzt wird [30].<br />
Bei der <strong>Extraktion</strong> der Oberflächenbehandlungsmittel nach [4,31] werden die Schalen<br />
der Früchte ohne Wasserzusatz direkt mit überkritischem Kohlendioxid bzw. mit<br />
Dichlormethan extrahiert. Da die Schalenoberfläche der Zitrusfrüchte im Gegensatz<br />
zum Fruchtfleisch nicht sauer reagiert <strong>und</strong> kaum Wasser enthält, sind die<br />
Bedingungen für eine Auflösung des Salzes <strong>und</strong> für die Protonierung des Phenolates<br />
zur Phenolform nicht günstig. Es ist demnach, bei diesen Methoden, mit einer<br />
unvollständigen <strong>Extraktion</strong> des Orthophenylphenol zu rechnen.<br />
3.1.5.2.2 Wechselwirkungen <strong>von</strong> Wirkstoffen mit Oberflächen<br />
Theoretische Betrachtung:<br />
Adsorptionen <strong>von</strong> Wirkstoffen an Oberflächen (z.B. über Ionen-Ionen-Wechselwirkungen<br />
oder über Wasserstoffbrücken-Bindungen) sind oft die Ursache für<br />
schlechte Extrahierbarkeit, für Verluste bei der Aufarbeitung <strong>und</strong> für Schwierigkeiten<br />
bei der Chromatographie. Daher sind Kenntnisse über die möglichen Ursachen <strong>und</strong><br />
Mechanismen dieser Erscheinungen für die Entwicklung <strong>von</strong> SFE-Methoden sehr<br />
hilfreich.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
65
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Mögliche Oberflächen mit adsorptiven Eigenschaften sind z.B.:<br />
1. bei der Probenaufarbeitung<br />
Bestandteile der Probe (Wachse, Cutin, Öle, Zellulose, Pektin),<br />
Glasoberflächen (Glasgeräte, Glasfaserpapier),<br />
Cellulose (Papierfilter),<br />
Adsorbentien (Hydromatrix, Kieselgel)<br />
2. bei der Gaschromatographie<br />
Glasoberflächen (GC-Injektions-Liner)<br />
Schmutzablagerungen auf der Oberfläche <strong>von</strong> GC-Injektions-Liner <strong>und</strong> -Vorsäule.<br />
Die Adsorptionskraft bestimmter Oberflächen kann erheblich variieren. Bei Polysilikaten<br />
wie Kieselgel spielt z.B. der Wassergehalt (Aktivitätsstufe) eine erhebliche<br />
Rolle, da Wasser die Oberfläche benetzen <strong>und</strong> maskieren kann.<br />
Eine entscheidende Abschwächung der Aktivität kann z.B. durch Sättigung freier<br />
Silanolgruppen an der Oberfläche durch Silanisierung erreicht werden (z.B.<br />
silanisierte Glasgeräte, GC-Glasliner, Füllmaterialien <strong>von</strong> LC-Säulen).. Die Restmenge<br />
an freien Silanolgruppen bestimmt den Restaktivitätsgrad der Oberfläche<br />
Zu Adsorptionen neigen u.a.:<br />
1. Verbindungen, die als Lewis Säuren oder Basen fungieren <strong>und</strong> dadurch direkt<br />
oder über Wasserstoffbrücken-Bindungen (vgl. Abb. 3.1.5-1) mit der Oberfläche<br />
des Adsorbens in Wechselwirkung treten können (z.B. Verbindungen mit Alkohol-<br />
oder Säuregruppen <strong>und</strong> Verbindungen die basische Stickstoffatome aufweisen),<br />
2. ionische Verbindungen (adsorbieren an Oberflächen die entgegengesetzte<br />
Ladungen aufweisen),<br />
3. lipophile Verbindungen <strong>und</strong> Verbindungen mit lipophilen Resten (neigen zur<br />
Adsorption an lipophile Oberflächen).<br />
Eine wichtige Rolle bei Adsorptionsprozessen spielen auch die beteiligten flüssigen<br />
Phasen (Lösungsmittel). Lösungsmittel treten sowohl mit den Analyten als auch mit<br />
aktiven Stellen der Oberfläche der festen Phase in Wechselwirkung <strong>und</strong> können<br />
damit die Affinität <strong>von</strong> Analyt zu Oberfläche schwächen.<br />
Zum Beispiel wird die Adsorption <strong>von</strong> Verbindungen an einem hydrophilen Adsorbens<br />
(wie Kieselgel) erheblich abgeschwächt, wenn die aktiven Stellen an seiner<br />
Oberfläche durch Lösungsmittelmoleküle wie Wasser oder Methanol „besetzt“<br />
(desaktiviert) werden. Unpolare Lösungsmittel (z.B. Hexan) konkurrieren dagegen<br />
kaum um solche aktive Stellen <strong>und</strong> können in diesem Fall die Adsorptionsprozesse<br />
nur wenig beeinflussen.<br />
Die Adsorption unpolarer Analyten an lipophilen Oberflächen (z.B. Wachsoberflächen)<br />
ist dagegen günstiger, wenn die beteiligte flüssige Phase polar (z.B.<br />
wasserhaltig) ist.<br />
I.a. sind Wechselwirkungen elektrostatischer Art zwischen dem Analyt <strong>und</strong> der<br />
Oberfläche des Adsorbens um so schwächer ausgeprägt, je höher die Dielektrizitätskonstante<br />
des Lösungsmittels ist.<br />
Abb. 3.1.5-1: Wechselwirkung <strong>von</strong> Verbindungen mit aktiven Oberflächen<br />
über Wasserstoffbrückenbindungen, am Beispiel eines<br />
Benzimidazolderivates (Vorschlag)<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
66
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
H<br />
O<br />
H<br />
H<br />
N<br />
H<br />
O<br />
N H<br />
R<br />
H<br />
O<br />
H<br />
N<br />
H<br />
H O<br />
H<br />
O<br />
H H<br />
N<br />
H<br />
O<br />
H<br />
N<br />
H<br />
H O<br />
Praktische Erfahrungen - Adsorptionserscheinungen bei der GPC:<br />
Im folgenden Kapitel werden derartige Adsorptionsvorgänge beschrieben, die zu<br />
Verlusten <strong>von</strong> Analyten führen. Ein praktisches Beispiel bei dem Wechselwirkungen<br />
<strong>von</strong> Verbindungen mit Oberflächen festgestellt wurden, ist die bei zahlreichen<br />
Methoden der Rückstandsanalytik zur Abtrennung höhermolekularer Begleitstoffe<br />
eingesetzte GPC. Bei diesem Verfahren werden Substanzen nach ihrer Größe<br />
(räumliche Ausdehnung) getrennt. Als Säulenmaterial wird meist ein in seiner<br />
Porosität definiertes Copolymerisat auf Basis <strong>von</strong> Styren <strong>und</strong> Divinylbenzol (zu 3 %<br />
quervernetzt) verwendet (Bio-Beads S-X3).<br />
Die Trennung bei der GPC basiert auf folgendem Prinzip:<br />
Die Porengrößen des Säulenmaterials sind so verteilt, daß höhermolekulare Stoffe<br />
z.B. Triglyceride <strong>und</strong> Wachse, aufgr<strong>und</strong> ihrer Ausdehnung in die Mehrzahl der Poren<br />
nicht eindringen können. Dadurch erfahren solche Moleküle nur eine kleine Retention<br />
durch die stationäre Phase. Dagegen können kleinere Moleküle, wie z.B. Pestizide, in<br />
die Poren eindringen <strong>und</strong> legen somit längere Wegsstrecken zurück.<br />
Bei GPC-Elutionsversuchen wurden für verschiedene Substanzen besonders<br />
niedrige Wiederfindungen festgestellt. Auffällig ist, daß diese Substanzen in ihrem<br />
Molekül sterisch nicht gehinderte basische Stickstoffatome aufweisen, die (bis auf<br />
Fenpropimorph) an aromatischen Heterosystemen beteiligt sind (siehe Tab. 3.1.5-1).<br />
Bei Fenpropimorph ist wegen der relativ starren Struktur des Morpholin-Sechsringes<br />
(Sesselkonformation) das basische N-Atom ebenfalls leicht zugänglich.<br />
Die molekularen Verhältnisse spielen hier eine große Rolle, da sie für die Ausprägung<br />
der Basizität entscheidend sind. Bei Pestiziden, wie etwa Diazinon, Pirimiphos-<br />
Methyl <strong>und</strong> Chlorpyrifos, deren Stickstoffatome durch benachbarte Gruppen sterisch<br />
abgeschirmt oder sonst in ihrer Nucleophilie geschwächt sind (siehe Abb. 3.1.5-2)<br />
wurden, erwartungsgemäß, geringere Verluste bei der GPC festgestellt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
N<br />
H<br />
R<br />
R<br />
H<br />
O<br />
67<br />
H
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-2: Beispiele für N-haltige Pestizide mit abgeschwächter Nucleophilie<br />
H3CO<br />
O<br />
P O<br />
N<br />
N<br />
H3CO<br />
OCH3<br />
OCH3<br />
Diazinon Pirimiphos-methyl<br />
O<br />
P O<br />
N<br />
N<br />
N<br />
H5C2O<br />
Cl<br />
O<br />
P O<br />
OC2H5<br />
N<br />
Chlorpyrifos<br />
Tab. 3.1.5-1: Einige Fungizide mit schlechter Wiederfindung bei der GPC<br />
Verluste festgestellt bei GPC-<br />
Elutionsversuchen*<br />
Wirkstoff Gruppen-<br />
zugehörigkeit<br />
Thiabendazol:<br />
N<br />
N<br />
H<br />
Carbendazim:<br />
Imazalil:<br />
N<br />
N<br />
N<br />
H<br />
N<br />
N CH2 CH<br />
Prochloraz:<br />
N<br />
CH3CH2CH2<br />
NH C<br />
O<br />
S<br />
OCH3<br />
O CH2 CH CH2<br />
Cl<br />
O<br />
Cl<br />
N C<br />
N CH2CH2O<br />
Myclobutanil:<br />
N<br />
N CH2<br />
N<br />
CN<br />
CH2<br />
Fenpropimorph:<br />
Cl<br />
Cl<br />
C Cl<br />
CH2CH2CH3<br />
N<br />
CH3<br />
O<br />
CH3<br />
Cl<br />
Benzimidazolderivat <br />
Benzimidazolderivat<br />
Wirkstoffe in<br />
reinem<br />
Elutionsgemisch<br />
68<br />
Cl<br />
Cl<br />
bei Gegenwart <strong>von</strong><br />
Probenextrakt<br />
(1 g Zitrone/ml)<br />
bis zu 80 % bis zu 95 %<br />
nicht durchgeführt bis zu 90 %<br />
Imidazolderivat bis zu 50 % bis zu 90 %<br />
Imidazolderivat nicht durchgeführt bis zu 60 %<br />
Triazolderivat bis zu 50 % bis zu 60 %<br />
Morpholinderivat<br />
* eingesetztes Probevolumen je 4 ml, Wirkstoffkonzentration: 1 µg/ml<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
bis zu 70% bis zu 80 %
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Bei Thiabendazol, Imazalil <strong>und</strong> Fenpropimorph wurde ein über längere Zeit andauerndes<br />
„Schleichen“ festgestellt. Bei einem Elutionsversuch waren Spuren dieser<br />
Substanzen in der GPC-Fraktion 70-90 min noch nachweisbar (Durchflußrate <strong>von</strong> 5<br />
ml/min, Collect-Fraktion für Pestizide 18-30 min), obwohl diese nach ihrer Größe in<br />
der Fraktion zwischen 18 <strong>und</strong> 30 min zu erwarten wären.<br />
Auffällig ist, daß es bei Gegenwart <strong>von</strong> Matrixbestandteilen in der zu eluierenden<br />
Probelösung zu einer Verschlechterung der Wiederfindungen bei der GPC kommt<br />
(siehe Tab. 3.1.5-1). Beobachtet wurde zudem, daß bei Gegenwart <strong>von</strong> Matrix,<br />
Anteile <strong>von</strong> Imazalil <strong>und</strong> Thiabendazol früher als erwartet im GPC-Eluat auftreten (vor<br />
17 min). Hier könnten Wechselwirkungen zwischen den Wirkstoffen <strong>und</strong><br />
Matrixbestandteilen eine Rolle spielen.<br />
Wechselwirkungen zwischen dem Säulenmaterial <strong>und</strong> Wirkstoffen (etwa über π-<br />
Elektronen-Systeme) spielen bei diesen Effekten sicherlich kaum eine Rolle. Einige<br />
denkbare, mit der GPC in Zusammenhang stehende, zu Verlusten führende Effekte<br />
werden im folgenden aufgeführt:<br />
• Wirkstoffanlagerung an Schwebstoffe, die sich entweder schon vor der GPC<br />
absetzen oder sich am Anfangsbereich der GPC-Säule ablagern.<br />
• Anlagerung weiterer Wirkstoffe an diese Ablagerungen am vorderen Teil der GPC-<br />
Säule. (Die kontinuierliche Abgabe aus diesem „Depot“ könnte für das<br />
Schleichen/Bluten dieser Wirkstoffe verantwortlich sein).<br />
• Wirkstoffanlagerungen an gelöste höhermolekulare Matrixbestandteile, wodurch<br />
diese Moleküle eine kürzere Retention erfahren, als aufgr<strong>und</strong> ihrer räumlichen<br />
Ausdehnung zu erwarten wäre. Sie eluieren dadurch vor der „collect“ Fraktion in<br />
der die Pestizide eluieren.<br />
Die hier beschriebenen Beobachtungen werden auch in [29] erläutert.<br />
Die oben aufgeführten theoretischen Überlegungen <strong>und</strong> die durchgeführten naßchemischen<br />
Untersuchungen haben wertvolle Erkenntnisse zum Verhalten verschiedener<br />
Pestizide bezüglich Extrahierbarkeit <strong>und</strong> Adsorptionsverhalten gebracht.<br />
Diese waren für die Entwicklung <strong>von</strong> speziellen SFE-Methoden für saure <strong>und</strong><br />
basische Pestizide <strong>von</strong> großem Nutzen.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
69
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.5.3 Pestizide mit basischen Eigenschaften<br />
3.1.5.3.1 Einfluß des pH-Wertes auf die Extrahierbarkeit (vgl. Kap. 3.1.4.7.2)<br />
Basische Pestizide können mit ihren freien Elektronenpaaren in Wechselwirkungen<br />
z.B. mit anderen Verbindungen oder verschiedenen Oberflächen treten. Aufgr<strong>und</strong><br />
dieser Eigenschaft treten bei <strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong> Chromatographie Probleme auf (siehe<br />
auch Kap. 3.1.5.2.2), so daß die Analytik dieser Verbindungen ein besonderes<br />
Vorgehen erfordert <strong>und</strong> z.T. sehr aufwendig ist. Häufig handelt es sich bei diesen<br />
Stoffen um Fungizide, die in ihrem Molekül basische Stickstoffatome z.B. als Teil<br />
eines aromatischen Systems aufweisen. Zu den verbreitetsten Vertretern basischer<br />
Fungizide zählen die Benzimidazolderivate Thiabendazol (pKb 9,3 <strong>und</strong> 11,5) [130]<br />
<strong>und</strong> Carbendazim (pKb 9,52), die Imidazolderivate Imazalil <strong>und</strong> Prochloraz (pKb 10,2)<br />
sowie das Morpholinderivat Fenpropimorph (pKb 9,4) (siehe Abb. 3.1.5-3).<br />
Wie in Kap. 3.1.4.7.2 gezeigt, kann die Extrahierbarkeit <strong>von</strong> basischen Verbindungen<br />
bei der SFE durch Erhöhung des pH-Wertes deutlich verbessert werden.<br />
Es wurde ein Versuch durchgeführt um festzustellen, wie sich der pH-Wert auf die<br />
Extrahierbarkeit der oben genannten Fungizide sowie <strong>von</strong> Diphenylamin auswirkt.<br />
Hierzu wurde eine unveränderte (pH-Wert 2,5) <strong>und</strong> eine auf pH 9 eingestellte<br />
(Zugabe <strong>von</strong> 50%iger K2CO3-Lösung) Zitronenmatrix mit einer Mischung dieser<br />
Verbindungen dotiert <strong>und</strong> nach Vermengung mit Hydromatrix extrahiert. Zur<br />
<strong>Extraktion</strong> wurde das <strong>Extraktion</strong>sgerät der Fa. ISCO gewählt, da hier die Extrakte<br />
direkt in eine Lösungsmittelvorlage geleitet werden. Bei Verwendung des Gerätes der<br />
Fa. HP, bei dem die Extrakte zunächst an einer mit ODS befüllten Falle aufgefangen<br />
werden, wurde beobachtet, daß einige basische Pestizide, insbesondere<br />
Thiabendazol aber auch Imazalil <strong>und</strong> Fenpropimorph nur sehr schleppend <strong>von</strong> der<br />
Falle in das Vorlagegläschen eluiert werden. Gr<strong>und</strong> hierfür sind Wechselwirkungen<br />
dieser Pestizide mit aktiven Stellen an der Oberfläche des ODS-Adsorptionsmaterials<br />
(vgl. Kap. 3.1.5.2.2).<br />
Die dabei erzielten Wiederfindungen sind in Tab. 3.1.5-2 dargestellt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
70
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-3: Strukturformeln einiger Pestizide mit basischen Eigenschaften<br />
N<br />
NH<br />
C<br />
N<br />
O<br />
H<br />
Carbendazim<br />
N<br />
N<br />
H<br />
N<br />
S<br />
OCH 3<br />
N<br />
N<br />
N C<br />
CH 3CH 2CH 2<br />
N CH2 CH<br />
Cl<br />
Imazalil<br />
O<br />
O CH2 CH CH2<br />
N CH 2CH 2O<br />
Thiabendazol Prochloraz<br />
H<br />
N<br />
Diphenylamin<br />
Wie aus der Tab. 3.1.5-2 ersichtlich spielt der pH-Wert bei der <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong><br />
Thiabendazol, Imazalil <strong>und</strong> Carbendazim aus Zitrone eine wichtige Rolle. Bei<br />
Diphenylamin <strong>und</strong> Prochloraz dagegen wurden sowohl im Sauren als auch im<br />
Alkalischen gute Wiederfindungen erzielt. Auffällig ist, daß bei Imazalil der pH-Wert<br />
einen viel größeren Einfluß auf die Wiederfindungen hat als bei Prochloraz, obwohl<br />
es sich bei beiden Molekülen um Imidazolderivate handelt. Im Unterschied zu<br />
Imazalil steht jedoch das aromatische System bei Prochloraz in Konjugation mit der<br />
angrenzenden Carbonylgruppe, so daß die Elektronenverteilung im Molekül<br />
verschoben wird <strong>und</strong> die Basizität des Stickstoffs am Imidazolring geschwächt wird<br />
(siehe Abb. 3.1.5-4).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
Cl<br />
Cl<br />
Cl<br />
71<br />
Cl
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.5-2: Wiederfindungen verschiedener basischer Pestizide bei<br />
unterschiedlichen pH-Werten<br />
mittlere Wiederfindungen in %<br />
Bedingungen Thiabendazol Carbendazim* Imazalil Diphenylamin Prochloraz<br />
pH∼2,5<br />
pH 9<br />
pH 9, 2. Extr.<br />
15 12 44 96 92<br />
62 94 91 98 95<br />
16 - - - -<br />
* nach Derivatisierung mit Pentafluorbenzylbromid (siehe Kap. 3.1.5.3.2.3)<br />
Abb. 3.1.5-4: Konjugation des Imidazolsystems mit der Carbonylgruppe<br />
bei Prochloraz<br />
H<br />
H<br />
N<br />
N<br />
N C<br />
N C<br />
O<br />
N R 1<br />
R 2<br />
O<br />
N R 1<br />
R2<br />
N<br />
N C<br />
O<br />
N R 1<br />
Prochloraz<br />
N<br />
N<br />
N C<br />
N C<br />
O<br />
N R1<br />
R2<br />
O<br />
R2<br />
H<br />
H<br />
N R 1<br />
Fazit:<br />
Durch diese einfache Maßnahme, der pH-Wert-Einstellung vor der SFE-<strong>Extraktion</strong>,<br />
wird die Bestimmung verschiedener basischer Pestizide ermöglicht. Mit Ausnahme<br />
<strong>von</strong> Carbendazim, das vor einer gaschromatographischen Bestimmung derivatisiert<br />
werden muß, lassen sich die untersuchten Verbindungen bei Berücksichtigung der<br />
Matrixeffekte (vgl. Kap. 3.1.2.3) gut mittels GC/MSD bestimmen.<br />
Obwohl Carbendazim eines der am häufigsten in der Landwirtschaft verwendeten<br />
Fungizide ist, wird es wegen der Aufwendigkeit bestehender analytischer Methoden<br />
bisher nicht routinemäßig untersucht. Stellvertretend für basische Pestizide wurde im<br />
Rahmen dieser Arbeit eine schnelle Methode zur Bestimmung <strong>von</strong> Carbendazim<br />
entwickelt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
R 2<br />
72
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.5.3.2 Carbendazim, Benomyl <strong>und</strong> Thiophanat-Methyl<br />
Bei der Entwicklung <strong>von</strong> analytischen Methoden zur Bestimmung <strong>von</strong> Carbendazim<br />
muß berücksichtigt werden, daß diese Verbindung der Hauptmetabolit <strong>und</strong> die<br />
fungizid wirksame Form <strong>von</strong> zwei weiteren landwirtschaftlich oft eingesetzten<br />
Verbindungen, Benomyl <strong>und</strong> Thiophanat-Methyl, ist (siehe Abb. 3.1.5-5).<br />
Üblicherweise erfolgt die Bestimmung der drei Fungizide, nach Umwandlung zu<br />
Carbendazim, gemeinsam. In der RHmV ist daher eine Summen-Höchstmenge<br />
berechnet als Carbendazim festgesetzt [34,46].<br />
Abb. 3.1.5-5: Strukturformeln <strong>von</strong> Carbendazim, Thiophanat-Methyl <strong>und</strong> Benomyl<br />
(Carbendazim-Gruppe)<br />
N<br />
H<br />
N NH COOCH3<br />
Carbendazim<br />
NH<br />
NH<br />
S<br />
C<br />
C<br />
S<br />
Thiophanat-Methyl<br />
NH COOCH3<br />
NH COOCH3<br />
O<br />
C<br />
N<br />
N NH<br />
Benomyl<br />
NH C 4H 9<br />
COOCH3<br />
Während der Wachstumsperiode werden diese Fungizide häufig im Kernobstanbau,<br />
beim Anbau <strong>von</strong> Tafeltrauben, Steinobst, Salat <strong>und</strong> Getreide verwendet. Als<br />
Nacherntebehandlungsmittel finden sie bei Bananen, Zitrusfrüchten, Kernobst,<br />
Mangos <strong>und</strong> Kartoffel zum Schutz vor zahlreichen Pilzkrankheiten Verwendung<br />
[30,47].<br />
Carbendazim, Benomyl <strong>und</strong> Thiophanat-Methyl werden nicht mit den gängigen<br />
Multimethoden erfaßt, da sie bei der <strong>Extraktion</strong> Schwierigkeiten bereiten <strong>und</strong> da eine<br />
Umwandlung zu Carbendazim sowie eine Derivatisierung vor der GC-Bestimmung<br />
durchgeführt werden muß. Vorhandene Einzelbestimmungsverfahren sind daher sehr<br />
arbeitsintensiv, verbrauchen große Mengen an Lösungsmittel <strong>und</strong> sind für die<br />
Routineanalytik wenig attraktiv [48,51-58].<br />
Wegen des verbreiteten Einsatzes <strong>und</strong> der unzureichenden Rückstandsdaten ist es<br />
jedoch notwendig diese Stoffe im Rahmen der Lebensmittelüberwachung <strong>und</strong> des<br />
Lebensmittel-Monitoring routinemäßig zu untersuchen [48,49].<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
73
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Jimènez et al [40] entwickelten eine SFE-Methode zur Bestimmung <strong>von</strong> Carbendazim<br />
in gefriergetrocknetem Salat, bei der Methanol als Modifier des Kohlendioxids<br />
verwendet wurde. Die Gefriertrocknung <strong>von</strong> Probenmaterial ist jedoch sehr<br />
zeitaufwendig <strong>und</strong> nicht für alle Obst- <strong>und</strong> Gemüsesorten geeignet (siehe Kap.<br />
3.1.3.2.1). Aharonson et al. [9] beschreiben eine Methode zur Bestimmung der<br />
Benzimidazol-Fungizide einschließlich Carbendazim <strong>und</strong> Thiophanat-Methyl unter<br />
Verwendung <strong>von</strong> SFE <strong>und</strong> HPLC-UV. Sie erzielten gute Wiederfindungen für<br />
Bananen, Kartoffel <strong>und</strong> Äpfel. Allerdings sind die Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen<br />
dieses Verfahrens nicht ausreichend zur Überprüfung kleiner Höchstmengen.<br />
Desweiteren wird nach unserer Erfahrung Carbendazim aus sauren<br />
<strong>Lebensmitteln</strong> nicht vollständig extrahiert (siehe Kap. 3.1.4.7.2).<br />
3.1.5.3.2.1 Umwandlung <strong>von</strong> Benomyl zu Carbendazim<br />
Benomyl ist eine labile Verbindung. Zahlreiche Veröffentlichungen beschreiben die<br />
Kinetik der Zersetzung <strong>von</strong> Benomyl in organischen Lösungsmitteln [64-66] <strong>und</strong> in<br />
wäßrigen Lösungen [66-69]. Ältere Arbeiten berichten, daß Benomyl in wäßrigen<br />
Lösungen [28,45] <strong>und</strong> auf Pflanzen [71] schnell <strong>und</strong> vollständig zu Carbendazim<br />
umgewandelt wird. Baude et al [74] zeigten jedoch bei Feldversuchen, daß Benomyl<br />
sowohl in wäßriger Suspension als auch als Rückstand auf der Pflanze eine gute<br />
Stabilität besitzt. Wegen seiner geringen Wasserlöslichkeit (3,8 ppm bei 20°C [69])<br />
liegt Benomyl in wäßrigen Präparaten als Suspension vor (übliche Konzentration 250<br />
ppm) <strong>und</strong> wird dort nur langsam abgebaut [65].<br />
Da Benomyl-Standardsubstanzen stets einen kleinen Anteil an Carbendazim enthalten<br />
<strong>und</strong> Benomyl sich in organischen Lösungsmitteln rasch zu Carbendazim<br />
umwandelt, ist es nicht möglich carbendazimfreie Benomyl-Lösungen herzustellen<br />
[68]. Für Dotierungsversuche wurde eine Benomyl-Lösung in kaltem Acetonitril<br />
hergestellt (500µg/ml). Diese Lösung wurde unmittelbar nach ihrer Herstellung mit<br />
HPLC/DAD untersucht <strong>und</strong> dabei ein Carbendazimgehalt <strong>von</strong> etwa 40 µg/ml ermittelt,<br />
was etwa 60 µg/ml Benomyl entspricht. Bei einer Lagerung dieser Lösung bei -18°C<br />
stieg der Anteil an Carbendazim über längere Zeit nicht merklich an. Bei<br />
Raumtemperatur setzte sich jedoch das Benomyl rasch zu Carbendazim um. Nach<br />
einer anfänglich hohen Umsetzungsrate (t0,5 = etwa 40 min), erreichte die Reaktion<br />
schnell einen Gleichgewichtszustand, bei dem etwa 20 % des ursprünglichen<br />
Benomyl noch intakt vorlag. Diese Beobachtungen stimmen sehr gut mit kinetischen<br />
Studien über das Verhalten <strong>von</strong> Benomyl in Acetonitril überein, die <strong>von</strong> Singh et al.<br />
[66] durchgeführt wurden. Auch sie beobachteten das Auftreten eines<br />
Gleichgewichtszustandes.<br />
In neutralen wäßrigen Lösungen ist die Umwandlungsrate <strong>von</strong> Benomyl zu<br />
Carbendazim geringer als in organischen Lösungsmitteln, sie steigt jedoch im Sauren<br />
<strong>und</strong> im Alkalischen an [67,68,75]. Im Alkalischen tritt neben der Bildung <strong>von</strong><br />
Carbendazim eine weitere dazu konkurrierende Reaktion auf, die mit steigendem pH-<br />
Wert zunehmend an Bedeutung gewinnt (siehe Abb. 3.1.5-6). Zunächst bildet sich<br />
aus Benomyl unter Ringschluß STB (3-Butyl-2,4-Dioxo[1,2-a]-s-Triazinobenzimidazol),<br />
das bei höheren pH-Werten weiter zu BBU (1-(2-Benzimidazoyl)-3-n-<br />
Butylharnstoff) abgebaut wird [76].<br />
Abb. 3.1.5-6: Abbaupfade <strong>von</strong> Benomyl [69,74,77]<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
74
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
N<br />
N<br />
C<br />
O NH<br />
C4H9<br />
Benomyl<br />
H +<br />
N<br />
O<br />
NH C OCH3<br />
N NH C OCH3<br />
H<br />
Carbendazim<br />
O<br />
OH -<br />
OH -<br />
N<br />
N<br />
C<br />
O N<br />
C4H9<br />
STB<br />
NH<br />
N<br />
O<br />
N NH2<br />
H<br />
2-Aminobenzimidazole<br />
OH -<br />
N<br />
N NH<br />
H C O<br />
NH<br />
Diese Konkurrenzreaktion zur Bildung <strong>von</strong> Carbendazim unter alkalischen Bedingungen<br />
bringt analytische Schwierigkeiten mit sich. Vor einer <strong>Extraktion</strong> unter<br />
alkalischen Bedingungen muß Benomyl zu Carbendazim umgewandelt werden, da<br />
sonst unerwünschtes STB <strong>und</strong> BBU entsteht.<br />
Eine quantitative Umwandlung <strong>von</strong> Benomyl zu Carbendazim kann nach Literaturangaben<br />
durch Erhitzen angesäuerter Proben erreicht werden [51,54]. Allerdings<br />
berichten Calmon et al. [67], daß die Umwandlung bei pH-Werten unterhalb 2,5<br />
wegen der Protonierung des Benomyl gehemmt ist.<br />
Die Umwandlung <strong>von</strong> Benomyl zu Carbendazim wurde deshalb bei pH∼3 durch<br />
Erhitzen der Probe durchgeführt. Bei Wiederfindungsversuchen wurde gezeigt, daß<br />
unter diesen Bedingungen eine sehr hohe Umwandlungsrate <strong>von</strong> Benomyl zu<br />
Carbendazim (über 90 %) erreicht wird (Bem.: der pH-Wert wurde vor der <strong>Extraktion</strong><br />
auf 8 eingestellt). Zudem wurde gezeigt, daß weder Thiophanat-Methyl noch<br />
Carbendazim unter diesen Bedingungen beeinträchtigt werden. Die Wiederfindung<br />
an Benomyl war wesentlich schlechter (73 % als Carbendazim), wenn die dotierten<br />
Proben ohne saure Vorbehandlung direkt alkalisiert (pH=8) <strong>und</strong> extrahiert wurden<br />
(siehe Tab. 3.1.5-3). Dies ist vermutlich auf die kompetitive Bildung <strong>von</strong> STB<br />
zurückzuführen. Die Wiederfindungsraten waren noch niedriger, wenn die bereits in<br />
die <strong>Extraktion</strong>shülsen gefüllten Proben vor der <strong>Extraktion</strong> bei Raumtemperatur<br />
gelagert wurden (siehe Tab. 3.1.5-3, Bem.: etwa 12 % des Benomyls lag bereits vor<br />
der Dotierung als Carbendazim in der Standardlösung vor).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
C4H9<br />
BBU<br />
75
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.5-3: Wiederfindung <strong>von</strong> Benomyl als Carbendazim<br />
(dotierte Menge 3,3 mg/kg), <strong>Extraktion</strong> bei pH 8<br />
Lagerzeit in der Wiederfindungsrate Bemerkungen<br />
<strong>Extraktion</strong>shülse vor als Carbendazim<br />
der <strong>Extraktion</strong> bei RT<br />
%<br />
0 h 73 keine Vorbehandlung<br />
2 h 41 im Sauren<br />
8 h 28<br />
0 h 94 mit Vorbehandlung<br />
2 h 90 im Sauren<br />
8 h 92 (20 min, 65° C, pH 3)<br />
Der Umwandlungsfaktor 1,52 wurde für die Berechnung verwendet<br />
Anmerkung zur Analytik <strong>von</strong> Benomyl:<br />
Die Umwandlung <strong>von</strong> Benomyl zu STB <strong>und</strong> BBU im Alkalischen eröffnet die Möglichkeit<br />
zur indirekten Bestimmung <strong>von</strong> Benomyl-Rückständen in Proben. Dies wurde<br />
jedoch nicht weiter verfolgt, da in der RHmV eine Summenhöchstmenge für Benomyl<br />
Carbendazim <strong>und</strong> Thiophanat-Methyl angegeben ist. Die gesonderte Bestimmung<br />
<strong>von</strong> Benomyl-Rückständen in Proben ist daher für die Überwachung nicht<br />
interessant.<br />
3.1.5.3.2.2 Thiophanat-Methyl<br />
Thiophanat-Methyl ist beständiger als Benomyl <strong>und</strong> kann oft über längere Zeit in<br />
behandelten Erntegütern nachgewiesen werden [51,78]. Wie Abb. 3.1.5-7 zeigt ist die<br />
Umwandlung <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl zu Carbendazim während der SFE-<strong>Extraktion</strong>,<br />
selbst bei alkalischen Bedingungen, vernachlässigbar. Folglich kann Thiophanat-<br />
Methyl nach einer SFE-<strong>Extraktion</strong> als solches bestimmt werden (HPLC/DAD).<br />
Allerdings wurde eine nicht unwesentliche Umwandlung <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl zu<br />
Carbendazim beobachtet, wenn die <strong>Extraktion</strong> nicht direkt durchgeführt wurde,<br />
sondern die <strong>Extraktion</strong>shülsen einige St<strong>und</strong>en bei Raumtemperatur (z.B. im<br />
Autosampler des <strong>Extraktion</strong>s-Gerätes) lagerten. Diese Umwandlung wird mit<br />
