ASTERICS-Software-Handbuch (Version 3.3.1)

Software-Handbuch ASTERICS, Version 3.3, einschließlich PERLODES 1 

ASTERICS 

- einschließlich Perlodes - 

(deutsches Bewertungssystem auf Grundlage des Makrozoobenthos) 

Version 3.3.1 

herausgegeben im Februar 2012 

Software-Handbuch für die deutsche Version


Inhaltsverzeichnis 

Entwicklung 

Beschreibung der Erweiterungen (Versionen 3.1 und 3.2) 

Installation – Systemvoraussetzungen – Support 

1. Einführung ........................................................................................................... 8 

1.1 Anmerkungen zur Anwendung der Software in Deutschland .......................... 8 

1.2 Besammlung ..................................................................................................... 13 

2. Verwendung der Software ASTERICS ............................................................. 14 

2.1 Startfenster ........................................................................................................ 14 

2.2 Hauptfenster ...................................................................................................... 14 

2.2.1 Import einer Taxaliste ................................................................................. 15 

2.3 Datei-Layout ...................................................................................................... 17 

2.3.1 Excel-Datei ................................................................................................. 17 

2.3.2 ASCII-Datei ................................................................................................ 20 

2.4 Automatisches Ersetzen von Taxa .................................................................. 21 

2.5 Ersetzen unbekannter Taxa .............................................................................. 22 

2.6 Berechnung im Teilprogramm „Deutschland (Perlodes)“ ............................. 24 

2.6.1 Einstellung des Gewässertyps.................................................................... 24 

2.6.2 Filterung von Taxalisten für das Modul „Allgemeine Degradation“ .............. 26 

2.6.3 Hauptfenster nach einem Datei-Import ....................................................... 27 

2.6.4 Ergebnisse der Berechnung ....................................................................... 28 

2.7 Export der Ergebnisse nach MS Excel oder MS Access ................................ 35 

2.8 Berechnung im Teilprogramm „Deutschland (AQEM System)“ .................... 36 

2.8.1 Einstellung des Gewässertyps.................................................................... 36 

2.8.2 Hauptfenster nach einem Datei-Import ....................................................... 38 

2.8.3 Ergebnisse der Berechnung ....................................................................... 39 

2.9 Mögliche Kombinationen aus Gewässertyp und Stressor ............................. 41 

2.10 Autökologische Informationen ........................................................................ 44 

3. Batch modus ..................................................................................................... 49 

4. Beschreibung der in der Software verwendeten Metrics ............................... 55 

5. Referenzen ...................................................................................................... 108


Entwicklung 

Die AQEM-Software (Version 1.0, veröffentlicht im März 2002) wurde durch das folgende 

von der EU geförderte Projekt entwickelt: 

„The Development and Testing of an Integrated Assessment System for the Ecological 

Quality of Streams and Rivers throughout Europe using Benthic Macroinvertebrates“ 

(Entwicklung und Validierung eines integrierten Bewertungssystems für die ökologische 

Qualität von Fließgewässern in Europa anhand benthischer Makroinvertebraten) 

– ein Projekt des 5. Europäischen Forschungs-Rahmenprogramms (Contract No: 

EVK1-CT1999-00027) 

Die Berechnungs-Metrics wurden von dem AQEM-Konsortium entwickelt. 

Die Taxaliste, die den Berechnungen zugrunde liegt, wurde im AQEM-Konsortium zusammengestellt. 

Die daran angehängten autökologischen Informationen (z. B. Ernährungstypen, 

Habitatpräferenzen etc.) stammen überwiegend aus den folgenden Werken: 

• Moog, O. (Ed.) (1995): Fauna Aquatica Austriaca. 1. Auflage, Wasserwirtschafts- 

Kataster, Bundesministerium für Land- und Forstwirtschaft, Wien. 

• Schmedtje, U. und M. Colling (1996): Ökologische Typisierung der aquatischen 

Makrofauna. Informationsberichte des Bayerischen Landesamtes für Wasserwirtschaft 

4/96. 

• Informationen, die durch das AQEM-Konsortium gesammelt wurden. 

Die Programmierung erfolgte durch: 

Wageningen Software Labs 

P.O.Box 47 

6700 AA Wageningen 

The Netherlands 

http://www.wisl.nl 

Beschreibung der Erweiterungen 

- Version 2.0 

Abschnitt wurde gelöscht. 

- Version 2.3 (veröffentlicht im April 2004) 


- Version 2.5 (veröffentlicht im Mai 2005) 


- Version 3.0 (veröffentlicht im Mai 2006) 

Abschnitt wurde gelöscht.


- Version 3.1 (veröffentlicht im Februar 2008) 

Das Update auf die Version 3.1 hat zum Ziel, die Software technisch und funktional 

weiterzuentwickeln und sie benutzerfreundlicher zu gestalten. Maßgeblich sind hierbei 

vor allem die Anmerkungen der Anwender. 

Wesentliche Bestandteile des Updates sind: 

• Herstellung der Kompatibilität zwischen ASTERICS und MS Vista; 

• Anpassung der DV-Nummern an den aktuellen Stand der Deutschlandliste; 

• Abgleich der Importlisten mit der datenbankinternen Liste gängiger Synonyme; 

• Einführung von Qualitätskriterien zur Absicherung von Bewertungsergebnissen; 

• Integration von Fauna-Indizes für Keupergewässer; 

• Überarbeitung des Faunaindexes für Gewässertyp 15g (hierdurch bedingt kommt 

es zu Abweichungen zwischen den Ergebnissen der Versionen 3.0 und 3.1); 

• Integration der PTI-Berechnung auf Grundlage von Einzelproben; 

• Integration neuer (internationaler) Metrics. 

