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[tel-00433556, v1] Relation entre Stress Oxydant et Homéostasie ...

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<strong>tel</strong>-<strong>00433556</strong>, version 1 - 20 Nov 2009<br />

l"oxygène qui, au niveau du complexe IV, est entièrement réduit en eau grâce à la<br />

cytochrome oxydase. Lorsque l"ADP ou les équivalents viennent à manquer, la chaîne<br />

respiratoire devient plus réduite <strong>et</strong> le flux d"électrons ralentit (état 4 de la respiration, par<br />

opposition à l'état 3, dans lequel la chaîne respiratoire est très active).<br />

La mitochondrie n"est pas une “simple machine” à synthétiser de l"ATP# ; elle connaît, en<br />

réalité, quatre grandes fonctions# intriquées mutuellement : (i) l"oxydation des coenzymes<br />

réduits ; (ii) la diminution de la concentration cellulaire en oxygène (principal facteur<br />

oxydant) ; (iii) le maintien de la force proton-motrice ; <strong>et</strong> (iv) la production d"ERO (pour<br />

revue : Leverve, 2007). Nous reviendrons sur ce dernier point plus en détails par la suite.<br />

1.4.2.2. Place du rendement de l"oxydation phosphorylante<br />

Introduction — <strong>Stress</strong> oxydant<br />

! Parce que la demande cellulaire en ATP n"est pas unie stœchiométriquement à la<br />

réoxydation de nouveaux équivalents réduits, phosphorylation <strong>et</strong> oxydation sont finement<br />

régulées de manière indépendante. Il en résulte une modulation du rapport ATP/O, avec une<br />

augmentation du rendement (efficacité) lorsque ce rapport augmente, <strong>et</strong> vice versa. Trois<br />

mécanismes physiologiques ajustent ce rapport# : (i) la stœchiométrie intrinsèque des<br />

pompes à proton, ou slipping ; (ii) la conductance de la membrane interne aux protons, ou<br />

leak ; <strong>et</strong> (iii) le site d"entrée des électrons au sein de la chaîne respiratoire (Rigoul<strong>et</strong> <strong>et</strong> al.,<br />

1998 ; Nogueira <strong>et</strong> al., 2001).<br />

! (i) Le processus de slipping siège au niveau de la cytochrome oxydase (Fig. I5A).<br />

N"affectant pas le gradient de protons, il est sans conséquence sur la synthèse d"ATP.<br />

! (ii) Contrairement au découplage contrôlé par la cytochrome oxydase, le découplage,<br />

par fuite passive de protons au travers de la membrane interne, engendre une dissipation du<br />

gradient de protons sous forme de chaleur (Fig. I5B). C<strong>et</strong>te fuite de protons est catalysée par<br />

des transporteurs de protons (protéines découplantes pour uncoupling proteins [UCP]). Elle<br />

dépend de la force proton-motrice, de la nature de la membrane mitochondriale (liée au type<br />

cellulaire) <strong>et</strong> de la quantité d"UCP activées. En dissociant l"oxydation des équivalents réduits<br />

à la synthèse d"ATP, ce type de découplage gaspille de l"énergie (elle entraîne une<br />

diminution du *+m). La découverte de la présence d"une forme singulière d"UCP, UCP1, a<br />

permis la compréhension du rôle physiologique du tissu adipeux brun (production<br />

significative de chaleur) chez certains mammifères (Ricquier, 2005), <strong>et</strong> a provoqué un intérêt<br />

grandissant pour les nouvelles protéines de c<strong>et</strong>te famille, même si leur fonction découplante<br />

mérite d'être nuancée. Aujourd"hui, on sait qu"un grand nombre de tissus comme le tissu<br />

adipeux blanc, le muscle, la rate, les macrophages, le foie (cellules de Küpffer), le pancréas,<br />

<strong>et</strong>c. expriment ces protéines (Ricquier <strong>et</strong> al., 2000 ; Bouillaud <strong>et</strong> al., 2001).<br />

! (iii) Les électrons <strong>entre</strong>nt dans la chaîne respiratoire en amont (NADH) ou en aval<br />

(FADH2) du complexe I (Fig. I6). Les électrons provenant du NADH ou du FADH2 sont<br />

transférés via trois (complexes I, III <strong>et</strong> IV) ou deux (complexes III <strong>et</strong> IV) sites de couplages<br />

séquentiels. Le FADH2 est donc moins rentable au plan énergétique, puisque la force proton-<br />

motrice résultante (pour chaque atome d"oxygène consommé) est inférieure. Les substrats<br />

cellulaires potentiellement plus riches en FADH2 qu"en NADH (les lipides par opposition aux<br />

glucides), vont donc affecter la stœchiométrie de l"oxydation phosphorylante, provoquant un<br />

découplage partiel <strong>et</strong> relatif. Ainsi, selon la nature des substrats fournis, les conséquences<br />

du découplage sont différentes. En présence d'hydrates de carbones, les conséquences d"un<br />

découplage sont une diminution du gradient de proton <strong>et</strong> une baisse des rapports ATP/ADP<br />

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