steigendem pH-Wert begünstigt. Allerdings treten auch hier Konkurrenzreaktionen<br />
auf, so daß die Wiederfindungsrate als Carbendazim relativ niedrig lag (bei max. 60%<br />
nach 24 h, pH 8,5) (Abb. 3.1.5-8). Bei -18°C wurde dagegen selbst nach längerer<br />
Lagerung kein wesentlicher Abbau <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl beobachtet. (siehe Abb.<br />
3.1.5-7).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
76
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-7: Unerwünschter Abbau <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl in der<br />
<strong>Extraktion</strong>shülse während der Lagerung bei Raumtemperatur<br />
µg/<strong>Extraktion</strong>shülse<br />
25<br />
20<br />
15<br />
10<br />
5<br />
0<br />
100 % Wiederfindung ber. als Carbendazim<br />
0 1 2 3 4 5 6 7 10 72*<br />
Lagerzeit der <strong>Extraktion</strong>shülsen in St<strong>und</strong>en bei pH 8,5<br />
Carbendazim Thiophanat-Methyl Summe ber. als Carbendazim<br />
* diese Probe wurde bei -18° C gelagert<br />
Abb. 3.1.5-8: Unerwünschter Abbau <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl in der<br />
<strong>Extraktion</strong>shülse während der Lagerung bei Raumtemperatur<br />
.<br />
Wiederfindung als<br />
Carbendazim in %<br />
100<br />
80<br />
60<br />
40<br />
20<br />
0<br />
0 1 2 3 4 5 6 7 10 24<br />
St<strong>und</strong>en<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
pH 7<br />
pH 8,5<br />
pH 9,5<br />
77
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Umwandlung <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl zu Carbendazim nach der <strong>Extraktion</strong>:<br />
Eine nahezu vollständige Umwandlung <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl zu Carbendazim<br />
wurde durch Zugabe <strong>von</strong> Kaliumcarbonat-Lösung als Katalysator in den GC-Vials,<br />
die den SFE-Extrakt in Acetonitril enthalten, durchgeführt.<br />
Um diese Umwandlung zu optimieren wurde eine einfache kinetische Studie<br />
gemacht. Der Fortgang der Umwandlung wurde mit Hilfe eines RP-HPLC/DAD<br />
verfolgt <strong>und</strong> ist in Abb. 3.1.5-9 dargestellt.<br />
Abb. 3.1.5-9: Kinetik der Umwandlung <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl zu Carbendazim in<br />
Acetonitril/K2CO3<br />
Der erste Schritt dieser basisch katalysierten Reaktion läßt sich anhand der raschen<br />
Abnahme der Peakfläche des Thiophanat-Methyl verfolgen. Diese Abnahme scheint<br />
den Gesetzen einer Reaktion 1. Ordnung zu folgen (Linearität der Beziehung<br />
zwischen dem Logarithmus der Peakfläche <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl gegen die<br />
Reaktionszeit, siehe Abb. 3.1.5-10). Wie in Abb. 3.1.5-9 <strong>und</strong> Abb. 3.1.5-11 zu sehen<br />
ist, entstehen einhergehend mit der Abnahme des Thiophanat-Methyl Zwischenprodukte,<br />
die hier nicht näher untersucht wurden.<br />
Die Halbwertszeiten (HWZ) der Abnahme <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl bei verschiedenen<br />
Temperaturen wurden aus den Steigungen der Geraden in Abb. 3.1.5-10 berechnet<br />
(HWZ=ln 2/Steigung). Die Bildung <strong>von</strong> Carbendazim kann durch die Erhöhung der<br />
Temperatur beschleunigt werden. Allerdings sollte die Temperatur unterhalb 70°C<br />
liegen um zu vermeiden, daß Carbendazim zu 2-Aminobenzimidazol abgebaut wird<br />
(siehe Abb. 3.1.5-7 <strong>und</strong> Abb. 3.1.5-2).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
78
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-10: Kurven des Logarithmus der relativen Peakflächen <strong>von</strong> Thiophanat-<br />
Methyl gegen die Zeit<br />
ln (signalx100/Int.Std)<br />
6<br />
5<br />
4<br />
3<br />
2<br />
1<br />
0<br />
60°C<br />
t 0.5 =1.1 min<br />
50°C<br />
t 0.5 =1.8 min<br />
40°C<br />
t 0.5 =3.4 min<br />
20°C<br />
t 0.5 =21 min<br />
0 10 20 30 40<br />
Zeit [min]<br />
Abb. 3.1.5-11: Fortgang der Umwandlung <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl zu Carbendazim<br />
in Acetonitril/K2CO3 bei Raumtemperatur (HPLC/DAD, 285 nm)<br />
mAu<br />
100<br />
80<br />
60<br />
40<br />
20<br />
0<br />
0 min 60 min 160 min 300 min<br />
Thiophanat-Methyl<br />
2 4 6 8<br />
mAu<br />
100<br />
80<br />
60<br />
40<br />
20<br />
0<br />
Zwischenprodukte<br />
Carbendazim<br />
Thiophanat-Methyl<br />
2 4 6 8<br />
mAu<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
80<br />
60<br />
40<br />
20<br />
0<br />
Zwischenprodukte<br />
Carbendazim<br />
2 4 6 8<br />
mAu<br />
100<br />
80<br />
60<br />
40<br />
20<br />
0<br />
Zwischenprodukte<br />
Carbendazim<br />
79<br />
2 4 6 8
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-12: Bildung <strong>von</strong> Carbendazim bei der Umwandlung <strong>von</strong> Thiophanat-<br />
Methyl in Acetonitril/K2CO3 bei verschiedenen Temperaturen<br />
Die Bildung der Zwischenprodukte erfolgt rasch. Wesentlich langsamer <strong>und</strong> daher<br />
geschwindigkeitsbestimmend erfolgt die nachfolgende Bildung des Carbendazim.<br />
(Abb. 3.1.5-9 <strong>und</strong> Abb. 3.1.5-11). Dies hat Auswirkungen auf die Analytik. Die HPLC-<br />
Bestimmung kann erst dann durchgeführt werden, wenn sich die Zwischenprodukte<br />
quantitativ in Carbendazim umgewandelt haben <strong>und</strong> nicht sobald kein Thiophanat-<br />
Methyl mehr vorhanden ist, da sonst zu niedrige Werte ermittelt werden. Analog dazu<br />
sollte eine nachfolgende Derivatisierung des Carbendazim erst nach vollständig<br />
erfolgter Umwandlung durchgeführt werden, da andernfalls das Derivatisierungsmittel<br />
mit Thiophanat-Methyl selbst oder den Zwischenprodukten reagiert, wodurch andere<br />
Produkte als das gewünschte Carbenazim-Derivat entstehen können.<br />
Bestimmung <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl als solches:<br />
Es wurde gezeigt, daß sich Thiophanat-Methyl bei pH-Werten zwischen 4 <strong>und</strong> 9,5 gut<br />
extrahieren läßt. Wegen der Instabilität des Thiophanat-Methyl im Alkalischen sind<br />
jedoch niedrigere pH-Werte günstiger. Wird die <strong>Extraktion</strong> jedoch bei höheren pH-<br />
Werten durchgeführt, ist darauf zu achten, daß unter alkalischen Bedingungen in den<br />
<strong>Extraktion</strong>shülsen ein Abbau erfolgen kann. Sowohl die <strong>Extraktion</strong> als auch die<br />
Bestimmung müssen ohne Verzögerung möglichst rasch durchgeführt werden, da<br />
Thiophanat-Methyl selbst in den in Acetonitril gelösten Extrakten innerhalb einiger<br />
St<strong>und</strong>en teilweise zu Carbendazim umgewandelt wird.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
80
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.5.3.2.3 Derivatisierung <strong>von</strong> Carbendazim mit PFB-Br im GC-Vial<br />
Die direkte Bestimmung <strong>von</strong> Carbendazim mittels HPLC-DAD ist relativ unempfindlich.<br />
Eine gaschromatographische Bestimmung ist nur nach Derivatisierung<br />
möglich. Da für Carbendazim <strong>und</strong> Thiophanat-Methyl eine gemeinsame<br />
Höchstmenge, berechnet als Carbendazim, gilt <strong>und</strong> Carbendazim sehr empfindlich<br />
als PFB-Derivat mit GC-MSD bestimmt werden kann, ist es sinnvoll beide Stoffe<br />
zusammen als Carbendazim zu bestimmen (Benomyl wird schon vor der <strong>Extraktion</strong><br />
zu Carbendazim umgewandelt). Im Rahmen dieser Arbeit wurde daher eine Methode<br />
entwickelt bei der die Umwandlung <strong>von</strong> Thiophanat-Methyl <strong>und</strong> die anschließende<br />
Derivatisierung des Carbendazim direkt in dem GC-Gläschen durchgeführt wird, in<br />
dem der SFE-Extrakt anfällt. Beide Reaktionen werden durch K2CO3-Lösung<br />
katalysiert.<br />
Sie ist einfach durchzuführen <strong>und</strong> erfordert nur wenige Arbeitsschritte (siehe Anlage<br />
2, Code 101E3102).<br />
3.1.5.3.2.4 Bestimmung mittels GC-MSD<br />
Die derivatisierten Extrakte können ohne weitere Reinigung direkt zur Messung<br />
eingesetzt werden.<br />
Tab. 3.1.5-4 zeigt die Strukturformel des Derivates, seine Retentionszeit sowie die<br />
zur Quantifizierung <strong>und</strong> Identifizierung verwendeten SIM-Massen auf.<br />
Tab. 3.1.5-4: GC-MS-Daten des Carbendazim-bis-PFB-Derivates<br />
Strukturformel Retentionszeit<br />
(min)<br />
N<br />
N<br />
CH2C6F5<br />
CH2C6F5<br />
N C<br />
O<br />
OCH3<br />
24,10<br />
GC-Bedingungen: siehe Anlage 2 (Code 101E3102)<br />
Quantifizierungs-<br />
Masse<br />
(m/z)<br />
551<br />
Bestätigungs-<br />
Massen<br />
(m/z)<br />
492, 292<br />
Zur Kompensation <strong>von</strong> Matrix-Effekten bei kleinen Carbendazim-Konzentrationen ist<br />
es günstig Kalibrierungen nach dem Standard-Additionsverfahren durchzuführen.<br />
Abb. 3.1.5-13 zeigt die Matrix-Effekte des Carbendazim-bis-PFB-Derivates am<br />
Beispiel eines Orangensaft-Extraktes.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
81
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-13: Matrixeffekte, die bei niedrigen Konzentrationen an Carbendazim-<br />
Derivat auftraten, Eichlösungen auf Orangensaft-Extrakt<br />
Fläche vs. Internen Standard<br />
120<br />
100<br />
80<br />
60<br />
40<br />
20<br />
3.1.5.3.2.5 Validierung<br />
Wiederfindungen:<br />
"Matrix Eichung"<br />
0<br />
0 20 40 60 80 100 120 140 160<br />
ng Carbendazim/ml<br />
"Lösungsmittel-Eichung"<br />
Zur Ermittlung der Wiederfindungsraten wurden zerkleinerte Grapefruit-, Trauben-<br />
<strong>und</strong> Eisbergsalat-Proben mit Thiophanat-Methyl oder Carbendazim dotiert. Die<br />
verwendete Analysenvorschrift befindet im Anlage 2. Tab. 3.1.5-5 zeigt die<br />
ermittelten Wiederfindungen.<br />
Tab. 3.1.5-5: Wiederfindung <strong>von</strong> dotiertem Carbendazim (0,33 mg/kg) <strong>und</strong><br />
Thiophanat-Methyl (0,66 mg/kg) aus verschiedenen <strong>Lebensmitteln</strong><br />
Lebensmittel Carbendazim Thiophanat-Methyl<br />
Grapefruit<br />
Trauben<br />
Eisbergsalat<br />
Analysenmethode: siehe Anlage 2<br />
Mittlere Wiederfindung in %<br />
91 85<br />
92 79<br />
93 -<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
82
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen:<br />
Die Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen für Carbendazim wurden nach dem DFG-<br />
Eichgeradenverfahren ermittelt (siehe Tab. 3.1.5-6) [80]. Hierzu wurden Wiederfindungsversuche<br />
bei vier verschiedenen Konzentrationen jeweils 4 mal durchgeführt<br />
(16 Aufarbeitungen). Die Dotierungen erfolgten auf Apfelmatrix, wobei die niedrigste<br />
dotierte Konzentration im Bereich der erwarteten Nachweisgrenze lag [81].<br />
Tab. 3.1.5-6: Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen nach dem DFG-Eichgeradenverfahren<br />
[80-82]<br />
Parameter Carbendazim<br />
(als Bis-PFB-Derivat)<br />
dotierte Menge (µg/kg) 4,8/9,5/19/28,6<br />
berechnete Nachweisgrenze 3 µg/kg<br />
berechnete Bestimmungsgrenze* 5 µg/kg<br />
Korrelation der Geraden (r) 0,998<br />
Korrelationskoeffizient (%RSD) 3,6<br />
Analysenmethode: siehe Anlage 2<br />
* kleinste Höchstmenge für Obst <strong>und</strong> Gemüse 100 µg/kg, für Säuglingsnahrung 10<br />
µg/kg [34]<br />
Laborvergleichsuntersuchung<br />
Eine zerkleinerte, mit einer unbekannten Menge an Carbendazim dotierte Apfelprobe<br />
wurde mit der in Anlage 2 vorgestellten SFE-Methode untersucht. Diese Probe wurde<br />
<strong>von</strong> der Europäischen Kommission im März 1997 im Rahmen einer<br />
Laborvergleichsuntersuchung (Proficiency Test) zur Verfügung gestellt [83]. Tab.<br />
3.1.5-7 zeigt die Ergebnisse, die mit der SFE-Methode erzielt wurden, im Vergleich<br />
zu denen der 58 teilnehmenden Laboratorien.<br />
Tab. 3.1.5-7: European Commission’s Proficiency Test II (März 1997)<br />
Teilnehmerzahl 58<br />
Mittelwert 0,507 mg/kg<br />
Median 0,513 mg/kg<br />
dotierte Menge 0,653 mg/kg<br />
Ergebnis der SFE-Methode 0,66 mg/kg<br />
Wiederfindung 1) 100% (0,5 mg/kg)<br />
1 ) pestizidfreie Apfelmatrix, die <strong>von</strong> den Organisatoren zur Verfügung gestellt wurde,<br />
wurde mit 0,5 mg/kg Carbendazim dotiert<br />
Analysenmethode: siehe Anlage 2<br />
Die Ergebnisse dieser Untersuchungen wurden in [101, 102] veröffentlicht.<br />
Untersuchungsergebnisse <strong>von</strong> zahlreichen Proben aus dem Handel werden in Kap.<br />
3.1.6.2 vorgestellt.<br />
3.1.5.3.2.6 <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> „gewachsenen“ Carbendazim-Rückständen aus<br />
Keltertrauben<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
83
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Im Rahmen eines Feldversuches im Überwachungsgebiet der CVUA Stuttgart wurde<br />
die Wirksamkeit der botriticiden Präparate „Skala“ <strong>und</strong> „Botrylon“ im Weinbau<br />
untersucht. Zur Überprüfung der Rückstandssituation der enthaltenen Wirkstoffe<br />
Carbendazim, Pyrimethanil <strong>und</strong> Diethofencarb zum Zeitpunkt der Lese wurden <strong>von</strong><br />
Weinkontrolleuren entsprechende Proben entnommen.<br />
Die Trauben wurden nach der Zerkleinerung zu je 3 g in 50 ml Bechergläser<br />
eingewogen <strong>und</strong> zum Teil mit NaHCO3-Lösung zur Einstellung des pH-Wertes auf<br />
etwa 6,5 („neutral“) bzw. 8,5 („alkalisch“) versetzt. Die restlichen Proben wiesen<br />
einen pH-Wert <strong>von</strong> etwa 3 auf („sauer“). Alle Proben wurden anschließend mit 2 g<br />
Hydromatrix verrührt <strong>und</strong> zur SFE-<strong>Extraktion</strong> eingesetzt. Die Ergebnisse sind in Tab.<br />
3.1.5-8 dargestellt.<br />
Tab. 3.1.5-8: Einfluß des pH-Wertes auf die Extrahierbarkeit <strong>von</strong><br />
Carbendazim aus Trauben mittels SFE<br />
Carbendazimgehalt (in ppm) bestimmt nach Derivatisierung<br />
mit PFBB/K2CO3<br />
SFE-Methode DFG-Methode<br />
„alkalisch“ „neutral“ „sauer“<br />
pH∼8,5 pH∼6,5 pH∼3<br />
Probe 1 0,18 (n=5) 0,035 (n=4)<br />
Probe 2 0,10 (n=6) 0,053 0,018 (n=3)<br />
Probe 3 0,16 (n=6) 0,039 (n=4)<br />
Probe 4 0,17 (n=6) 0,042 (n=3)<br />
Probe 5 0,37 (n=4) 0,38 (n=2)<br />
Probe 6 0,16 (n=5) 0,045 0,019 (n=2)<br />
Analysenmethode: siehe Anlage 2<br />
Wie zu erwarten war, spielt der pH-Wert auch bei der SFE-<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> gewachsenen<br />
Carbendazim-Rückständen eine große Rolle. Unter alkalischen Bedingungen<br />
wurden für Carbendazim Werte ermittelt, die mit denen der DFG-Methode<br />
vergleichbar sind. Unter sauren Bedingungen konnte dagegen nur ein Bruchteil des<br />
Carbendazim erfaßt werden.<br />
Die Ergebnisse der Untersuchung auf Pyrimethanil <strong>und</strong> Diethofencarb sind in Kap.<br />
3.1.6.1 dargestellt.<br />
3.1.5.3.2.7: SFE- <strong>und</strong> DFG-Methode zur Bestimmung der Carbendazim-Gruppe im<br />
Kostenvergleich<br />
In Tab. 3.1.5-9 werden die einzelnen Arbeitsschritte, die bei der SFE-Methode (siehe<br />
Anlage 2) <strong>und</strong> der DFG-Methode 261, 378 zur Bestimmung <strong>von</strong> Carbendazim,<br />
Benomyl <strong>und</strong> Thiophanat-Methyl anfallen, gegenübergestellt. Darüber hinaus werden<br />
die Kosten für die beiden Verfahren geschätzt. Es wird ersichtlich, daß die SFE-<br />
Methode im Vergleich zu der herkömmlichen Methode deutlich effizienter ist. Die<br />
Vorteile liegen vor allem in der Einsparung <strong>von</strong> Lösungsmittel- <strong>und</strong> Personalkosten.<br />
Tab. 3.1.5-9: Gegenüberstellung der DFG-261, 378 <strong>und</strong> der SFE-Methode zur<br />
Bestimmung der Stoffe der Carbendazim-Gruppe<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
84
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
SFE-Methode DFG 261, 378<br />
Arbeitsschritte<br />
• einwiegen<br />
• einwiegen<br />
• alkalisieren<br />
• mit Methanol homogenisieren<br />
• Zugabe <strong>von</strong> Adsorbens<br />
• ausschütteln<br />
• einfüllen in die <strong>Extraktion</strong>shülse • abnutschen, nachwaschen,<br />
• <strong>Extraktion</strong><br />
auffüllen<br />
• Derivatisierung<br />
• Aliquotierung<br />
• Chromatographie<br />
• mit DMF am Rotationsverdampfer<br />
konzentrieren<br />
• mit DMF <strong>und</strong> Ammoniak versetzen<br />
• auf dem Wasserbad erwärmen<br />
• am Rotationsverdampfer<br />
konzentrieren<br />
• mit Phosphatpuffer <strong>und</strong> Salzlösung<br />
versetzen<br />
• 3 x mit Dichlormethan ausschütteln<br />
• mit Natriumsulfat trocknen<br />
• am Rotationsverdampfer<br />
konzentrieren<br />
• aufnehmen<br />
• Al2O3-Säulen herstellen<br />
• säulenchromatographische<br />
Reinigung<br />
• Lösungsmittel entfernen<br />
• Derivatisierung<br />
• Chromatographie<br />
Arbeitszeit pro Serie in St<strong>und</strong>en<br />
6 Arbeitsst<strong>und</strong>en für 12 Proben 20 Arbeitsst<strong>und</strong>en für 6 Proben<br />
Chemikalienverbrauch<br />
• 40 g hochreines Kohlendioxid<br />
• 250 ml Methanol<br />
• techn. Kohlendioxid zur Kühlung der • 240 ml Dichlormethan<br />
Falle<br />
• 150 ml Hexan/Essigester<br />
• 10 g Hydromatrix<br />
• 10 ml DMF<br />
• 8 ml Acetonitril<br />
• Natriumsulfat<br />
• 5 ml Hexan<br />
• Natriumchlorid<br />
Kosten für die Aufarbeitung pro Probe in DM<br />
Personalkosten: ca. 15 DM Personalkosten: ca. 100 DM<br />
Chemikalien /<br />
ca. 10 DM Chemikalien /<br />
ca. 55 DM<br />
Verbrauchsmaterial<br />
Verbrauchsmaterial:<br />
Summe<br />
ca. 65 DM ca. 155 DM<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
85
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.5.4 Saure Pestizide<br />
3.1.5.4.1 Einführung<br />
Ähnlich wie im Fall basischer Verbindungen ist bei sauren Pestiziden zur Verbesserung<br />
der Extrahierbarkeit eine pH-Wert-Einstellung notwendig. Eine Ansäuerung<br />
der Matrix ist hier erforderlich um das Säure-Base-Gleichgewicht in Richtung der<br />
leicht extrahierbaren protonierten Form zu verschieben. Die meisten Pestizide mit<br />
Carbonsäure-Funktion sind herbizid <strong>und</strong>/oder wachstumsregulatorisch wirksam.<br />
Zu den wichtigsten Vertretern gehören die Phenoxyalkancarbonsäuren, die als<br />
Selektivherbizide im Getreideanbau verwendet werden. Beispiele hierfür sind<br />
2,4-D <strong>und</strong> Mecoprop, die weltweit zu den mengenmäßig am häufigsten verwendeten<br />
Pestiziden gehören. Pestizide mit Säuregruppen sind in der Regel gut wasserlöslich<br />
<strong>und</strong> daher systemisch wirksam, d.h. sie dringen z.B. über die Wurzeln in die Pflanzen<br />
ein <strong>und</strong> verteilen sich über die Assimilatenbahnen über die ganze Pflanze. Hier<br />
können sie über die Säuregruppe Bindungen mit verschiedenen Pflanzeninhaltsstoffen,<br />
wie Kohlenhydraten <strong>und</strong> Proteinen eingehen (Ausbildung geb<strong>und</strong>ener<br />
Rückstände).<br />
Analytisch bereiten Pestizide mit Säuregruppen einige Schwierigkeiten, da sie<br />
besondere <strong>Extraktion</strong>sbedingungen erfordern <strong>und</strong> nicht ohne Derivatisierung<br />
gaschromatographisch bestimmt werden können. Sie werden daher nicht mit den<br />
gängigen Multimethoden erfaßt <strong>und</strong> somit routinemäßig kaum untersucht.<br />
Die Entwicklung einer einfachen Methode zur Bestimmung solcher Pestizide ist daher<br />
erforderlich.<br />
Stellvertretend für Phenoxyalkancarbonsäuren wurde 2,4-D für die Entwicklung einer<br />
Bestimmungsmethode ausgewählt. 2,4-D wird nicht nur als Herbizid im Getreideanbau<br />
eingesetzt, sondern auch in geringen Konzentrationen als Wachstumsregulator beim<br />
Anbau <strong>von</strong> Obst <strong>und</strong> Gemüse. In Getreide werden üblicherweise nur geringe Gehalte<br />
an Phenoxyalkancarbonsäuren gef<strong>und</strong>en, da die Behandlung bereits zu einem sehr<br />
frühen Zeitpunkt des Anbaus erfolgt. Bei Zitrusfrüchten wird 2,4-D zudem häufig auch<br />
zur Nacherntebehandlung eingesetzt, weshalb hier am ehesten mit Rückständen zu<br />
rechnen ist.<br />
3.1.5.4.2 2,4-D-Rückstände in Zitrusfrüchten<br />
Seit den späten 40 iger Jahren wird 2,4-D im Zitrusanbau als Wachstumsregulator<br />
eingesetzt [9]. In den USA werden beispielsweise Zitrusbäume vor der Ernte mit<br />
schwach konzentrierten 2,4-D-Isopropylester-Lösungen behandelt [4,9]. 2,4-D bewirkt<br />
eine Verlangsamung der Reifungsprozesse in den Früchten, wodurch der Fruchtabfall<br />
verzögert wird. Dadurch kann die Erntezeit erheblich verlängert werden. Die Belastung<br />
der Früchte mit 2,4-D durch diese Behandlung ist relativ gering [9].<br />
In Ländern wie Argentinien, Uruguay <strong>und</strong> Südafrika werden Zitrusfrüchte vor der<br />
Einschiffung zum Export nach Europa mit wäßrigen Wachsemulsionen behandelt, die<br />
etwa 500 ppm 2,4-D enthalten. Der Wirkstoff wird hier meist als Salz (z.B. Natrium-<br />
oder Dimethylammonium-Salz) oder als Ester (z.B. Isopropylester) eingesetzt<br />
[5,9,125,132]. In USA <strong>und</strong> Spanien wird 2,4-D nur bei Früchten verwendet, die zur<br />
Lagerung bestimmt sind [125,131]. Hier wird das 2,4-D-haltige Wachs vor dem<br />
Verkauf abgewaschen <strong>und</strong> durch ein 2,4-D-freies Glanzwachs ersetzt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
86
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Mit 2,4-D behandelte Zitrusfrüchte sind beständiger gegen Pilzbefall. Dies ist darauf<br />
zurückzuführen, daß biologische Prozesse, die für die natürliche Alterung der Früchte<br />
verantwortlich sind, mit Hilfe <strong>von</strong> 2,4-D verzögert werden. Dadurch bleiben die<br />
Resistenzmechanismen der Früchte gegenüber Pilzen länger intakt [9,47,50].<br />
Die zur Oberflächenbehandlung <strong>von</strong> Zitrusfrüchten eingesetzten 2,4-D-Ester<br />
hydrolysieren in der Regel kurze Zeit nach ihrer Anwendung zu der Säureform [5,9].<br />
Der als Säure vorliegende Wirkstoff kann sich nun an verschiedene Moleküle mit<br />
reaktionsfähigen Gruppen (z.B. Hydroxyl- oder Epoxid-Gruppen [vgl. 33]) anbinden. In<br />
Betracht kommen hier in erster Linie Wachse, die zur Oberflächenbehandlung der<br />
Früchte eingesetzt werden, fruchteigene Wachse <strong>und</strong> Cutin-Makromoleküle,<br />
Wachsalkohole <strong>und</strong> Polysaccharide. Reaktionen mit stickstoffhaltigen Substanzen<br />
(z.B. Aminosäuren) unter Ausbildung <strong>von</strong> Amidbindungen spielen auf der Schalenoberfläche<br />
eine untergeordnete Rolle.<br />
Über Esterbindungen geb<strong>und</strong>ene Rückstände können mittels einer alkalischen<br />
Hydrolyse, wie sie auch bei anderen Methoden zur Bestimmung <strong>von</strong> Phenoxyalkancarbonsäuren<br />
in Getreide eingesetzt wird [2,6], freigesetzt werden.<br />
3.1.5.4.3 <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> freiem 2,4-D<br />
Einfluß des pH-Wertes:<br />
Zur <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> 2,4-D mit überkritischem Kohlendioxid wird das Probenmaterial<br />
angesäuert, wodurch das Säure-Base-Gleichgewicht (pKs=2,73) in Richtung der gut<br />
extrahierbaren protonierten Form verschoben wird (siehe auch Kap. 3.1.4.7.2).<br />
Der Einfluß des pH-Wertes auf die Extrahierbarkeit <strong>von</strong> 2,4-D wird in Tab. 3.1.5-10<br />
dargestellt. Es wird ersichtlich, daß unter alkalischen Bedingungen, nur geringe<br />
Anteile des 2,4-D extrahiert werden.<br />
Tab. 3.1.5-10: Wiederfindungen <strong>von</strong> 2,4-D in Abhängigkeit<br />
vom pH-Wert, Grapefruit-Matrix 0,5 ppm<br />
„sauer“ pH 1-2 „alkalisch“ pH∼9,5<br />
Wiederfindung in %<br />
100 (n=2) 6 (n=4)<br />
Analysenmethode: siehe Anlage 3<br />
Einfluß des Wassergehaltes:<br />
Zur Überprüfung des Einflusses <strong>von</strong> vorhandenem Wasser wurden Wiederfindungsversuche<br />
mit unterschiedlichem Probe/Hydromatrix-Verhältnis durchgeführt. Dabei<br />
wurden bei Orangensaft für Probe/Hydromatrix-Verhältnisse <strong>von</strong> 0,75:1 bis 1,65:1<br />
nahezu identisch Wiederfindungsraten für 2,4-D festgestellt. Noch größere Anteile an<br />
Probe (höherer Wasseranteil) führten jedoch zu einer Verschlechterung der<br />
Wiederfindung.<br />
3.1.5.4.4 Freisetzung <strong>von</strong> geb<strong>und</strong>enen 2,4-D-Rückständen<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
87
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Nach der Ernte wird 2,4-D häufig als Isopropyl-Ester oder Dimethylamin-Salz eingesetzt.<br />
2,4-D-Ester hydrolysieren nach der Anwendung rasch zur freien Säure<br />
[30,59,60]. Die Säure kann dann teilweise an Wachsüberzüge <strong>und</strong> natürliche<br />
Schalenbestandteile unter Esterbildung binden. Derartig „geb<strong>und</strong>ene“ 2,4-D-<br />
Rückstände werden bei einer <strong>Extraktion</strong> mit Lösungsmitteln nicht mit erfaßt.<br />
Es wurde festgestellt daß sich der Anteil an extrahierbarem 2,4-D deutlich erhöht,<br />
wenn Proben mit gewachsenen 2,4-D-Rückständen unter alkalischen Bedingungen<br />
erhitzt werden (Tab. 3.1.5-11, Abb. 3.1.5-14). Eventuell geb<strong>und</strong>ene 2,4-Dichlorphenol-Anteile<br />
(Abbauprodukt <strong>von</strong> 2,4-D) dürften bei dem alkalischen Aufschluß [29]<br />
ebenfalls freigesetzt werden.<br />
Eine Erhöhung des extrahierbaren 2,4-D wurde ebenfalls festgestellt, wenn die<br />
Proben im Sauren erhitzt wurden, allerdings wurde in diesem Fall deutlich weniger<br />
2,4-D freigesetzt als bei alkalischer Hydrolyse.<br />
Zur Optimierung dieses alkalischen Aufschlusses wurde der pH-Wert <strong>und</strong> die<br />
Erhitzungszeit variiert, um die Bildung unerwünschter Artefakte, die bei der GC-<br />
Bestimmung stören können, möglichst klein zu halten. Es zeigte sich, daß bereits<br />
relativ milde Bedingungen ausreichen, um den Großteil des „geb<strong>und</strong>enen“ 2,4-D<br />
freizusetzen. Keine weitere Erhöhung des extrahierbaren 2,4-D aber deutlich<br />
dunklere Extrakte wurden bei längerer Erhitzungszeit <strong>und</strong> höheren pH-Werten erzielt<br />
(Tab. 3.1.5-11).<br />
Tab. 3.1.5-11: Einfluß der Erhitzungszeit <strong>und</strong> des pH-Wertes während der<br />
Hydrolyse auf die Freisetzung <strong>von</strong> 2,4-D<br />
Erhitzungszeit pH-Wert während 2,4-D Menge<br />
(min) der Hydrolyse<br />
1) Fruchtart<br />
(Herkunftsland)<br />
- 2) - 0,22 mg/kg<br />
15 ∼9,5 0,47 mg/kg<br />
20 ∼9,5 0,48 mg/kg Orange<br />
30 ∼9,5 0,44 mg/kg (Südafrika)<br />
45 ∼9,5 0,47 mg/kg<br />
15 >13 0,46 mg/kg<br />
- 2) - 0,11 mg/kg Zitrone<br />
30 ∼2,5 3) 0,17 mg/kg (Argentinien)<br />
20 ∼9,5 0,31 mg/kg<br />
- 2) - 0,60 mg/kg<br />
60 ∼3,3 3) 0,62 mg/kg Orange<br />
30 2 0,88 mg/kg (Simbabwe)<br />
60 2 0,94 mg/kg<br />
20 ∼9,5 1,60 mg/kg<br />
1)<br />
alle Proben wurden bei pH∼2,5 extrahiert, SFE-Bedingungen: siehe Anlage 3<br />
2) es wurde keine Hydrolyse durchgeführt<br />
3) natürlicher pH Wert<br />
Die Auswirkung eines alkalischen Aufschlusses vor der SFE-<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> 2,4-Dhaltigen<br />
Zitrusproben aus dem Handel wird aus Abb. 3.1.5-14 ersichtlich.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
88
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-14: Freisetzung geb<strong>und</strong>ener 2,4-D Rückstände aus Zitrusfrüchten<br />
durch alkalische Hydrolyse<br />
2,4-D (mg/kg)<br />
0,6<br />
0,5<br />
0,4<br />
0,3<br />
0,2<br />
0,1<br />
0<br />
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10<br />
ohne alkalische Hydrolyse nach alkalischer Hydrolyse<br />
Nr. Fruchtart Herkunftsland Verhältnis<br />
1 Orange Simbabwe 1,6<br />
2 Orange Uruguay 1,7<br />
3 Orange Südafrika 2,1<br />
4 Grapefruit Südafrika 6,3<br />
5 Grapefruit Argentinien 2,4<br />
6 Grapefruit Honduras 3,0<br />
7 Zitrone Argentinien 4,0<br />
8 Zitrone Argentinien 5,7<br />
9 Zitrone Argentinien 2,8<br />
3.1.5.4.5 Derivatisierungsmöglichkeiten <strong>von</strong> Phenoxyalkancarbonsäuren<br />
Die Derivatisierung des 2,4-D, sowie auch weiterer Phenoxyalkancarbonsäuren zu<br />
den 2,2,2-Trichlorethyl- (TCE) Derivaten ist einfach in der Durchführung <strong>und</strong> hat sich<br />
als sehr zuverlässig <strong>und</strong> robust erwiesen. Durch die Zugabe <strong>von</strong> 20 %iger statt<br />