• Batchmodus, automatisierte Verarbeitung grössere Datenmengen zur Einbindung 

in bestehende Softwaresysteme 

• Zu beachten: Aufgrund von Fehlern in der softwareinternen Datenbank kommt es 

bei Taxalisten, die mit der Version 3.1 berechnet wurden, zu falschen Metricergebnissen, 

die sich im weiteren Verlauf auch auf die Bewertung der Probestellen auswirken. 

Die Ergebnisse aller mit der Version 3.1 berechneten Rohdaten sind daher 

zu verwerfen und mit der korrigierten Version 3.1.1 erneut zu berechnen. Bewertungsergebnisse 

der Version 3.0 (und früherer Versionen) sind hiervon nicht betroffen. 

Den dadurch entstehenden Mehraufwand bitten wir vielmals zu entschuldigen. 


IRV – Software 

Ing. Robert Vogl 

Breitenfurterstraße 107/3/17 

A-1120 Wien 

Österreich 

http://www.irv-software.at 

- Version 3.1.1 (veröffentlicht im Mai 2008) 

Das Update der Software ASTERICS auf die Version 3.1.1 wurde notwendig, nachdem 

bei Version 3.1 Fehler in der zugrundeliegenden Taxa-Datenbank aufgedeckt wurden, 

die sich auf Metricergebnisse wie auch Bewertungsklassen auswirken. 

Das Update beschränkt sich ausschließlich auf die Korrektur der Fehler und beinhaltet 

keine technischen, funktionalen oder sonstigen Veränderungen.


- Version 3.3 1 (veröffentlicht im Juni 2011) 

Das Update auf die Version 3.3 erfolgte im Rahmen des Forschungsvorhabens „Weiterentwicklung 

biologischer Untersuchungsverfahren zur kohärenten Umsetzung der 

EG-Wasserrahmenrichtlinie“. 

Wesentliche Bestandteile des Updates sind: 

• Anpassung der Bewertungssysteme einzelner Gewässertypen 

Typ Core Metric Modifikation 

Typ 14 Litoral [%] Core Metric entfällt 

Typ 15 Pelal [%] Core Metric entfällt 

Typ 16 #Trichoptera Anhebung des oberen Ankerpunkts von 10 auf 12 

Typ 19 

Faunaindex 

Entwicklung eines eigenständigen Indexes1 

(oberer Ankerpunkt 1,55 / unterer Ankerpunkt -0,15) 

#Trichoptera Anhebung des oberen Ankerpunkts von 6 auf 10 

Ströme PTI 

Aktualisierung der ECO-Werte sowie Anpassung der Klassengrenzen 

(gemäß den Angaben der BfG) 2 

1 

bisher erfolgte die Bewertung mittels der Einstufungen des Faunaindexes für die Gewässertypen 11 

und 12; 

2 

� für eine Gegenüberstellung der alten und neuen Klassengrenzen siehe Kapitel 4 (Beschreibung 

der in der Software verwendeten Metrics). 

Anmerkung zum PTI-Zusatzkriterium r-Dominanz 

Die zusätzlich zum PTI angegebene r-Dominanz ist ein Maß für den Anteil von r-Strategen an der Gesamtindividuenzahl. 

Da der Index als Zusatzkriterium für die Bewertung von Strömen vorgesehen ist, 

wurden lediglich Arten eingestuft, die in Gewässern der Typen 10 und 20 zu erwarten sind. Aus diesem 

Grund liefert der Index auch nur für diese Gewässertypen interpretierbare Ergebnisse. Bei allen 

anderen Gewässertypen dürften die Ergebnisse deutlich zu niedrig ausfallen und nicht den wahren 

Anteil von r-Strategen repräsentieren. 

• Anpassung der Qualitätskriterien der Faunaindizes 

- Abundanzklassensumme: Neufestsetzung der Kriterien für die Einstufung des 

Modulergebnisses als gesichert bzw. nicht gesichert in Abhängigkeit von der sich 

ergebenden Qualitätsklasse � Kapitel 2.6.4 (Abschnitt: Datenblatt „Allgemeine 

Degradation“); 

- Anzahl Indikatortaxa: Ausgabe des Hinweises auf Artenverarmung („low indicator 

taxa number“) bei Unterschreiten eines festgelegten Schwellenwerts � Kapitel 

2.6.4 (Abschnitt: Datenblatt „Allgemeine Degradation“); 

• Aktualisierung autökologischer Einstufungen 

- Potamon-Typie-Index (ECO-Werte); 

- Faunaindizes FI 11/12, FI 14/16/18 sowie FI 15/17; 

- Biozönotische Regionen; 

- Salinität. 

• Berechnung neuer Metrics 

1 Die Version 3.2 wurde ausschließlich zu Testzwecken programmiert.


- Neozoenanteil: Ausgabe des Hinweises auf hohen Neozoenanteil („high share of 

alien species“) bei Überschreiten eines festgelegten Schwellenwerts � Kapitel 

2.6.4 (Abschnitt: Datenblatt „Allgemeine Degradation“); 

- SPEAR-Indizes zur Indikation des Eintrags von Pestiziden sowie weiteren toxisch-organischen 

Verbindungen � Kapitel 4 (Beschreibung der in der Software 

verwendeten Metrics). 

• Import/Export: Erweiterung der Exportfunktion auf das csv-Format; 

• Optimierung des Batch-Modus 

- Erstellung eines Ablaufprotokolls 

- Unterdrückung von Fehlermeldungen; 

• Anpassung an das Betriebssystem Windows 7 � Informationen zur Installation 

siehe weiter unten; 

• Deaktivierung der Hilfe-Funktion. 

Das Gros der genannten Veränderungen erfolgte gemäß der Entscheidungen des 

Makrozoobenthos-Beirats vom 24.02.10. 

Detaillierte Beschreibungen der Modifikationen sind den einzelnen Kapiteln zu entnehmen. 

