18.08.2013 Views

M - laboratoire PROTEE - Université du Sud - Toulon - Var

M - laboratoire PROTEE - Université du Sud - Toulon - Var

M - laboratoire PROTEE - Université du Sud - Toulon - Var

SHOW MORE
SHOW LESS

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.

II-4 Préculture / Culture en biofilm<br />

a) Préculture<br />

Avec une oese stérile, des bactéries prélevées <strong>du</strong> cryotube sont étalées à la surface d’une<br />

boîte de Pétri contenant <strong>du</strong> milieu gélosé Marine Agar (MA). Les boîtes sont ensuite incubées<br />

à 20°C pendant 72 h afin de permettre la croissance bactérienne. Cinq mL de milieu de<br />

culture MB liquide sont alors inoculés avec une colonie prélevée sur la boîte de Pétri. Cette<br />

étape permet de synchroniser la croissance des bactéries en culture liquide.<br />

b) Culture en erlenmeyer<br />

Les bactéries doivent être en phase post-exponentielle ou stationnaire de croissance pour être<br />

en mesure de pro<strong>du</strong>ire un biofilm de manière optimale. Ceci a été préalablement mis au point<br />

au <strong>laboratoire</strong> en milieu VNSS. Les DO des précultures précédentes sont donc mesurées de<br />

façon à obtenir une DO de 0,1 dans un volume final de 50 mL de VNSS. Les cultures sont<br />

incubées à 20°C sous agitation (120 rpm) jusqu’à leur phase post-exponentielle respective.<br />

c) Culture en biofilm<br />

Pour chaque souche, à partir des cultures en erlenmeyer dont les bactéries sont arrivées en<br />

phase stationnaire (délai connu d’après les courbes de croissance réalisées préalablement),<br />

100 boîtes de Pétri (en polystyrène) sont ensemencées à une DO600nm de 0,1 dans 10 mL de<br />

milieu liquide MB. Les boîtes de Pétri sont incubées 72 heures à 20°C sans agitation, afin de<br />

laisser le temps aux bactéries d’adhérer et de former un biofilm. 10 mL de milieu MB sont<br />

ajoutés après 48 h d’incubation.<br />

II-5 Extraction des substances extrapolymériques.<br />

Quatre étapes ont été mises au point pour extraire les EPS des biofilms formés par les<br />

bactéries étudiées :<br />

- récupération <strong>du</strong> milieu de culture contenant les bactéries non adhérées et les substances<br />

relarguées au cours de la croissance, et centrifugation à 4000g pour séparer le culot CT1<br />

(bactéries libres) <strong>du</strong> surnageant SN1. Celui-ci est filtré sur 0,2 µm et dialysé (seuil de coupure<br />

3500 Da). Dans SN1 se trouvent les EPS dits solubles, relargués.<br />

- 5 mL de tampon PBS (Phosphate Buffer Saline) sont ensuite ajoutés dans les boîtes de Pétri<br />

et le fond est gratté afin de décrocher le biofilm.<br />

- 1 traitement est appliqué au biofilm récupéré afin d’extraire les composés de la matrice<br />

extracellulaire sans lyser les cellules (centrifugation à 4000g et filtration <strong>du</strong> surnageant sur 0,2<br />

µm pour obtenir un CT2 correspondant aux bactéries <strong>du</strong> biofilm dans leur matrice<br />

exopolymérique (non extraite à ce stade) et un SN2 correspondant aux EPS dits solubles<br />

faiblement liés (décrochés par la centrifugation à faible vitesse).<br />

- puis traitement <strong>du</strong> biofilm bactérien (CT2) avec une résine échangeuse de cations DOWEX<br />

(forme Na + ) suivi d’étapes de centrifugations à 12000 puis 15000g. La 1 ère est destinée à<br />

décrocher les EPS de la matrice dont les interactions ioniques ont été rompues <strong>du</strong> fait de<br />

17

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!