konzentrierter Schwefelsäure als Katalysator konnte die Reinheit der Extrakte nach<br />
der Derivatisierung weiter erhöht werden. Diese Derivatisierungsmethode wird in [19]<br />
eingehend erläutert.<br />
Als Alternative zu der Trichlorethylierung wurde eine Derivatisierung mit 1,3-Dichlor-<br />
Isopropanol (DCIP) vorgenommen [29]. Reagentienverteilung <strong>und</strong> Ablauf der<br />
Reaktion entsprechen der Trichlorethylierung. Zu den DCIP- <strong>und</strong> TCE-Derivaten<br />
wurden neben 2,4-D auch weitere Phenoxyalkancarbonsäuren <strong>und</strong> andere Säuren<br />
derivatisiert. Wie in Abb. 3.1.5-15 <strong>und</strong> 3.1.5-16 zu sehen ist, lassen sich die Derivate<br />
gaschromatographisch gut trennen.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
89
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-15: TIC der 1,3-Dichlorisopropylester saurer Pestizide<br />
340000<br />
320000<br />
300000<br />
280000<br />
260000<br />
240000<br />
220000<br />
200000<br />
180000<br />
160000<br />
140000<br />
120000<br />
100000<br />
80000<br />
60000<br />
40000<br />
20000<br />
15.51<br />
15.78<br />
16.15<br />
16.70<br />
16.50<br />
17.06<br />
17.40<br />
18.01<br />
18.64<br />
19.32<br />
20.05<br />
20.22<br />
21.26<br />
0<br />
Time--><br />
15.00 16.00 17.00 18.00 19.00 20.00 21.00 22.00<br />
Abb. 3.1.5-16: TIC der 2,2,2-Trichlorethylester saurer Pestizide<br />
60000<br />
50000<br />
40000<br />
30000<br />
20000<br />
10000<br />
0<br />
Time--><br />
14.42<br />
14.79<br />
15.85<br />
15.36<br />
15.07<br />
16.65<br />
16.27<br />
17.75<br />
17.13 17.39<br />
18.47<br />
19.30<br />
19.08<br />
20.29<br />
21.67<br />
15.00 16.00 17.00 18.00 19.00 20.00 21.00 22.00 23.00 24.00 25.00<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
90<br />
1,3-Dichlorpropan-2-ol Derivate<br />
15.51 Dichlorbenzoesäure<br />
15.78 Clopyralid<br />
16.15 4-Chlorphenoxyessigsäure<br />
16.50 MCPP (Mecoprop)<br />
16.70 Dicamba<br />
17.06 MCPA<br />
17.40 2,4-DP (Dichlorprop)<br />
18.01 2,4-D<br />
18.64 Triclopyr<br />
19.32 2,4,5-TP (Fenoprop)<br />
20.05 2,4,5-T<br />
20.22 MCPB<br />
21.26 2,4-DB<br />
24.50<br />
2,2,2-Trichlorethyl Derivate<br />
14.42 Reagenz-Blindpeak<br />
14.79 Dichlorbenzoesäure<br />
15.07 Clopyralid<br />
15.36 4-Chlorphenoxyessigsäure<br />
15.84 MCPP (Mecoprop)<br />
15.86 Dicamba<br />
16.27 MCPA<br />
16.65 2,4-DP (Dichlorprop)<br />
17.14 2,4-D<br />
17.39 Interner Standard PCB 101<br />
17.75 Triclopyr<br />
18.47 2,4,5-TP (Fenoprop)<br />
19.09 2,4,5-T<br />
19.30 MCPB<br />
20.29 2,4-DB<br />
21.67 Picloram<br />
24.50 p,p´-DDA
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Charakteristisch für die Massenspektren der DCIP-Derivate ist, daß die, wegen ihrer<br />
höheren Massen in der Regel weniger störungsanfälligen höhermolekularen Ionen,<br />
i.a. stark vertreten sind. Die Bestimmungen mittels GC/MSD gewinnen dadurch an<br />
Empfindlichkeit <strong>und</strong> Spezifität. Problematisch für den Einsatz <strong>von</strong> DCIP ist allerdings<br />
dessen cancerogenes Potential [32].<br />
2,4-Dichlorphenol als Abbauprodukt <strong>von</strong> 2,4-D wird bei den oben beschriebenen<br />
Derivatisierungsreaktionen nicht umgesetzt. Als Alternative bietet sich hier eine<br />
Umsetzung mit Pentafluorbenzylbromid an, siehe [29], bei der auch phenolische<br />
Gruppen derivatisiert werden.<br />
Die Massenspektren der verschiedenen 2,4-D-Derivate sind in den Abbildungen<br />
3.1.5-17 bis 19 dargestellt.<br />
Abb. 3.1.5-17: Massenspektrum <strong>von</strong> 2,4-D-TCE-Ester<br />
9500<br />
9000<br />
8500<br />
8000<br />
7500<br />
7000<br />
6500<br />
6000<br />
5500<br />
5000<br />
4500<br />
4000<br />
3500<br />
3000<br />
2500<br />
2000<br />
1500<br />
1000<br />
500<br />
0<br />
m/z--><br />
61<br />
77<br />
111<br />
133<br />
145 161<br />
175<br />
175<br />
205<br />
2,4-D-TCE-Ester<br />
220238 271 277<br />
316 318<br />
352<br />
374384 408<br />
60 80 100 120 140 160 180 200 220 240 260 280 300 320 340 360 380 400<br />
Abb. 3.1.5-18: Massenspektrum <strong>von</strong> 2,4-D-DCP-Ester<br />
9500<br />
9000<br />
8500<br />
8000<br />
7500<br />
7000<br />
6500<br />
6000<br />
5500<br />
5000<br />
4500<br />
4000<br />
3500<br />
3000<br />
2500<br />
2000<br />
1500<br />
1000<br />
500<br />
0<br />
m/z--><br />
63<br />
75<br />
111<br />
133<br />
145<br />
175<br />
177<br />
210<br />
220<br />
255<br />
269 284<br />
100 150 200 250 300 350 400<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
175<br />
2,4-D-DCIP-Ester<br />
317<br />
332<br />
344<br />
380 387 417<br />
91
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-19: Massenspektrum <strong>von</strong> 2,4-D-PFB-Ester<br />
9500<br />
9000<br />
8500<br />
8000<br />
7500<br />
7000<br />
6500<br />
6000<br />
5500<br />
5000<br />
4500<br />
4000<br />
3500<br />
3000<br />
2500<br />
2000<br />
1500<br />
1000<br />
500<br />
m/z--> 0<br />
63 75<br />
111<br />
133<br />
145<br />
181<br />
175<br />
100 150 200 250 300 350 400<br />
3.1.5.4.6 Bestimmung mittels GC-MSD<br />
()<br />
2,4-D-PFB-Ester<br />
219 224 243 279288 307 342 365380<br />
Die derivatisierten Extrakte können ohne weitere Reinigung direkt zur Messung<br />
eingesetzt werden.<br />
Tab. 3.1.5-12 zeigt die Sturkturformeln der Derivate, deren Retentionszeiten sowie<br />
die zur Quantifizierung <strong>und</strong> Identifizierung verwendeten SIM-Massen auf.<br />
Die beschriebenen „Matrix-Effekte“, die die gaschromatographische Bestimmung<br />
beeinflussen können, erwiesen sich im Fall der 2,4-D-TCE-Derivate als sehr gering.<br />
Lediglich bei sehr geringen Gehalten (
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.5.4.7 Validierung<br />
Wiederfindung:<br />
Zur Ermittlung der Wiederfindungsrate wurden zerkleinerte Grapefruit mit 2,4-D<br />
dotiert (0,25 ppm) <strong>und</strong> nach der Analysenvorschrift 102E3102 (siehe Anlage 3) fünf<br />
mal aufgearbeitet. Die ermittelte Wiederfindungsrate betrug 93 %.<br />
Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen:<br />
Die Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen für 2,4-D wurden nach dem DFG-Eichgeradenverfahren<br />
ermittelt (siehe Tab. 3.1.5-13) [80]. Hierzu wurden Wiederfindungsversuche<br />
bei vier verschiedenen Konzentrationen jeweils 4 mal durchgeführt<br />
(16 Aufarbeitungen). Die Dotierungen erfolgten auf Apfelmatrix, wobei die niedrigste<br />
dotierte Konzentration im Bereich der erwarteten Nachweisgrenze lag [81].<br />
Tab. 3.1.5-13: Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen nach dem DFG-<br />
Eichgeradenverfahren [80,81]<br />
Parameter 2,4-D<br />
(als TCE-Derivat)<br />
dotierte Menge (µg/kg) 7,1/14,2/22,8/71<br />
berechnete Nachweisgrenze 6 µg/kg<br />
berechnete Bestimmungsgrenze * 14 µg/kg<br />
Korrelation der Geraden (r) 0,999<br />
Korrelationskoeffizient (%RSD) 3,8<br />
Analysenvorschrift: siehe Anlage 3<br />
* die kleinste Höchstmenge für Obst <strong>und</strong> Gemüse beträgt 100µg/kg, für Säuglingsnahrung<br />
10 µg/kg<br />
Methodenvergleich:<br />
Zur weiteren Überprüfung der Methode wurden Proben, die gewachsene 2,4-D-<br />
Rückstände enthielten, mit der SFE-Methode zur Bestimmung <strong>von</strong> 2,4-D <strong>und</strong> parallel<br />
dazu mit einer naßchemischen Methode untersucht [29].<br />
Die Ergebnisse sind in Tab. 3.1.5-14 zusammengefaßt. Bei beiden Methoden wird<br />
ein alkalischer Aufschluß vor der <strong>Extraktion</strong> durchgeführt. Es wurden nahezu<br />
identische Ergebnisse erzielt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
93
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.5-14: Vergleich der SFE-Methode zur Bestimmung <strong>von</strong> 2,4-D in<br />
Zitrusfrüchten mit einer <strong>Extraktion</strong>smethode die organische<br />
Lösungsmittel verwendet<br />
Fruchtart Herkunftsland 2,4-D in mg/kg<br />
SFE-Methode „Lösungsmittel“<br />
Methode [29]<br />
Zitrone Argentinien 0,16 0,17<br />
Zitrone Argentinien 0,15 0,16<br />
Zitrone Argentinien 0,12 0,13<br />
Grapefruit Argentinien 0,19 0,21<br />
Grapefruit Argentinien 0,13 0,14<br />
Grapefruit Südafrika 0,63 0,60<br />
Grapefruit Südafrika 0,59 0,64<br />
Clementine Argentinien 0,29 0,29<br />
Die Ergebnisse dieser Untersuchungen wurden in [101,102] veröffentlicht.<br />
Untersuchungsergebnisse <strong>von</strong> zahlreichen Zitrusfruchtproben aus dem Handel<br />
werden i Kap. 3.1.6.3 vorgestellt.<br />
3.1.5.4.8 Behandlung <strong>von</strong> Zitronen mit 2,4-D <strong>und</strong> Lagerungsversuch<br />
Um festzustellen, mit welcher Kinetik 2,4-D auf der Oberfläche <strong>von</strong> Zitrusfrüchten<br />
nach einer Behandlung geb<strong>und</strong>en wird, wurden unbehandelte Zitronen wie folgt<br />
behandelt: Ein Teil der Proben wurde in eine wäßrige 2,4-D-Lösung (1000 ppm)<br />
eingetaucht, der andere Teil der Proben wurde mit einer 2,4-D-haltigen<br />
Wachsemulsion auf Polyethylen-Basis überzogen (500 ppm). Gelagert wurden die<br />
Proben bei Temperaturen zwischen 3 <strong>und</strong> 7°C in einem Kellerraum. Gegen Ende des<br />
Versuches (ab etwa dem 100. Tag) stieg die Temperatur witterungsbedingt<br />
allmählich auf etwa 12°C-14°C an.<br />
Zu verschiedenen Zeitpunkten wurden Früchte entnommen, zerkleinert <strong>und</strong> tiefgefroren.<br />
Der Gehalt an 2,4-D in den jeweiligen Einzelfrüchten wurde mit <strong>und</strong> ohne<br />
die Durchführung einer alkalischen Hydrolyse bestimmt (freies 2,4-D <strong>und</strong> „Gesamt-<br />
2,4-D“). Zur <strong>Extraktion</strong> wurde die SFE eingesetzt (Analysenvorschrift siehe Anlage 3.<br />
Die Ergebnisse sind in Tab. 3.1.5-15 / Abb. 3.1.5-20 <strong>und</strong> Tab. 3.1.5-16 / Abb. 3.1.5-<br />
21 zusammengefaßt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
94
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.5-15: Zitronen behandelt mit wäßriger 2,4-D-haltiger Lösung<br />
Lagerzeit<br />
(Tage)<br />
Proben-<br />
nummer<br />
mit Hydrolyse<br />
("Gesamt-2,4-D")<br />
2,4-D (mg/kg)*<br />
ohne Hydrolyse<br />
(freies 2,4-D)<br />
Faktor<br />
freies 2,4-D /<br />
"Gesamt-2,4-D"<br />
95<br />
Mittlerer<br />
Faktor<br />
0 1 7,39 6,97 0,94<br />
2 5,44 5,20 0,96 0,95<br />
10 3 3,28 3,10 0,95<br />
4 7,22 6,80 0,94 0,94<br />
28 5 3,67 2,75 0,75<br />
6 5,39 3,63 0,67 0,71<br />
7 5,61 4,00 0,71<br />
50 9 6,39 3,80 0,59<br />
10 7,39 3,90 0,53 0,57<br />
11 5,49 3,40 0,62<br />
12 8,77 4,75 0,54<br />
71 13 4,56 2,38 0,52<br />
14 5,56 2,90 0,52 0,52<br />
* Mittelwerte aus mindestens 2 Bestimmungen pro Probe<br />
Abb. 3.1.5-20: Bindung des 2,4-D an die Matrix während der Lagerung behandelter<br />
Zitronen<br />
Faktor:<br />
freies 2,4-D /<br />
"Gesamt-2,4-D"<br />
1,0<br />
0,5<br />
0,0<br />
2,4-D in wässriger Lösung aufgebracht<br />
0 10 28 50 71<br />
Lagerzeit (Tage)<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.5-16: Zitronen behandelt mit wäßriger 2,4-D-haltiger Wachsemulsion<br />
Lagerzeit<br />
(Tage)<br />
Proben-<br />
nummer<br />
mit Hydrolyse<br />
("Gesamt-2,4-D")<br />
2,4-D (mg/kg)*<br />
ohne Hydrolyse<br />
(freies 2,4-D)<br />
Faktor<br />
freies 2,4-D /<br />
"Gesamt-2,4-D"<br />
96<br />
Mittlerer<br />
Faktor<br />
0 1 1,53 1,59 1,04<br />
2 1,04<br />
5 3 1,83 1,82 1,00<br />
4<br />
1,86 1,83 0,98 0,99<br />
14 5 1,36 1,28 0,94<br />
6 1,14 1,08 0,94 0,94<br />
28 7 1,50 1,29 0,86<br />
8 1,36 1,23 0,90 0,88<br />
35 9 1,39 1,13 0,82<br />
10 0,82<br />
50 11 1,58 1,18 0,75<br />
12 1,38 1,13 0,82 0,78<br />
71 13 1,40 0,94 0,67<br />
14 1,59 1,05 0,66 0,67<br />
99 15 1,32 0,81 0,62<br />
16 1,32 0,84 0,63 0,62<br />
130 17 1,20 0,50 0,42<br />
18 1,22 0,49 0,40 0,41<br />
* Mittelwerte aus mindestens 2 Bestimmungen pro Probe<br />
Abb. 3.1.5-21: Bindung des 2,4-D an die Matrix während der Lagerung behandelter<br />
Zitronen<br />
Faktor:<br />
freies 2,4-D /<br />
"Gesamt-2,4-D"<br />
1,0<br />
0,5<br />
0,0<br />
2,4-D mit Wachs aufgebracht<br />
0 5 14 28 35 50 71 99 130<br />
Lagerungszeit (Tage)<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Der Anteil an geb<strong>und</strong>enem 2,4-D stieg sowohl bei den mit Wachs behandelten als<br />
auch bei den mit wäßriger 2,4-D-Lösung behandelten Zitronen im Verlauf der<br />
Lagerung deutlich an (siehe Tab. 3.3.5-15 <strong>und</strong> 3.1.5-16)<br />
Bemerkenswert ist, daß sich trotz der sehr langen Lagerzeit <strong>von</strong> über 4 Monaten kein<br />
signifikanter 2,4-D Abbau feststellen ließ (vgl. Abb. 3.1.5-22).<br />
Abb. 3.1.5-22: Mittlere Gehalte an "Gesamt-2,4-D" einzelner Früchte während der<br />
Lagerung<br />
Gehalt an 2,4-D (mg/kg)<br />
1,6<br />
1,4<br />
1,2<br />
1<br />
0,8<br />
0,6<br />
0,4<br />
0,2<br />
0<br />
Mittelwert<br />
0 14 28 35 50 71 99 130<br />
97<br />
Lagerungszeit (Tage)<br />
3.1.5.4.9 Freisetzung <strong>von</strong> geb<strong>und</strong>enem 2,4-D aus Zitrusfrüchten bei simulierter<br />
Verdauung <strong>und</strong> simulierter Verarbeitung<br />
Die in der RHmV festgesetzten Höchstmengen für 2,4-D [34] beziehen sich auf das<br />
freie 2,4-D, seine Salze <strong>und</strong> Ester, wobei unter 2,4-D-Ester die Esterverbindungen zu<br />
verstehen sind, die als Pflanzenschutzmittel eingesetzt werden <strong>und</strong> in den Proben<br />
noch unhydrolysiert als Rückstände vorliegen. Das über Konjugate an Matrixbestandteile<br />
geb<strong>und</strong>ene 2,4-D ist hierbei nicht berücksichtigt [127].<br />
Derartiges geb<strong>und</strong>enes 2,4-D kann aber ebenfalls <strong>von</strong> Relevanz sein, da es bei der<br />
Verarbeitung <strong>von</strong> Zitrusfrüchten <strong>und</strong> im Verdauungsapparat des Menschen<br />
freigesetzt <strong>und</strong> dadurch bioverfügbar werden kann.<br />
Um dies zu überprüfen, wurde eine 2,4-D-haltige argentinische Zitronenprobe, die<br />
einen großen Anteil an geb<strong>und</strong>enem 2,4-D enthielt, einer simulierten Magen- <strong>und</strong><br />
Dünndarmverdauung unterzogen (Durchführung siehe Anlage 8) [135].<br />
Für die Verdauungsversuche wurde Pepsin sowie Galle <strong>und</strong> Dünndarmenzyme aus<br />
Schwein verwendet. Magen- <strong>und</strong> Dünndarmverdauung wurden isoliert betrachtet.<br />
Die Ergebnisse dieser Versuche sind in Abb. 3.1.5-23 <strong>und</strong> 3.1.5-24 dargestellt.<br />
Es wird ersichtlich, daß unter den Bedingungen einer simulierten Dünndarmverdauung<br />
große Anteile des geb<strong>und</strong>enen vorliegenden 2,4-D freigesetzt werden<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
können (57 % nach 1 h <strong>und</strong> 86 % nach 3 h); bei einer simulierten Magenverdauung<br />
dagegen, innerhalb <strong>von</strong> 3 h, nur 14 %.<br />
Auch ohne Zusatz <strong>von</strong> Enzymen bei einem pH-Wert <strong>von</strong> 7,4 <strong>und</strong> 37°C wurde eine<br />
erhebliche 2,4-D-Freigesetzung festgestellt (70%).<br />
Abb. 3.1.5-23: Gegenüberstellung der ermittelten 2,4-D-Gehalte in Zitronen bei<br />
unterschiedlicher Probenvorbehandlung<br />
Alkalische Hydrolyse<br />
Dünndarmverdauung (3h)<br />
Ohne Enzyme (3h) pH<br />
7,4/ 37°C<br />
Dünndarmverdauung (1h)<br />
Magenverdauung 3h<br />
Freies 2,4-D<br />
29%<br />
39%<br />
69%<br />
78%<br />
90%<br />
100%<br />
0 0,05 0,1 0,15 0,2 0,25 0,3 0,35 0,4 0,45 0,5<br />
2,4-D in ppm<br />
Abb. 3.1.5-24: Freisetzung <strong>von</strong> geb<strong>und</strong>enem 2,4-D durch verschiedene Verfahren<br />
Alkalische Hydrolyse<br />
Dünndarmverdauung (3h)<br />
Ohne Enzyme (3h)<br />
Dünndarmverdauung (1h)<br />
Magenverdauung 3h<br />
14<br />
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 110<br />
57<br />
Freigesetzter Anteil <strong>von</strong> geb<strong>und</strong>enem 2,4-D in %<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
70<br />
86<br />
100<br />
98
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Simulierung einer Zitrusfruchtverarbeitung<br />
Zur Simulierung der Herstellung einer Zitronenmarmelade wurde eine Probe zerkleinerter<br />
argentinischer Zitronen (die oben aufgeführte Probe), die einen hohen<br />
Anteil an geb<strong>und</strong>enem 2,4-D enthielt, 1 h lang in einem siedenden Wasserbad<br />
erhitzt. Unter diesen Bedingungen wurde etwa 25 % des geb<strong>und</strong>enen 2,4-D<br />
freigesetzt, so daß der Gehalt an freiem 2,4-D <strong>von</strong> 0,121 auf 0,174 mg/kg anstieg.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
99
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.5.5 N-Methyl-Carbamate<br />
3.1.5.5.1 Einführung<br />
N-Methyl-Carbamate werden häufig in der Landwirtschaft eingesetzt. Es handelt sich<br />
meist um Insektizide, einige zeigen jedoch auch akarizide, nematizide oder<br />
molluskizide Wirkung [92,89].<br />
Als gemeinsames Strukturmerkmal weisen die Vertreter dieser Pestizidklasse eine N-<br />
Methyl-Carbamat-Gruppe auf:<br />
R<br />
O<br />
O C<br />
NHCH3<br />
In Abbildung 3.1.5-25 werden die Strukturformeln, die Wasserlöslichkeit <strong>und</strong> die<br />
Wirkung einiger N-Methyl-Carbamate aufgeführt [92,119]. Nach der Art des Restes R-<br />
werden die N-Methyl-Carbamate im allgemeinen in zwei Gr<strong>und</strong>typen unterteilt:<br />
• Aryl-Carbamate<br />
• Oxim-Carbamate.<br />
Im Vergleich zu den Aryl-Carbamaten weisen Oxim-Carbamate eine deutlich höhere<br />
Polarität auf <strong>und</strong> wirken daher meist systemisch, d.h. sie werden über die<br />
Leitungsbahnen über das ganze Pflanzensystem verteilt.<br />
Wegen ihrer vergleichsweise geringen Persistenz <strong>und</strong> dem schwachen Bioakkumulationspotential<br />
konnten die N-Methyl-Carbamate, zusammen mit den<br />
Organophosphorsäureestern, die Organochlorinsektizide, die in den 40iger <strong>und</strong><br />
50iger Jahren weit verbreitet waren, verdrängen.<br />
Ähnlich wie bei Organophosphorsäureestern basiert die insektizide Wirkung der<br />
Carbamate auf der Hemmung des Enzyms Chlolinesterase. Carbamate werden<br />
jedoch in der Regel schneller metabolisiert <strong>und</strong> sind daher für Warmblüter im allgemeinen<br />
weniger toxisch. In den letzten Jahren sind allerdings Bedenken hinsichtlich<br />
ihre toxikologischen Wirkung beim Menschen aufgekommen. So wird <strong>von</strong><br />
einer subchronischen Neurotoxizität, infolge einer längeren Anwendung der Substanz<br />
Carbaryl in Wohnräumen berichtet. Weiterhin führt bei einigen Vertretern, wie<br />
beispielsweise Aldicarb, die Metabolisierung der Thioethergruppe zum Sulfoxid <strong>und</strong><br />
Sulfon, zu einer deutlichen Erhöhung des toxikologischen Potentials.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
100
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-25: Strukturformeln einiger N-Methyl-Carbamate [92]:<br />
DIOXACARB (6g/l)<br />
Insektizid<br />
O<br />
CH 2<br />
O<br />
O C<br />
ETHIOFENCARB (1,8g/l)<br />
Insektizid<br />
O<br />
O C<br />
NHCH3<br />
SCH 2CH 3<br />
NHCH3<br />
CARBOFURAN (0,32g/l)<br />
Insektizid <strong>und</strong> Nemadizid<br />
N<br />
O<br />
O<br />
C<br />
C<br />
S<br />
CH3<br />
O<br />
O C<br />
N<br />
O<br />
NHCH3<br />
O<br />
O C<br />
NHCH 3<br />
OXAMYL (280g/l)<br />
Insektizid <strong>und</strong> Nematizid<br />
ARYL-CARBAMATE<br />
O<br />
O<br />
O<br />
C<br />
NHCH3<br />
PROPOXUR (1,9g/l)<br />
Insektizid<br />
O<br />
C<br />
CH3S O NHCH3 METHIOCARB (0,027g/l)<br />
Insektizid <strong>und</strong> Molluskizid<br />
O O<br />
O<br />
O C<br />
NHCH 3<br />
BENDIOCARB (0,26g/l)<br />
Insektizid<br />
OXIM-CARBAMATE<br />
H 3CS<br />
C N<br />
H<br />
O<br />
O<br />
C<br />
101<br />
NHCH 3<br />
PROMECARB (0,091g/l)<br />
Insektizid<br />
N<br />
O<br />
O<br />
C<br />
NHCH3<br />
AMINOCARB (0,92mg/l)<br />
Insektizid <strong>und</strong> Akarizid<br />
CARBARYL (0,12g/l)<br />
Insektizid <strong>und</strong> Nemadizid<br />
Anmerkung: In Klammern ist die Löslichkeit der Substanzen in Wasser bei 20°C aufgeführt.<br />
O<br />
O C<br />
NHCH 3<br />
ALDICARB (9g/l)<br />
Insektizid, Nematizid <strong>und</strong> Akarizid<br />
H3C<br />
C<br />
S<br />
CH3<br />
N<br />
O<br />
O<br />
C<br />
O<br />
O C<br />
NHCH3<br />
NHCH 3<br />
METHOMYL (58g/l)<br />
Insektizid <strong>und</strong> Akarizid<br />
Zu den wichtigsten Metabolisierungsreaktionen der N-Methyl-Carbamate zählen,<br />
neben der erwähnten Oxidation <strong>von</strong> Thioethergruppen zu Sulfonen <strong>und</strong> Sulfoxiden,<br />
die Hydroxylierung des aromatischen Restes sowie die Hydrolyse der Carbamat-<br />
Gruppe unter Bildung <strong>von</strong> Methylamin, Kohlendioxid <strong>und</strong> des korrespondierenden<br />
Phenols bzw. Oxims [133]. Im Gegensatz zu den Organophosphorsäureestern<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
zeigen sich die N-Methyl-Carbamate in der Regel in der Pflanze widerstandsfähiger<br />
gegen Hydrolyse <strong>und</strong> werden eher durch Ringhydroxylierung abgebaut [123].<br />
Dioxacarb (siehe Abb. 3.1.5-25) wird hauptsächlich über die hydrolytische Spaltung<br />
des cyclischen Acetals abgebaut, wobei neben Benzaldehyd, Ethylenglykol freigesetzt<br />
wird. Darüber hinaus zeigen einige Vertreter einen starken photochemischen<br />
Abbau (z.B. Ethiofencarb <strong>und</strong> Propoxur) [105,106,134].<br />
Zu den N-Methyl-Carbamaten werden im weitesten Sinne auch die Verbindungen<br />
Furathiocarb, Benfuracarb <strong>und</strong> Carbosulfan gezählt. Diese drei Verbindung werden<br />
sowohl auf der Pflanze selbst, als auch während der Probenvor- <strong>und</strong> aufarbeitung zu<br />
Carbofuran umgewandelt (siehe Abb. 3.1.5-26).<br />
Abb. 3.1.5-26: Umwandlung <strong>von</strong> Furathiocarb, Benfuracarb <strong>und</strong> Carbosulfan zu<br />
Carbofuran<br />
O<br />
O<br />
O<br />
O<br />
C<br />
O<br />
O<br />
C<br />
N<br />
CH3<br />
S<br />
CH3<br />
N<br />
C O<br />
O<br />
FURATHIOCARB<br />
N<br />
CH3<br />
O<br />
S<br />
CH3<br />
CH<br />
N<br />
BENFURACARB<br />
O<br />
C<br />
O N S N<br />
CH3<br />
CH3<br />
C2H4 C<br />
CARBOSULFAN<br />
C4H9<br />
OC2H5<br />
O<br />
C4H9<br />
C4H9<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
O<br />
O<br />
C<br />
O NH<br />
CH3<br />
CARBOFURAN<br />
102
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.5.5.1.1 Analytik<br />
Analytisch bereiten N-Methyl-Carbamate gewisse Schwierigkeiten. Aufgr<strong>und</strong> der<br />
Thermolabilität der Carbamatgruppe <strong>und</strong> der hohen Polarität einiger Vertreter werden<br />
sie in den gängigen Multimethoden, bei denen die Bestimmung mittels<br />
Gaschromatographie erfolgt, in der Regel nicht erfaßt.<br />
Eine gaschromatographische Bestimmung <strong>von</strong> N-Methyl-Carbamaten ist nach ihrer<br />
Umsetzung zu thermostabilen Derivaten möglich. In der Literatur werden verschiedene<br />
Möglichkeiten hierzu beschrieben, wie beispielsweise die Umsetzung mit<br />
Dinitrofluorbenzol [107,108], mit Essigsäureanhydrid [122] oder mit verschiedenen<br />
Perfluoracylanhydriden wie z.B. Heptafluorpropionsäueanhydrid [109].<br />
Die meisten in der Literatur beschriebenen Methoden zur Bestimmung der N-Methyl-<br />
Carbamate basieren auf eine flüssigkeitschromatographischen Auftrennung <strong>und</strong><br />
anschließender Fluoreszenzdetektion [121]. Dabei werden die N-Methyl-Carbamate<br />
nach ihrer Auftrennung mittels RP-LC mit Lauge hydrolysiert <strong>und</strong> das dabei entstehende<br />
Methylamin mit o-Phthalsäureanhydrid in Gegenwart <strong>von</strong> 2-Mercaptoethanol<br />
(OPA/2-Me) zu einem fluoreszierenden Isoindol-Derivat umgesetzt. Dieses<br />
wird fluorimetrisch mit hoher Empfindlichkeit detektiert [110-114].<br />
3.1.5.5.2 Bestimmung <strong>von</strong> N-Methyl-Carbamaten nach <strong>Extraktion</strong> mittels SFE<br />
3.1.5.5.2.1 Übersicht<br />
In diesem Abschnitt wird zunächst eine SFE-<strong>Extraktion</strong>smethode für die N-Methyl-<br />
Carbamate vorgestellt <strong>und</strong> anschließend folgende drei Bestimmungsmöglichkeiten<br />
gegenübergestellt <strong>und</strong> ihre Vor- <strong>und</strong> Nachteile erläutert:<br />
1. direkte Bestimmung mittels GC/MSD bei Verwendung eines Kaltaufgabesystems,<br />
2. Bestimmung mittels GC/MSD nach Derivatisierung mit PFB-Br,<br />
3. Bestimmung mittels LC/MSD im API-Elektrospray-Modus.<br />
Abb. 3.1.5-27: zeigt den Analysengang zur Bestimmung der N-Methyl-Carbamate<br />
auf. Eine detaillierte Analysenvorschrift befindet sich in Anlage 4.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
103
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-27: SFE-Methode zur Bestimmung der N-Methyl-Carbamate<br />
Bestimmung<br />
mit LC/MS<br />
Feinzerkleinerung der Probe<br />
3 Teile der Probe werden intensiv<br />
mit 2 Teilen Hydromatrix vermengt<br />
5g Aliquot (3g Probe) wird<br />
in eine <strong>Extraktion</strong>shülse eingewogen<br />
Supercritical Fluid Extraction (SFE)<br />
3. 1.<br />
2.<br />
Derivatisierung mit<br />
PFB-Br/K2CO3<br />
GC/MSD Bestimmung<br />
Anmerkungen:<br />
Zu 1: Im Rahmen der Vorversuche zur Optimierung der gaschromatographischen<br />
Bedingungen (siehe Kap. 3.1.2.1 <strong>und</strong> 3.1.2.2) wurde festgestellt, daß verschiedene<br />
polare <strong>und</strong> thermolabile Verbindungen (u.a. auch Carbamate) bei Verwendung eines<br />
Kaltaufgabesystems (Kaltinjektion <strong>und</strong> Lösungsmittelausblendung, vgl. Kap 3.1.2.1)<br />
gaschromatographisch auch ohne Derivatisierung bestimmt werden können. Daraus<br />
ergibt sich die Möglichkeit eine ganze Reihe <strong>von</strong> N-Methyl-Carbamaten in die<br />
üblichen Multimethoden zu integrieren, wodurch für diese Verbindungen auf eine<br />
gesonderte Bestimmung mittels HPLC verzichtet werden kann (effizientere Analytik).<br />
Zu 3: Für die Bestimmung aller N-Methyl-Carbamate <strong>und</strong> deren Umwandlungsprodukte<br />
bietet sich die LC-MSD als Methode der Wahl an. Es bot sich die Möglichkeit<br />
dieses Verfahren, das durch die Entwicklung verbesserter Geräte für die<br />
Routineanalytik interessant geworden ist, für einige Messungen zu verwenden. Die<br />
Messungen wurden in den Laboratorien der Fa. HP in Waldbronn durchgeführt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
104
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.5.5.2.2 <strong>Extraktion</strong> mit SFE<br />
Die Mehrzahl der N-Methyl-Carbamate sind unpolare bis mittelpolare Verbindungen<br />
<strong>und</strong> lassen sich gut unter den <strong>Extraktion</strong>sbedingungen der in Kapitel 3.1.4.2<br />
aufgeführten Multimethode extrahieren. Dies haben auch erste Versuche mit einigen<br />
N-Methyl-Carbamaten gezeigt.<br />
SFE-Parameter: <strong>Extraktion</strong>sgerät: HP 7680T<br />
• <strong>Extraktion</strong>sdruck: 329 bar, Temperatur: 55°C<br />
• Dichte: 0,89 g/ml<br />
• statische <strong>Extraktion</strong>: 2 min<br />
• dynamische <strong>Extraktion</strong>: 25 min<br />
• CO2-Fluß: 1,8 ml/min<br />
• Fallenmaterial: ODS, 10°C während der <strong>Extraktion</strong><br />
• Lösungsmittel: Acetonitril<br />
3.1.5.5.2.3 Direkte Bestimmung mittels GC-MSD (KAS3-Gerstel)<br />
N-Methyl-O-Aryl-Carbamate können direkt gaschromatographisch bestimmt werden.<br />
Infolge <strong>von</strong> Wechselwirkungen mit aktiven Stellen im GC-Injektionssystem werden sie<br />
jedoch bei erhöhten Temperaturen teilweise zu ihren korrespondierenden Phenolen<br />
abgebaut. So kommt es, daß in den erhaltenen Chromatogrammen sowohl die<br />
Muttersubstanz (das Carbamat) als auch das Abbauprodukt (Phenol) auftritt. Das<br />
Ausmaß der Zersetzungen hängt in erster Linie <strong>von</strong> der Aktivität der Oberflächen ab,<br />
mit denen die Pestizide in Kontakt kommen. So ist z.B. bei Verwendung eines stark<br />
verschmutzten Injektionsliners der Abbau viel größer <strong>und</strong> auf Gr<strong>und</strong> unerwünschter<br />
Wechselwirkungen (Retention) die Peakform viel schlechter als bei Verwendung eines<br />