Alle textlichen Ergänzungen gegenüber dem Softwarehandbuch der Version 

3.1.1 wurden durch Farbsignatur kenntlich gemacht. 

Detaillierte Beschreibungen der Modifikationen sind den jeweiligen Kapiteln zu entnehmen 

sowie der ergänzenden Dokumentation „Asterics_Software-Datenbank“. 

- Version 3.3.1 (veröffentlicht im Februar 2012) 

Das Update auf die Version 3.3.1 beinhaltet kleinere Korrekturen, die allesamt nicht 

bewertungsrelevant sind. Ein detaillierterer Überblick über die vorgenommenen Änderungen 

ist der gesonderten Textdatei „Update 3.3.1_Neuerungen“ zu entnehmen. 


IRV – Software 

Ing. Robert Vogl 

Breitenfurterstraße 107/3/17 

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Österreich 

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Installation 

a) Systemvoraussetzungen 

• Betriebssystem Microsoft Windows NT, Windows 2000, Windows XP, Windows 

Vista, Windows 7; 

• Microsoft Office 97, Office 2000, Office XP, Office 2003 oder Office 2007 sollte 

auf dem Computer installiert sein, da Excel-Dateien vor der Berechnung importiert 

werden und die Ergebnisse zum Speichern nach Excel und/oder Access 

exportiert werden. Zudem liegt dem Programm eine Access-Datenbank zugrunde, 

zu der die Software nur dann eine Verbindung herstellen kann, wenn 

die entsprechende Software installiert ist. 

b) Prozedere 

Die Software Asterics ist verfügbar über den Downloadbereich der Internetseite 

http://www.fliessgewaesserbewertung.de. Die Installation erfolgt durch das Ausführen 

der Datei „setup.exe“. Hierbei ist darauf zu achten, dass der Benutzer Administratorrechte 

besitzt, da sonst die Installation nicht ordnungsgemäß durchgeführt 

werden kann. 

� Anmerkung zur Installation unter Windows 7: Zu Beginn der Installation kann es zu 

einer Fehlermeldung kommen (siehe screenshot), die zunächst bestätigt werden 

muss. Anschließend wird der Anwender aufgefordert, ein Verzeichnis für temporäre 

Dateien anzugeben. Nach Auswahl eines entsprechenden Ordners wird der Installationsprozess 

fortgesetzt. 

Um aktuelle Bewertungsergebnisse mit denen frührerer Software-Versionen zu vergleichen, 

besteht die Möglichkeit, mehrere Asterics-Versionen parallel auf einem Rechner 

zu installieren. Die Beschreibung des genauen Vorgehens ist in der Datei „Asterics_Installationsanleitung“ 

zu finden. 

Support 

Fragen zur Software können an die Abteilung Angewandte Zoologie/Hydrobiologie der 

Universität Duisburg-Essen gerichtet werden (E-Mail: peter.rolauffs@uni-due.de oder 

info@fliessgewaesserbewertung.de).


1. Einführung 

ASTERICS (AQEM/STAR Ecological River Classification System) ist eine Software zur 

Berechnung der ökologischen Qualität von Fließgewässern nach den Vorgaben der 

EG-Wasserrahmenrichtlinie (EG-WRRL) anhand von Makroinvertebraten. 

Sie bezieht sich auf insgesamt 56 europäische Fließgewässertypen in den Staaten 

Deutschland (31 Typen), Griechenland, Italien, Niederlande, Österreich, Portugal, 

Schweden und Tschechien. Für die 56 Gewässertypen ist das Programm in der Lage, 

aus vorhandenen Taxalisten des Makrozoobenthos folgende Werte zu berechnen: 

• ökologische Qualitätsklasse, ausgehend von einer Reihe gewässertypspezifischer 

„Metrics“, die eng mit der Degradation eines Gewässers korreliert sind 

(die Metrics beziehen sich jeweils auf einen Degradationsfaktor [= Stressor], z. 

B. organische Belastung, Degradation der Gewässermorphologie oder Versalzung); 

• eine große Zahl zusätzlicher Metrics, die zur weiteren Interpretation der Bewertungsergebnisse 

herangezogen werden können. 

Das Programm ist in der Lage, Taxalisten aus Excel einzulesen (alternativ auch in 

Form einer Textdatei) und die Ergebnisse der Berechnung wieder nach Excel und/oder 

Access (letzteres gilt nur für das deutsche Bewertungssystem Perlodes) zu exportieren. 

Ergänzung: Seit der Version 3.3 ist zusätzlich der Export in Form einer csv-Datei 

möglich. 

1.1 Anmerkungen zur Anwendung der Software in Deutschland 

Das Programm bietet die Möglichkeit, mittels zweier verschiedener Bewertungsverfahren 

(Perlodes und AQEM) den ökologischen Zustand von Fließgewässerabschnitten zu 

ermitteln. Grundlage für die typspezifische Differenzierung ist die Gewässertypentabelle 

nach POTTGIESSER & SOMMERHÄUSER (2004).


Tabelle 1: Kurznamen der biozönotisch bedeutsamen Fließgewässertypen der BRD 

Bearbeitung: POTTGIESSER & SOMMERHÄUSER (2004), verändert (Stand Februar 2006). 

