manejo de insectos plagas05-10 - projeto pirada
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pellet con 500 µl <strong>de</strong> etanol al 70 %. Se eliminó cuidadosamente el etanol y se<br />
colocó los tubos boca abajo en un papel toalla, don<strong>de</strong> se <strong>de</strong>jó secar hasta que no<br />
hubiera olor a etanol. Finalmente, se resuspendió el pellet en 300 µl <strong>de</strong> buffer TE,<br />
y se almacenó a –20 ºC.<br />
Método <strong>de</strong> CTAB (Modificación <strong>de</strong>l método <strong>de</strong> Wood et al., 2003)<br />
Se extrajeron las branquias <strong>de</strong> conchas <strong>de</strong> abanico frescas, se pesó 50 mg, se<br />
homogenizó en un mortero, se agregó 300 µl <strong>de</strong> buffer CTAB (Tris HCl <strong>10</strong>0mM<br />
pH 8, NaCl 1.4 M, EDTA 20 mM, CTAB 2 %) y se disolvió. Se transfirió a un<br />
microtubo limpio y agregó 0.15 mg <strong>de</strong> proteinasa K. Se incubó a 55ºC por 2 horas.<br />
Luego se centrifugó a <strong>10</strong>,000 rpm por <strong>10</strong> minutos a temperatura ambiente (18 -<br />
20ºC). Se transfirió el sobrenadante a un microtubo y se agregó un volumen <strong>de</strong><br />
cloroformo isoamil alcohol. Luego se centrifugó como anteriormente, y se transfirió<br />
la fase superior a un microtubo. Se agregó nuevamente un volumen <strong>de</strong> cloroformo<br />
isoamil alcohol y se centrifugó como anteriormente. Se transfirió la fase<br />
superior a un microtubo y se agregó 1 volumen <strong>de</strong> ClNa 1 M. Se agregó 2 volúmenes<br />
<strong>de</strong> etanol al <strong>10</strong>0 % y se centrifugó a <strong>10</strong> 000 rpm por <strong>10</strong> minutos a temperatura<br />
ambiente. Se eliminó cuidadosamente el sobrenadante y se enjuagó el precipitado<br />
con etanol al 70 %, invirtiendo el tubo suavemente. Luego se extrajo el etanol. Se<br />
repitió el enjuague con etanol. Se <strong>de</strong>jó secar el tubo boca abajo en un papel toalla<br />
hasta que no hubiera olor a etanol. Se resuspendió cuidadosamente el precipitado<br />
en 300 µl <strong>de</strong> buffer TE, y se almacenó a -20ºC.<br />
Visualización <strong>de</strong>l ADN en geles <strong>de</strong> electroforesis (Sambrook & Russell, 2001)<br />
Se utilizó el buffer <strong>de</strong> corrida TAE (Tris 2 M, EDTA 0,1 M, pH 8,0 ajustado con<br />
ácido acético) y <strong>10</strong>0 ml <strong>de</strong> gel <strong>de</strong> agarosa al 1.5 % en buffer TAE. Se corrió el gel<br />
a <strong>10</strong>0 voltios por 45 minutos, hasta que el frente <strong>de</strong> corrida alcanzó aproximadamente<br />
8 cm. Se sumergió el gel en una solución <strong>de</strong> bromuro <strong>de</strong> etidio (0.01 %) por<br />
15 minutos. El gel se enjuagó con agua potable y se observó a través <strong>de</strong>l<br />
transiluminador ultravioleta a 302 nm.<br />
Medición <strong>de</strong> la concentración y pureza <strong>de</strong>l ADN<br />
La concentración se midió por triplicado, a través <strong>de</strong> espectrofotometría <strong>de</strong> luz<br />
ultravioleta, aplicando la siguiente fórmula:<br />
Concentración <strong>de</strong> ADN = 50 µg.mL -1 x A 260 x Factor <strong>de</strong> dilución.<br />
La pureza <strong>de</strong> las soluciones se <strong>de</strong>terminó aplicando la relación A 260 /A 280 don<strong>de</strong><br />
valores <strong>de</strong> 1,7 – 1,9 indicarían una pureza <strong>de</strong> 85 – 90 %.<br />
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