sauberen Liners (stärkeres Tailing). Interessant ist, daß bei Gegenwart <strong>von</strong><br />
Matrixbestandteilen in den zu messenden Lösungen, dieser Abbau viel geringer<br />
ausfällt <strong>und</strong> die Peaks eine schärfere Form aufweisen (siehe Abb. 3.1.5-28). Gr<strong>und</strong><br />
hierfür ist die Maskierung <strong>von</strong> aktiven Stellen durch Matrixbestandteile<br />
(Konkurrenzreaktion). Aus diesem Gr<strong>und</strong> erhält man bei Verwendung <strong>von</strong><br />
Kalibrierstandards in reinen Lösungsmitteln Ergebnisse die deutlich überhöht sind. Die<br />
Verwendung <strong>von</strong> Kalibrierlösungen, die Matrix enthalten ist daher unerläßlich (vgl.<br />
Kap. Matrixeffekte 3.1.2.3).<br />
Bei diesem Verfahren muß auf jeden Fall darauf geachtet werden, daß das<br />
Injektionssystem in einer guten Kondition ist. Darüber hinaus sollten zu Kontrollzwecken<br />
die korrespondierenden Phenole mit erfaßt werden.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
105
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-28: Unerwünschter Abbau <strong>und</strong> Retention im GC-Injektor-System:<br />
0,8<br />
0,6<br />
0,4<br />
0,2<br />
0,5<br />
0,4<br />
0,3<br />
0,2<br />
0,1<br />
0<br />
0<br />
"Lösungsmittel-Kalibrierung"<br />
Methiocarb<br />
0 0,2 0,4 0,6 0,8 1<br />
µg/ml<br />
"Matrix-Kalibrierung"<br />
Methiocarb<br />
Korresp. Phenol<br />
Korresp. Phenol<br />
0 0,2 0,4 0,6 0,8 1<br />
µg/ml<br />
Ab<strong>und</strong>ance<br />
1500<br />
1000<br />
500<br />
Ion 168.00 (167.70 to 168.70): 1301019.D<br />
15.83<br />
0<br />
Time--><br />
15.70 15.75 15.80 15.85 15.90 15.95 16.00 16.05 16.10 16.15 16.20<br />
Ab<strong>und</strong>ance<br />
1500<br />
Ab<strong>und</strong>ance 1000<br />
8000<br />
500<br />
7000<br />
6000<br />
5000 0<br />
Time--><br />
15.70 15.75 15.80 15.85 15.90 15.95 16.00 16.05 16.10 16.15 16.20<br />
4000<br />
3000<br />
2000<br />
1000<br />
15.74<br />
Ion 153.00 (152.70 to 153.70): 0201002.D<br />
0<br />
Time--><br />
15.70 15.75 15.80 15.85 15.90 15.95 16.00 16.05 16.10 16.15 16.20<br />
Ab<strong>und</strong>ance<br />
3.1.5.5.2.4 Bestimmung mittels GC-MSD nach Derivatisierung<br />
Methiocarb<br />
Ion 326.00 (325.70 to 326.70): 1301019.D<br />
Methiocarb<br />
Ion 326.00 (325.70 to 326.70): 0201002.D<br />
Zur Erzeugung thermostabiler Derivate werden die N-Methyl-Carbamate (NMC) mit<br />
Pentafluorbenzylbromid (PFB-Br) umgesetzt. Die eingesetzte Derivatisierungsmethode<br />
ist identisch mit derjenigen, die zur Umsetzung <strong>von</strong> Carbendazim,<br />
Thiabendazol <strong>und</strong> 2,4-D eingesetzt wird (siehe auch Kap. 3.1.5.3.2.3 <strong>und</strong> 3.1.5.4.5,<br />
Anlage 2 sowie [29]). Sie kann gut zu Screeningzwecken eingesetzt werden, da<br />
Verbindungen mit unterschiedlichen reaktiven Gruppen wie Säure-, Alkohol- <strong>und</strong> z.T.<br />
Amino-Gruppen gut mit PFB-Br umgesetzt werden. Sie ist einfach in der Durchführung<br />
<strong>und</strong> wird in dem GC-Vial durchgeführt in dem die SFE-Extrakte anfallen.<br />
Bei dieser Reaktion werden sowohl die N-Methyl-O-Aryl-Carbamate als auch ihre<br />
korrespondierende Phenole zum gleichen Derivat umgesetzt <strong>und</strong> gemeinsam erfaßt<br />
(siehe Abb. 3.1.5-29).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
106
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-29: Reaktionsgleichung zur Bildung der PFB-Derivate<br />
Derivatisierung der NMC mit Pentafluorbenzylbromid<br />
R<br />
O<br />
Hydrolyse<br />
O<br />
C<br />
R O H<br />
NHCH3<br />
Korr. Phenol<br />
+ C6F5CH2 Br<br />
K2CO3/ H2O<br />
Katalyse<br />
R O CH2C6F5<br />
PFB-Derivat<br />
Die Oxim-Carbamate lassen sich jedoch nicht zu analytisch interessanten Derivaten<br />
umsetzen.<br />
Ethiofencarb läßt sich im Vergleich zu den anderen Aryl-Carbamaten erheblich<br />
schlechter umsetzen. Dies könnte auf sterische Gründe zurückzuführen sein, denn<br />
Ethiofencarb besitzt als einziger Vertreter in ortho-Position zur Phenolgruppe einen<br />
vergleichsweise sperrigen Rest (-CH2SCH2CH3). Eine Oxidation <strong>von</strong> Ethiofencarb am<br />
Schwefelatom während der Derivatisierung ist ebenfalls nicht auszuschließen.<br />
Eine weitere Besonderheit tritt bei der Derivatisierung <strong>von</strong> Dioxacarb auf. Hier kommt<br />
es nicht zu einer Abspaltung der Carbamatgruppe, sondern primär zu einer<br />
Hydrolyse der Acetalfunktion. Die Anlagerung des Pentafluorbenzylrestes erfolgt erst<br />
nach einer Cyclisierung. In Abb. 3.1.5-30 wird ein möglicher Reaktionsmechanismus<br />
für die Entstehung des Derivatisierungsproduktes <strong>von</strong> Dioxacarb vorgestellt.<br />
Abb. 3.1.5-30: Reaktionsmechanismus zur Entstehung des Dioxacarb-PFB-Derivates<br />
Derivatisierung <strong>von</strong> Dioxacarb mit PFB-Br<br />
O O<br />
O<br />
O C<br />
Dioxacarb<br />
C 6F 5CH 2<br />
O<br />
H<br />
NHCH3<br />
N<br />
O<br />
CH3<br />
C O<br />
Derivatisierungsprodukt<br />
HOCH2CH2OH<br />
H2O<br />
C6F5CH2 Br K2CO3<br />
Derivatisierung<br />
Gaschromatographische Bestimmung:<br />
O H<br />
H<br />
O<br />
O<br />
O C<br />
H<br />
N<br />
NHCH3<br />
O<br />
CH 3<br />
C O<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
- H<br />
H<br />
H<br />
O<br />
H<br />
H<br />
O<br />
H<br />
H<br />
N<br />
N<br />
O<br />
107<br />
C O<br />
CH3<br />
O<br />
C<br />
O<br />
CH3
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
In Tabelle 3.1.5-17 sind die zur GC-MSD Bestimmung der Aryl-Carbamat-Derivate<br />
verwendeten Quantifizierungs- <strong>und</strong> Identifizierungsmassen angegeben. Die<br />
apparativen Einstellungen sind in Anlage 4 aufgeführt.<br />
Tabelle 3.1.5-17: Verwendete Identifizierungs- <strong>und</strong> Quantifizierungsmassen<br />
Verbindung Target-/Qualifier-Ionen (m/z)<br />
Aminocarb 331, 150, 181<br />
Bendiocarb 346, 331, 125<br />
Carbanolat 336, 155, 181<br />
Carbaryl 324, 143, 115<br />
Carbofuran 344, 163, 135<br />
Dioxacarb 345, 188, 181<br />
Ethiofencarb 348, 287, 181<br />
Fenobucarb 330, 301, 181<br />
Isoprocarb 316, 135, 181<br />
Landrin 316, 135, 181<br />
Methiocarb 348, 167, 139<br />
Promecarb 330, 287, 181<br />
Propoxur 332, 290, 109<br />
GC/MSD Bedingungen: siehe Anlage 4<br />
Rechtliche Problematik:<br />
Da sich die Höchstmengen in der Rückstandshöchstmengenverordnung nur auf die<br />
N-Methyl-Carbamate beziehen <strong>und</strong> die Abbauprodukte nicht berücksichtigt werden,<br />
ergibt sich bei deren gemeinsamer Bestimmung ein rechtliches Problem, da eventuell<br />
bereits in der Probe vorliegendes Phenol (Abbauprodukt) mit erfaßt wird. Für die<br />
korrespondierenden Phenole der Verbindungen Carbaryl (α-Naphthol), Propoxur (o-<br />
Isopropoxyphenol), Promecarb (3-Isopropyl,2-methyl-phenol) <strong>und</strong> Carbofuran (2,3<br />
Dihydro-2,2-dimethyl-7-benzofuranol) wurden Wiederfindungsversuche durchgeführt<br />
<strong>und</strong> dabei Wiederfindungen <strong>von</strong> über 90% festgestellt.<br />
3.1.5.5.2.5 Bestimmung mittels LC-MSD<br />
Unter den schonenden Bedingungen der Flüssigkeitschromatographie findet kein<br />
Abbau der N-Methyl-Carbamate statt. Durch den Einsatz der LC/MSD konnte eine<br />
sehr empfindliche <strong>und</strong> selektive Bestimmung dieser Verbindungen erzielt werden. Die<br />
Empfindlichkeit <strong>und</strong> Robustheit der HPLC-MSD-Geräte konnte in den letzten Jahren<br />
durch Optimierung der Interface-Techniken bedeutend verbessert werden. Die<br />
Messungen wurden an einem HP 1100 series LC/MSD im API-Elektrospray-Modus<br />
durchgeführt.<br />
Bei diesem Verfahren kommt es durch Protonierung in der flüssigen Phase zu einer<br />
Ionisierung <strong>von</strong> Analyten. Die LC-Eluate werden nach der Säule in eine Kammer<br />
gesprüht <strong>und</strong> das Elutionsmittel im Stickstoffstrom verdampft. Durch die zunehmende<br />
Ladungsdichte in den erzeugten Tröpfchen werden diese aufgr<strong>und</strong> <strong>von</strong><br />
aufeinanderfolgenden Coulomb-Explosionen, zu immer kleineren Einheiten reduziert.<br />
Durch Einwirkung eines elektrischen Feldes kommt es letztendlich zu einer<br />
Freisetzung <strong>von</strong> Ionen in die Gasphase. Die erzeugten Ionen werden in Richtung des<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
108
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Analysators beschleunigt. Vor dem Eintritt in den Quadrupol erfolgt eine<br />
Fragmentierung der Ionen aufgr<strong>und</strong> <strong>von</strong> Kollisionen, die auf ein angelegtes<br />
Spannungsfeld (Fragmentorspannung) zurückzuführen sind (collision induced<br />
dissociation) [126]. Die zur Quantifizierung <strong>und</strong> Identifizierung verwendeten Massen<br />
werden in Tab. 3.1.5-18 aufgeführt.<br />
Tab. 3.1.5-18: Zur Quantifizierung <strong>und</strong> Identifizierung herangezogene m/z<br />
N-Methyl-Carbamat M+1 M-56 weitere<br />
Fragmentionen<br />
Bemerkungen<br />
Aldicarb Sulfon 223 240 (M+18)<br />
Aminocarb 209 152 M+1:<br />
Bendiocarb 224 167 protoniertes Molekülion<br />
Carbanolat 214 157<br />
Carbaryl 202 145 219 (M+18)<br />
Carbofuran 222 165<br />
Dioxacarb 224 165 M-56:<br />
Ethiofencarb 226 169 164 (M-61) protoniertes<br />
Fenobucarb 208 151 korrespondierendes<br />
Isoprocarb 194 137 Phenol<br />
Landrin 226 169<br />
Methiocarb 226 169<br />
Methiocarb Sulfon 258 185<br />
Methiocarb Sulfoxid 242 185 M+18:<br />
Methomyl 163 106 180 (M+18) Ammonium-Addukt<br />
Metolcarb 166<br />
Oxamyl 220<br />
Promecarb 208 151<br />
Propoxur 210 153 168 (M-41)<br />
Benfuracarb 411 - 190, 252<br />
Furathiocarb 383 - 252, 195<br />
Carbosulfan 381 - 222<br />
Das Fragmentierungsmuster der N-Methyl-Carbamate ist im Vergleich zur GC meist<br />
sehr einfach, durch Abspaltung der Carbamatgruppe tritt das protonierte<br />
korrespondierende Phenol als Hauptfragmention auf. Vereinzelt treten bei einigen<br />
Vertretern wie z.B. bei Ethiofencarb durch Spaltung der Thioethergruppe auch<br />
weitere nennenswerte Fragmente auf (vgl. Abb. 3.1.5-31). Im allgemeinen kann das<br />
Fragmentierungsmuster durch Variation der Fragmentorspannung verändert werden.<br />
Bei höherer Fragmentorspannung kommt es zu einer stärkeren Bildung <strong>von</strong><br />
Fragmentionen. Die Intensität der Hauptfragmentionen nimmt jedoch dabei meist ab.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
109
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-31: Fragmentierung <strong>von</strong> Ethiofencarb<br />
CH 2<br />
O<br />
O C<br />
SCH 2CH 3<br />
Ethiofencarb<br />
O<br />
O C<br />
NHCH3<br />
CH2 SCH2CH3<br />
M+1<br />
CH2<br />
H<br />
O<br />
O C<br />
N<br />
H<br />
CH3<br />
CH3CH2SH<br />
NHCH3<br />
H<br />
M-61<br />
H 3C N C O<br />
+<br />
H<br />
O<br />
NH<br />
C<br />
CH3<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
O<br />
CH2 SCH2CH3<br />
H<br />
O<br />
H<br />
H<br />
O<br />
H<br />
M-56<br />
110<br />
CH2 SCH2CH3
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
LC-MSD-Einstellungen:<br />
LC-Parameter:<br />
• Säule: 2,1x 30 mm, 3,5µ, ZORBAX XDB C-18,<br />
• mobile Phasen: A: 1 mM wäss. CH3COONH4, B: Methanol/Acetonitril 1:1,<br />
10%B → 90%B in 5 min,<br />
• Fluß 0,3 ml/min,<br />
• Ofentemperatur: 50°C,<br />
• Injektionsvolumen: 0,5-2µl.<br />
MSD-Parameter:<br />
• API-Elektrospray,<br />
• Fragmentor 40 V,<br />
• drying gas: Stickstoff 10 l/min, 300°C<br />
Abb. 3.1.5-32 zeigt für einige N-Methyl-Carbamate mehrere SIM-Chromatogramme<br />
übereinander gelegt. Dabei wird deutlich, daß für Carbaryl, Fenobucarb <strong>und</strong><br />
Promecarb, bei der hier gewählten Fragmentorspannung <strong>von</strong> 40 V, die Fragmentionen<br />
in ausreichender Ausbeute entstehen, so daß eine Identifizierung relativ gut<br />
möglich ist. Für Aminocarb <strong>und</strong> Isoprocarb sind die erzeugten Fragmentionen jedoch<br />
sehr schwach ausgeprägt. Hier ist eine Identifizierung, vor allem bei kleinen Gehalten<br />
problematisch. Durch eine Erhöhung der Fragmentorspannung ist es jedoch möglich,<br />
die Fragmentierung so zu gestalten, daß durch verstärkte Bildung <strong>von</strong><br />
Fragmentionen, die Identifizierung dieser Verbindungen verbessert wird.<br />
Das Meßsystem bietet die Möglichkeit die Fragmentorspannung je nach Fragestellung<br />
für jede Substanz individuell zu wählen. Dies wurde aus zeitlichen Gründen<br />
nicht durchgeführt, da alle Messungen bei HP in Waldbronn durchgeführt wurden (zu<br />
diesem Zeitpunkt war das entsprechende Analysengerät beim CVUA Stuttgart noch<br />
nicht vorhanden).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
111
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-32: SIM-Chromatogramme übereinander gelegt,<br />
Dotierung auf Apfel 0,166 ppm, Endvol. 1,5 ml, Injektionsvol. 0,5 µl,<br />
m/z 208, 151, 145, 202, 137, 194, 152, 209<br />
Aminocarb<br />
Carbaryl<br />
Isoprocarb<br />
Promecarb<br />
Fenobucarb<br />
166 pg<br />
9 10 11 12<br />
Empfindlichkeit des Verfahrens:<br />
Durch die API (Atmospheric Pressure Ionisation) Elektrospray-Technik können ohne<br />
vorherige Derivatisierung für die N-Methyl-Carbamate Nachweisgrenzen erreicht<br />
werden, die im Bereich dessen liegen, was mittels GC-MSD möglich ist. Wie Abb.<br />
3.1.5-33 zeigt sind die Hauptmassen <strong>von</strong> Promecarb <strong>und</strong> Fenobucarb bei einer<br />
Konzentration <strong>von</strong> 0,003 ppm bezogen auf die Probe (3,3 pg absolut) noch deutlich in<br />
einem Apfelextrakt nachweisbar. Allerdings waren unter den gewählten Bedingungen<br />
die Hauptfragmentionen mit der Masse 151 nicht mehr nachweisbar. (Anmerkung:<br />
beide Verbindungen geben ein Fragmention mit der Masse 151). Durch eine<br />
Erhöhung des Injektionsvolumens oder einer Verschiebung der Fragmentorspannung<br />
könnte die Nachweisempfindlichkeit der Fragmentionen jedoch noch weiter gesteigert<br />
werden <strong>und</strong> dadurch die Selektivität erhöht werden.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
112
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-33: Abschätzung der Nachweisempfindlichkeit<br />
Dotierung auf Apfel 0,003 ppm, Endvol. 1,5 ml, Injektionsvol. 0,5 µl<br />
Vorteile der LC/MSD:<br />
m/z 151<br />
Promecarb<br />
m/z 208<br />
Fenobucarb<br />
3,3 pg<br />
Die Vorteile der LC/MSD Methode lassen sich wie folgt zusammenfassen:<br />
• hohe Selektivität <strong>und</strong> Empfindlichkeit,<br />
• keine Derivatisierung erforderlich,<br />
• Erfassung aller N-Methyl-Carbamate (Oxim- <strong>und</strong> Aryl-),<br />
• gleichzeitige Bestimmung der Abbauprodukte möglich,<br />
• Schnelligkeit.<br />
3.1.5.5.2.6 Wiederfindungen<br />
Es wurden mehrere Wiederfindungsversuche mit verschiedenen Matrizes (Apfel,<br />
Orangensaft, Traube, Karotte, Blumenkohl) durchgeführt <strong>und</strong> mit den drei beschriebenen<br />
Bestimmungsmethoden untersucht. Die dabei erzielten Wiederfindungen<br />
lagen unabhängig <strong>von</strong> der gewählten Bestimmungsmethode in der gleichen<br />
Größenordnung. In Abb. 3.1.5-34 sind die mittels SFE <strong>und</strong> LC-MSD erzielten<br />
Wiederfindungen für eine mit 0,167 ppm dotierte Traubenmatrix aufgeführt. Mit<br />
diesem Verfahren können, im Gegensatz zu den beiden gaschromatographischen<br />
Verfahren, nicht nur die Aryl- sondern auch die Oxim-Carbamate <strong>und</strong> Benfuracarb,<br />
Furathiocarb <strong>und</strong> Carbosulfan erfaßt werden.<br />
Die erzielten Wiederfindungen bei Verwendung der anderen Bestimmungs-<br />
verfahren werden nicht gesondert aufgeführt. Im Vergleich wiesen die mittels LC-<br />
MSD erzielten Ergebnisse <strong>von</strong> Wiederholbestimmungen die kleinsten Schwankungen<br />
auf (Variationskoeffizienten zwischen 1,3% <strong>und</strong> 4,8%, meist im Bereich <strong>von</strong> 2%).<br />
Erwartungsgemäß waren die Wiederfindungen der polaren Oxim-Carbamate<br />
Aldicarbsulfon, Oxamyl <strong>und</strong> Methomyl schlecht (vgl. Kap. 3.1.4.7.2).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
113
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-34: Wiederfindungen verschiedener Carbamate (SFE-LC-MSD)<br />
dotierte Matrix: Traube, Dotierungs-Level: 0,167 ppm<br />
Aldicarb Sulfon<br />
Aminocarb<br />
Bendiocarb<br />
Carbaryl<br />
Carbofuran<br />
Dioxacarb<br />
Ethiofencarb<br />
Fenobucarb<br />
Isoprocarb<br />
Landrin<br />
Methioc. Sulfon<br />
Methioc. Sulfoxid<br />
Methiocarb<br />
Methomyl<br />
Metolcarb<br />
Oxamyl<br />
Promecarb<br />
Propoxur<br />
Var. Koeff.: 1,3-4,8 %<br />
280 g/l<br />
58 g/l<br />
10g/l<br />
Abbau<br />
0 20 40 60 80 100<br />
114<br />
Wiederfindung in %<br />
Anmerkung: Die neben den Balken aufgeführten Werte zeigen die Löslichkeit der Carbamate in<br />
Wasser bei 20°C.<br />
3.1.5.5.2.7 Abbau in der <strong>Extraktion</strong>shülse<br />
Im Gegensatz zu den herkömmlichen Analysenverfahren, bei denen die Proben<br />
unmittelbar nach der Einwaage extrahiert werden, werden die Proben bei der SFE bis<br />
zur <strong>Extraktion</strong> manchmal über mehrere St<strong>und</strong>en im Autosampler des SFE-Gerätes<br />
bei Raumtemperatur gelagert. Dabei kann es zu einem signifikanten Abbau<br />
bestimmter empfindlicher Verbindungen kommen:<br />
Abbau <strong>von</strong> Dioxacarb:<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Dioxacarb weist eine Acetalgruppe auf, die insbesondere säurekatalysiert leicht<br />
hydrolysierbar ist. So wurde z.B. beobachtet, daß bei Dotierungen auf Traube<br />
(pH∼3,5) die Wiederfindungen mit der Lagerzeit der zu extrahierenden SFE-Hülsen<br />
rasch abnahmen. Bei Salat dagegen (pH∼6) war unter vergleichbaren Bedingungen<br />
praktisch kein Rückgang der Wiederfindungen festzustellen (siehe Kap. 3.1.4.7.4). In<br />
der folgenden Abbildung (3.1.5-35) wird der Abbau <strong>von</strong> Dioxacarb in Apfelmus-Matrix<br />
(pH∼5) gezeigt.<br />
Abb. 3.1.5-35: Abbau <strong>von</strong> Dioxacarb in Apfelmus/Hydromatrix-Gemisch 3:2 bei<br />
Lagerung in der <strong>Extraktion</strong>shülse bei Raumtemperatur<br />
80<br />
60<br />
40<br />
20<br />
0<br />
Umwandlung zu Carbofuran:<br />
Wiederfindung in %<br />
0 h 2 h 12 h<br />
Lagerzeit bei RT<br />
O<br />
O<br />
O<br />
O<br />
C<br />
NHCH3<br />
Wie bereits erwähnt, werden Carbosulfan, Benfuracarb <strong>und</strong> Furathiocarb leicht zu<br />
Carbofuran abgebaut. Dieser Abbau erfolgt sowohl auf der behandelten Pflanze als<br />
auch während der Analyse. Abb. 3.1.5-36 zeigt den Fortgang der Umwandlung <strong>von</strong><br />
Benfuracarb <strong>und</strong> Furathiocarb zu Carbofuran während der Lagerung der <strong>Extraktion</strong>shülsen<br />
bei Raumtemperatur . Dabei werden die Wiederfindungen als Carbofuran<br />
angegeben. Zur Berechnung wurden hierbei die Umwandlungsfaktoren 1,73 für<br />
Furathiocarb <strong>und</strong> 1,86 für Benfuracarb herangezogen. Wie aus der Graphik<br />
ersichtlich, erfolgt bei Benfuracarb eine raschere Umwandlung zu Carbofuran als bei<br />
Furathiocarb.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
115
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-36: Umwandlung zu Carbofuran in Apfelmus/Hydromatrix-Gemisch 3:2<br />
bei Lagerung in der <strong>Extraktion</strong>shülse bei Raumtemperatur<br />
80<br />
60<br />
40<br />
20<br />
0<br />
Fazit:<br />
Wiederfindung in %<br />
0 h 2 h 20 h<br />
Lagerzeit bei RT<br />
O<br />
O<br />
O<br />
C<br />
O<br />
N<br />
CH3<br />
S<br />
CH3<br />
CH<br />
N<br />
C2H4 C<br />
BENFURACARB<br />
O<br />
C<br />
N<br />
CH3<br />
FURATHIOCARB<br />
CH3<br />
CH3<br />
N<br />
C O<br />
O<br />
116<br />
OC2H5<br />
Mit Hilfe der SFE können N-Methyl-O-Aryl-Carbamate mit sehr guten Ausbeuten<br />
extrahiert werden. Oxim-Carbamate zeigen dagegen wegen ihrer hohen Polarität<br />
geringere Wiederfindungen. Es wurden drei verschiedene Verfahren zur Bestimmung<br />
dieser Verbindungen miteinander verglichen: die direkte Bestimmung mittels<br />
GC/MSD bei Verwendung eines Kaltaufgabesystems, die Bestimmung mittels<br />
GC/MSD nach Derivatisierung mit PFB-Br <strong>und</strong> die Bestimmung mittels LC/MSD. Mit<br />
der LC/MSD ist eine direkte schnelle <strong>und</strong> einfache Bestimmung aller N-Methyl-<br />
Carbamate <strong>und</strong> Ihrer Abbauprodukte mit guter Empfindlichkeit möglich.<br />
Die Ergebnisse dieser Untersuchungen wurden als Poster beim 2nd European<br />
Pesticide Residue Workshop in Almería, beim 9th IUPAC International Congress-<br />
Pesticide Chemistry <strong>und</strong> beim 3. SFE-SFC-XSE Forum in Siegen, sowie als Vortrag<br />
beim MS-Anwendertreffen der Fa. HP in Fulda (1998) vorgestellt [103,104].<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
O<br />
S<br />
O<br />
C4H9
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.5.6 Organozinn-Pestizide<br />
3.1.5.6.1 Einleitung<br />
Organozinn-Verbindungen werden in der Industrie z.B. als Hilfsmittel bei der Verarbeitung<br />
<strong>von</strong> PVC, als Holzschutzmittel <strong>und</strong> als Bestandteil <strong>von</strong> Anstrichmitteln für<br />
Schiffsteile, die vor Anlagerung <strong>von</strong> Pflanzen <strong>und</strong> Tieren geschützt werden sollen,<br />
verwendet [84,85]. In der Landwirtschaft werden sie seit den 50 iger Jahren [86] als<br />
Akarizide <strong>und</strong> Fungizide eingesetzt.<br />
Die Strukturformeln der Organozinn-Pestizide werden in Abb. 3.1.5-37 aufgeführt.<br />
Triphenylzinn-Verbindungen (Fentinhydroxid <strong>und</strong> Fentinacetat) werden hauptsächlich<br />
wegen ihrer fungiziden Wirkung <strong>und</strong> als Antifraßmittel gegen blattfressende Larven<br />
im Kartoffel-, Rüben- <strong>und</strong> Sellerieanbau verwendet [85]. Fentinacetat hat darüber<br />
hinaus algizide <strong>und</strong> mulluscizide Eigenschaften. Es wird nach dem Aufbringen innerhalb<br />
kurzer Zeit zu Fentinhydroxid umgewandelt [93].<br />
Die Trialkyl-Zinn-Verbindungen Azocyclotin, Cyhexatin <strong>und</strong> Fenbutatinoxid sind<br />
gegen alle beweglichen Entwicklungsstadien der Spinnmilbe wirksam [92]. Cyhexatin<br />
wurde lange Zeit bei der Produktion <strong>von</strong> Obst eingesetzt. 1987 wurde allerdings das<br />
Produkt (Handelsname Plictran) vom Hersteller aufgr<strong>und</strong> <strong>von</strong> Studien, die eine<br />
teratogene Wirkung bei Versuchstieren nachwiesen, vom Markt genommen.<br />
Dennoch ist Cyhexatin ist in mehreren EU-Staaten noch zugelassen [120].<br />
Analytik:<br />
Organo-Zinn-Pestizide werden in Deutschland im Rahmen der Lebensmittelüberwachung<br />
nicht routinemäßig untersucht [124], da zu ihrer Bestimmung eine gesonderte<br />
Aufarbeitung <strong>und</strong> Derivatisierung erforderlich ist.<br />
Zur Beseitigung analytischen Defizite im Bereich der Pestizid-Rückstandsanalytik<br />
wurde vom BMG eine Liste <strong>von</strong> Substanzen zusammengestellt, für die schwerpunktmäßig<br />
analytische Methoden entwickelt werden sollen. In dieser Prioritätenliste<br />
stehen die Organo-Zinn-Pestizide Fentinacetat, Fentinhydroxid <strong>und</strong> Azocyclotin unter<br />
den ersten sechs <strong>und</strong> Fenbutatinoxid, Cyhexatin <strong>und</strong> Fentinchlorid unter den ersten<br />
25 Stoffen mit größter Priorität [124].<br />
Für die Spurenanalytik zinnhaltiger Pestizide sind in der Literatur verschiedene<br />
Analysenmethoden beschrieben worden. Diese Methoden lassen sich in zwei<br />
Gruppen einteilen.<br />
Bei den indirekten Bestimmungsverfahren werden die Organozinn-Verbindungen<br />
durch einen Aufschluß zerstört. Das freigesetzte Zinn wird z. B. polarographisch<br />
[94,95], über AAS [93] oder ICP/MS bestimmt. Für die Bestimmung der unzersetzten<br />
Pestizide werden in der Literatur u.a. flüssigkeitschromatographische, gaschromatographische<br />
<strong>und</strong> dünnschichtchromatographische Verfahren beschrieben. Für<br />
gaschromatographische Untersuchungen muß durch Alkylierung oder Hydrierung die<br />
Thermostabilität erhöht <strong>und</strong> die Siedetemperatur der Moleküle erniedrigt werden, da<br />
bei allen hier vorgestellten Verbindungen eine direkte gaschromatographische<br />
Analyse nicht möglich ist. Für eine Bestimmung mittels HPLC ist, bei Verwendung<br />
eines DAD-Detektors, ebenfalls eine Derivatisierung notwendig, weil nicht alle<br />
zinnhaltigen Pestizide ein Chromophor enthalten.<br />
Abb.3.1.5-37: Strukturformeln der Organozinn-Pestizide<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
117
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Sn<br />
OH<br />
Organozinn-Pestizide<br />
Fentinhydroxid<br />
(Triphenylzinnhydroxid)<br />
Sn<br />
O<br />
C<br />
O CH3<br />
Fentinacetat<br />
(Triphenylzinnacetat)<br />
CH 2<br />
CH2<br />
Sn<br />
CH2<br />
N<br />
Sn<br />
OH<br />
Cyhexatin<br />
(Tricyclohexylzinnhydroxid)<br />
Sn<br />
N<br />
N<br />
Azocyclotin<br />
(Tri(cyclohexyl)-1-1H-1,2,4-triazol-1-yl-zinn)<br />
O<br />
CH2<br />
Sn<br />
CH2<br />
CH 2<br />
Fenbutatinoxid<br />
(Bis[tris(2-methyl-2-phenylpropyl)zinn]oxid)<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
118
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.5.6.2 <strong>Extraktion</strong> mit SFE<br />
Organozinn-Pestizide weisen eine geringe Polarität auf <strong>und</strong> werden bei den in der<br />
Literatur beschriebenen Analysenmethoden mit unpolaren Lösungsmitteln wie Hexan<br />
oder Dichlormethan extrahiert. Überkritisches Kohlendioxid bietet sich daher<br />
ebenfalls als <strong>Extraktion</strong>smittel an.<br />
Es wurden <strong>Extraktion</strong>sversuche mit beiden zu Verfügung stehenden <strong>Extraktion</strong>sgeräten<br />
durchgeführt. Die dabei verwendeten Bedingungen werden im folgenden<br />
aufgeführt:<br />
SFE-Parameter HP 7680T:<br />
• <strong>Extraktion</strong>sdruck: 329 bar, Temperatur: 55°C<br />
• Dichte: 0,89 g/ml<br />
• statische <strong>Extraktion</strong>: 2 min<br />
• dynamische <strong>Extraktion</strong>: 25 min<br />
• CO2-Fluß: 1,8 ml/min<br />
• Fallenmaterial: ODS, 10°C während der <strong>Extraktion</strong><br />
• Elutionslösungsmittel: Hexan<br />
SFE-Parameter ISCO SFX 3560:<br />
• <strong>Extraktion</strong>sdruck: 330 bar, Temperatur: 55°C<br />
• Dichte: 0,89 g/ml<br />
• statische <strong>Extraktion</strong>: 2 min<br />
• dynamische <strong>Extraktion</strong>: 25 min<br />
• CO2-Fluß: 1,8 ml/min<br />
• Lösungsmittel in der Vorlage: 10 ml Hexan<br />
• Temperatur der Vorlage: 0°C<br />
Während bei Verwendung des Gerätes der Fa. ISCO gute Wiederfindungen erzielt<br />
werden konnten (siehe unter Wiederfindungen) wurden bei Verwendung des HP-<br />
Extraktors, bei dem die Extrakte zunächst an einer Festphasenfalle gesammelt<br />
werden, niedrige <strong>und</strong> schwankende Ergebnisse erzielt. Wie aus den oben aufgeführten<br />
Bedingungen ersichtlich, wurde bei diesem Gerät zur Elution der Extrakte aus<br />
der Festphasenfalle in die Vorlagen, Hexan verwendet. Dies könnte auch die<br />
Ursache für die schlechten Wiederfindungen sein. Bei der SFE-<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Obst -<br />
<strong>und</strong> Gemüseproben gelangt, trotz der Verwendung <strong>von</strong> Adsorbentien stets eine<br />
gewisse Menge an Wasser bis zur Falle. Die Elution mit Hexan ist gestört, da dieses<br />
Lösungsmittel sich mit dem Wasser nicht mischt, so daß die präzipitierten Analyten<br />
vom Wasser abgeschirmt werden. Aus Zeitgründen konnte diese Problematik jedoch<br />
nicht weiter verfolgt werden.<br />
3.1.5.6.3 Optimierung der Derivatisierung mit Grignard-Reagenz<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
119
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Um die gaschromatographische Bestimmung der Organo-Zinn-Pestizide zu ermöglichen,<br />
müssen diese derivatisiert werden, wobei ein vierter organischer Rest am<br />
Zinnatom eingeführt wird (siehe Abb. 3.1.5-38).<br />