Ökoregion 4: Alpen, Höhe > 800 m; Ökoregion 9 (8): Mittelgebirge und Alpenvorland, Höhe ca. 200 – 800 

m und höher; Ökoregion 14: Norddeutsches Tiefland, Höhe < 200 m; u: ökoregionunabhängige Typen; K = 

Keuper; N = Nord, S = Süd 

Längszonierung 

Typ / Kurzname 

Typ 01.1: Bäche der Kalkalpen 4 

Typ 01.2: Kleine Flüsse der Kalkalpen 4 

Typ 02.1: Bäche des Alpenvorlandes 9(8) 

Typ 02.2: Kleine Flüsse des Alpenvorlandes 9(8) 

Typ 03.1: Bäche der Jungmoräne des Alpenvorlandes 9(8) 

Typ 03.2: Kleine Flüsse der Jungmoräne des Alpenvorlandes 9(8) 

Typ 04: Große Flüsse des Alpenvorlandes 9(8) 

Typ 05: Grobmaterialreiche, silikatische Mittelgebirgsbäche 9(8) 

Typ 05.1: Feinmaterialreiche, silikatische Mittelgebirgsbäche 9(8) 

Typ 06: Feinmaterialreiche, karbonatische Mittelgebirgsbäche 9(8) 

Typ 06_K: Feinmaterialreiche, karbonatische Mittelgebirgsbäche (Keuper) 

Typ 07: Grobmaterialreiche, karbonatische Mittelgebirgsbäche 9(8) 

Typ 09: Silikatische, fein- bis grobmaterialreiche Mittelgebirgsflüsse 9(8) 

Typ 09.1: Karbonatische, fein- bis grobmaterialreiche Mittelgebirgsflüsse 9(8) 

Typ 09.1_K: Karbonatische, fein- bis grobmaterialreiche Mittelgebirgsflüsse 

(Keuper) 

Typ 09.2: Große Flüsse des Mittelgebirges 9(8) 

Typ 10: Kiesgeprägte Ströme 9(8) 

Typ 11: Organisch geprägte Bäche u 

Typ 12: Organisch geprägte Flüsse u 

Typ 14: Sandgeprägte Tieflandbäche 14 

Typ 15: Sand- und lehmgeprägte Tieflandflüsse 14 

Typ 15_groß: Große sand- und lehmgeprägte Tieflandflüsse 14 

Typ 16: Kiesgeprägte Tieflandbäche 14 

Typ 17: Kiesgeprägte Tieflandflüsse 14 

Typ 18: Löss-lehmgeprägte Tieflandbäche 14 

Typ 19: Kleine Niederungsfließgewässer in Fluss- und Stromtälern u 

Typ 20: Sandgeprägte Ströme 14 

Typ 21_N: Seeausflussgeprägte Fließgewässer (Nord) u 

Typ 21_S: Seeausflussgeprägte Fließgewässer (Süd) u 

Typ 22: Marschengewässer 14 

Typ 23: Rückstau- bzw. brackwasserbeeinflusste Ostseezuflüsse 14 

Ökoregion 

9(8) 

9(8) 

Bach 

Kl. Fluss 

Gr. Fluss 

Strom


Bei der Zuordnung von Fließgewässerabschnitten zu den oben genannten Gewässertypen 

können folgende Materialien unterstützend herangezogen werden: 

• Karte der biozönotisch bedeutsamen Fließgewässertypen Deutschlands (Stand 

Dezember 2003) (POTTGIESSER, KAIL, SEUTER & HALLE 2003), 

• Fließgewässertypologie Deutschlands: Die Gewässertypen und ihre Steckbriefe 

als Beitrag zur Umsetzung der EU-Wasserrahmenrichtlinie (POTTGIESSER & 

SOMMERHÄUSER 2004). 

Gewässertypenkarte sowie Steckbriefe sind unter www.wasserblick.net abrufbar. 

Mit Hilfe des AQEM-Systems kann für die Gewässertypen 5, 9, 11, 14 und 15 der Einfluss 

der morphologischen Beeinträchtigung eines Gewässers auf dessen ökologische 

Qualität ermittelt werden. Dieser typspezifische, multimetrische Ansatz, der sich an den 

biozönotischen Referenzbedingungen der einzelnen Gewässertypen orientiert, integriert 

Metrics (biozönotische Kenngrößen), die zu einem überwiegenden Teil die strukturelle 

Degradation eines Gewässerabschnitts widerspiegeln. 

Zu beachten: Zur Berechnung des Moduls „Degradation der Gewässermorphologie“ ist 

es zwingend erforderlich, dass die Methode der Probenahme weitgehend der Methode 

entspricht, die im „Manual for the application of the AQEM system“ (AQEM consortium 

2002) beschrieben wurde (verfügbar unter www.aqem.de). 

Das Bewertungssystem Perlodes integriert durch seinen modularen Aufbau den Einfluss 

verschiedener Stressoren auf die ökologische Qualität eines Fließgewässers. Aus 

der Artenliste eines zu bewertenden Gewässers können folgende Informationen extrahiert 

und leitbildbezogen bewertet werden: 

Modul „Saprobie“ 

Die Bewertung der Auswirkungen organischer Verschmutzung auf das Makrozoobenthos 

erfolgt mit Hilfe des gewässertypspezifischen und leitbildbezogenen Saprobienindexes 

nach DIN 38 410 (FRIEDRICH & HERBST 2004). Die Indexergebnisse 

werden unter Berücksichtigung typspezifischer Klassengrenzen in eine Qualitätsklasse 

überführt. Die hierfür abgeleiteten Grundzustände und Klassengrenzen können dem 

„Methodischen Handbuch Fließgewässerbewertung“ (MEIER et al. 2008) entnommen 

werden. 

