M - laboratoire PROTEE - Université du Sud - Toulon - Var
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II-4 Préculture / Culture en biofilm<br />
a) Préculture<br />
Avec une oese stérile, des bactéries prélevées <strong>du</strong> cryotube sont étalées à la surface d’une<br />
boîte de Pétri contenant <strong>du</strong> milieu gélosé Marine Agar (MA). Les boîtes sont ensuite incubées<br />
à 20°C pendant 72 h afin de permettre la croissance bactérienne. Cinq mL de milieu de<br />
culture MB liquide sont alors inoculés avec une colonie prélevée sur la boîte de Pétri. Cette<br />
étape permet de synchroniser la croissance des bactéries en culture liquide.<br />
b) Culture en erlenmeyer<br />
Les bactéries doivent être en phase post-exponentielle ou stationnaire de croissance pour être<br />
en mesure de pro<strong>du</strong>ire un biofilm de manière optimale. Ceci a été préalablement mis au point<br />
au <strong>laboratoire</strong> en milieu VNSS. Les DO des précultures précédentes sont donc mesurées de<br />
façon à obtenir une DO de 0,1 dans un volume final de 50 mL de VNSS. Les cultures sont<br />
incubées à 20°C sous agitation (120 rpm) jusqu’à leur phase post-exponentielle respective.<br />
c) Culture en biofilm<br />
Pour chaque souche, à partir des cultures en erlenmeyer dont les bactéries sont arrivées en<br />
phase stationnaire (délai connu d’après les courbes de croissance réalisées préalablement),<br />
100 boîtes de Pétri (en polystyrène) sont ensemencées à une DO600nm de 0,1 dans 10 mL de<br />
milieu liquide MB. Les boîtes de Pétri sont incubées 72 heures à 20°C sans agitation, afin de<br />
laisser le temps aux bactéries d’adhérer et de former un biofilm. 10 mL de milieu MB sont<br />
ajoutés après 48 h d’incubation.<br />
II-5 Extraction des substances extrapolymériques.<br />
Quatre étapes ont été mises au point pour extraire les EPS des biofilms formés par les<br />
bactéries étudiées :<br />
- récupération <strong>du</strong> milieu de culture contenant les bactéries non adhérées et les substances<br />
relarguées au cours de la croissance, et centrifugation à 4000g pour séparer le culot CT1<br />
(bactéries libres) <strong>du</strong> surnageant SN1. Celui-ci est filtré sur 0,2 µm et dialysé (seuil de coupure<br />
3500 Da). Dans SN1 se trouvent les EPS dits solubles, relargués.<br />
- 5 mL de tampon PBS (Phosphate Buffer Saline) sont ensuite ajoutés dans les boîtes de Pétri<br />
et le fond est gratté afin de décrocher le biofilm.<br />
- 1 traitement est appliqué au biofilm récupéré afin d’extraire les composés de la matrice<br />
extracellulaire sans lyser les cellules (centrifugation à 4000g et filtration <strong>du</strong> surnageant sur 0,2<br />
µm pour obtenir un CT2 correspondant aux bactéries <strong>du</strong> biofilm dans leur matrice<br />
exopolymérique (non extraite à ce stade) et un SN2 correspondant aux EPS dits solubles<br />
faiblement liés (décrochés par la centrifugation à faible vitesse).<br />
- puis traitement <strong>du</strong> biofilm bactérien (CT2) avec une résine échangeuse de cations DOWEX<br />
(forme Na + ) suivi d’étapes de centrifugations à 12000 puis 15000g. La 1 ère est destinée à<br />
décrocher les EPS de la matrice dont les interactions ioniques ont été rompues <strong>du</strong> fait de<br />
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