Abb. 3.1.5-38: Derivatisierung schematisch<br />
R<br />
R Sn<br />
R<br />
R<br />
X R Sn<br />
R: Alkyl, Aryl; R’: Alkyl; X: Hydroxid, Acetat, Triazol<br />
In der Literatur werden zur Derivatisierung der Organo-Zinn-Verbindungen verschiedene<br />
Möglichkeiten beschrieben.<br />
Eine Alkylierung am Zinnatom ist durch eine Umsetzung mit Tetraalkylborat möglich.<br />
Die Ethylierung mit Tetraethylborat wird in der Literatur zum Beispiel für die<br />
Umsetzung der Organozinn-Verbindungen aus Trinkwasser <strong>und</strong> Abwasser sowie aus<br />
Bodenproben beschrieben [97].<br />
Die am häufigsten beschriebene Derivatisierungsmethode <strong>von</strong> Organozinn-Verbindungen<br />
ist die Umsetzung mit Grignard-Reagenzien [3,88,90,93,98], vgl. Abb.<br />
3.1.5-39.<br />
Abb. 3.1.5-39: Umsetzung mit Grignard-Reagenz<br />
R<br />
R Sn<br />
R<br />
X + CH3MgCl R<br />
R<br />
Sn<br />
R<br />
CH3 +<br />
R<br />
R'<br />
MgClX<br />
Dort beschriebenen Verfahren zur Derivatisierung mit Grignard-Reagenz sind<br />
allerdings etwas langwierig <strong>und</strong> daher für die Routineanalytik wenig attraktiv. Die<br />
Derivatisierung wird oft in aufwendigen Apparaturen unter Stickstoffatmosphäre<br />
durchgeführt. Es folgt dann meist eine mehrmalige Ausschüttelung der Derivate aus<br />
dem Derivatisierungsansatz sowie in einigen Fällen eine Nachreinigung durch<br />
Säulenchromatographie.<br />
Im Rahmen dieser Arbeit wurde eine erheblich einfachere Variante dieser Derivatisierung<br />
ausgearbeitet.<br />
Derivatisierungsreaktion:<br />
Bei Verwendung des ISCO-Gerätes werden die Extrakte in 20 ml Vorlagegläschen, in<br />
denen 10 ml Hexan vorgelegt wurde aufgefangen. Nach Beendigung der <strong>Extraktion</strong><br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
120
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
sind etwa 4-5 ml des Hexans noch im Vorlagegefäß vorhanden. Diese Lösung wird<br />
direkt zur Derivatisierung eingesetzt.<br />
Nach Zugabe <strong>von</strong> Internem Standard (PCB IUPAC Nr. 101) in Isooctan <strong>und</strong> der<br />
Grignard-Reagenz-Lösung wird der Ansatz 15 min unter Rühren (Magnetrührer) bei<br />
Raumtemperatur derivatisiert. Die Reaktion wird durch Zugabe <strong>von</strong> 15 %iger<br />
Ammoniumchlorid-Lösung gestoppt.<br />
Nach kräftigem Schütteln wird die obere organische Phase mit Stickstoff bis auf etwa<br />
1,5 ml eingeengt, in ein GC-Vial überführt <strong>und</strong> zur GC-MSD-Bestimmung eingesetzt.<br />
Bei der Derivatisierung entstand neben dem Hauptderivat Triphenyl-methyl-zinn in<br />
geringen Mengen ein weiteres Produkt, das Diphenyl-dimethyl-zinn. Möglicherweise<br />
findet hier als Nebenreaktion eine Substitution des Phenyl-Restes durch einen<br />
Methyl-Rest statt. Auffällig war, daß mit der Zunahme der Bildung des Dimethyl-<br />
Derivates eine geringere Ausbeute an Methyl-Derivat einherging. Das Dimethyl-<br />
Derivat wird in Abb. 3.1.5-40 abgebildet:<br />
Abb. 3.1.5-40: Strukturformel <strong>von</strong> Diphenyl-dimethyl-zinn (unerwünschtes<br />
Nebenprodukt bei der Derivatisierung <strong>von</strong> Fentinacetat <strong>und</strong> -hydroxid)<br />
Sn CH 3<br />
Diphenyl-dimethyl-zinn<br />
Abb. 3.1.5-41 zeigt die Entstehung der Derivatisierungsprodukte aus den Organo-<br />
Zinn-Verbindungen.<br />
CH 3<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
121
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-41: Entstehung der Derivatisierungsprodukte aus den Organo-Zinn-<br />
Verbindungen nach Umsetzung mit Grignard-Reagenz<br />
Bildung der Derivatisierungsprodukte<br />
OH<br />
Sn<br />
Fentinhydroxid<br />
OH<br />
Sn<br />
Cyhexatin<br />
CH2<br />
Sn<br />
CH2<br />
CH 2<br />
CH2<br />
CH3<br />
Tricyclohexyl-methyl-zinn<br />
CH3<br />
Sn<br />
Tricyclohexyl-methyl-zinn<br />
CH2<br />
Sn<br />
CH 3<br />
O<br />
CH 2<br />
Tris(2-methyl-2-phenyl-propyl)-methyl-zinn<br />
Fenbutatinoxid<br />
CH 2<br />
Sn<br />
CH2<br />
CH 2<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
Sn<br />
CH 3<br />
C O<br />
O<br />
Sn<br />
Fentinacetat<br />
N<br />
N<br />
Sn<br />
N<br />
Azocyclotin<br />
122
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Wie erwähnt, enthalten SFE-Extrakte <strong>von</strong> Obst <strong>und</strong> Gemüseproben geringe Mengen<br />
an Wasser. Da Wasser mit Grignard-Reagenz reagieren kann, wurde überprüft, ob<br />
diese kleinen Wassermengen die Derivatisierung beeinflussen können. Darüber<br />
hinaus wurde die Reaktion in drei verschiedenen Reaktionsmedien durchgeführt <strong>und</strong><br />
die Derivatisierungsausbeuten wurden verglichen:<br />
• Isooctan:Hexan 1:4 (IO:HEX),<br />
• Cyclohexan: Ethylacetat 1:1 (CH:EA),<br />
• tert.-Butyl-Methyl-Ether (TBME).<br />
In diesen Fällen wurden Extrakte aus 3 g Mango verwendet, die zuvor mit<br />
Natriumsulfat getrocknet wurden. Dotiert wurde kurz vor der Derivatisierung mit je 1<br />
µg an Cyhexatin, Fentinhydroxid <strong>und</strong> Fenbutatinoxid. Die Ergebnisse dieser<br />
Untersuchungen werden in Tab. 3.1.5-19 dargestellt.<br />
Tab. 3.1.5-19: Derivatisierungsausbeute der Organo-Zinn-Pestizide bei Variation<br />
der Derivatisierungsparameter<br />
Verwendetes Cyhexatin Fentin- Fentin Abbau** Anmerkungen<br />
Lösungsmittel<br />
hydroxid<br />
TPME<br />
1 1 1 auf 1 normiert<br />
TPME* 0,99 0,96 1,36 *Wasser nicht<br />
entfernt<br />
CH:EA<br />
1:1<br />
0,98 1,04 0,10<br />
IO:HEX<br />
1:4<br />
0,91 0,88 1,87<br />
** Zur Entstehung des Diphenyl-dimethyl-zinn-Derivates aus Fentinhydroxid siehe oben<br />
Die Unterschiede in den Derivatisierungsausbeuten bei Verwendung verschiedener<br />
Lösungsmittel waren nur gering. Bei Derivatisierung in Cyclohexan-Ethylacetat wurde<br />
deutlich weniger unerwünschtes Diphenyl-dimethyl-zinn gebildet, als in den anderen<br />
Reaktionsmedien. Dieser Sachverhalt sollte noch weiter untersucht werden. Das in<br />
den Probenextrakten vorhandene Wasser störte die Derivatisierungsreaktion nicht.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
123
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.5.6.4 Bestimmung mittels GC-MSD<br />
Die Bestimmung der Derivate wurde mittels GC-MSD im EI-Modus durchgeführt. Es<br />
wurden die Meßbedingungen der im Anhang 1 aufgeführten SFE-Multimethode<br />
eingesetzt.<br />
Die Bestimmung der Organozinn-Verbindungen mittels GC/MSD bietet sich an, da<br />
diese charakteristische Isotopenmuster im Massenspektrum aufweisen. Das Element<br />
Zinn besitzt zehn Isotope, <strong>von</strong> denen 120 Sn (natürliche Häufigkeit: 32,4 %), 118 Sn<br />
(24,3 %) <strong>und</strong> 116 Sn (14,7 %) am häufigsten vorkommen. Massenspektren zinnhaltiger<br />
Verbindungen zeigen daher ein charakteristisches Isotopenmuster. Abb. 3.1.5-42<br />
verdeutlicht dies am Massenspektrum <strong>von</strong> Triphenyl-methyl-zinn, dem Derivat <strong>von</strong><br />
Fentinhydroxid <strong>und</strong> Fentinacetat.<br />
Abb. 3.1.5-42: Massenspektrum <strong>von</strong> Triphenyl-methyl-zinn<br />
Ab<strong>und</strong>ance<br />
120000<br />
110000<br />
100000<br />
90000<br />
80000<br />
70000<br />
60000<br />
50000<br />
40000<br />
30000<br />
20000<br />
10000<br />
0<br />
m/z--><br />
77<br />
91<br />
120<br />
Scan 819 (19.275 min): 9301002.D<br />
124 154<br />
169<br />
197<br />
210<br />
289<br />
118 Sn +<br />
251271<br />
294 335<br />
351<br />
365<br />
100 150 200 250 300 350 400<br />
3<br />
116 Sn +<br />
124<br />
120 Sn +<br />
393 414434<br />
Cyhexatin <strong>und</strong> Azocyclotin werden bei der Derivatisierung zu Tricyclohexyl-methylzinn<br />
umgesetzt (vgl. Abb. 3.1.5-41). In der Rückstands-HöchstmengenVO wird für<br />
beide Pestizide eine Summenhöchstmenge, berechnet als Cyhexatin, angegeben<br />
[34]. Ähnliches gilt auch für Fentinacetat <strong>und</strong> Fentinhydroxid, die beide zu Triphenylmethyl-zinn<br />
umgesetzt werden. Hier besteht ebenfalls eine Summenhöchstmenge,<br />
berechnet als Fentinhydroxid [34].<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
3<br />
3
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Zur Bestimmung der Substanzen im SIM-Modus, wurden die in Tab 3.1.5-20 aufgeführten<br />
Quantifizierungs- <strong>und</strong> Identifizierungs-Ionen (Target- <strong>und</strong> Qualifier-Ionen)<br />
ausgewählt.<br />
Tab 3.1.5-20: Übersicht der Derivatisierungsprodukte, Retentionszeiten <strong>und</strong><br />
detektierten Massen im SIM-Modus<br />
Target-/ Retentions-<br />
Organo-Zinn-<br />
Pestizid<br />
Derivatisierungsprodukt Qualifier-Ionen<br />
[m/z]<br />
zeit<br />
[min]<br />
Azocyclotin Tricyclohexyl-methyl-zinn 301/<br />
Cyhexatin 299; 219<br />
Fentinacetat<br />
Fentinhydroxid<br />
Fenbutatinoxid<br />
Triphenyl-methyl-zinn<br />
Tris(2-methyl-2phenylpropyl)-methyl-zinn<br />
351/<br />
349; 347<br />
401/<br />
399; 397<br />
19,05<br />
19,28<br />
34,30<br />
Unerwünschtes Nebenprodukt aus Fentinhydroxid <strong>und</strong> Fentinacetat<br />
Diphenyl-<br />
zinn-dihydroxid<br />
Diphenyl-dimethyl-zinn<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
289/<br />
287; 285<br />
13,22<br />
125
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb.3.1.5-43: Massenspektren der Derivatisierungsprodukte zinnhaltiger Pestizide<br />
Ab<strong>und</strong>ance<br />
140000<br />
130000<br />
120000<br />
110000<br />
100000<br />
90000<br />
80000<br />
70000<br />
60000<br />
50000<br />
Tricyclohexyl-methyl-zinn aus Cyhexatin <strong>und</strong> Azocyclotin<br />
(19.016 min)<br />
135<br />
137<br />
40000<br />
30000<br />
83<br />
20000<br />
67<br />
10000<br />
m/z--> 0<br />
60 80<br />
116<br />
100 120 140<br />
159 175<br />
160 180<br />
203<br />
200 220<br />
249 251<br />
240 260<br />
287 307 327 355<br />
280 300 320 340 360 380<br />
365 384<br />
150000<br />
140000<br />
130000<br />
120000<br />
110000<br />
100000<br />
90000<br />
80000<br />
70000<br />
60000<br />
50000<br />
40000<br />
30000<br />
20000<br />
10000<br />
m/z--> 0<br />
Triphenyl-methyl-zinn aus Fentinhydroxid <strong>und</strong> Fentinacetat<br />
Ab<strong>und</strong>ance (19.263 min)<br />
120<br />
197<br />
219<br />
77<br />
91<br />
124<br />
154<br />
169<br />
201<br />
221 247<br />
289<br />
273 293 318<br />
373 405<br />
80 100 120 140 160 180 200 220 240 260 280 300 320 340 360 380<br />
Tris(2-methyl-2-phenyl-propyl)-methyl-zinn aus Fenbutatinoxid<br />
Ab<strong>und</strong>ance (38.956 min)<br />
85000<br />
80000<br />
75000<br />
70000<br />
65000<br />
60000<br />
55000<br />
50000<br />
45000<br />
40000<br />
35000<br />
91<br />
30000<br />
25000<br />
20000<br />
15000<br />
10000<br />
5000<br />
m/z--> 0<br />
60<br />
77<br />
80<br />
117<br />
100 120 140 160 180 200 220 240 260 280 300 320 340 360 380 400<br />
135<br />
197<br />
289<br />
405<br />
201 227 253<br />
145 161<br />
281 303 341<br />
345<br />
369<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
301<br />
351<br />
349<br />
401<br />
126
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Kalibrierung<br />
Zur Erstellung <strong>von</strong> Kalibrierungen wurden folgende Standardlösungen angefertigt:<br />
• Azocyclotin/Fentinacetat-Standardgemisch<br />
• Cyhexatin/Fentinhydroxid/Fenbutatinoxid-Standardgemisch.<br />
Bei der Zusammenstellung der Standardlösungen wurde beachtet, daß Verbindungen,<br />
die das gleiche Derivat ergeben, nicht zusammen vorkommen.<br />
Während die Kalibrierkurven der Derivate <strong>von</strong> Cyhexatin <strong>und</strong> Azocyclotin eine sehr<br />
gute Linearität aufwiesen, war bei Fentinhydroxyd/-acetat <strong>und</strong> bei Fenbutatinoxid bei<br />
Abwesenheit <strong>von</strong> Matrixbestandteilen die Linearität schlecht. Dies deutet auf eine<br />
Zersetzung dieser Substanzen im Injektionssystem hin. Dagegen zeigte sich bei<br />
Anwesenheit <strong>von</strong> Matrixbestandteilen in den Meßlösungen ein linearer Verlauf der<br />
Kalibrierkurven, was auf Matrixeffekte hindeutet (vgl. Kap. 3.1.2.3).<br />
Um den Einfluß verschiedener Matrizes auf die Derivatisierungsausbeute <strong>und</strong> die<br />
Steigung der Kalibriergeraden zu untersuchen, wurden Extrakte verschiedener<br />
Matrizes (Petersilie, Mango, Zitrone), mit unterschiedlichen Mengen an Organo-Zinn-<br />
Pestiziden dotiert <strong>und</strong> derivatisiert. Dabei wurde festgestellt, daß die Art der Matrix<br />
keinen nennenswerten Einfluß auf die Steigung der Kalibriergeraden hatte.<br />
3.1.5.6.5 Bestimmung mittels LC-MSD (API-Elektrospray)<br />
Für die Bestimmung der Organo-Zinn-Pestizide mittels LC-MSD ist keine Derivatisierung<br />
erforderlich.<br />
Erste Messungen wurden mit einem HP 1100 series MSD-Gerät im Elektospray-<br />
Modus (Fragmentorspannung 80V) durchgeführt. Hierbei wurden die Verbindungen<br />
mittels LC aufgetrennt <strong>und</strong> Massenspektren für die einzelnen Verbindungen<br />
aufgenommen. Es wurde festgestellt, daß nicht das protonierte Molekülion als<br />
Hauptmasse im Massenspektrum auftritt, sondern die Triphenyl-/Trialkyl-Zinn-<br />
Kationen. Mögliche Mechanismen, die zur Entstehung dieser Hauptfragmentionen bei<br />
Cyhexatin, Azocyclotin, Fentinhydroxid <strong>und</strong> Fentinacetat führen, werden in Abb.<br />
3.1.5-44 dargestellt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
127
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.5-44: Entstehung der Hauptfragmentionen aus Fentin, Fentinacetat,<br />
Azocyclotin <strong>und</strong> Cyhexatin.<br />
Sn<br />
O<br />
H<br />
Fentinhydroxid<br />
O<br />
Sn<br />
O<br />
C<br />
CH3<br />
Fentinacetat<br />
O<br />
H<br />
Cyhexatin<br />
N<br />
Sn<br />
Sn<br />
N<br />
N<br />
Azozyclotin<br />
+H<br />
+H<br />
+H<br />
+H<br />
O<br />
Sn<br />
O<br />
H H<br />
Sn<br />
O<br />
C H<br />
N<br />
CH3<br />
Sn<br />
O<br />
H H<br />
Anmerkung: Die angegebenen Massen beziehen sich auf das 120 Sn-Isotop<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
Sn<br />
N<br />
N<br />
H<br />
N<br />
H2O<br />
H2O<br />
Sn<br />
Sn<br />
128<br />
Triphenylzinnkation<br />
(Hauptfragmention)<br />
m/z 351<br />
CH3COOH<br />
Tricyclohexylzinnkation<br />
(Hauptfragmention)<br />
m/z 369<br />
N<br />
NH
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Bei der Fragmentierung <strong>von</strong> Cyhexatin <strong>und</strong> Azocyclotin im MSD entsteht nach Abspaltung<br />
<strong>von</strong> Cyclohexen <strong>und</strong> Wasser ein weiteres Fragmention mit hoher Intensität<br />
(siehe Abb. 3.1.5-45) .<br />
Abb. 3.1.5-45: Abspaltung <strong>von</strong> Cyclohexen aus Cyhexatin <strong>und</strong> Azocyclotin (Vorschlag)<br />
Sn<br />
O<br />
H<br />
H<br />
H<br />
Cyhexatin<br />
H<br />
O<br />
H H<br />
Sn H<br />
Fragmention<br />
m/z 287<br />
N<br />
N<br />
NH<br />
N<br />
Sn<br />
N<br />
N<br />
Azocyclotin<br />
Die Entwicklung einer vollständigen Bestimmungsmethode war leider nicht möglich,<br />
da alle Messungen bei der Fa. HP in Waldbronn erfolgten.<br />
Die bisherigen Erfahrungen zeigen jedoch, daß diese Bestimmungsmethode für<br />
Organo-Zinn-Verbindungen gut geeignet ist. Sie ist nicht nur schnell in der<br />
Durchführung, sondern erlaubt auch prinzipiell die Erfassung <strong>von</strong> Azocyclotin <strong>und</strong><br />
Cyhexatin sowie <strong>von</strong> Fentinhydroxid <strong>und</strong> Fentinacetet nebeneinander.<br />
Die Untersuchungen sollten daher fortgeführt werden.<br />
3.1.5.6.6 Wiederfindungsversuche<br />
Zur Ermittlung der Wiederfindungsraten wurde Apfelmus mit je 0,166 ppm sowie 1,11<br />
ppm der Organo-Zinn-Pestizide dotiert, mit SFE extrahiert <strong>und</strong> nach Derivatisierung<br />
mittels GC-MSD bestimmt.<br />
Die Ergebnisse dieser Untersuchungen werden in Tab. 3.1.5-21 aufgeführt.<br />
Leider konnten Wiederfindungen mit dem LC-MSD-System als Bestimmungs-<br />
verfahren nicht mehr durchgeführt werden.<br />
Tab. 3.1.5-21: Wiederfindungen der Organozinn-Pestizide,<br />
dotierte Probe: Apfelmus,<br />
dotierte Menge: je 0,166 ppm <strong>und</strong> 1,11 ppm, (n=4)<br />
Organozinn-<br />
Dotierung<br />
Dotierung<br />
Pestizide<br />
0,166 ppm<br />
1,11 ppm<br />
Mittlere Wiederfindungen in %<br />
Azocyclotin 73 (10)<br />
83<br />
Fentinacetat 76 (9) 69<br />
Cyhexatin 73 (6) 71<br />
Fentinhydroxid<br />
77 (8) 73<br />
Fenbutatinoxid 75 (6) 71<br />
Anmerkung: In Klammern sind die Wiederfindungen, die bei einer Nachextraktion der<br />
Probe unter den gleichen Bedingungen erzielt wurden, aufgeführt<br />
Angesichts der relativ hohen Wiederfindungen bei der zweiten <strong>Extraktion</strong><br />
(Nachextraktion), erscheint es notwendig <strong>und</strong> möglich die <strong>Extraktion</strong>sbedingungen zu<br />
optimieren, so daß noch bessere Wiederfindungen erzielt werden können.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
129<br />
H<br />
H
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Da Organo-Zinn-Verbindungen bekanntermaßen oxidationsempfindlich sind, könnten<br />
bei weiterführenden Untersuchungen, zu ihrem Schutz, Antioxidantien wie<br />
Ascorbinsäure eingesetzt werden.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
130
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.6 Beispiele aus der Praxis der Lebensmittelüberwachung<br />
3.1.6.1 Bestimmung <strong>von</strong> Pyrimethanil <strong>und</strong> Diethofencarb in<br />
Keltertrauben<br />
Bei einem Feldversuch im Weinbau wurden Pyrimethanil <strong>und</strong> Diethofencarb sowie<br />
Carbendazim zur Überprüfung ihrer Wirksamkeit bei der Bekämpfung <strong>von</strong> Botrytis<br />
cinerea eingesetzt. Verschiedene Traubenproben wurden der CVUA Stuttgart zur<br />
Bestimmung der Wirkstoffgehalte zum Zeitpunkt der Lese vorgelegt (vgl. Kap.<br />
3.1.5.3.2.6).<br />
Pyrimethanil <strong>und</strong> Diethofencarb sind erst in den letzten Jahren auf den Markt gekommen.<br />
In den Wirkstofflisten der gängigen DFG-Multi-Methoden für Pestizide<br />
waren sie noch nicht aufgeführt. Für Pyrimethanil war in der RHmV zu diesem<br />
Zeitpunkt noch keine Höchstmenge festgesetzt worden.<br />
Abb. 3.1.6-1: Strukturformeln <strong>von</strong> Pyrimethanil <strong>und</strong> Diethofencarb<br />
C2H5O<br />
O<br />
C<br />
C2H5O NH O<br />
Diethofencarb<br />
CH3<br />
CH<br />
CH3<br />
H<br />
N<br />
N<br />
N<br />
CH3<br />
Pyrimethanil<br />
Wiederfindungsversuche mit dotierten Traubenproben zeigten, daß diese Stoffe sich<br />
sehr gut mittels SFE extrahieren lassen. Eine Änderung des pH-Wertes <strong>von</strong> ∼3 auf<br />
∼6,5 <strong>und</strong> ∼8,5 zeigte im Gegensatz zu Carbendazim (siehe Kap. 3.1.5.3.2.6) keinen<br />
Einfluß auf die <strong>Extraktion</strong>sausbeuten (siehe Tab. 3.1.6-1). Die Carbamatgruppe des<br />
Diethofencarb zeigt sich im Alkalischen stabil. Die Basizität der drei Stickstoffatome<br />
des Pyrimethanil ist relativ schwach, so daß bei einem pH <strong>von</strong> ∼3 nur ein kleiner<br />
Anteil protoniert vorliegt.<br />
Tab. 3.1.6-1: Wiederfindungsversuche für die Stoffe Pyrimethanil <strong>und</strong><br />
Diethofencarb, je 0,33 ppm<br />
Stoffe Wiederfindungen in % Mittelwert<br />
pH∼3 pH∼6,5 pH∼8,5<br />
(natürlicher pH)<br />
Pyrimethanil 100 106 103 103<br />
Diethofencarb 99 99 98 99<br />
SFE-Bestimmungsmethode: siehe Anlage1<br />
Probe: tiefgefroren zerkleinerte Weintrauben, Probenmenge 3 g / Hydromatrix 2 g<br />
Bestimmung: mittels GC/MSD<br />
CH3<br />
Die ermittelten Wirkstoffgehalte, die die untersuchten Weintrauben <strong>und</strong> die daraus<br />
hergestellten Weine aufwiesen, werden in Tab. 3.1.6-2 dargestellt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
131
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.6-2: Untersuchungsergebnisse <strong>von</strong> Keltertrauben aus einem Feldversuch<br />
Probennummer Pyrimethanil Diethofencarb<br />
Trauben Wein Trauben Wein<br />
(ppm) (ppm) (ppm) (ppm)<br />
unbehandelt Probe 1 0,05 < 0,005<br />
Probe 2<br />
0,024
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.6.2 Untersuchung <strong>von</strong> Carbendazim in Obst <strong>und</strong> Gemüse<br />
Da die in der Literatur beschriebenen Analysenverfahren für Benomyl, Thiophanat-<br />
Methyl <strong>und</strong> Carbendazim zeitaufwendig <strong>und</strong> arbeitsintensiv sind, werden diese<br />
Verbindungen kaum routinemäßig bestimmt. Mit Hilfe der in Anlage 2 aufgeführten<br />
Methode lassen sie sich jedoch problemlos <strong>und</strong> schnell bestimmen.<br />
Die Untersuchung <strong>von</strong> über 250 Obst- <strong>und</strong> Gemüseproben aus dem Handel zeigt,<br />
daß diese Verbindungen in der Landwirtschaft sehr häufig eingesetzt werden <strong>und</strong><br />
daß durchaus Überschreitungen der Höchstmengen auftreten (siehe Tab. 3.1.6-3<br />
sowie Abb. 3.1.6-2).<br />
Tab. 3.1.6-3: Carbendazim* Rückstände in Proben aus dem Handel (1997)<br />
Probenzahl<br />
Proben mit<br />
Rückständen<br />
Höchstmenge<br />
[34]<br />
>Höchstmenge<br />
Gehalt in<br />
mg/kg<br />
Salate 131 21 (16%) 1,0 2
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.6-2: Carbendazim Rückstände in Proben aus dem Handel (1997)<br />
Salat (131)<br />
Steinobst (20)<br />
Erdbeeren (46)<br />
Zitrusfrüchte (24)<br />
Papayas <strong>und</strong> Mangos (25)<br />
max. 11 ppm<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
< HM: 15%<br />
> HM: 2%<br />
< HM: 40%<br />
> HM: 10%<br />
< HM: 48%<br />
> HM: 0%<br />
< HM: 42%<br />
> HM: 0%<br />
< HM: 24%<br />
> HM: 12%<br />
134
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.1.6-3 zeigt einen Vergleich der beim CVUA Stuttgart gef<strong>und</strong>enen Pestizid-<br />
Rückstände in Obst in den letzten vier Jahren. Aufgeführt sind jeweils die 15 am<br />
häufigsten quantifizierten Pestizide. Die starke Zunahme der Carbendazim-Bef<strong>und</strong>e<br />
im Jahr 1997 ist auf die Einführung der hier vorgestellten Analytik für Routinezwecke<br />
zurückzuführen. Ähnliches gilt auch für die Verbindung 2,4-D im Jahr 1996.<br />
Abb. 3.1.6.-3: Pestizid-Rückstände in Obst in den letzten vier Jahren<br />
(CVUA-Stuttgart)<br />
Carbendazim<br />
Procymidon<br />
Chlorpyriphos<br />
Dichlofluanid<br />
Imazalil<br />
Thiabendazol<br />
Brompropylat<br />
Pyrimethanil<br />
o-Phenyl-Phenol<br />
Endosulfan<br />
Vinclozolin<br />
Ipro dio n<br />
Captan<br />
Prochloraz<br />
Dicofol<br />
Vinclozolin<br />
Procymidon<br />
Chlorpyrifos<br />
Endosulfan<br />
Tetradifon<br />
Dichlofluanid<br />
Brompropylat<br />
Dicofol<br />
Thiabendazol<br />
Prochloraz<br />
M ethidathion<br />
Ipro dio n<br />
Parathion<br />
Mecarbam<br />
Captan<br />
% der Proben<br />
0 5 10 15 20 25 30<br />
1997<br />
376 Proben<br />
77 % mit Rückständen<br />
73 versch. Pestizide<br />
2,8 Wirkstoffe/Probe<br />
8,2 % der Proben >HM<br />
0 5 10 15 20 25 30<br />
Procymidon<br />
Thiabendazol<br />
Chlorpyrifos<br />
Imazalil<br />
Brompropylat<br />
Vinclozolin<br />
Dichlofluanid<br />
Dicofol<br />
Endosulfan<br />
o-Phenyl-Phenol<br />
Captan<br />
Tetradifon<br />
M ethidathion<br />
Ipro dio n<br />
2,4-D<br />
Vinclozolin<br />
Dicofol<br />
Endosulfan<br />
Brompropylat<br />
135<br />
0 5 10 15 20 25<br />
0 5 10 15 20 25<br />
1995<br />
Tetradifon<br />
Chlorpyrifos<br />
Procymidon<br />
1994<br />
M ethidathion<br />
Thiabendazol<br />
Dichlofluanid<br />
Ipro dio n<br />
Azinphos-M ethyl<br />
Carbendazim<br />
Parathion<br />
o-Phenyl-Phenol<br />
% der Proben<br />
427 Proben<br />
71 % mit Rückständen<br />
69 versch. Pestizide<br />
2,7 Wirkstoffe/Probe<br />
4,0 % der Proben >HM<br />
% der Proben % der Proben<br />
324 Proben<br />
72 % mit Rückständen<br />
49 versch. Pestizide<br />
1,9 Wirkstoffe/Probe<br />
8,0 % der Proben >HM<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
1996<br />
329 Proben<br />
68 % mit Rückständen<br />
47 versch. Pestizide<br />
2,1 Wirkstoffe/Probe<br />
6,2 % der Proben >HM
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.6.3 Untersuchung <strong>von</strong> 2,4-D in Zitrusfrüchten<br />
Da die herkömmlichen Verfahren zur Bestimmung <strong>von</strong> 2,4-D relativ arbeitsaufwendig<br />
sind, wird diese Verbindung nur äußerst selten untersucht. Deshalb liegen nur<br />
wenige Daten über die Häufigkeit <strong>und</strong> Höhe <strong>von</strong> 2,4-D-Rückständen in Zitrusfrüchten<br />
vor.<br />
Mit der im Rahmen dieser Arbeit entwickelten SFE-Methode (Anlage 3, Code<br />
102E3102) wurden deshalb 140 Zitrusproben aus verschiedenen Herkunftsländern<br />
untersucht. Die Ergebnisse sind in Tab. 3.1.6-4 dargestellt. In Proben aus<br />
Mittelmeerländern wurden bei dieser Untersuchung selten Rückstände an 2,4-D<br />
nachgewiesen. Dagegen wiesen nahezu alle Proben aus Süd- <strong>und</strong> Mittelamerika <strong>und</strong><br />
aus Südafrika 2,4-D-Rückstände auf. Der höchste Bef<strong>und</strong> wurde in einer Probe aus<br />
Simbabwe mit 1,6 ppm festgestellt. Die Höchstmenge <strong>von</strong> 2 ppm wurde jedoch in<br />
keinem Fall überschritten.<br />
Tab. 3.1.6-4: Rückstände an 2,4-D in Proben des Handels (1996 <strong>und</strong> 1997)<br />
Herkunft<br />
Anzahl Proben mit Gehalt in<br />
Proben Rückständen mg/kg<br />
Südafrika <strong>und</strong> Simbabwe 23 16 (70 %) 0,01-1,6<br />
Süd- <strong>und</strong> Mittelamerika 12 11 (92 %) 0,01-0,38<br />
Mittelmeerländer 83 7 (8 %) 0,01-0,29<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
136
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.7 Untersuchung <strong>von</strong> Ringversuchsproben<br />
3.1.7.1 European Commission´s Proficiency Tests on Pesticide<br />
Residues in Fruit and Vegetables 1996/1997<br />
Das CVUA Stuttgart hat Anfang 1997 an einem Ringversuch der Europäischen<br />
Kommission (European Commission´s Proficiency Tests on Pesticide Residues in<br />
Fruit and Vegetables 1996/1997, Proficiency Test I <strong>und</strong> II) teilgenommen.<br />
3.1.7.1.1 Proficiency Test I<br />
Eine dotierte Probe Gemüsepaprika sollte auf folgende Stoffe untersucht werden:<br />
Acephat, Benalaxyl, Binapacryl, Bromophos-Ethyl, Captafol, Chlorthalonil,<br />
Chlorpyrifos, Chlorpyrifos-Methyl, Cyfluthrin, Cypermethrin, DDT, Deltamethrin,<br />
Diazinon, Dioxathion, Endosulfan, Endrin, Fenarimol, Fenchlorphos, Fenvalerat,<br />
Heptachlor, Iprodion, Lambda-Cyhalothrin, Mecarbam, Metalaxyl,<br />
Methamidophos, Methidathion, Permethrin, Pirimiphos-Methyl, Procymidon,<br />
Propoxur, Propyzamid, TEPP <strong>und</strong> Triazophos.<br />
Daneben sollten für die positiven Stoffe Wiederfindungen aus einer dotierten<br />
Blindprobe ermittelt werden. Die Kalibrierung sollte entweder mit Standards in<br />
Lösungsmittel oder mit Standards in Matrixextrakt erfolgen.<br />
Für die Bestimmung wurden folgende Methoden eingesetzt:<br />
1) DFG S19 (modifiziert, ohne Mini-Kieselgelsäulen)<br />
2) SFE Methode (siehe Anlage 1, Code: 100E3101)<br />
Folgende Substanzen wurden identifiziert: Diazinon, Chlorpyrifos, Procymidon,<br />
Endosulfan, Cypermethrin. Tab. 3.1.6-5 zeigt die nach beiden Methoden ermittelten<br />
Wiederfindungen. Zur Herstellung der Kalibrierlösungen wurden Extrakte der<br />
Blindprobe mit Standards versetzt (Eichung auf Matrix).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
137
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.7-1: Wiederfindungen <strong>von</strong> Wirkstoffen aus Paprika.<br />
Diazinon Chlorpyrifos Procymidon Endosulfan Cypermethrin<br />
α- β- -sulfat<br />
Wiederfindung in %<br />
SFE-Methode: 3g Probe + 2g Hydromatrix, Zusatz: 0,8µg/3g (0,267 ppm)<br />
Ansatz 1 106 96 109 102 105 101 73<br />
Ansatz 2 101 99 105 107 104 104 83<br />
Ansatz 3 88 91 105 103 98 83 83<br />
Ansatz 4 95 90 100 104 97 87 84<br />
Ansatz 5 84 87 92 92 92 80 82<br />
Mittelwert 95 92 102 102 99 91 81<br />
Variationskoeff.<br />
in %<br />
9,7 5,2 6,4 5,5 5,3 12,1 5,6<br />
SFE-Methode: 2g Probe + 2g Hydromatrix, Zusatz: 0,8 µg/2g (0,4 ppm)<br />