Modul „Allgemeine Degradation“ 

Dieses Modul spiegelt die Auswirkungen verschiedener Stressoren wider. Dies können 

sein: Degradation der Gewässermorphologie, Landnutzung im Einzugsgebiet, Pestizide, 

hormonäquivalente Stoffe. Das Modul ist als multimetrischer Index aus Einzelindizes, 

so genannten „Core Metrics“, aufgebaut. Die Ergebnisse der typ- bzw. typgruppenspezifischen 

Einzelindizes werden zu einem Gesamtindex verrechnet, der abschließend 

in eine Qualitätsklasse von „sehr gut“ bis „schlecht“ überführt wird. Die Einzelschritte 

der Bewertung sehen wie folgt aus: 

• Berechnung der Ergebnisse der Core Metrics; 

• Umwandlung der Ergebnisse in einen Wert zwischen 0 und 1 unter Zuhilfenahme 

folgender Formel:


Metricergebnis 

− unterer Ankerpunkt 

Wert = 

oberer Ankerpunkt 

− unterer Ankerpunkt 

Die oberen und unteren Ankerpunkte eines Metrics entsprechen den Werten 1 (Referenzzustand) 

und 0 (schlechtester theoretisch auftretender Zustand). Metricergebnisse, 

die den Bereich zwischen den Ankerpunkten überschreiten, werden automatisch 

auf den Wert 1 oder 0 gesetzt. Die Ankerpunkte wurden für jeden Metric 

und jeden Gewässertyp gesondert ermittelt und repräsentieren, neben der Auswahl 

der Core Metrics, die typspezifische Komponente des Verfahrens. 

• Der multimetrische Index wird berechnet durch Mittelung der Core Metrics, wobei 

der Faunaindex mit einer Gewichtung von 50 % und alle übrigen Metrics in 

der Summe ebenfalls mit 50 % in den Gesamtindex einfließen. 

• Das Ergebnis des multimetrischen Indexes wird (gewässertypunabhängig) auf 

folgende Weise in die Qualitätsklassen überführt: 

Index Qualitätsklasse 

> 0,8 bis 1 sehr gut 

> 0,6 bis d 0,8 gut 

> 0,4 bis d 0,6 mäßig 

> 0,2 bis d 0,4 unbefriedigend 

> 0,0 bis d 0,2 schlecht 

• Ausnahmen von obiger Vorschrift stellen lediglich die Gewässertypen 10 und 

20 (Ströme) dar. Bei diesen Typen wird das Ergebnis des Metrics „Potamon- 

Typie-Index“ direkt (d. h. ohne Umweg über ein [0;1]-Intervall) in eine Qualitätsklasse 

überführt. 

• Die ergänzend zu den Core Metrics ausgegebenen weiteren Indizes werden 

nicht verrechnet, sondern können für eine vertiefte Analyse der ökologischen 

Situation an einer Probestelle herangezogen werden. 

Die Core Metrics und Ankerpunkte, die zur Bewertung der einzelnen Fließgewässertypen 

herangezogen werden, können dem „Methodischen Handbuch Fließgewässerbewertung“ 

(MEIER et al. 2008) entnommen oder von der Homepage 

www.fliessgewaesserbewertung.de (Link „Kurzdarstellungen“) abgerufen werden. 

Zu beachten: Die Zusammensetzung der Bewertung (Core Metrics und Ankerpunkte) 

für die Typen 15_groß, 21_N und 21_S ist derzeit noch als vorläufig anzusehen. Hier 

ist in den nächsten Jahren eine Überarbeitung geplant, die im Wesentlichen die Weiterentwicklung 

des typspezifischen Faunaindexes (Typ 15_groß) umfasst. Für den Typ 

22 (Marschengewässer) liegt derzeit noch kein Modul „Allgemeine Degradation“ vor. 

Modul „Versauerung“ 

Bei den Gewässertypen, die von Versauerung betroffen sein können (Typen 5 und 

5.1), wird mit Hilfe des genannten Moduls die typspezifische Bewertung des Säurezustandes 

vorgenommen. Die Berechnung basiert auf den Säurezustandsklassen nach 

Braukmann & Biss (2004) und mündet in einer 5-stufigen Einteilung der Säureklassen.


Sofern die Gewässer nicht natürlicherweise sauer sind (Typ 5), entspricht die Säureklasse 

1 der Qualitätsklasse „sehr gut“, die Säureklasse 2 der Klasse „gut“ usw. Im 

Falle einer natürlicherweise bedingten Versauerung auch im Grundzustand (Typ 5.1) 

werden die Qualitätsklassen um jeweils eine Stufe angehoben, sodass sich die folgende 

Zuordnung ergibt: die Säureklassen 1 und 2 entsprechen der Qualitätsklasse „sehr 

gut“, Säureklasse 3 entspricht der Klasse „gut“, Säureklasse 4 der Klasse „mäßig“ und 

Säureklasse 5 der Klasse „unbefriedigend“. Die Qualitätsklasse „schlecht“ wird bei 

Gewässern des Typs 5.1 somit nicht vergeben. 

Ergänzung: Mit Umsetzung der Version 3.3 wird die Versauerung auch für die Gewässertypen 

11 bis 19 ausgegeben. Diese Angaben sind jedoch rein informell und besitzen 

keine Relevanz für die Berechnung der finalen ökologischen Zustandsklasse. 

Verrechnung der Module 

Mit Hilfe des Bewertungssystems Perlodes kann die ökologische Zustandsklasse für 30 

der 31 deutschen Fließgewässertypen (inkl. Untertypen) ermittelt werden. Die Bewertungsverfahren 

für die einzelnen Typen beruhen auf dem gleichen Prinzip, können sich 

jedoch durch die jeweils verwendeten Kenngrößen und die der Bewertung zugrunde 

liegenden Referenzzustände unterscheiden. 

Durch seinen modularen Aufbau integriert Perlodes verschiedene Stressoren in die 

Bewertung der ökologischen Qualität eines Fließgewässerabschnitts. Die folgende 

Abbildung verdeutlicht den schematischen Ablauf der stressorenbezogenen Bewertung 

mittels Makrozoobenthos, deren modularer Aufbau die Ausgabe von Ergebnissen auf 

verschiedenen Ebenen ermöglicht. 

Ebene 1: Ökologische Zustandsklasse (5-klassig); 

Ebene 2: Ursachen der Degradation (organische Verschmutzung, Versauerung, allgemeine 

Degradation); 

Ebene 3: Ergebnisse der einzelnen (bewertungsrelevanten) Core Metrics; 

Ebene 4: Ergebnisse von über 200 Metrics zur weiteren Interpretation.


