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500nm - TOBIAS-lib - Universität Tübingen

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2.2.11 Immunhistologie<br />

MATERIAL UND METHODEN<br />

Nach Entparaffinisierung der aus einer Mäuseaorta gewonnen Gefäßschnitte<br />

wurden diese in PBS gewaschen und dreimal fünf Minuten in Citratpuffer<br />

gekocht. Nach einem weiteren Waschschritt mit PBS wurden die Schnitte 15<br />

min in 3%igem Wasserstoffperoxid inkubiert, bevor diese drei mal zwei Minuten<br />

in 0,05%igem Tween-PBS (Tween 20) und anschließend in 15%iges<br />

Kaninchenserum (bei Markierung von EMMPRIN) bzw. 15%iges Eselserum<br />

(bei Markierung von Cyclophilin A) eingelegt wurden.<br />

Nach Abkippen des Überstandes wurden die Gefäßschnitte mit den<br />

entsprechenden Antikörpern gegen CD147 (1 mg/ml; 1:30 in 1% BSA) oder<br />

Cyclophilin A (0,5 mg/ml; 1:100 in 1% BSA) bzw. der IgG1-Kontrolle oder PBS<br />

eine Stunde bei RT inkubiert. Im Anschluss wurden die Schnitte zunächst für<br />

fünf mal fünf Minuten mit 0,05%igemTween-PBS und anschließend für weitere<br />

30 min mit dem entsprechenden biotinylisierten Zweitantikörper inkubiert.<br />

Nachdem die Schnitte erneut fünf mal fünf Minuten in 0,05%iges Tween-PBS<br />

eingelegt worden waren, wurde für 30 min der StreptABComplex/HRP<br />

zugegeben. Vor und nach dem folgenden fünf bis zehn minütigen Bad in DAB-<br />

Lösung wurden die Gefäßschnitte wieder fünfmal fünf Minuten mit 0,05%igem<br />

Tween-PBS inkubiert. Es folgte ein zweiminütiges Gegenfärben mit<br />

Hämalaunlösung, sowie das „Bläuen“ in lauwarmem Leitungswasser für 15 min.<br />

2.2.12 Statistische Analyse<br />

Die gewonnen Daten wurden mittels Student t-Test oder Varianzanalyse auf<br />

ihre statistische Aussagekraft hin untersucht. Angegeben sind die Mittelwerte<br />

mit Standardabweichung. P

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