Ansatz 1 100 102 105 100 103 87 97<br />
Ansatz 2 93 105 107 107 103 75 98<br />
Ansatz 3 100 102 106 106 104 88 91<br />
Ansatz 4 86 98 99 97 98 81 105<br />
Ansatz 5 97 101 105 100 105 76 93<br />
Mittelwert 95 101 104 102 102 81 97<br />
Variationskoeff.<br />
in %<br />
6,4 2,6 2,9 4,2 2,4 7,4 5,6<br />
Methode DFG S19: Zusatz 0,32 ppm<br />
Mittelwert 85 88 97<br />
SFE-Bestimmungsmethode: siehe Anlage 1<br />
Probe: tiefgefroren zerkleinerte Paprika<br />
Dotierung: auf 3g bzw. 2g Probe je 100µl Standardlösung (Aceton: Isooctan 1:1)<br />
Bestimmung: mittels GC/MSD<br />
95 91<br />
Wie aus Tab. 3.1.7-1 ersichtlich wurden sowohl mit der DFG S19 als auch den SFE-<br />
Methoden für alle Stoffe hohe Wiederfindungen erzielt.<br />
Auffällig ist, daß die Wiederfindung <strong>von</strong> Cypermethrin bei einem Probe/ Hydromatrix<br />
Verhältnis <strong>von</strong> 3:2 mit 81 % deutlich niedriger lag als bei einem Verhältnis <strong>von</strong> 2:2 (97<br />
%) (siehe Tab. 3.1.7-1).<br />
Es besteht hier ein Zusammenhang zwischen dem Wasser/Hydromatrix-Verhältnis in<br />
der Probe (Feuchtigkeitsgrad) <strong>und</strong> der Extrahierbarkeit <strong>von</strong> Cypermethrin (vgl. Kap.<br />
3.1.4.7.3). In Tab. 3.1.7-2 werden die nach der SFE-Methode (Anlage 1) <strong>und</strong> der<br />
DFG-S-19-Methode ermittelten Gehalte mit den Angaben der Organisatoren des<br />
Ringversuches verglichen.<br />
Tab. 3.1.7-2: Gegenüberstellung der ermittelten Gehalte der SFE-Methode <strong>und</strong><br />
der DFG S19 mit den Ergebnisangaben der Organisatoren<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
138
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
SFE-Methode DFG S19<br />
(modifiziert)<br />
Angaben der Organisatoren<br />
Mittelwert Mittelwert Median kleinster höchster<br />
(„korrigiert*“) („korrigiert*“) aller 85 angegebener angegebener<br />
Teilnehmer<br />
Gehalte in ppm<br />
Wert Wert<br />
Diazinon 0,39 (0,41) 0,37 (0,44) 0,312 0,170 0,460<br />
Chlorpyrifos 0,74 (0,80) 0,72 (0,82) 0,681 0,370 0,942<br />
Procymidon 0,75 (0,74) 0,76 (0,78) 0,644 0,315 0,993<br />
Σ-Endosulfan 0,47 (0,47) 0,48 (0,51) 0,391 0,195 0,650<br />
Cypermethrin 0,29 (0,36) 0,34 (0,37) 0,330 0,042 0,695<br />
SFE-Bestimmungsmethode: Anlage 1<br />
Probe: tiefgefroren zerkleinerte Paprika, 3g Probe + 2g Hydromatrix<br />
Bestimmung: mittels GC/MSD<br />
* bei Berücksichtigung der Wiederfindungen<br />
3.1.7.1.2 Proficiency Test II<br />
Eine dotierte Probe Apfel sollte auf folgende Stoffe untersucht werden:<br />
Acephat, Benalaxyl, Binapacryl, Bromophos-Ethyl, Captafol, Carbendazim,<br />
Carbofuran, Chlorthalonil, Chlorpyrifos, Chlorpyrifos-Methyl, Cyfluthrin,<br />
Cypermethrin, DDT, Deltamethrin, Diazinon, Dicofol, Dioxathion, Disulfoton,<br />
Endosulfan, Endrin, Fenarimol, Fenchlorphos, Fenvalerat, Heptachlor, Imazalil,<br />
Iprodion, Lambda-Cyhalothrin, Mecarbam, Metalaxyl, Methamidophos,<br />
Methidathion, Permethrin, Pirimiphos-Methyl, Procymidon, Propiconazol,<br />
Propoxur, Propyzamid, TEPP, Thiabendazol, Triazophos <strong>und</strong> Vinclozolin.<br />
Für die Bestimmung wurden die in Anlage 1 <strong>und</strong> Anlage 2 aufgeführten Methoden<br />
verwendet. Auch hier wurden für die positiven Stoffe Wiederfindungsversuche<br />
durchgeführt (siehe Tab. 3.1.7-3) <strong>und</strong> zur Herstellung der Kalibrierlösungen Extrakte<br />
der Blindprobe mit Standards versetzt (Eichung auf Matrix).<br />
Folgende Substanzen wurden identifiziert: Diazinon, p,p-Dichlorbenzophenon,<br />
Thiabendazol, Methidathion, Iprodion <strong>und</strong> Carbendazim. Tab. 3.1.7-3 zeigt die<br />
ermittelten Wiederfindungen (Carbendazim siehe Kap. 3.1.5.3.2.5).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
139
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.1.7-3: Wiederfindungen <strong>von</strong> Wirkstoffen aus Paprika.<br />
Diazinon p,p´-Dichlorbenzophenon*<br />
Methidathion Iprodion<br />
Wiederfindung in %<br />
Ansatz 1 94 92 90 87<br />
Ansatz 2 93 89 88 86<br />
Ansatz 3 100 93 89 87<br />
Ansatz 4 104 94 88 87<br />
Ansatz 5 98 94 87 87<br />
Mittelwert 98 92<br />
88 87<br />
SFE-Bestimmungsmethoden: Anlage 1<br />
Probe: tiefgefroren zerkleinerte Paprika 3g Probe + 2g Hydromatrix, Zusatz: 2µg/3g (0,267 ppm)<br />
Bestimmung: mittels GC/MSD<br />
*Abbauprodukt <strong>von</strong> Dicofol<br />
In Tab. 3.1.7-4 werden die nach den SFE-Methoden (Anlage 1 <strong>und</strong> 2) ermittelten<br />
Gehalte mit den Angaben der Organisatoren des Ringversuches verglichen.<br />
Tab. 3.1.7-4: Vergleich der mittels SFE-Methode ermittelten Gehalte mit den<br />
Angaben der Organisatoren<br />
Wirkstoff Ansatz 1 Ansatz 2 Mittelwert<br />
Spiking<br />
level<br />
140<br />
Mittelwert<br />
aller<br />
Teilnehmer<br />
mg/kg mg/kg mg/kg<br />
Carbendazim 0,58 0,74 0,66 0,653 0,507<br />
Diazinon<br />
0,211 0,214 0,21 0,243 0,197<br />
p,p´-Dichlorbenzophenon* 0,331 0,345 0,34 0,373 keine Angabe<br />
Methidathion 0,232 0,237 0,23 0,253 0,246<br />
Iprodion 1,20 1,25 1,22 1,38 1,222<br />
Thiabendazol 1,00 0,943 0,97 1,11 0,825<br />
SFE-Bestimmungsmethoden: Anlage 1 <strong>und</strong> Anlage 2<br />
Probe: tiefgefroren zerkleinerte Paprika 3g Probe + 2g Hydromatrix<br />
Bestimmung: mittels GC/MSD<br />
*Abbauprodukt <strong>von</strong> Dicofol<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.2 EINSATZ DER SFE IN DER ANALYTIK VON BEDARFSGEGENSTÄNDEN<br />
3.2.1 Einleitung<br />
Zu den Bedarfsgegenstände im Sinne des LMBG werden unter anderem gezählt:<br />
• „Gegenstände, die dazu bestimmt sind, bei dem Herstellen, Behandeln, Inverkehrbringen<br />
oder dem Verzehr <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> verwendet zu werden <strong>und</strong> dabei<br />
mit den <strong>Lebensmitteln</strong> in Berührung zu kommen oder auf diese einzuwirken“<br />
(Lebensmittelbedarfsgegenstände) wie z.B. Lebensmittelverpackungen, Geschirr,<br />
• „Spielwaren <strong>und</strong> Scherzartikel“,<br />
• „Gegenstände, die dazu bestimmt sind, nicht nur vorübergehend mit dem<br />
menschlichen Körper in Berührung zu kommen...“, wie Kleidung, Bettwäsche.<br />
In <strong>Bedarfsgegenständen</strong> können Stoffe enthalten sein, die, bei einem Kontakt, ggf.<br />
auf Lebensmittel oder Menschen übergehen (migrieren) können.<br />
Nach §31 LMBG ist es verboten:<br />
„...Gegenstände als Bedarfsgegenstände... so zu verwenden oder für solche<br />
Verwendungszwecke in den Verkehr zu bringen, daß <strong>von</strong> ihnen Stoffe auf<br />
Lebensmittel oder deren Oberfläche übergehen, ausgenommen ges<strong>und</strong>heitlich,<br />
geruchlich <strong>und</strong> geschmacklich unbedenkliche Anteile, die technisch unvermeidbar<br />
sind“.<br />
In der Bedarfsgegenständeverordnung werden deshalb u.a. umfangreiche Positivlisten<br />
<strong>von</strong> Stoffen aufgeführt, die die Zusammensetzung <strong>und</strong> Migration <strong>von</strong><br />
Lebensmittelbedarfsgegenständen regeln. Aufgabe der Lebensmittelüberwachung ist<br />
es, die Einhaltung der Vorschriften hinsichtlich der Zusammensetzung der<br />
Bedarfsgegenstände <strong>und</strong> des Migrationsverhaltens der Inhaltsstoffe zu überwachen.<br />
Auf den ersten Blick erscheinen viele Bedarfsgegenstände gut für <strong>Extraktion</strong>en mit<br />
überkritischem Kohlendioxid geeignet zu sein. Sie enthalten meist wenig oder kein<br />
Wasser oder Fett, Inhaltsstoffe, die bei der SFE im allgemeinen Probleme bereiten<br />
können (vgl. Kap. 2.3.3). Allerdings bereitet bei vielen <strong>Bedarfsgegenständen</strong>, z.B. bei<br />
Kunststoffen, die Zerkleinerung Schwierigkeiten. Da bei der SFE nur wenig Probenmaterial<br />
zur <strong>Extraktion</strong> eingesetzt werden kann, ist hier auf eine besonders gute<br />
Homogenität zu achten. Dies ist aber nicht immer einfach, da z.B. bei der<br />
Zerkleinerung <strong>von</strong> Kunststoffen viel Wärme entsteht <strong>und</strong> Verluste an Inhaltsstoffen<br />
auftreten können. Darüber hinaus ist es bekanntermaßen meist nicht möglich, die<br />
z.B. bei Kunststoffen eingebetteten Inhaltsstoffe durch Dotierungen im Labor zu<br />
simulieren. Daher ist bei reellen Proben eine Abschätzung der <strong>Extraktion</strong>sausbeuten<br />
<strong>von</strong> Inhaltsstoffen sehr schwer.<br />
Im folgenden werden einige Anwendungen vorgestellt, bei denen die SFE zur<br />
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Inhaltsstoffen in <strong>Bedarfsgegenständen</strong> erfolgreich eingesetzt werden<br />
kann.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
141
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.2.2 Di-Isopropyl-Naphthalin in Papier<br />
3.2.2.1 Einführung<br />
Di-Isopropyl-Naphthalin (DIPN) wird als Isomerengemisch u.a. bei der Herstellung<br />
<strong>von</strong> Durchschreibepapieren <strong>und</strong> Thermopapieren als Farblösungsmittel <strong>und</strong> Farbträger<br />
verwendet. Die allgemeine Strukturformel der DIPN-Isomere ist in Abb. 3.2.2-1<br />
dargestellt [117].<br />
Abb. 3.2.2-1: Strukturformel <strong>von</strong> Di-Isopropyl-Naphthalin<br />
Di-Isopropyl-Naphthalin<br />
(Isomerengemisch)<br />
Da beim Recycling <strong>von</strong> Altpapier alle Prozesse in wäßrigen Medien ablaufen, wird<br />
DIPN wegen seiner stark lipophilen Eigenschaften nur schwer abgetrennt <strong>und</strong> gelangt<br />
somit in Recyclingpapiere <strong>und</strong> Recyclingkartonagen. Aus Sicht der Lebensmittelüberwachung<br />
ist es interessant DIPN zu analysieren, da Verpackungsmaterialien<br />
oft zu einem großen Anteil aus Altpapier hergestellt werden. Kommen<br />
diese Papiere in Kontakt mit <strong>Lebensmitteln</strong>, so kann es durch Migrationen, zu einer<br />
Kontamination kommen [118].<br />
3.2.2.2 Bestimmungsverfahren<br />
Im Rahmen dieser Arbeit wurde eine Methode zur Bestimmung <strong>von</strong> DIPN-Rückständen<br />
in Papier entwickelt. Nach einer <strong>Extraktion</strong> mit überkritischem Kohlendioxid<br />
wurde das DIPN Isomerengemisch mittels GC/MSD gemessen. Erzielte Ergebnisse<br />
wurden mit denen eines naßchemischen Verfahrens verglichen.<br />
3.2.2.2.1 naßchemisches Verfahren<br />
Im Rahmen einer Praktikantenarbeit am CVUA Stuttgart wurde ein Verfahren zur<br />
Bestimmung <strong>von</strong> DIPN in Papieren <strong>und</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> ausgearbeitet, bei dem das<br />
Isomerengemisch mit Hilfe einer Wasserdampfdestillation nach Clevenger aus dem<br />
Papier in eine Isooctan-Vorlage getrieben wird [115]. Die Messung erfolgt fluorimetrisch<br />
nach flüssigkeitschromatographischer Auftrennung. Die einzelnen DIPN-<br />
Isomere konnten flüssigkeitschromatographisch nicht aufgetrennt werden <strong>und</strong><br />
wurden daher als Summe erfaßt.<br />
3.2.2.2.2 <strong>Extraktion</strong> mittels SFE<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
142
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Es wurden <strong>Extraktion</strong>en mit beiden zur Verfügung stehenden Extraktoren durchgeführt.<br />
Die zu extrahierenden Papierproben wurden in kleine Streifen geschnitten <strong>und</strong> in die<br />
<strong>Extraktion</strong>shülsen gefüllt (meist 0,8 bis 1,2 g) <strong>und</strong> extrahiert.<br />
<strong>Extraktion</strong> mit HP-7680T:<br />
Zur Ermittlung der Wiederfindungsrate wurde ein zuvor mit Ether extrahiertes<br />
Filterpapier verwendet. Je 1 g Filterpapier wurde in drei <strong>Extraktion</strong>shülsen gefüllt <strong>und</strong><br />
mit jeweils 5 µg DIPN in acetonischer Lösung versetzt. Vor der <strong>Extraktion</strong> wurde die<br />
Hülse für ca. 1 min offen stehen gelassen, damit das Lösungsmittel verdampfen<br />
konnte. Die <strong>Extraktion</strong> erfolgte nach den unten aufgeführten Bedingungen <strong>und</strong> die<br />
Bestimmung wurde mittels GC-MSD durchgeführt. Dabei wurde eine mittlere<br />
Wiederfindung <strong>von</strong> 98% (n=3) ermittelt.<br />
SFE-Parameter für HP 7680T:<br />
• <strong>Extraktion</strong>sdruck: 329 bar, Temperatur: 55°C<br />
• Dichte: 0,89 g/ml<br />
• statische <strong>Extraktion</strong>: 2 min<br />
• dynamische <strong>Extraktion</strong>: 25 min<br />
• CO2-Fluß: 1,8 ml/min<br />
• Fallenmaterial: ODS, 5°C während der <strong>Extraktion</strong><br />
• Elutions-Lösungsmittel: Acetonitril<br />
<strong>Extraktion</strong> mit ISCO SFX 3560:<br />
Bei <strong>Extraktion</strong>sversuchen mit dem ISCO Gerät wurde zunächst zum Auffangen der<br />
Extrakte Acetonitril/Aceton 1:4 bei einer Temperatur <strong>von</strong> 10°C vorgelegt. Es wurde<br />
jedoch beobachtet, daß es mit steigender <strong>Extraktion</strong>szeit zu Verlusten an DIPN durch<br />
Verflüchtigung kam. Daraufhin wurde das unpolare Isooctan als Vorlagelösungsmittel<br />
verwendet <strong>und</strong> die Temperatur wurde während der <strong>Extraktion</strong> bei 0°C gehalten. Zur<br />
Überprüfung ob unter diesen Bedingungen Verluste auftreten, wurden vier<br />
Vorlagegläschen in denen Isooctan vorgelegt wurde mit je 10 µg DIPN versetzt <strong>und</strong><br />
für 5, 10, 20, 30 min eine <strong>Extraktion</strong> simuliert. Selbst nach 30minütiger<br />
„<strong>Extraktion</strong>szeit“ waren praktisch keine Verluste festzustellen.<br />
SFE-Parameter für ISCO SFX 3560:<br />
• <strong>Extraktion</strong>sdruck: 330 bar, Temperatur: 55°C<br />
• Dichte: 0,89 g/ml<br />
• statische <strong>Extraktion</strong>: 2 min<br />
• dynamische <strong>Extraktion</strong>: 25 min<br />
• CO2-Fluß: 1,8 ml/min<br />
• Lösungsmittel in der Vorlage: 10 ml Isooctan<br />
• Temperatur der Vorlage: 0°C<br />
3.2.2.2.3 Bestimmung mittels GC/MSD<br />
Die nach der SFE erhaltenen Extrakte wurden direkt ohne jegliche Nachreinigung<br />
mittels GC/MSD gemessen. In Abb. 3.2.2-2 sind die SIM-Chromatogramme (m/z 155<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
143
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
<strong>und</strong> 197) einer DIPN-Standardlösung dargestellt. Es wird ersichtlich, daß das<br />
Isomerengemisch durch die Gaschromatographie zu einer Vielzahl <strong>von</strong> Peaks<br />
aufgetrennt wird, die man im wesentlichen in zwei Hauptgruppen unterteilen kann.<br />
Gruppe 1: Retentionszeit-Fenster 17 -17,60 min (leichterflüchtigere Isomere)<br />
Gruppe 2: Retentionszeit-Fenster 17,60-18,30 min (schwererflüchtigere Isomere).<br />
Abb. 3.2.2-2: SIM-Chromatogramme <strong>von</strong> DIPN-Standardlösung (m/z 155, 197)<br />
Ab<strong>und</strong>ance<br />
80000<br />
75000<br />
70000<br />
65000<br />
60000<br />
55000<br />
50000<br />
45000<br />
40000<br />
35000<br />
30000<br />
25000<br />
20000<br />
15000<br />
10000<br />
5000<br />
Ion 155.00 (154.70 to 155.70): 5101002.D<br />
17.82<br />
0<br />
Time--><br />
17.00 17.10 17.20 17.30 17.40 17.50 17.60 17.70 17.80 17.90 18.00 18.10<br />
Ab<strong>und</strong>ance<br />
220000<br />
200000<br />
180000<br />
160000<br />
140000<br />
120000<br />
100000<br />
80000<br />
60000<br />
40000<br />
20000<br />
Ion 197.00 (196.70 to 197.70): 5101002.D<br />
17.83<br />
0<br />
Time--><br />
17.00 17.10 17.20 17.30 17.40 17.50 17.60 17.70 17.80 17.90 18.00<br />
Anmerkung: Die Unterschiede im Peakmuster der beiden SIM-Chromatogramme sind auf die<br />
Unterschiede in den Massenspektren der einzelnen DIPN Isomere zurückzuführen<br />
(Fragmentierungsunterschiede).<br />
Abb. 3.2.2-3: SIM-Chromatogramme <strong>von</strong> DIPN aus Papierextrakt (m/z 155, 197)<br />
Ab<strong>und</strong>ance<br />
180000<br />
170000<br />
160000<br />
150000<br />
140000<br />
130000<br />
120000<br />
110000<br />
100000<br />
90000<br />
80000<br />
70000<br />
60000<br />
50000<br />
40000<br />
30000<br />
20000<br />
10000<br />
Gr. 1<br />
Gr. 1<br />
Gr. 2<br />
m/z 155<br />
Ion 155.00 (154.70 to 155.70): 5501006.D<br />
Gr. 2<br />
17.83<br />
Ab<strong>und</strong>ance<br />
500000<br />
450000<br />
400000<br />
350000<br />
300000<br />
250000<br />
200000<br />
150000<br />
100000<br />
m/z 155 m/z 197<br />
0<br />
Time--><br />
17.00 17.10 17.20 17.30 17.40 17.50 17.60 17.70 17.80 17.90 18.00<br />
50000<br />
Gr. 1<br />
Gr. 1<br />
Gr. 2<br />
m/z 197<br />
Ion 197.00 (196.70 to 197.70): 5501006.D<br />
Gr. 2<br />
17.83<br />
0<br />
Time--><br />
17.00 17.10 17.20 17.30 17.40 17.50 17.60 17.70 17.80 17.90 18.00 18.10<br />
Anmerkung: Die Unterschiede im Peakmuster der beiden SIM-Chromatogramme sind auf die<br />
Unterschiede in den Massenspektren der einzelnen DIPN Isomere zurückzuführen<br />
(Fragmentierungsunterschiede).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
144
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.2.2-1: Verhältnisse der Peakflächen der Gruppe 2 zu Gruppe 1<br />
bei 2 SIM-Massen (m/z 155, 197)<br />
m/z Standardlösung Papierextrakt<br />
Gruppe 1 Gruppe 2 Verhältnis Gruppe 1 Gruppe 2 Verhältnis<br />
Fläche Gr. 1/Gr. 2 Fläche Gr. 1/Gr. 2<br />
155 3560 7240 0,49 5850 14120 0,41<br />
197<br />
7570 18990 0,40 12410 36860 0,34<br />
Bei ersten <strong>Extraktion</strong>sversuchen <strong>von</strong> Papierproben wurde festgestellt, daß es<br />
Unterschiede in den Peakmustern zwischen dem aus Proben extrahierten DIPNisomerengemisch<br />
<strong>und</strong> dem verwendetem Standard gab (vgl. Abb. 3.2.2-2 <strong>und</strong> Abb.<br />
3.2.2-3). Die Isomeren der ersten Gruppe waren im Verhältnis zu denen der Gruppe<br />
2 in den Probenextrakten schwächer vertreten als im Standard (siehe Tab. 3.2.2-1).<br />
Es lag demnach eine Diskriminierung der leichterflüchtigeren Isomeren in den Proben<br />
vor.<br />
Durch einen Vergleich der Peakmuster eines Extraktes aus einem Wiederfindungsversuch<br />
<strong>und</strong> dem Standard konnte ausgeschlossen werden, daß diese<br />
Diskriminierung während der <strong>Extraktion</strong> auftritt. Wenn man da<strong>von</strong> ausgeht, daß im<br />
verwendeten DIPN-Standard die Isomerenverteilung in etwa mit der des industriell<br />
verwendeten DIPN übereinstimmt, dann müßte diese Diskriminierung im Zeitraum<br />
<strong>von</strong> der ersten Verwendung des DIPN bis zur Analyse erfolgt sein. Dies ließe sich<br />
durch die leichtere Verflüchtigung der leichterflüchtigen Isomere der Gruppe 1 erklären.<br />
Abb. 3.2.2-4: Massenspektrum <strong>von</strong> zwei unterschiedlichen DIPN-Isomeren<br />
Ab<strong>und</strong>ance<br />
130000<br />
120000<br />
110000<br />
100000<br />
90000<br />
80000<br />
70000<br />
60000<br />
50000<br />
40000<br />
30000<br />
20000<br />
10000<br />
0<br />
m/z--><br />
Ab<strong>und</strong>ance<br />
220000<br />
200000<br />
180000<br />
160000<br />
140000<br />
120000<br />
100000<br />
80000<br />
60000<br />
40000<br />
20000<br />
0<br />
m/z--><br />
128<br />
129<br />
120 130 140 150 160 170 180 190 200 210 220<br />
128<br />
129<br />
Scan 1772 (17.231 min): 5101002.D<br />
Peak aus Gruppe 1<br />
141<br />
Scan 1846 (17.832 min): 5101002.D<br />
141<br />
152<br />
152<br />
155<br />
155<br />
165<br />
Peak aus Gruppe 2<br />
165<br />
120 130 140 150 160 170 180 190 200 210 220<br />
Zur Ermittlung der Gehalte wurden die Peaks der jeweiligen Gruppe als Summe<br />
integriert. Bedingt durch die oben beschriebene Diskriminierung werden in Proben für<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
197<br />
197<br />
212<br />
212<br />
145
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
die Isomere der Gruppe 1 niedrigere Ergebnisse erzielt als für die Gruppe 2. Die<br />
Unterschiede zwischen den Ergebnissen aus Gruppe 1 <strong>und</strong> Gruppe 2 lagen<br />
zwischen 4 <strong>und</strong> 30 % (meist im Bereich zwischen 15 <strong>und</strong> 20%). Daher wurde hier<br />
stets der Mittelwert aus den beiden Werten als Ergebnis angegeben.<br />
Da es, wie beschrieben, zwischen Standard <strong>und</strong> Proben Unterschiede im DIPN-<br />
Peakmuster gibt (vgl. Abb. 3.2.2-2 <strong>und</strong> Abb. 3.2.2-3) <strong>und</strong> da die einzelnen Isomere<br />
etwas unterschiedliche Massenspektren aufweisen (siehe Abb. 3.2.2-4 <strong>und</strong> Tab.<br />
3.2.2-1), ergeben sich bei der Bestimmung Unterschiede in den Ergebnissen bei<br />
Verwendung unterschiedlicher Quantifizierungsmassen. Um diesen Fehler möglichst<br />
klein zu halten, wurden mehr als 15 Massen, die zusammen etwa 80% der<br />
Gesamtfläche des DIPN-Signals im SCAN-Modus ausmachen, zur Quantifizierung<br />
herangezogen. Eine Quantifizierung anhand der im SCAN-Modus erhaltenen<br />
Gesamtionenstrom-Chromatogramme wurde nicht durchgeführt, um zu vermeiden,<br />
daß durch Interferenzen koeluierender Verbindungen das Ergebnis verfälscht wird.<br />
3.2.2.3 <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Proben aus dem Handel<br />
Verschiedene Proben wurden mit den SFE-Methoden sowie naßchemisch untersucht<br />
<strong>und</strong> die dabei erzielten Ergebnisse verglichen. Bei diesen Proben handelte es sich<br />
um Papierverpackungen, die dazu verwendet werden offene Lebensmittel vor der<br />
Abgabe an den Verbraucher zu verpacken. Diese Verpackungen waren z.T. mit einer<br />
Kunststoffolie beschichtet. In Tab. 3.2.2-2 werden die Ergebnisse dieser<br />
Untersuchungen zusammengestellt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
146
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.2.2-2: Zusammenstellung der Ergebnisse der Untersuchung <strong>von</strong> Papieren<br />
<strong>und</strong> Kunststoffolien<br />
Ermittelte Gehalte in ppm<br />
Proben-<br />
Nr.<br />
11146<br />
11211<br />
Papierart<br />
Destillation HP- ISCO-<br />
HPLC Extraktor Extraktor<br />
GC-MSD GC-MSD<br />
Butterbrotpapier 0,24 0,73 -<br />
Packpapier für Backwaren 1,18 0,68 -<br />
147<br />
Anmerkungen<br />
11212 beschichtetes Papier zur<br />
Verpackung <strong>von</strong><br />
<strong>Lebensmitteln</strong><br />
34,2 22,0 Σ=90* *4x extrahiert<br />
11459 Papiertüte für Brot 22,9 22,1 22,4<br />
11460<br />
11883<br />
11884<br />
12170<br />
12368<br />
12591<br />
12813<br />
Papiertüte für Backwaren 1,53 - 5,2<br />
Pappschachtel für fritierte<br />
Backwaren<br />
0,22 2,8 0,85<br />
Papiertüte für Backwaren 0,40 2,0 -<br />
Butterbrotpapier 0,05 0,16 -<br />
Frühstücksbeutel 0,07 0,27 -<br />
Frühstücksbeutel<br />
aus Papier <strong>und</strong> Folie<br />
2,32 0,48/2,65 - mit Folie<br />
Karton für Torten 4,6 7,6 -<br />
13049 Einwickelpapier für Wurst mit<br />
PE-Folie beschichtet<br />
2,72 3,4/26 2,0/9,8 mit Folie<br />
13050 Einwickelpapier für Käse mit<br />
PE-Folie Beschichtet<br />
6,52 4,7/28,6 3,9/11,9 mit Folie<br />
Bei der <strong>Extraktion</strong> einiger wachshaltiger Proben mit dem Extraktor HP 7680T ist es<br />
zu Verstopfungen in der Festphasenfalle <strong>und</strong> in der Leitung, die <strong>von</strong> der Festphasenfalle<br />
zu dem Auffanggläschen führt, gekommen. Bei <strong>Extraktion</strong>en mit dem<br />
ISCO SFX 3560 traten diese Schwierigkeiten dagegen nicht auf.<br />
Bei der Interpretation der Ergebnisse aus der Tab. 3.2.2-2 ist zu beachten, daß das<br />
DIPN innerhalb verschiedener Papierschichten sehr unterschiedlich verteilt ist. Die<br />
große Streuung der Ergebnisse ist in erster Linie sicherlich auf diese Inhomogenitäten<br />
(z.B. Klebeflächen, bedruckte Flächen) zurückzuführen.<br />
Bei mehreren Papieren wurde eine Doppelextraktion durchgeführt. Bei fast allen<br />
Papieren war im Extrakt der zweiten <strong>Extraktion</strong> DIPN nur noch in Spuren vorhanden.<br />
Die 1. <strong>Extraktion</strong> scheint daher nahezu vollständig zu sein. Bei einem Papier<br />
allerdings (Nr. 11211, siehe Tab. 3.2.2-2), das einseitig mit einer glänzenden Schicht<br />
beschichtet war, war trotz mehrerer <strong>Extraktion</strong>en weiterhin DIPN nachweisbar.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.2.2-3: Ergebnisse der Mehrfachextraktion eines beschichteten Papiers<br />
Papier Nr.<br />
11211<br />
dynamische <strong>Extraktion</strong>szeit (min)<br />
5 10 15 25<br />
1. <strong>Extraktion</strong> 63 % 69 % 73 % 75 %<br />
2. <strong>Extraktion</strong> 19 % 13 % 13 % 13 %<br />
3. <strong>Extraktion</strong> 8 % 8 % 8 % 6 %<br />
4. <strong>Extraktion</strong> 6 % 6 % 6 % 6 %<br />
5. <strong>Extraktion</strong> 4 % 4 % n.d. n.d.<br />
Summe als<br />
100 % gesetzt<br />
100 % 100 % 100 % 100 %<br />
Summe 83 ppm 86 ppm 86 ppm 90 ppm<br />
Interessant ist, daß es zu einer Anreicherung <strong>von</strong> DIPN in den mit den Papieren in<br />
Kontakt stehenden Beschichtungsfolien kommt (siehe Tab. 3.2.2-2). Da mit Folien<br />
beschichtete Papiere zur Verpackung <strong>von</strong> fettreichen <strong>Lebensmitteln</strong> (z.B. Käse,<br />
Wurst) vorgesehen sind, ist dieser Bef<strong>und</strong> im Hinblick auf mögliche Migrationen für<br />
die Lebensmittelüberwachung <strong>von</strong> Bedeutung.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
148
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.2.3 PCP (Pentachlorphenol) aus Holz <strong>und</strong> Textilien<br />
3.2.3.1 Einführung<br />
Pentachlorphenol wurde in der Vergangenheit häufig wegen seiner fungiziden<br />
Eigenschaften als Holzschutzmittel eingesetzt. Daneben wurde <strong>und</strong> wird es als<br />
Konservierungsstoff in der Papier- <strong>und</strong> Zellstoffindustrie, in der Textilindustrie, zur<br />
Konservierung <strong>von</strong> Leder, bei der Herstellung <strong>von</strong> Farben, Klebern <strong>und</strong> Leimen etc.<br />
eingesetzt.<br />
Aufgr<strong>und</strong> seiner Toxizität wurde PCP nach <strong>und</strong> nach durch andere Stoffe ersetzt.<br />
Zwischenzeitlich ist seine Verwendung in vielen Bereichen verboten. In Deutschland<br />
ist es nach der Chemikalienverbots-Verordnung verboten Mittel in den Verkehr zu<br />
bringen, die PCP in einer Menge <strong>von</strong> über 0,1 % enthalten. Es sind Höchstmengen<br />
für PCP festgesetzt, deren Einhaltung im Rahmen der amtlichen Lebensmittelüberwachung<br />
zu überprüfen sind (z.B. in Leder, Holz).<br />
3.2.3.2 Bestimmung <strong>von</strong> PCP<br />
3.2.3.2.1 naßchemisches Verfahren<br />
Nach dem derzeit im CVUA Stuttgart verwendeten Verfahren wird Phentachlorphenol<br />
mit Isooctan aus dem zerkleinerten Probenmaterial (Holz, Textilien) isoliert <strong>und</strong> nach<br />
Silylierung mittels GC-MSD bestimmt.<br />
Dazu werden 5 g Probe mit 200 ml Isooctan versetzt <strong>und</strong> 2 h lang unter Rückflußkühlung<br />
auf der Heizplatte oder im Wasserbad extrahiert. Der abgekühlte Extrakt wird<br />
filtriert <strong>und</strong> auf etwa 2-5 ml eingeengt. Anschließend wird der Extrakt in einen 25 ml<br />
Meßkolben überführt, mit Interner Standard-Lösung (HCB) versetzt <strong>und</strong> mit Isooctan<br />
zur Marke aufgefüllt.<br />
Bei positiven Bef<strong>und</strong>en wird die Bestimmung wiederholt <strong>und</strong> die Kalibrierung erfolgt<br />
nach dem Standardadditionsverfahren.<br />
3.2.3.2.2 SFE-Methode<br />
3.2.3.2.2.1 Probenaufarbeitung<br />
PCP ist eine recht saure Verbindung (pKs=5,8). Die Abspaltung des Protons aus der<br />
Phenolgruppe wird durch die elektronenanziehende Wirkung der 5 Chloratome im<br />
Ring erleichtert. Daher wurden zur <strong>Extraktion</strong> des PCP saure Bedingungen<br />
eingestellt (vgl. Kap. 3.1.4.7.2).<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
149
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Abb. 3.2.3-1: Strukturformel <strong>von</strong> PCP<br />
Cl<br />
Cl<br />
Cl<br />
Cl Cl<br />
O<br />
Pentachlorphenol<br />
Je nach Größe <strong>und</strong> Dichte des Ausgangsmaterials werden 0,5 bis 2 g Probe in ein<br />
Becherglas eingewogen. Die Probenmatrix wird mit ca. 150 bis 200 µl 2%iger<br />
Schwefelsäure versetzt <strong>und</strong> mit Wasser befeuchtet. Die befeuchtete <strong>und</strong> angesäuerte<br />
Probe wird mit einem Adsorbens (Hydromatrix) vermengt <strong>und</strong> in die<br />