Die abschließende ökologische Zustandsklasse ergibt sich aus den Qualitätsklassen 

der Einzelmodule. Dabei bestimmt das Modul mit der schlechtesten Einstufung das 

Gesamtergebnis (Prinzip des „worst case“). Im Fall einer mäßigen oder schlechteren 

saprobiellen Qualitätsklasse kann die Saprobie die Ergebnisse der Module „Allgemeine 

Degradation“ und „Versauerung“ beeinflussen und zu unplausiblen Ergebnissen führen. 

Daher ist in begründeten Ausnahmefällen eine nachträgliche Korrektur der Modulergebnisse 

aufgrund von Zusatzkriterien möglich. Darüber hinaus kann im Einzelfall 

vom rechnerischen Ergebnis abgewichen werden, wenn dies nach Expertenurteil aufgrund 

der Verhältnisse an der Probestelle oder aufgrund von weiteren für die Messstelle 

vorliegenden Daten geboten ist. Die Gründe sind zu dokumentieren. 

1.2 Besammlung 

Es wird empfohlen, die Software nur mit Taxalisten zu verwenden, die mit den im „Methodischen 

Handbuch Fließgewässerbewertung“ (MEIER et al 2008) geschilderten Besammlungsmethoden 

erhoben wurden. Bei Verwendung von Taxalisten, die mit anderen 

Methoden erhoben wurden, sind die Bewertungsergebnisse mit Vorsicht zu interpretieren.


2. Verwendung der Software ASTERICS 

2.1 Startfenster 

Durch Klicken auf eine der Flaggen wird der entsprechende Programmteil geladen und 

das Hauptfenster des Programms geöffnet. Die Auswahl des Staates kann im Hauptfenster 

oder im Fenster „Einstellungen“ nachträglich noch verändert werden. 

Für die Bewertung von Gewässerabschnitten nach den in Deutschland entwickelten 

Verfahren kann zwischen den Bewertungssystemen Perlodes und AQEM gewählt werden. 

2.2 Hauptfenster 

Nach der Auswahl eines Staates bzw. eines Verfahrens öffnet sich das Hauptfenster 

des Programms. Die Wahl des Staates bzw. Verfahrens lässt sich über die Einstellung 

des Kombinationsfelds „Land“ nachträglich verändern.


Die im rechten Kopfbereich angeordneten Schaltflächen beinhalten folgende Funktionen: 

• Hilfe: öffnet die Hilfe-Datei; 

• Info: öffnet ein Fenster mit allgemeinen Informationen zur Software; 

• Beenden: beendet das Programm. 

Die über der Tabelle angeordneten Schaltflächen beinhalten folgende Funktionen: 

• Import: Taxalisten werden importiert; 

• Speichern: Taxalisten werden gespeichert; 

• Speichern unter...: Taxalisten werden unter einem neuen Namen gespeichert; 

• Einstellungen: öffnet ein Fenster zur Auswahl des Gewässertyps; 

• Berechnung: startet die Berechnung der stressorenspezifischen Module; 

• Autökologische Infos: öffnet ein Fenster mit autökologischen Informationen. 

Um die Berechnung zu starten, muss zunächst eine Taxaliste importiert werden. Die zu 

importierende Datei sollte dabei vor dem Import geschlossen werden (Excel kann 

demgegenüber geöffnet bleiben). 

2.2.1 Import einer Taxaliste 

Die Schaltfläche „Import“ des Hauptfensters öffnet eine Dialogbox, in der die zu importierende 

Datei ausgewählt werden kann. Importiert werden können Dateien folgender 

Formate: Excel sowie ASCII. Das Format der Listen muss in allen Fällen bestimmten 

Vorgaben entsprechen; anderenfalls kann ASTERICS die Datei nicht korrekt einlesen. 

Angaben zur Formatierung werden in Kapitel 2.3 (Dateilayout) gegeben.


Nach Auswahl der gewünschten Datei erscheint die folgende Dialogbox zum Einstellen 

des verwendeten Schlüsselcodes: 

Ein häufiges Problem beim Importieren von Taxalisten ist, dass Taxa nicht korrekt erkannt 

werden. Die Gründe hierfür liegen in einer unterschiedlichen Nomenklatur, in 

nicht einheitlichen Abkürzungen bei der Schreibweise von Taxanamen (z. B. „Baetis 

spec.“ anstelle von „Baetis sp.“) oder in Schreibfehlern. Viele Systeme benutzen daher 

Codes aus Buchstaben oder Zahlen, die ein Taxon eindeutig identifizieren. 

Da das AQEM-System für die Anwendung in mehreren europäischen Staaten entworfen 

wurde, beinhaltet die vorliegende Software vier verschiedene Schlüsselcodes. Einer 

dieser Schlüsselcodes muss vor einem Import in der Dialogbox „Import: Einstellungen” 

gewählt werden. Die Zuordnung der Schlüsselcodes zu den Taxa ist daher bereits 

vor einem Import zu leisten. Eine entsprechende Zuordnungsliste („list of taxa key values“) 

wird unter www.fliessgewaesserbewertung.de bereitgestellt. 

Zu beachten: Bisweilen tritt während des Datenimports die Fehlermeldung „Erstellung 

des Probenahmen-Daten-Satzes nicht möglich“ auf. In einem solchen Fall sollte wie 

folgt verfahren werden: 

• bestätigen Sie die Dialogbox und schließen das Programm; 

• bestätigen Sie die daraufhin erscheinende Fehlermeldung „Schutzverletzung 

bei Adresse/im Modul ...“; 

• öffnen Sie Perlodes erneut und importieren die gewünschte Datei. 

