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La phospholipase D, une voie de signalisation lipidique impliquée ...

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leur organisation et leur stabilité. Nombre <strong>de</strong> ces protéines possè<strong>de</strong>nt <strong>de</strong>s sites d’interaction<br />

avec les phospholipi<strong>de</strong>s membranaires.<br />

II.1.5.3 Rôle <strong>de</strong> la PLD dans le remaniement du cytosquelette :<br />

Les PLD <strong>de</strong> mammifères jouent un rôle dans le remaniement du cytosquelette induit par<br />

différents agonistes. Plusieurs équipes ont pu établir un lien entre l’aci<strong>de</strong> phosphatidique et la<br />

polymérisation <strong>de</strong> l’actine, dans différents types cellulaires dont les fibroblastes Rat-1, Swiss<br />

3T3 et IIC9 (Ridley et al., 1992; Van <strong>de</strong>r Bend et al., 1992; Ha and Exton, 1993; Ha et al.,<br />

1994), les cellules endothéliales <strong>de</strong> l’aorte <strong>de</strong> porc (PAEC) (Cross et al., 1996), les<br />

neutrophiles (Siddiqui and English, 1997) et les monocytes (Zhou et al., 1995). Ha et Exton<br />

en 1994 ont montré que le changement morphologique <strong>de</strong>s fibroblastes IIC9 d’<strong>une</strong> forme<br />

semi-circulaire à <strong>une</strong> forme allongée peut être induit par l’α-thrombine et s’accompagne <strong>de</strong> la<br />

formation <strong>de</strong> fibres <strong>de</strong> stress. Sur ces mêmes cellules, l’ajout <strong>de</strong> PA exogène ou d’<strong>une</strong> PLD<br />

bactérienne, produit les mêmes effets que ceux obtenus par la stimulation avec l’α-thrombine<br />

alors que d’autres phospholipi<strong>de</strong>s, le PMA, le DAG, et la PLC bactérienne ne permettent pas<br />

<strong>de</strong> reproduire ces effets.<br />

Le PA produit par la PLD peut être métabolisé en LPA sous l’action d’<strong>une</strong> <strong>phospholipase</strong> A2<br />

spécifique (Thomson et Clark, 1995). Ce <strong>de</strong>rnier phospholipi<strong>de</strong> intervient dans l’organisation<br />

du cytosquelette d’actine (Moolenaar, 1995). Ha et al. (1994) ont montré que le LPA entraîne<br />

<strong>une</strong> augmentation <strong>de</strong> la polymérisation <strong>de</strong> l’actine et <strong>une</strong> hausse très rapi<strong>de</strong> <strong>de</strong>s taux <strong>de</strong> PA<br />

endogène due à l’activation <strong>de</strong> la PLD. Le LPA stimulerait la PLD via <strong>une</strong> protéine G sensible<br />

à la toxine pertussique. <strong>La</strong> stimulation <strong>de</strong>s récepteurs au LPA active la PLD ainsi que la<br />

formation <strong>de</strong> fibres <strong>de</strong> tension dans les cellules endothéliales <strong>de</strong> l’aorte chez le porc (Cross et<br />

al., 1996). Le même effet est observé quand on ajoute du PA exogène aux cellules. En<br />

présence <strong>de</strong> butanol-1, la PLD stimulée par le LPA catalyse <strong>une</strong> réaction <strong>de</strong><br />

transphosphatidylation qui permet la formation <strong>de</strong> phosphatidylbutanol aux dépens du PA et<br />

il en résulte <strong>une</strong> inhibition <strong>de</strong> la formation <strong>de</strong>s fibres <strong>de</strong> stress. Porcelli et al. en 2002 ont<br />

montré que la sphingosine-1-phosphate (S1P) induit la formation <strong>de</strong>s fibres <strong>de</strong> stress dans les<br />

cellules épithéliales humaines et que la PLD serait un <strong>de</strong>s composants <strong>de</strong> la <strong>voie</strong> <strong>de</strong><br />

<strong>signalisation</strong> en aval du récepteur <strong>de</strong> la S1P. Dans les cellules U937, la PLD1 est associée à<br />

<strong>une</strong> fraction insoluble à l’octylglucosi<strong>de</strong> correspondant vraisemblablement au cytosquelette :<br />

cette PLD1 est activée par RhoA et ARF (Iyer et Kusner, 1999). L’exoenzyme C3 qui inactive<br />

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