<strong>Extraktion</strong>shülsen überführt.<br />
3.2.3.2.2.2 <strong>Extraktion</strong> mit ISCO SFX 3560<br />
Die <strong>Extraktion</strong> wurde ausgehend <strong>von</strong> den bisherigen Erfahrungen bei folgenden<br />
Bedingungen durchgeführt:<br />
Extraktor ISCO SFX 3560<br />
• <strong>Extraktion</strong>sdruck CO2-Druck 330 bar<br />
• <strong>Extraktion</strong>stemperatur 55 °C<br />
• Restriktortemperatur 55 °C<br />
• Flußrate (Restrikor) 1,8 ml/min<br />
• Statische <strong>Extraktion</strong>szeit 2,5 min<br />
• Dynamische <strong>Extraktion</strong>szeit 25 min<br />
• Vorlage im Auffanggefäß 5 ml Aceton-Acetonitril-Gemisch (2:1)<br />
• Temperatur der Vorlage 10 °C.<br />
Der Extrakt wird im Stickstoff-Strom vorsichtig auf etwa 1 ml eingeengt.<br />
3.2.3.2.2.3 Derivatisierung mit PFB-Br<br />
Die Derivatisierung erfolgt im Vorlagegefäß. Dazu wird der eingeengte Extrakt mit<br />
200 µl 25% iger Kaliumcarbonat-Lösung (Katalysator) <strong>und</strong> 200 µl 15 %iger PFB-Br-<br />
Lösung in Acetonitril versetzt. Das verschlossene Gefäß wird 3 h im Heizblock auf 65<br />
°C erwärmt. Anschließend wird die organische Phase im Stickstoffstrom entfernt <strong>und</strong><br />
die Derivate in 1 ml Isooctan, das den Internen Standard enthält (PCB IUPAC Nr.<br />
101), aufgenommen. Noch vorhandenes Wasser wird mit Na2SO4 (wasserfrei)<br />
geb<strong>und</strong>en.<br />
Die organische Phase wird in ein GC-Vial überführt <strong>und</strong> zur GC-MSD-Bestimmung<br />
eingesetzt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
H<br />
150
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.2.3.2.3 Wiederfindungen <strong>und</strong> Untersuchung PCP-haltiger Seide<br />
Zur Ermittlung der Wiederfindungsrate wurde eine PCP-freie Probe insgesamt 3 mal<br />
mit 10 µg PCP dotiert <strong>und</strong> wie oben beschrieben aufgearbeitet. Die Wiederfindungsraten<br />
lagen zwischen 95 <strong>und</strong> 97 %.<br />
Das <strong>Extraktion</strong>sverhalten <strong>von</strong> gealterten PCP-Rückständen könnte jedoch anders sein<br />
als das <strong>von</strong> dotierten. Für weitere Untersuchungen (siehe Tab. 3.2.3-1) wurde deshalb<br />
ein Seidenpulver verwendet, das gealterte PCP-Rückstände enthielt. Diese Probe<br />
wurde im Rahmen eines Ringversuches zur Verfügung gestellt.<br />
Tab. 3.2.3-1: Untersuchungsergebnisse der PCP-haltigen Seidenprobe<br />
PCP-Gehalt (angegebener Gehalt)<br />
30 mg/kg<br />
naßchemisch ermittelter Gehalt<br />
mit der SFE-Methode ermittelter Gehalt<br />
Wiederfindung bei der SFE, Aufstockung mit 15 µg PCP<br />
3.2.3.2.4 Optimierung der <strong>Extraktion</strong><br />
5 mg/kg<br />
28 mg/kg<br />
99 %<br />
Folgende Parameter wurden variiert um zu überprüfen, ob die <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> PCP<br />
noch verbessert werden kann:<br />
- höhere Flußrate,<br />
- höhere <strong>Extraktion</strong>stemperatur,<br />
- längere statische <strong>Extraktion</strong>szeit,<br />
- höherer <strong>Extraktion</strong>sdruck,<br />
- Durchführung einer zweiten <strong>Extraktion</strong>.<br />
Die Untersuchungen wurden mit einer Holzprobe durchgeführt, bei der nach der<br />
naßchemischen Methode ein PCP-Gehalt <strong>von</strong> 5,2 mg/kg ermittelt wurde.<br />
Tab. 3.2.3-2 zeigt die bei Anwendung verschiedener <strong>Extraktion</strong>sbedingungen<br />
ermittelten PCP-Gehalte.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
151
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.2.3-2: Ermittelte PCP-Ergebnisse in einer zerkleinerten Holzprobe bei<br />
Variation der <strong>Extraktion</strong>sbedingungen<br />
<strong>Extraktion</strong>sbedingungen ermittelter PCP-Gehalt (mg/kg)<br />
1. <strong>Extraktion</strong> 2. <strong>Extraktion</strong><br />
naßchemische Methode 4,9 5,6 5,0 n.n. n.d.<br />
SFE-Methode (wie 3.2.2.3.2.2) 4,1 4,0 0,7<br />
SFE, Fluß 2,5 ml/min 4,1 0,81<br />
SFE, <strong>Extraktion</strong>stemperatur 65 °C 4,1 4,0 0,65<br />
SFE, statische <strong>Extraktion</strong>szeit 5 min 4,1 4,0 0,64<br />
SFE, <strong>Extraktion</strong>sdruck 500 bar 4,6 4,6 0,4<br />
SFE, <strong>Extraktion</strong>sdruck 660 bar 4,6 4,5<br />
0,64<br />
Wie die Ergebnisse zeigen, führt eine Erhöhung des <strong>Extraktion</strong>sdruckes <strong>von</strong> 330 auf<br />
500 bar zu einer deutlichen Erhöhung der PCP-Ausbeuten. Eine weitere Erhöhung<br />
des Druckes auf 660 bar brachte keine Vorteile mehr.<br />
Um zu überprüfen, ob die <strong>Extraktion</strong>szeit noch verkürzt werden kann, wurde ein<br />
weiterer Versuch durchgeführt, bei den die dynamische <strong>Extraktion</strong>szeit zwischen 10<br />
<strong>und</strong> 35 min variiert wurde. Tab. 3.2.3-3 zeigt die Ergebnisse dieses Versuchs.<br />
Tab. 3.2.3-3: PCP-Ergebnisse einer Holzprobe bei Variation der <strong>Extraktion</strong>szeit<br />
<strong>Extraktion</strong>sbedingungen<br />
ermittelter PCP-Gehalt (mg/kg)<br />
1. <strong>Extraktion</strong> 2. <strong>Extraktion</strong><br />
naßchemische Methode 4,9 5,6 5,0 n.n.<br />
SFE-Methode (wie 3.2.2.3.2.2) 4,1 4,0 0,7<br />
SFE*, dyn. <strong>Extraktion</strong>szeit 10 min 3,1 3,2 0,45<br />
SFE*, dyn. <strong>Extraktion</strong>szeit 15 min 3,5 3,6 0,21<br />
SFE*, dyn. <strong>Extraktion</strong>szeit 20 min 4,0 4,3 0,17<br />
SFE*, dyn. <strong>Extraktion</strong>szeit 25 min 4,6 0,15<br />
SFE*, dyn. <strong>Extraktion</strong>szeit 30 min 4,6<br />
SFE*, dyn. <strong>Extraktion</strong>szeit 35 min<br />
* <strong>Extraktion</strong>sdruck 500 bar<br />
4,6<br />
Nach diesen Untersuchungen sind die optimierten <strong>Extraktion</strong>sbedingungen:<br />
Extraktor ISCO SFX 3560<br />
• <strong>Extraktion</strong>sdruck CO2-Druck 500 bar<br />
• <strong>Extraktion</strong>stemperatur 55 °C<br />
• Restriktortemperatur 55 °C<br />
• Flußrate (Restrikor) 1,8 ml/min<br />
• Statische <strong>Extraktion</strong>szeit 2,5 min<br />
• Dynamische <strong>Extraktion</strong>szeit 25 min<br />
• Vorlage im Auffanggefäß 5 ml Aceton-Acetonitril-Gemisch (2:1)<br />
• Temperatur der Vorlage 10 °C.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
152
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.2.3.3 Untersuchung <strong>von</strong> Planproben<br />
Mit der optimierten <strong>Extraktion</strong>smethode wurden einige Planproben auf ihren Gehalt<br />
an PCP untersucht. Die Ergebnisse im Vergleich zur herkömmlichen Analysenmethode<br />
sind in Tab. 3.2.3-3 dargestellt.<br />
Tab. 3.2.3-3: PCP-Gehalte in Planproben, <strong>Extraktion</strong> mit SFE im Vergleich zum<br />
naßchemischen Verfahren<br />
Gehalt an PCP (mg/kg)<br />
Proben-Nr. SFE-Methode Mittelwert naßchemisches<br />
SFE-Methode Verfahren<br />
4191 4,6; 4,7; 4,5 4,6 4,9; 5,6; 5,0; n.n.<br />
6280 12,7; 15,3; 15,8 14,6 2,2; 0,6; 0,7; 0,8<br />
5057 0,22; 0,23 0,23 n.n.<br />
Seidenpulver 30,0; 32,2; 30,7 30,9 5,0<br />
3.2.3.4 Fazit<br />
Wie Tab. 3.2.3-3 zeigt, werden mit der SFE-<strong>Extraktion</strong> zum Teil erheblich höhere<br />
Gehalte an PCP festgestellt als nach einer <strong>Extraktion</strong> mit Isooctan. Ausschlaggebend<br />
für diese deutlich verbesserte <strong>Extraktion</strong> dürften sein:<br />
• Zurückdrängung der Dissoziation des PCP durch Einstellung des pH-Wertes <strong>und</strong><br />
• die Zugabe <strong>von</strong> Wasser als Modifier bei der SFE-<strong>Extraktion</strong>, wodurch<br />
Wechselwirkungen zwischen dem PCP <strong>und</strong> Bestandteilen der Holzmatrix reduziert<br />
werden.<br />
Vorteile der SFE-<strong>Extraktion</strong> sind der geringere Lösungsmittelverbrauch, der geringere<br />
Zeit- <strong>und</strong> Arbeitsaufwand <strong>und</strong> die damit verb<strong>und</strong>enen geringeren Kosten [116].<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
153
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.2.4 <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Antioxidantien aus Kunststoff<br />
3.2.4.1 Einführung<br />
Die einzelnen Kunststoffe weisen unterschiedlich günstige physikalische <strong>und</strong><br />
chemische Eigenschaften auf. Sie haben in der Regel für sich allein nicht die<br />
hinsichtlich Verarbeitung, Gebrauch <strong>und</strong> Stabilität benötigten Eigenschaften, sondern<br />
sind oft spröde, lichtempfindlich, wärmeunbeständig, hydrolyseanfällig, gas- oder<br />
wasserdampfdurchlässig. Durch Zugabe weiterer Stoffe, sog. Additiven <strong>und</strong><br />
Verarbeitungshilfsstoffen, werden die gewünschten eigenschaften eingestellt.<br />
Typische Zusatz- <strong>und</strong> Hilfsstoffe sind: Weichmacher, Stabilisatoren, Gleitmittel,<br />
Füllstoffe, Antistatika u.a..<br />
Wärme, energiereiche Lichtstrahlung (UV), Luftsauerstoff sowie Feuchtigkeit<br />
schädigen polymere Werkstoffe derart, daß ein Kettenabbau stattfindet, wodurch sich<br />
die mechanischen Eigenschaften der Kunststoffe verschlechtern. Ein Zusatz <strong>von</strong><br />
Stabilisatoren (Antioxidantien <strong>und</strong> UV-Stabilisatoren) erhöht die Lebensdauer <strong>von</strong><br />
Kunststoffen.<br />
Antioxidantien werden zum Schutz gegen thermische Alterungserscheinungen sowie<br />
gegen Oxidationen eingesetzt. Beispiele für diese Additive sind sterisch gehinderte<br />
Phenole, Thioether <strong>und</strong> Organophosphite [128].<br />
3.2.4.2 Bestimmung <strong>von</strong> Antioxidantien<br />
3.2.4.2.1 naßchemisches Verfahren<br />
Die Antioxidatien werden aus Polyolefinen isoliert <strong>und</strong> mit HPLC-DAD oder<br />
densitometrisch bestimmt.<br />
Dazu werden 5 g zerkleinertes Kunststoffmaterial mit 75 ml Toluol versetzt unter<br />
Rückflußkühlung erwärmt. Dabei löst sich das Polyolefin auf. Zur Fällung des<br />
Polymer gibt man in die noch heiße Lösung ca. 150 ml Ethanol. Die abgekühlte<br />
Lösung wird über ein Faltenfilter filtriert <strong>und</strong> der Niederschlag mit Ethanol<br />
gewaschen. Das Filtrat wird am Rotationsverdampfer auf ca. 5 ml eingeengt, dabei<br />
fällt noch etwas Polymer aus. Nach erneutem Filtrieren, Nachwaschen <strong>und</strong> Einengen<br />
wird der Extrakt mit Ethanol auf 10 ml aufgefüllt <strong>und</strong> zur HPLC oder Densitometrie<br />
eingesetzt.<br />
3.2.4.2.2 SFE-Methode<br />
3.2.4.2.2.1 Probeneinbringung in die SFE-Hülse<br />
Der zerkleinerte Kunststoff wird direkt in eine <strong>Extraktion</strong>shülse eingewogen.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
154
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.2.4.2.2.2 <strong>Extraktion</strong> mit ISCO SFX 3560<br />
Die <strong>Extraktion</strong> wurde bei folgenden Bedingungen durchgeführt:<br />
Extraktor ISCO SFX 3560<br />
• <strong>Extraktion</strong>sdruck CO2-Druck 440 bar<br />
• <strong>Extraktion</strong>stemperatur 120 °C<br />
• Restriktortemperatur 50 °C<br />
• Flußrate (Restrikor) 1,5 ml/min<br />
• Statische <strong>Extraktion</strong>szeit 5 min<br />
• Dynamische <strong>Extraktion</strong>szeit 30 min<br />
• Vorlage im Auffanggefäß 5 ml Acetonitril<br />
• Temperatur der Vorlage 10 °C.<br />
Die Bestimmung der Antioxidantien erfolgt direkt aus dem erhaltenen Extrakt mittels<br />
HPLC-DAD.<br />
3.2.4.2.3 Untersuchung <strong>von</strong> Proben mit bekannter Rezeptur<br />
Da durch Dotierung <strong>von</strong> Kunststoffen im Labor die natürlichen Verhältnisse <strong>von</strong><br />
Proben praktisch nicht simulierbar sind, machen Wiederfindungsversuche meist<br />
wenig Sinn. Zur Entwicklung <strong>und</strong> Validierung <strong>von</strong> Methoden sollte deshalb Probenmaterial<br />
zur Verfügung stehen dessen Rezeptur bekannt ist. Antioxidantien werden<br />
jedoch dazu eingesetzt, Oxidationen am Polymer zu verhindern, sie werden dabei<br />
selbst oxidiert <strong>und</strong> damit verbraucht. Dies bedeutet, daß die in der Rezeptur<br />
angegebene Menge an Antioxidantien im Endprodukt bereits nicht mehr vorhanden<br />
zu sein braucht.<br />
Zur Bewertung der SFE-Methode wurden 6 Proben mit bekanntem Gehalt an drei<br />
Antioxidantien untersucht. Die Ergebnisse werden mit denen der bisher gebräuchlichen<br />
naßchemischen Methode verglichen.<br />
3.2.4.2.3.1 untersuchte Antioxidantien<br />
In Tab. 3.2.4-1 sind die Antioxidantien aufgeführt, die in den zur Verfügung<br />
stehenden Proben mit bekannter Rezeptur verwendet wurden.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
155
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.2.4-1: untersuchte Antioxidantien<br />
Abkürzung Chemische Bezeichnung Summen-<br />
A1<br />
A2<br />
A3<br />
Tetrakis (methylen(3,5-di-tert.butyl-4-hydroxycinamat)-methan<br />
n-Octadecyl-ß-(4’-hydroxy-3,5 ditert.-butylphenyl)-propionat <br />
Tris-(2,4-di-tert.-butylphenyl)phosphit <br />
formel<br />
C73H100O1<br />
Im folgenden werden die Abkürzungen A1, A2 <strong>und</strong> A3 verwendet.<br />
3.2.4.2.3.2 Probenmaterial<br />
2<br />
156<br />
Molekular Handels-<br />
gewicht bezeichnung<br />
1168 Irganox 1010<br />
C35H56O4 530 Irganox 1076<br />
C42H63O3P 647 Irgafos 168<br />
In Tab. 3.2.5-2 sind die zur Verfügung gestandenen Proben <strong>und</strong> deren Rezepturangaben<br />
bezüglich A1, A2 <strong>und</strong> A3 aufgeführt.<br />
Tab. 3.2.4-2: untersuchtes Probenmaterial<br />
Bezeichnung Abkürzung Gehalt an Antioxidanz (mg/100g)<br />
nach Rezeptur<br />
A1 A2 A3<br />
Schale, klein Probe 1 36 - 72<br />
Schale, groß Probe 2 4,5 - 14<br />
Polybatch PAO 1490<br />
Probe 3 65 - 180<br />
Daplen Str. 150 RC Probe 4 16 18 35<br />
Attane SC 4103 Probe 5 - 63 120<br />
Amaco PP 100-GA02 Probe 6 30 - 112<br />
3.2.4.2.3.3 Untersuchungsergebnisse<br />
Die zur Verfügung gestandenen Proben 1-6 mit bekanntem Gehalt an Antioxidantien<br />
wurden mittels SFE extrahiert <strong>und</strong> z.T. auch mit der naßchemischen Methode aufgearbeitet.<br />
In der folgenden Tab. 3.2.3-3 werden die erzielten Untersuchungsergebnisse<br />
aufgeführt.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Tab. 3.2.4-3: Untersuchungsergebnisse<br />
Probe Gehalt an A1 Gehalt an A2 Gehalt an A3<br />
(mg/100g)<br />
(mg/100g)<br />
(mg/100g)<br />
SFE naßchem. SFE naßchem. SFE naßchem.<br />
Probe 1 12,7 12,4 - - 34,4 23<br />
Probe 2 1,55 - - - 5,4 -<br />
Probe 3 22,5 n.d. - n.d. 88,5 n.d.<br />
Probe 4 7,85 n.d. 6,75 n.d. 12 n.d.<br />
Probe 5 - n.d. 20,9 n.d. 59,5 n.d.<br />
Probe 6 14,8 n.d. - n.d. 58,1 n.d.<br />
Anmerkung: n.d.: nicht durchgeführt<br />
3.2.4.2.3.4 Variation der SFE-Parameter<br />
Folgende Parameter wurden variiert um zu überprüfen, ob die <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong><br />
Antioxidantien noch verbessert werden kann:<br />
- höhere Flußrate,<br />
- höhere Restriktortemperatur,<br />
- höherer <strong>Extraktion</strong>sdruck.<br />
Die restlichen Parameter der <strong>Extraktion</strong>smethode wurden gleich belassen.<br />
Die Untersuchungen wurden mit Probe Nr. 4 durchgeführt.<br />
Die folgende Tab. 3.2.3-4 zeigt die Ergebnisse bei verschiedenen <strong>Extraktion</strong>sbedingungen.<br />
Tab. 3.2.4-4: SFE-Ergebnisse bei Variation der <strong>Extraktion</strong>sbedingungen, Probe 4<br />
ermittelter Antioxidantien-Gehalt<br />
<strong>Extraktion</strong>sbedingungen<br />
(mg/100g)<br />
A1 A2<br />
SFE-Methode (wie 3.2.5.3.2.2) 15,0 8,9<br />
SFE, Fluß 2,5 ml/min 14,6 10,0<br />
SFE, Restriktortemperatur 60 °C 15,1 11,1<br />
SFE, <strong>Extraktion</strong>sdruck 550 bar<br />
18,4 11,0<br />
Die Bestimmung <strong>von</strong> A3 bereitete aufgr<strong>und</strong> <strong>von</strong> Zersetzungen Probleme. Eine<br />
Quantifizierung wurde deshalb nicht vorgenommen.<br />
Aus Tab. 3.2.4-4 wird ersichtlich daß durch Erhöhung des <strong>Extraktion</strong>sdruckes auf 550<br />
bar die <strong>Extraktion</strong>sausbeuten <strong>von</strong> A1 am deutlichsten gesteigert werden können,<br />
während A2 schon bei milderen Bedingungen gut extrahiert werden kann.<br />
3.2.4.2.4 Fazit<br />
Aus den erzielten Ergebnissen der oben beschriebenen, zur Orientierung dienenden<br />
Untersuchungen, können folgende Folgerungen gezogen werden. Die SFE ist für die<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
157
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> Antioxidantien aus Kunststoffen prinzipiell gut geeignet. Die<br />
Verwendung hoher Drucke begünstigt die <strong>Extraktion</strong>. Da mit dem Gerät der Fa. HP<br />
Drucke bis maximal 350 bar erreichbar sind, scheint der Extraktor der Fa. ISCO für<br />
diesen Aufgabenbereich geeigneter zu sein.<br />
Bezüglich <strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong> Probenzerkleinerung sind noch weitere Untersuchungen<br />
erforderlich.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
158
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
4. SCHLUßFOLGERUNGEN<br />
4.1 BEWERTUNG DER SFE ALS EXTRAKTIONSVERFAHREN<br />
Die bisherigen Untersuchungen <strong>und</strong> Ergebnisse haben gezeigt, daß die SFE ein<br />
<strong>Extraktion</strong>sverfahren ist, das für verschiedene Aufgaben im Bereich der Lebensmittelüberwachung<br />
erfolgreich eingesetzt werden kann.<br />
Pestizidrückstandsanalytik:<br />
Im Bereich der Pestizidrückstandsanalytik hat sich die SFE als eine sehr gute<br />
Alternative zu vielen gängigen naßchemischen <strong>Extraktion</strong>smethoden erwiesen.<br />
Vorteilhaft bei der SFE sind neben dem geringeren Lösungsmittelverbrauch, der<br />
geringere Arbeitsaufwand <strong>und</strong> der hohe Probendurchsatz. Dadurch sind SFE-<br />
Methoden in der Regel wesentlich kostengünstiger als entsprechende naßchemische<br />
Verfahren.<br />
Mit der hier vorgestellten SFE-Multimethode werden bei einem geringen<br />
Arbeitsaufwand Ergebnisse erzielt, die mit denen herkömmlicher Multimethoden<br />
vergleichbar sind. Vorteilhaft bei der SFE-Methode ist vor allem die Tatsache, daß<br />
die SFE-Extrakte in der Regel so rein sind, daß ein aufwendiges Clean-up entfällt.<br />
Für zahlreiche Pestizide wurden Wiederfindungsversuche durchgeführt <strong>und</strong> bei<br />
niedrigen Schwankungen gute Wiederfindungen erzielt.<br />
Physikalische begründet sind die Limitationen der SFE bei der <strong>Extraktion</strong> polarer<br />
Analyten. Hier ist die SFE nur bedingt einsetzbar. (z.B. zur <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> sauren<br />
oder basischen Verbindungen nach einer pH-Wert Einstellung). Diese Problematik<br />
stellt sich allerdings auch bei vergleichbaren naßchemischen Verfahren.<br />
Als besonders interessant hat sich die Kombination SFE-<strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong> GC/MSD-<br />
Bestimmung erwiesen. Bei bestimmten Applikationen (saure <strong>und</strong> basische Pestizide<br />
<strong>und</strong> thermolabile Verbindungen wie N-Methylcarbamate <strong>und</strong> Organozinn-Pestizide)<br />
bietet sich darüber hinaus die LC-MSD als Bestimmungsverfahren an.<br />
Bedarfsgegenständeanalytik<br />
Die durchgeführten Untersuchungen (z.B. PCP aus Holz, Di-Isopropyl-Naphthalin aus<br />
Papier, Antioxidantien aus Kunststoff) haben gezeigt, daß die SFE prinzipiell vielfältig<br />
im Bereich der Bedarfsgegenständeanalytik eingesetzt werden kann.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
159
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
4.2 BEWERTUNG DER VERWENDETEN EXTRAKTIONSGERÄTE<br />
SFE-7680T der Fa. Hewlett-Packard:<br />
Das Gerät ist vom Funktionsprinzip her variabel <strong>und</strong> bietet dem Anwender gute<br />
Möglichkeiten, <strong>Extraktion</strong>smethoden zu entwickeln <strong>und</strong> zu optimieren. Die Handhabung<br />
ist sehr einfach <strong>und</strong> komfortabel. Druck- <strong>und</strong> Temperaturbereiche scheinen<br />
ausreichend für Anwendungen in der Pestizidanalytik. Das Gerät bietet zudem einen<br />
Clean-up-Schritt, der der <strong>Extraktion</strong> nachgeschaltet ist (fraktionierte Elution aus der<br />
Festphasenfalle).<br />
Das Geräte weist jedoch auch einige Mängel auf:<br />
Bei den relativ häufig auftretenden Undichtigkeiten, wird die Sequenz abgebrochen,<br />
Kühlung der Falle <strong>und</strong> Heizung der <strong>Extraktion</strong>skammer werden dabei allerdings nicht<br />
abgeschaltet. Dadurch wird unnötig Kühl-CO2<br />
verbraucht. Die nachfolgenden Proben<br />
in der Sequenz verbleiben u.U. für längere Zeit bei Raumtemperatur <strong>und</strong> werden<br />
dadurch meist unbrauchbar. Besser wäre es, wenn nach einer gewissen Zeit die<br />
fehlerhafte, <strong>und</strong>ichte Probe übersprungen <strong>und</strong> die Sequenz fortgeführt würde.<br />
Die Kühlung ist vom Prinzip her umständlich (häufiger Wechsel der Gasflasche<br />
nötig), laut <strong>und</strong> relativ teuer.<br />
Das Volumen der <strong>Extraktion</strong>shülse ist auf 7 ml begrenzt, wodurch auch die<br />
einsetzbare Probenmenge limitiert wird. Zwar reicht die Einwaage für viele Anwendungen<br />
aus, bei einigen Anwendungen wäre jedoch eine größere Probenmenge<br />
günstiger.<br />
SFX 3560 der Fa. ISCO:<br />
Bei dem Gerät der Fa. ISCO werden die Extrakte nicht an einer Festphasenfalle<br />
aufgefangen sondern in eine Lösungsmittelvorlage eingeleitet.<br />
Vorteilhaft gegenüber dem Gerät der Fa. HP ist die Tatsache, daß bei diesem Gerät<br />
wesentlich höhere Drucke eingesetzt werden können. Höhere Drucke in Kombination<br />
mit höheren Temperaturen sind z.B. im Bereich der Bedarfsgegenständeanalytik<br />
erforderlich.<br />
Darüber hinaus bietet sich die Möglichkeit durch eine zweite Förderpumpe dem<br />
überkritischen Kohlendioxid andere Lösungsmittel in beliebigem Verhältnis<br />
zuzumischen oder auch <strong>Extraktion</strong>en mit einem herkömmlichen Lösungsmittel<br />
durchzuführen (Accelerated Solvent <strong>Extraktion</strong>).<br />
Die Kapazität der <strong>Extraktion</strong>shülsen ist mit 10 ml größer als bei dem HP-Gerät, so<br />
daß größere Probenmengen eingesetzt werden können.<br />
Bei dem Gerät der Fa. ISCO traten insgesamt weniger Undichtigkeiten auf als beim<br />
Gerät der Fa. HP. Dies ist darauf zurückzuführen, daß die <strong>Extraktion</strong>shülsen sich<br />
während der <strong>Extraktion</strong> in einer unter Druck stehenden <strong>Extraktion</strong>skammer befinden<br />
(Druckausgleich). Dafür sind mehrmals Probleme mechanischer Art aufgetreten, die<br />
jedoch problemlos repariert werden konnten.<br />
Nachteilig bei diesem Gerät ist, daß Unregelmäßigkeiten im Fluß zu Verlusten <strong>von</strong><br />
Analyten in der Falle durch Verflüchtigung führen können. Im Vergleich zu dem<br />
Extraktor der Fa. HP ist die Bedienung etwas unbequemer.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
160
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
4.3 ALLGEMEINE ANALYTISCHE ERKENNTNISSE<br />
Matrixeffekte<br />
Bei der Optimierung der gaschromatographischen Bestimmung <strong>von</strong> Pestiziden wurde<br />
festgestellt, daß Matrixbestandteile im Probenextrakt einen großen Einfluß auf die<br />
Bestimmung verschiedener Substanzen haben. Diese Matrixbestandteile wirken bei<br />
der Gaschromatographie „schützend“ auf Pestizide, indem sie aktive Stellen im<br />
Injektionssystem besetzen. Dadurch werden Wechselwirkungen der Pestizide mit<br />
den Oberflächen des Injektionssystems verringert. Eine Bestimmung <strong>von</strong> Pestiziden<br />
unter Verwendung <strong>von</strong> Kalibrierlösungen in reinem Lösungsmittel führt für einige<br />
Verbindungen zu falschen, überhöhten Werten. Um dies zu verhindern, ist die<br />
Erstellung <strong>von</strong> „Eichungen auf Matrix“ unerläßlich.<br />
Zerkleinerung (Homogenität)<br />
Aufgr<strong>und</strong> der geringen Probenmenge die für SFE-<strong>Extraktion</strong>en eingesetzt wird, ist<br />
eine gute Homogenität der zerkleinerten Proben erforderlich. Nur so können<br />
Ergebnisse erzielt werden, die für die Gesamtprobe repräsentativ sind.<br />
Bei Obst- <strong>und</strong> Gemüseproben ist dies durch eine Zerkleinerung in gefrorenem<br />
Zustand möglich.<br />
Im Bereich der Bedarfsgegenstände ist ebenfalls eine Feinzerkleinerung der Proben<br />
erforderlich, die jedoch erfahrungsgemäß größere Schwierigkeiten bereitet.<br />
4.4 AUSBLICK<br />
Ein verstärkter Einsatz der SFE in Pestizidrückstandslaboratorien würde viele<br />
Vorteile mit sich bringen. Mit Hilfe der SFE kann nicht nur der Probendurchsatz<br />
erheblich gesteigert werden, sondern auch durch die Automatisierung der<br />
Probenaufarbeitung die Vergleichbarkeit innerhalb der Laboratorien verbessert<br />
werden.<br />
Die Entwicklung <strong>von</strong> weiteren matrixbezogenen Multimethoden wäre vorteilhaft. Hierbei<br />
werden Stoffe, die in den jeweiligen Matrizes zu erwarten sind, gezielt erfaßt <strong>und</strong> zudem<br />
ggf. Eigenheiten der betreffenden Matrizes (z.B. pH-Wert, Wasser-, Fettgehalt)<br />
berücksichtigt.<br />
Für Pestizide, die sich zwar mittels SFE gut extrahieren lassen, jedoch Probleme bei<br />
der Gaschromatographie bereiten, wäre der Einsatz der LC/MSD als Bestimmungsverfahren<br />
sehr interessant (z.B. Uronsäurederivate).<br />
Für die Erfassung <strong>von</strong> polareren Verbindungen ist der Einsatz der beschleunigten<br />
Lösungsmittelextraktion (ASE), die ebenfalls ein automatisiertes <strong>Extraktion</strong>sverfahren<br />
ist, denkbar.<br />
Im Bereich der Bedarfsgegenständeanalytik wurden zwar bisher nur wenige<br />
Applikationen entwickelt. Es ist zu erwarten, daß die SFE für viele weitere<br />
Applikationen erfolgreich eingesetzt werden könnte. In diesem Zusammenhang ist zu<br />
erwähnen, daß das Verfahren auch für die Analytik <strong>von</strong> migrierten Stoffen in<br />
<strong>Lebensmitteln</strong> geeignet ist.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
161
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Die Problematik der Zerkleinerung <strong>von</strong> verschiedenen <strong>Bedarfsgegenständen</strong> konnte,<br />
mangels apparativer Ausstattung, nicht näher verfolgt werden. Ein ausreichender<br />
Zerkleinerungsgrad der Proben ist sowohl unter dem Aspekt der Homogenität als<br />
auch der Extrahierbarkeit als günstig zu bewerten.<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
162
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
5. ABKÜRZUNGEN<br />
2,4-D : 2-(2,4-Dichlorphenoxy)-essigsäure<br />
2,4-DB : 2,4-Dichlorphenoxybuttersäure<br />
2,4-DP : 2,4-Dichlorphenoxypropionsäure<br />
2,4,5-T : 2-(2,4,5-Trichlorphenoxy)-essigsäure<br />
2,4,5-TP : 2,4,5-Trichlorphenoxypropionsäure<br />
a : Wasseraktivität<br />
w<br />
AAS : Atom-Adsorptions-Spektroskopie<br />
API : atmospheric pressure interface<br />
BBA : Biologische B<strong>und</strong>esanstalt<br />
BBU : (1-(2-Benzimidazoyl)-3-n-Butylharnstoff)<br />
BG : Bestimmungsgrenze<br />
BMG : B<strong>und</strong>esministerium für Ges<strong>und</strong>heit<br />
CH : Cyclohexan<br />
CID : collision induced dissociation<br />
CO2 : Kohlendioxid<br />
CVUA : Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt<br />
DAD : Dioden-Array-Detektor<br />
DCIP : Dichlorisopropanol<br />
DDE : 1,1-Dichlor-2,2-bis(4-chlorphenyl)ethylen<br />
DDT : 1,1,1-Trichlo-2,2-bis(4-chlorphenyl)ethan<br />
DFG : Deutsche Forschungsgemeinschaft<br />
DINP : Di-Isopropyl-Naphthalin<br />
DMF : Dimethylformamid<br />
EA : Ethylacetat<br />
EC : electron capture<br />
ECD : Elektroneneinfangdetektor<br />
EDTA : Ethylen-diamin-tetra-essigsäure<br />
EPC : electronic pressure control<br />
FP : flammenphotometrisch<br />
GC : Gaschromatographie<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
163
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
GPC : Gelpermeationschromatographie<br />
h : St<strong>und</strong>e<br />
HCB : Hexachlorbenzol<br />
HEX : Hexan<br />
HM : Höchstmenge<br />
HMZ : Halbwertszeit<br />
HP : Hewlett-Packard<br />
HPLC : high pressure liquid chromatography<br />
Hymx : Hydromatrix<br />
ICP : induktiv gekoppeltes Plasma<br />