Bedauerlicherweise war es bislang nicht möglich, die Ursache der Fehlermeldung zu 

ermitteln. Das Beenden und anschließende Wiederöffnen der Software sollte jedoch in 

nahezu allen Fällen den Fehler beseitigen. 

Die in der Software enthaltenen Schlüsselcodes sind: 

Schlüsselcode Beschreibung 

Shortcode Code aus den Anfangsbuchstaben der Gattungs- und Artnamen (Entwicklung 

im Rahmen des AQEM-Projekts) 

ID_ART Zahlencode (Entwicklung im Rahmen des AQEM-Projekts); der Code 

basiert auf dem österreichischen Identifikationscode, der auch der 

Software ECOPROF zugrunde liegt 

DINNo Deutsche DV-Nummer (Mauch et al. 2003) 

Anmerkung: Bei der Verwendung von DV-Nummern als Schlüsselcode 

sollte berücksichtigt werden, dass, im Gegensatz zur ID_ART,


bei der Gruppe der Käfer (Coleoptera) nicht zwischen Larven und 

Imagines unterschieden wird. Als Folge davon werden aus der Taxadatenbank 

weniger autökologische Informationen abgerufen, insbesondere 

in den Kategorien der Ernährungstypen. Da sich diese bei 

Larven und Imagines unterscheiden können, kann es zu geringfügigen 

Abweichungen in den Berechnungsergebnissen kommen. 

TAXON_NAME Name des Taxons 

Anmerkung: Dies ist kein Schlüsselcode im eigentlichen Sinn. Aufgrund 

der unterschiedlichen Schreibweise der Taxanamen kann ein 

korrektes Berechnungsergebnis nicht garantiert werden. 

Nach der Wahl eines Schlüsselcodes (oder der Option „Taxonname“) wird die gewünschte 

Datei importiert und das Programm verknüpft jedes Taxon mit den entsprechenden, 

in der Software-Datenbank enthaltenen autökologischen Informationen. Die 

Zuordnung zwischen Taxa und autökologischen Informationen erfolgt über den Schlüsselcode. 

2.3 Datei-Layout 

2.3.1 Excel-Datei 

Die nachfolgenden Abschnitte behandeln die Anforderungen, die an eine zu importierende 

Taxaliste gestellt werden, um einen erfolgreichen Datenimport zu gewährleisten. 

Im ersten Abschnitt „Datei-Layout: Spalten“ wird zunächst der prinzipielle Aufbau eines 

Excel-Tabellenblattes beschrieben, im darauf folgenden Abschnitt „Datei-Layout: Zeilen“ 

die zusätzlichen Anforderungen zum Import von Gewässertypen über MS Excel 

sowie die Möglichkeiten des Imports von Einzelproben zur Berechnung des Potamon- 

Typie-Indexes (PTI). 

Zu beachten: Im Hinblick auf einen späteren Export der Bewertungsergebnisse nach 

Excel und aufgrund der mehrspaltigen Ergebnisdarstellung ist bereits vor dem Import 

darauf zu achten, nicht mehr als 50 Probenahmen in ein Excel-Tabellenblatt aufzunehmen. 

Der Export nach Access ist nicht derlei Beschränkungen unterworfen. 

Es ist außerdem zu beachten, dass der optional einstellbare Filterprozess (Stichwort 

„Operationale Taxaliste“) bei einer großen Anzahl an Probenahmen eine intensive Rechenleistung 

erfordert und, abhängig von der PC-Ausstattung, einen vergleichsweise 

lange Zeitraum beanspruchen kann (siehe hierzu auch Kapitel 2.6.2).


Datei-Layout: Spalten 

Die erste Spalte der zu importierenden Datei beinhaltet den Schlüsselcode, die zweite 

Spalte die Taxanamen, alle weiteren Spalten die Abundanzen der Taxa. Das spezielle 

Format der Spalten orientiert sich an folgenden Vorgaben: 

• Spalte A (Schlüsselcode): Die Spaltenüberschrift (Zelle A1) muss, entsprechend 

des gewählten Schlüsselcodes, der Schreibweise folgen, die in obenstehender 

Tabelle (Kapitel 2.2.1) vorgegeben ist. Es ist darauf zu achten, Leerzellen 

innerhalb der Liste zu vermeiden, da die Importroutine eine solche Zelle als 

Abbruchkriterium interpretiert. Sollte der Taxonname als Schlüsselcode gewählt 

werden, enthalten die ersten beiden Spalten eine identische Überschrift (hierbei 

besteht die Notwendigkeit, im Falle einer von der in der Taxadatenbank abweichenden 

Schreibweise, das passende Taxon aus einer vorgegebenen Liste 

auszuwählen; siehe hierzu Kapitel 2.5). 

• Spalte B (Taxonname): Einträge in dieser Spalte sind, mit Ausnahme des 

Spaltenkopfes (Zelle B1) fakultativ. Fehlende oder von der programminternen 

Datenbank abweichende Einträge werden während des Imports automatisch 

ersetzt bzw. korrigiert. Der Spaltenkopf muss den Eintrag „TAXON_NAME“ 

enthalten. 

• Spalte C (Abundanzen): Diese und alle weiteren Spalten beinhalten die Abundanzen 

der Taxa an den jeweiligen Probestellen. Auch hier ist darauf zu 

achten, Leerzellen unbedingt zu vermeiden und diese durch Nullen zu füllen. 

Die Abundanzen sollten entweder als „Individuen/m 2 ” (Deutschland, Tschechische 

Republik), als „Individuen/1.25 m 2 ” (Österreich, Griechenland, Portugal,


Niederlande, Schweden), als „Individuen/0.5 m 2 ” (Italien: Gewässertypen I02 

und I03) oder als „Individuen/0.8 m 2 ” (Italien: Gewässertyp I04) angegeben 

werden. Die Angabe von Häufigkeitsklassen führt zu nicht interpretierbaren Ergebnissen. 

