500nm - TOBIAS-lib - Universität Tübingen
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2.2.11 Immunhistologie<br />
MATERIAL UND METHODEN<br />
Nach Entparaffinisierung der aus einer Mäuseaorta gewonnen Gefäßschnitte<br />
wurden diese in PBS gewaschen und dreimal fünf Minuten in Citratpuffer<br />
gekocht. Nach einem weiteren Waschschritt mit PBS wurden die Schnitte 15<br />
min in 3%igem Wasserstoffperoxid inkubiert, bevor diese drei mal zwei Minuten<br />
in 0,05%igem Tween-PBS (Tween 20) und anschließend in 15%iges<br />
Kaninchenserum (bei Markierung von EMMPRIN) bzw. 15%iges Eselserum<br />
(bei Markierung von Cyclophilin A) eingelegt wurden.<br />
Nach Abkippen des Überstandes wurden die Gefäßschnitte mit den<br />
entsprechenden Antikörpern gegen CD147 (1 mg/ml; 1:30 in 1% BSA) oder<br />
Cyclophilin A (0,5 mg/ml; 1:100 in 1% BSA) bzw. der IgG1-Kontrolle oder PBS<br />
eine Stunde bei RT inkubiert. Im Anschluss wurden die Schnitte zunächst für<br />
fünf mal fünf Minuten mit 0,05%igemTween-PBS und anschließend für weitere<br />
30 min mit dem entsprechenden biotinylisierten Zweitantikörper inkubiert.<br />
Nachdem die Schnitte erneut fünf mal fünf Minuten in 0,05%iges Tween-PBS<br />
eingelegt worden waren, wurde für 30 min der StreptABComplex/HRP<br />
zugegeben. Vor und nach dem folgenden fünf bis zehn minütigen Bad in DAB-<br />
Lösung wurden die Gefäßschnitte wieder fünfmal fünf Minuten mit 0,05%igem<br />
Tween-PBS inkubiert. Es folgte ein zweiminütiges Gegenfärben mit<br />
Hämalaunlösung, sowie das „Bläuen“ in lauwarmem Leitungswasser für 15 min.<br />
2.2.12 Statistische Analyse<br />
Die gewonnen Daten wurden mittels Student t-Test oder Varianzanalyse auf<br />
ihre statistische Aussagekraft hin untersucht. Angegeben sind die Mittelwerte<br />
mit Standardabweichung. P