ISTD : interner Standard<br />
IUPAC : International Union of Pure and Applied Chemistry<br />
IO : Isooctan<br />
KAS : Kaltaufgabesystem<br />
LC : liquid chromatography<br />
LMBG : Lebensmittel- <strong>und</strong> Bedarfsgegenständegesetz<br />
M : Molekulargewicht<br />
MCPA : 2-(4-Chlor-2-methylphenoxy) essigsäure<br />
MCPB : 2-(4-Chlor-2-methylphenoxy) buttersäure<br />
MCPP : 2-(4-Chlor-2-methylphenoxy) propionsäure<br />
MS : Massenspektrometrie<br />
MSD : massenselektiver Detektor<br />
m/z : Masse/Ladung<br />
n.d. : nicht durchgeführt<br />
NG : Nachweisgrenze<br />
NMC : M-Methyl-Carbamate<br />
NP : Stickstoff-Phosphor<br />
ODS : Octadecylsilan<br />
P : Druck<br />
PAK : polycyclische aromatische Kohlenwasserstoffe<br />
Pc : kritischer Druck<br />
PCB : polychlorierte Biphenyle<br />
PCP : Pentachlorphenol<br />
PE : Polyethylen<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
164
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
PFB : Pentafluorbenzyl<br />
PFB-Br : Pentafluorbenzylbromid<br />
Po/w : Verteilungskoeffizient n-Octanol/Wasser<br />
pKb : Basenkonstante<br />
ppm : parts per million<br />
pKs : Säurekonstante<br />
PVC : Polyvinylchlorid<br />
RHmV : Rückstands-Höchstmengenverordnung<br />
RP : reversed phase<br />
RT : Raumtemperatur<br />
SCAN : scanning modus, Aufzeichnung aller Massen<br />
s : Sek<strong>und</strong>e<br />
Sdp. : Siedepunkt<br />
SFC : supercritical fluid chromatography<br />
SFE : supercritical fluid extraction<br />
SIM : selected ion monitoring<br />
STB : (3-Butyl-2,4-Dioxo[1,2-a]-s-Triazinobenzimidazol)<br />
T : Temperatur<br />
t0,5 : Halbwertszeit<br />
TBME : tert.-Butyl-Metyl-Ether<br />
Tc : kritische Temperatur<br />
TCE : 2,2,2-Trichlorethanol<br />
TEPP : Tetraethylpyrophosphat<br />
TIC : Totalionenstrom-Chromatogramm, total ion chromatogram<br />
UV : Ultraviolett<br />
VO : Verordnung<br />
XSE : Accelerated Solvent Extraction<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
165
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
6. LITERATUR<br />
1. S.J. Lehotay u. K.I. Eller, Development of a Method of Analysis of 46 Pesticides<br />
in Fruits and Vegetables by Supercritical Fluid Extraction and Gas<br />
Chromatography/Ion Trap Mass Spectrometry, J. AOAC Int. 78 (1995) 821-830<br />
2. S.J. Lehotay, N. Anaronson, E. Pfeil u. M.A. Ibrahim, Development of a Sample<br />
Preparation Technic for Supercritical Fluid Extraction for Multiresidue Analysis of<br />
Pesticides in Produce, J. AOAC Int. 78 (1995) 831-840<br />
3. Deutsche Forschungsgemeinschaft , Rückstandsanalytik <strong>von</strong> Pflanzenschutzmitteln,<br />
Mitteilung VI der Senatskommission für Pflanzenschutz-, Pflanzenbehandlungs-<br />
<strong>und</strong> Vorratsschutzmittel, Methodensammlung der Arbeitsgruppe<br />
Analytik, 11. Lieferung, 1991, VCH Verlagsgesellschaft mbH, Weinheim.<br />
S 19: Gaschromatographische Bestimmung <strong>von</strong> Organochlor- <strong>und</strong> Organophosphorverbindungen<br />
sowie stickstoffhaltige <strong>und</strong> andere Pflanzenschutzmittel<br />
S 8: Gaschromatographische Bestimmung <strong>von</strong> Organohalogen-,<br />
Organophosphor- <strong>und</strong> Triazinverbindungen.<br />
S 24: Organozinn-Verbindungen<br />
261-(378)-(370)-1: Benomyl, Carbendazim, Thiophanat-Methyl<br />
4. P. Mock u. E. Scherbaum, <strong>Extraktion</strong> fungizider Pflanzenbehandlungsmittel aus<br />
Früchten mit überkritischem CO2, Dtsch. Lebensm.-R<strong>und</strong>sch. 91 (1995) 385-390<br />
5. J. Poustka, K. Holadova u. J. Haislova, Application of supercritical fluid extraktion<br />
for analysis of organophosphates in cereals, Int. J. Environ. Anal. Chem. 60<br />
(1995) 139-144<br />
6. T. Greibrokk, Applications of supercitical fluid extraction in multidimensional<br />
systems, J. Chromatogr. 703 (1995) 523-535<br />
7. M.E. McNally, Advances in environmental SFE, Anal. Chem. 67 (1995) 308A-<br />
315A<br />
8. A. Valverde-Garcia, A.R. Fernandez-Alba, A. Aguera u. M. Conteras, Extraction<br />
of methamidophos residues from vegetables with supercritical fluid carbon<br />
dioxide, J. AOAC Int. 78 (1995) 867-873<br />
9. N. Aharonson, S.J. Lehotay, M.A. Ibrahim, Supercritical fluid extraction and<br />
HPLC analysis of benzimidazole fungicides in potato, apple and banana, J. Agric.<br />
Food Chem. 42 (1994) 2817-2823<br />
10. F.M Lancas, M.S. Galhiane u. M.A. Barbirato, Supercritical fluid extraction of<br />
oxadixyl from food crops, Chromatographia 39 (1994) 11-14<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
166
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
11. A.L. Howard, C. Braue u. L.T. Taylor, Feasibility of thiocarbamate pesticide<br />
analysis in apples by supercritical fluid extraction and high performance liquid<br />
chromatography, J. Chromatogr. Sci. 31 (1993) 323-329<br />
12. M.L Hopper, J.W. King, Enhanced supercritical fluid carbon dioxide extraction of<br />
pesticides from foods using pelletized diatomaceaous earth, JAOAC 74 (1991)<br />
661-666<br />
13. E.A. Rochette, J.B. Harsh u. H.H. Hill, Supercritical fluid extraction from soils<br />
using derivatization and ionic modifiers, Talanta 40 (1993) 147-155<br />
14. S.B Hawthorne, D.J. Miller, D.E. Nivens u. D.C. White, Supercritical fluid<br />
extraction of polar analytes using in situ chemical derivatization, Anal. Chem. 64<br />
(1992) 405-412<br />
15. P. Sandra, A. Kot, A. Medvedovici u. F. David, Selected applications of<br />
supercritical fluids in coupled systems, J. Chromatogr. 703 (1995) 467-478<br />
16. S. Schütz, B. Weissbecker, C. Wittig u. H.E. Hummel, Ultraso<strong>und</strong> enhanced<br />
derivatization and GC-MS analysis of clopyralid, Meded. 59 (1994) 1415-1422<br />
17. V. Seidel u. W. Lindner, Evaluation of a supercritical fluid extraction method for<br />
hexachlorbenzene from artificially spiked and naturally contaminated oil seeds<br />
and soil samples, Int. J. Environ. Anal. Chem. 59 (1995) 1-13<br />
18. H. Beck, Mitteilungen aus dem B<strong>und</strong>esges<strong>und</strong>heitsamt, Untersuchungsmethoden<br />
zur Bestimmung der Rückstände <strong>von</strong> Chlorkohlenwasserstoff-Pestiziden in <strong>und</strong><br />
auf Lebensmittel tierischer Herkunft, B<strong>und</strong>esges<strong>und</strong>h. Bl. 1974 S. 269ff.<br />
19. M. Anastassiades u. E. Scherbaum, Bestimmung <strong>von</strong> Phenoxyalkansäure-<br />
Herbiziden in pflanzlichen Proben nach Derivatisierung mit Trichlorethanol,<br />
Dtsch. Lebensm. R<strong>und</strong>sch. 92 (1996) 175-183<br />
20. E.K. Stahl, W. Quirin u. D. Gerard, Verdichtete Gase zur <strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong><br />
Raffination, Springer Verlag Berlin 1987<br />
21. M.D. Luque de Castro, M. Valvárcel u. M.T. Tena, Analytical Supercritical Fluid<br />
Extraction, Springer Verlag Berlin, 1994<br />
22. S.B. Hawthorne, Analytical-scale supercritical fluid extraction, Anal. Chem. 62<br />
(1990) 633ff.<br />
23. H. Schaller, Online-Kopplung <strong>von</strong> SFE-GC, LaborPraxis, S. 824, 1991<br />
24. J.E. France, J.W. King.u. J.M. Snyder, Supercritical Fluid-Based Cleanup<br />
Technique for the Separation of Organochlorine Pesticides from Fats, J. Agric.<br />
Food Chem. 39 (1991) 1871-74<br />
25. K. Wuchner u. R. Grob, Application of supercritical fluid extraction in water<br />
analysis, Analusis, 23 (5) (1995) 227-29<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
167
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
26. D.A. Cassada, R.F. Spalting, Z. Cai <strong>und</strong> M.L. Gross, Determination of Atrazine,<br />
deethylatrazine and deisopropylatrazine in water and sediment by isotope dilution<br />
gas chromatography-mass spectrometry, Anal. Chim. Acta 287 (1-2) (1994) 7-15<br />
27. M. de Kroon, G. Ubbels <strong>und</strong> H. A. van der Schee, Matrix Effects on Peak<br />
Response, Posterbeitrag beim 1st European Pesticide Residue Workshop,<br />
Alkmaar, Netherlands, 1996<br />
28. A. Andersson, H. Pålsheden <strong>und</strong> B Arén, Matrix Effekts in Pesticide Multiresidue<br />
Analysis, Posterbeitrag beim 1st European Pesticide Residue Workshop,<br />
Alkmaar, Netherlands, 1996<br />
29. M. Anastassiades <strong>und</strong> E. Scherbaum, Bestimmung <strong>von</strong> Rückständen an<br />
Pflanzenschutz- <strong>und</strong> Oberflächenbehandlungsmitteln in Zitrusfrüchten<br />
einschließlich Imazalil, Fenpropimorph, Carbendazim/Benomyl/Thiophanat-<br />
Methyl <strong>und</strong> 2,4-D mittels GC-MSD<br />
Teil 1, Deutsch. Lebensm. R<strong>und</strong>sch. 93 (1997) 316-327<br />
Teil 2, Deutsch. Lebensm. R<strong>und</strong>sch 93 (1997) 393 396<br />
Teil 3, Deutsch. Lebensm. R<strong>und</strong>sch 94 (1998) 45-49<br />
30. David J. Dezman, Steven Nagy, G. Eldon Brown, Postharvest fungal decay<br />
control chemicals: Treatments and residues in citrus fruits , Residue Rewiews,<br />
Vol. 97, (1986), Springer Verlag New York<br />
31. Bernd Luckas, Methodik zur gemeinsamen Erfassung fungicider<br />
Pflanzenbehandlungsmittel auf Citrusfrüchten <strong>und</strong> Obst mit Hilfe der HPLC <strong>und</strong><br />
selektiver Detektoren, Z. Lebensm. Unters. Forsch., 184, (1987) 195-197<br />
32. L. Roth <strong>und</strong> U. Weller, Gefährliche chemische Reaktionen, Ecomed Verlag,<br />
Landsberg/Lech, Stand Dezember 1996<br />
33. M. Riederer <strong>und</strong> J. Schönherr, Covalent Binding of Chlorphenoxyacetic Acids to<br />
Plant Cuticles, Archives of Environmental Contamination and Toxicology, Vol. 15<br />
(1986) 97-105 Springer Verlag New York<br />
34. C.H. Beck, Lebensmittelrecht - Textsammlung, Stand: 1. September 1997, Verlag<br />
Franz Vahlen GmbH<br />
Pflanzenschutzgesetz, Rückstands-Höchstmengen VO, Chemikalien-Verbots-VO<br />
35. K. Schäfer, W. Baumann, Supercritical fluid extraction of pesticides,<br />
1. Extraction properties of selected pesticides in CO2, Fresenius Z. Anal. Chem.<br />
332 (1989) 884<br />
36. L.T. Taylor,<br />
Anal. Chem., 67 (1995) 364A Diffusivity,<br />
37. S. Bøwadt, S.B.Hawthorne, Supercritical fluid extraction in environmental<br />
analysis, J. Chromatogr. A, 703 (1995) 549<br />
38. V. Camel, A. Tamputé, M. Caude,<br />
J. Chromatogr. 642 (1993) 263<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
168
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
39. T.L. Chester, J.D. Pinkston, D.E. Raynie, Supercritical Fluid Chromatography<br />
and Extraction, Anal. Chem. 66 (1994) 106R-130R<br />
40. J.J. Jiménez, J. Atienza, J.L. Bernal, L. Toribio, Determination of Carbendazime<br />
in Lettuce Samples by SFE-HPLC; Chromatographia 38 (1994) 395<br />
8. A. Valverde-Garcia, A.R. Fernández-Alba, A. Aguera, M. Contreras,<br />
Journal of AOAC 78 (1995) 867<br />
42. R. Stefani, M. Buzzi, R. Grazzi,<br />
1st European Pesticide Residue Workshop, Alkmaar NL, June 10-12, 1996,<br />
Abstract P-033<br />
43. L.J. Mulcahey, J.L. Hedrick, L.T. Tayler, Collection Efficiency of Various Solid-<br />
Phase Traps for Off-Line Supercritical Fluid Extraction, Anal. Chem. 63 (1991)<br />
2225-2232<br />
44. C.V. Lopez-Avila, N.S. Dodhiwala, W.F. Beckert,<br />
J. Agric. Food Chem. 41 (1993) 2038<br />
45. S.N. Chatfield, M.Y. Croft, T. Dang, E.J. Murby, G.Y.F. Yu, R.J. Wells;<br />
Simultaneous Extraction and Methylation of Acidic Analytes Adsorbed onto Ion<br />
Exchange Resins Using Supercritical Carbon Dioxide Containing Methyl Iodide,<br />
Anal. Chem. 67 (1995) 945<br />
47. E. Papadopoulou-Mourkidou,<br />
J. Assoc. Off. Chem. 74 (1991) 745<br />
48. A. Sannino, Investigation into contamination of processed fruit products by<br />
carbendazim, methyl thiophanate and thiabendazole, Food Chem. 52 (1995) 57<br />
49. R.J. Bushway, H.L. Hurst, J. Kugabalasooriar, L.B. Perkins, Determination of<br />
carbendazim in blueberries by reversed-phase high-performance liquid<br />
chromatography, J. Chromatogr. 587 (1991) 321<br />
50. C.W. Coggins Jr., H.Z. Hield<br />
The Citrus Industry Vol. II, University of California, Devision of Agriculture<br />
Sciences, 1968<br />
51. P. Cano, J.L. de la Plaza, L. Munoz-Delgado, Determination and Persistance of<br />
Several Fungicides in Postharvest-Treated Apples during Their Cold Storage, J.<br />
Agric. Food Chem. 35, (1987) 144-147<br />
52. N. Aharonson, A. Ben-Aziz, Determination of residues of benomyl, ITS<br />
Hydrolysis Product, and Thiabendazole in Various Crops, Journal of AOAC 56<br />
(1973)<br />
53. J.J. Sims, H. Mee, D.C. Erwin, Methyl 2-benzimidazolecarbamate, a Fungitoxic<br />
Compo<strong>und</strong> Isolated from Cotton Plants Treated with Methyl-1-(butylcarbamoyl)-<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
169
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
2-benzimidazolecarbamate (Benomyl)<br />
Phytopathology 59 (1969) 1775<br />
54. J.J. Kirkland, Method for High-speed Chromatographic Analysis of Benomyl<br />
and/or Metabolite Residues in Cow Milk, Urine, Feces, and Tissues, J. Agr.<br />
Food Chem. 21 (1973) 171<br />
55. D.M. Gilvydis, S.M. Walters, Ion-Pairing Chromatographic Determination of<br />
Benzimidazole Fungicides in Foods, J. of AOAC 73 (1990) 753<br />
56. H.Suzuki, Y. Tonogai, Y. Ito, M. Inaida, Rapid and Systematic Determination of<br />
Thiophanate Methyl (TPM) Benomyl and MBC (Methyl Benzimidazolecarbamate)<br />
by a Combined Method of Alumina Column Clean-up and UV<br />
Spectrophotometry, Biol. Chem., 46 (2) (1982), 549<br />
57. W. Gilsbach u. H.-P. Thier, Beiträge zur Rückstandsanalyse <strong>von</strong><br />
Chlorphenoxycarbonsäure-Herbiziden in Weizenmehl, Z. Lebensm. Unters.<br />
Forsch. 175 (1982). 327<br />
58. W. Specht, M. Tilkes, Gaschromatographische Bestimmung <strong>von</strong> Rückständen<br />
an Pflanzenbehandlungsmitteln nach Clean-up über Gel-Chromatographie <strong>und</strong><br />
Mini-Kieselgel-Säulen-Chromatographie, 4. Mitteilung, Fresenius Z. Anal.<br />
Chem. 307 (1981) 257<br />
59. L.C. Erickson, B.L. Brannaman, C.W. Coggins Jr, Residues in stored lemons<br />
treated with various formulations of 2,4-D, J. Agr. Food Chem. 11 (1963) 437<br />
60. L.C. Erickson, H.Z. Hield, Determination of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid in<br />
citrus fruits, J. Agr. Food Chem. 10 (1962) 204<br />
61. D.J. Austin, G.G. Briggs, A New Extraction-Method for Benomyl Residues in<br />
Soil and its Application in Movement and Persistence Studies, Pestic. Sci. 7<br />
(1976) 201<br />
62. T.M. Fahmy, M.E. Paulaitis, D.M. Johnson, M.E. McNally, Modifier Effects in the<br />
Supercritical Fluid Extraction of Solutes from Clay, Soil, and Plant Materials,<br />
Anal. Chem. 65 (1993) 1462-1469<br />
63. J.L. Snyder, R.L. Grob, M.E. McNally, T.S. Oostdyk, Comparison of<br />
Supercritical Fluid Extraction with Classical Sonication and Soxhlet Extraction<br />
for Selected Pestcides, J. Chromatogr. Sci. 31 (1993) 183<br />
64. M. Chiba, F. Doornbos, Instability of benomyl in various conditions, Bull.<br />
Environ. Contam. Toxicol. 11 (1974) 273,<br />
65. M. Chiba, E.A. Cherniak, Kinetic Study of Reversible Conversion of Methyl-1-<br />
Butylcarbamoyl-2-benzimidazolecarbamate (Benomyl) to Methyl-2-<br />
Benzimidazolecarbamate (MBC) and n-Butyl Isocyanate (BIC) in Organic<br />
Solvents<br />
J. Agric. Food Chem. 26 (1978) 573<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
170
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
66. R.P. Singh I.D. Brindle, D.C. Hall, M. Chiba, Kinetic Study of the Decomposition<br />
of Methyl-(1-(Butylcarbamoyl-1H-benzimidazol-2yl)-carbamate (Benomyl) to<br />
Methyl-1H-Benzimidazol-2-yl-carbamate (MBC)<br />
J. Agric. Food Chem. 38 (1990) 1758<br />
67. J-P. Calmon, D.R. Sayag, Kinetics and Mechanisms of Conversion of Methyl-1-<br />
Butylcarbamoyl-2-benzimidazolecarbamate (Benomyl) to Methyl-2-<br />
Benzimidazolecarbamate (MBC), J. Agric. Food Chem. 24/2 (1976) 311<br />
68. R.P. Singh, M. Chiba, Solubility of Benomyl in Water at Different pHs and Its<br />
Conversion to Methyl 2-Benzimidazolecarbamate, 3-Butyl-2,4-dioxo [1,2-a]-striazinobenzimidazole,<br />
and 1-(2-Benzimidazoyl)-3-n-butylurea<br />
J. Agric. Food Chem. 33 (1985) 63,<br />
69. D.J. Austin, K.A. Lord, J.H. Williams, High Pressure Liquid Chromatography of<br />
Benzimidazoles, Pestic. Sci. 7 (1976) 211<br />
70. G.P. Clemons, H.D. Sisler, Formation of a fungitoxic derivative from benlate,<br />
Phytopathology 59 (1969) 705<br />
71. C.A. Peterson, L.V. Edgington, Quantitative Estimation of the Fungicide<br />
Benomyl Using a Bioautographic Technique, J. Agric. Food Chem. 17 (1969)<br />
898<br />
72. J.S. Jhooty, H. Singh,<br />
Phytochemistry 11 (1972) 2207<br />
73. L.G. Albrigo, G.E. Brown,<br />
Phytopathology 62 (1972) 1434<br />
74. F.J. Baude, J.A. Gardinger, J.C.Y. Han, Characterization of Residues on Plants<br />
Following Foliar Spray Applications of Benomyl, J. Agric. Food Chem. 21 (1973)<br />
1084<br />
75. J-P. Calmon, D.R. Sayag, Kinetics and mechanism of conversion of Methyl-1-<br />
Butylcarbamoyl-2-benzimidazolecarbamate (Benomyl) to Methyl-2-<br />
Benzimidazolecarbamate (MBC), J. Agric. Food Chem. 24 (1976a) 311-314<br />
76. E.R. White, E.A. Bose, J.M. Ogawa, B.T. Manji, W.W. Kilgore, Thermal and<br />
Base-catalysed Hydrolysis Products of Systemic Fungicide Benomyl, J. Agr.<br />
Food Chem. 21 (1973) 616<br />
77. D.A.M. Watkins, Benzimidazole Pesticides: Analysis and Transformations,<br />
Pestic. Sci. 7 (1976) 184-192<br />
78. S. Gorbach, A Review of Methods for the Residue Analysis of the Systemic<br />
Fungicides Benomyl, Carbendazim, Thiophanate Methyl and Thiabendazole,<br />
Pure & Appl. Chem. 52 (1980) 2567<br />
79. J. Fillion, R. Hindle, M. Lacroix, J. Selweyn, Multiresidue Determination of<br />
Pesticides in Fruits and Vegetables by Gas Chromatography-Mass-Selected<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
171
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
Detection and Liquid Chromatography with Fluorescence Detection<br />
J. of AOAC Int. 78 (1995) 1252<br />
80. Deutsche Forschungsgemeinschaft, Manual of Pesticide Residue Analysis<br />
Volume II, VCH, Weinheim 1992<br />
81. J. Hädrich, Zur Ableitung <strong>von</strong> Nachweisgrenze <strong>und</strong> Bestimmungsgrenze nach<br />
dem Eichkurvenverfahren, 3. Mitteilung: Die Auswahl der Dotierungsniveaus bei<br />
der Anwendung des neuen DFG-Konzeptes <strong>und</strong> ihr Einfluß auf die Höhe der<br />
Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen, Deutsch. Lebensm. R<strong>und</strong>sch. 89 (1993)<br />
286<br />
82. J. Vogelgesang, Computer Program Kalibo<br />
Brüssel<br />
83. European Commission’s Proficiency Tests on Pesticide Residues in fruit and<br />
Vegetables 1996/1997, Final Report August 1997<br />
National Food Administration, Uppsala, Sweden<br />
84. H. Beyer, W. Walter, Lehrbuch der organischen Chemie, 21. Aufl., S. 192, S.<br />
Hirzel Verlag 1988<br />
85. CD Römpp Chemie Lexikon Version 1.0, Georg Thieme Verlag 1995<br />
86. G.J.M. Van der Kerk, J.G.A. Luijten, J. Appl. Chem., 4 (1954) 314<br />
87. D. Barton, D. Ollis, Comprehensive organic chemistry, The synthesis and<br />
reactions of organic compo<strong>und</strong>s, Volume 3, Pergamon Press, 1st edition, 1979<br />
88. T.E. Stewart, R.D. Cannizzaro, Pesticide Analytical Methodology, 367<br />
89. K.A. Hassall, The Chemistry of Pesticides, Their Metabolism, Mode of Action<br />
and uses in Crop protection, S. 191, Verlag Chemie, 1982, 1. Aufl.<br />
90. Markus D. Müller, Comprehensive Trace Level Determination of Organotin<br />
Compo<strong>und</strong>s in Environmental Samples Using High-Resolution Gas<br />
Chromatography with Flame Photometric Detection, Anal. Chem. 59 (1987)<br />
617-623<br />
91. K.R.S. Ascher, S. Nissim, World Rev. Pest Contr., 3 (4) (1964) 188<br />
92. W. Perkow, H. Plos, Wirksubstanzen der Pflanzenschutz- <strong>und</strong><br />
Schädlingsbekämpfungsmittel, 3. Aufl., Paul Parey Verlag, 1996<br />
93. W. Verwaal, H.N. Kaandorp, H.A. van der Schee, Inspectorate for Health<br />
Protection Amsterdam, Hoogte Kadijk 401, 1018 BK Amsterdam, The<br />
Netherlands, Atomic Absorption Screening and Gaschromatographic<br />
Determination of Fentin Acetate in Agriculture and Horticulture Products<br />
94. J.H. Méndez, R.C. Martínez, M.E.G. López, Analytica Chimica Acta 138 (1982)<br />
47<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
172
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
95. METROHM, Application Bulletin Nr. 176/3 d<br />
96. J.A. Stäb et al., J. Chromatography 609 (1992) 195<br />
97. C. Carlierpinasseau, G. Lespes, M. Astruc, Environmental Technology, 18 (12)<br />
(1997) 1179<br />
98. H.H. van der Broek, G.B.M. Hermes, C.E. Goewie, Analyst 113 (1988) 1237<br />
99. T. Laue, A. Plagens, Namen- <strong>und</strong> Schlagwort-Reaktionen der Organischen<br />
Chemie, 2. Aufl., S. 155, Teubner-Studienbücher Chemie, 1995<br />
83. European Commission’s Proficiency Tests on Pesticide Residues in Fruits and<br />
Vegetables 1996/1997, Proficiency Test I and II, Final Report, organized by<br />
LIVSMEDELSVERKET, National Food Administration, Sweden<br />
101. M. Anastassiades, W. Schwack, Bestimmung <strong>von</strong> Carbendazim, Benomyl,<br />
Thiophanat-Methyl <strong>und</strong> 2,4-D in pflanzlichen Proben nach <strong>Extraktion</strong> mit<br />
überkritischem Kohlendioxid,<br />
Lebensmittelchemie 52 (1998) 13 <strong>und</strong> Lebensmittelchemie 52 (1998) 74<br />
102. M. Anastassiades, W. Schwack, Analysis of Carbendazim, Benomyl<br />
Thiophanate Methyl ans 2,4-D in Fruits and Vegetables after Supercritical Fluid<br />
Extraction, J. of Chromat. A 825 (1998) 45-54<br />
103. M. Anastassiades, W. Schwack, Analysis of Several N-Methyl-O-Aryl-<br />
Carbamates in Fruits and Vegetables after Supercritical Fluid Extraction (SFE),<br />
9 th IUPAC International Congress, Pesticide Chemistry, Books of Abstracts,<br />
Volume II<br />
104. M. Anastassiades, W. Schwack, Analysis of Pesticide Residues in Fruits and<br />
Vegetables by SFE and GC-MSD/LC-MSD, Tagungsband Int. SFE/SFC/XSE-<br />
Forum, Siegen, 1998<br />
105. W. Schwack, G. Kopf, Photodegradation of the Carbamate Insecticide<br />
Propoxur, Z. Lebens. Unters. Forsch. 195 (1992) 250-253<br />
106. G. Kopf, W. Schwack, Photodegradation of the Carbamate Insecticide<br />
Ethiofencarb, Pesticide Science 43 (1995) 303-309<br />
107. E.R. Holden, Gas Chromatographic Determination of Residues of<br />
Methylcarbamate Insecticides in Crops as Their 2,4-Dinitrophenyl Ether<br />
Derivatives, J. of AOAC 56 (1973) 713-717<br />
108. S. Brauckhoff, H.P. Thier, Analysenmethode für Rückstände <strong>von</strong> Methyl-<br />
Carbamat-Insectiziden in pflanzlichen <strong>Lebensmitteln</strong>, Z. Lebens. Unters.<br />
Forsch. 184 (1987) 91-95<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
173
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
109. E. Ballesteros, M. Gallego, M. Valcárcel, Automatic Gas Chromatographic<br />
Determination of N-Methyl-Carbamates in Milk with Electon Capture Detection,<br />
Anal. Chem. 65 (1993) 1773-1778<br />
110. W. Blaß, C. Pilipowski, Bestimmung <strong>von</strong> N-Methylcarbamat-Rückständen mit<br />
HPLC <strong>und</strong> on-line gekoppeltem Reaktionsdetektor in <strong>Lebensmitteln</strong> pflanzlicher<br />
Herkunft <strong>und</strong> Boden, Pflanzenschutz-Nachrichten, Bayer 45 (2) (1992) 277-301<br />
111. A. de Kok, M Hiemstra, C.P. Vreeker, Improved Cleanup Method for the<br />
Multiresidue Analysis of N-Methylcarbamates in Grains, Fruits and Vegetables<br />
by Means of HPLC with Postcolumn Reaction and Fluorescence Detection<br />
Chromatogaphia 24 (1987) 469-476<br />
112. A. de Kok, M Hiemstra, C.P. Vreeker, Optimization of the Postcolumn<br />
Hydrolysis Reaction on Solid Phases for the Routine High-Performance Liquid<br />
Chromatographic Determination of N-Methylcarbamate Pesticides in Food<br />
Products, J. of Chromat. 507 (1990) 459-472<br />
113. H.A. Moye, S.J. Scherer, P.A. St. John, Anal. Lett. 10 (1977) 1049-1058<br />
114. R.T. Krause, Liquid Chromatography Determination of N-Methylcarbamate<br />
Insecticides and Metabolites in Crops, Part I and II, J. of AOAC 68, 726-733 <strong>und</strong><br />
734-741<br />
115. C. Kolb, Bestimmung <strong>von</strong> Diiisopropylnaphthalin in <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong><br />
Verpackungen, CVUA Stuttgart 1997 (unveröffentlicht)<br />
116. C. Gentner, Bestimmung <strong>von</strong> PCP <strong>und</strong> Antioxidantien in <strong>Bedarfsgegenständen</strong><br />
nach <strong>Extraktion</strong> mit überkritischem CO2 (SFE), CVUA Stuttgart 1998,<br />
(unveröffentlicht)<br />
117. W. Baumann, Papierchemikalien, Springer Verlag, Berlin, 1994<br />
118. A. Sturaro, Food Contamination by Diisopropylnaphthalenes from Card Board<br />
Packages, Int. J. of Food Sci. and Techn. 29 (1994) 593-603<br />
119. R.D. Wauchope et al., The SCR/CES Pesticide Properties Database for<br />
Environmental Decision-Making, Reviews of Environmental Contamination and<br />
Toxicology, Volume 123, Springer Verlag<br />
120. D.S. Forsyth, D. Weber, K. Dalglish, Survey of Butyltin, Cyclohexyltin and<br />
Phenyltin Compo<strong>und</strong>s in Canadian Wines, J. of AOAC Int. 75, 1992, 964-973<br />
121. B.D. McGarvey, High-performance liquid chromatographic methods for the<br />
determination of N-methylcarbamate pesticides in water, soil, plants and air,<br />
Review, J. of Chromat. 642 (1993) 89-105<br />
122. H.-J. Stan, P. Klaffenbach, Determination of carbamate pesticides and some<br />
urea pesticides after derivatization with acetic anhydride by means of GC-MSD,<br />
Fresenius J. Anal. Chem. 339, (1991) 151-157<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
174
<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
123. H.-P. Thier, M. Frehse, Rückstandsanalytik <strong>von</strong> Pflanzenschutzmitteln, Thieme<br />
Verlag, 1986<br />
124. Auswertung des analytischen „Status quo“ bei der Überwachung <strong>von</strong><br />
Rückständen an Pflanzenschutzmitteln, BMG, Jan. 1999<br />
125. Ch. Coggins Jr., Department of Botany and Plant Sciences, University of<br />
California, Riverside, CA 92521-0124, USA, persönliche Mitteilung<br />
126. Schulungsunterlagen der Fa. HP, HP 1100 series LC/MSD<br />
127. Frau Hanns, BMG, persönliche Mitteilung<br />
128. H. Allmendinger, R. Brennecke, P. Ohs, Reduction of Sample Weights for<br />
Residues Analysis, Poster-Beitrag beim 9 th IUPAC International Congress,<br />
Pesticide Chemistry, Books of Abstracts, Volume II<br />
129. W. Frede (Hrsg.) Taschenbuch für Lebensmittelchemiker <strong>und</strong> -technologen,<br />
Band 3, Springer Verlag, 1993<br />
130. N. Aharonson, U. Kaffkaffi, Adsorption, Mobility and Persistance of<br />
Thiabendazole and Methyl-2-Benzimidazolecarbamate in Soils, J. Agr. Food<br />
Chem. 23 (1975 b) 720<br />
131. Dr. M. Garcia, Fa. Citrosol, 46721 Potries, Valencia, Spanien persönliche<br />
Mitteilung<br />
132. Ing. C. Namesny, Growpack LTDA. Juan J. Rousseau, 4159, 12000<br />
Montevideo, Uruguay, persönliche Mitteilung<br />
133. R. Wegler, Chemie der Pflanzenschutz- <strong>und</strong> Schädlingsbekämpfungsmittel,<br />
Band 1 Springer Verlag 1970<br />
134. G. Kopf, Modellreaktionen zum photochemischen Verhalten der insektiziden<br />
Carbamate Propoxur , Pirimicarb, Ethiofencarb auf Pflanzenoberflächen,<br />
Dissertation Universität Karlsruhe (TH), 1992<br />
135. L. Shen, J. Luten, H. Ropperecht, J. Bindels, H. Deelstra, Modification of an invitro<br />
method for estimating the bioavailability of zinc and calcium from foods, Z.<br />
Lebensm. Unters. -Forsch., 199 (1994) 442-445<br />
136. Wirkstoffe in Pflanzenschutz- <strong>und</strong> Schädlingsbekämpfungsmitten, Physikalischchemische<br />
<strong>und</strong> toxikologische Daten, IVA, Industrieverband Agrar e.V. 1990<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
175