Zu beachten: Die Einträge in den Zellen A1 und B1 müssen exakt den Vorgaben entsprechen. 

Für alle folgenden Spaltenköpfe gibt es lediglich die Einschränkung, gleichlautende 

Probestellenbezeichnungen zu vermeiden. 

Datei-Layout: Zeilen 

Mit der Version 3.1 wurde der Import um zwei Optionen erweitert. Zum einen ist es nun 

möglich, die Gewässertypen bereits innerhalb der Importtabelle zuzuweisen, zum anderen 

können Einzelproben zur Berechnung des Potamon-Typie-Indexes (PTI) für die 

Gewässertypen 10 und 20 eingelesen werden. Diese Möglichkeiten werden über zusätzliche 

Zeilen realisiert, die im Folgenden beschrieben werden. 

• Gewässertyp: Mittels einer zusätzlich eingefügten Zeile besteht die Möglichkeit, 

den Gewässertyp automatisch über die Importtabelle in die Software einzulesen, 

sodass anschließend, falls Probestellen unterschiedlicher Typzugehörigkeit 

gemeinsam importiert werden, keine manuelle Einstellung innerhalb der 

Software nötig ist. Die zusätzliche Zeile muss mit dem Eintrag „Gewässertyp“ 

betitelt sein (siehe obige Abbildung). Die Typzuweisung erfolgt in der Weise 

„Typ $$“, wobei auf das Leerzeichen zwischen Typ und Typnummer zu achten 

ist. Die Schreibweise der Typnummern entspricht derjenigen in Tabelle 1. 

• PTI-Kennung: Die Zeile dient der Kennzeichnung zusammengehöriger Teilproben, 

für die der PTI an einer Messstelle berechnet werden soll. Es sind nur 

Einträge in Form von Zahlen erlaubt. Im Beispiel der untenstehenden Abbildung


gehören die Datenspalten C bis G bzw. H bis L jeweils einer Messstelle an. Alternativ 

zur Beschriftung „PTI-Kennung“ kann auch der Eintrag „PTI-code“ verwendet 

werden. 

• PTI-Fläche: Die Zeile beinhaltet Angaben zur Flächengröße der jeweiligen Einzelproben 

an einer Messstelle; sie sind in der Einheit m 2 einzutragen. Auch hier 

sind nur Zahlenwerte erlaubt. Alternativ zur Beschriftung „PTI-Fläche“ kann der 

Eintrag „PTI-area“ verwendet werden. 

Zu beachten: 

• Die Zeile zum Einlesen des Gewässertyps ist fakultativ. Sollte auf diese Zeile 

verzichtet werden, kann die Zuweisung zu den Gewässertypen, wie gewohnt, 

innerhalb der Software ASTERICS erfolgen. 

• Für die Berechnung des PTI auf Grundlage von Einzelproben sind die drei zusätzlichen 

Zeilen obligat. Es ist nicht möglich, Einzelproben innerhalb der Software 

ASTERICS den Gewässertypen 10 oder 20 zuzuweisen. Die Reihenfolge 

der Zeilen ist beliebig. Was die Spalten betrifft, ist eine Typzuordnung für jede 

Einzelprobe zwingend erforderlich; eine einmalige Nennung in der jeweils ersten 

Spalte einer Messstelle reicht nicht. 

• Für die Ergebnisdarstellung des PTI wird die Überschrift der ersten Einzelprobe 

verwendet (im untenstehenden Beispiel: PS1a und PS2a). 

• Es ist möglich, sowohl Einzelproben der Typen 10 bzw. 20 wie auch Messstellen 

anderer Gewässertypen gemeinsam einzulesen. In diesem Fall bleiben die 

Zeilen PTI-Kennung und PTI-Fläche für die Messstellen anderer Gewässertypen 

leer. 

2.3.2 ASCII-Datei 

Neben eines Imports über MS Excel ist es möglich, ASCII-Datei zu importieren. Diese 

sind in der Weise anzuordnen, wie es folgende Abbildung zeigt. Das Trennungszeichen 

für die Informationen innerhalb der verschiedenen Spalten ist das Semikolon.


Die erste Spalte beinhaltet den Schlüsselcode, die zweite Spalte die Taxanamen. Ab 

der dritten Spalte werden die Abundanzen der Taxa für jede der Probestellen aufgeführt 

(als Individuen/m 2 ). Die Ziffer „0“ indiziert das Fehlen eines Taxons an einer Probestelle. 

Zu beachten: Gewässertypen oder PTI-Einzelproben können über eine ASCII-Datei 

nicht eingelesen werden (vergleiche Kapitel 2.3.1). 

2.4 Automatisches Ersetzen von Taxa 

Während des Imports einer Taxaliste wird der gewählte Schlüsselcode mit dem entsprechenden 

Code innerhalb der programminternen Datenbank verglichen. Sollte die 

Kombination aus Schlüsselcode und Taxonname sich von derjenigen der Datenbank 

unterscheiden, wird der Taxonname in der zu importierenden Datei automatisch ersetzt. 

Die veränderten Einträge werden im Dialogfeld „Ersetzte Taxanamen“ angezeigt. 

Es ist möglich, dieses Protokoll abzuspeichern, allerdings nur in Form einer ASCII- 

Datei. Wurde ein Taxon eingelesen, welches in der programminternen Datenbank als 

Synonym geführt wird, wird dieses ebenfalls in dem Protokoll gelistet.


2.5 Ersetzen unbekannter Taxa 

Falls ein Taxon in der programminternen Datenbank nicht gefunden oder nicht korrekt 

mit der Datenbank verknüpft werden konnte, gibt es die Möglichkeit des manuellen 

Eingreifens. Diese so genannten „unbekannten Taxa“ werden im Dialogfeld „Ersetzen 

unbekannter Taxa“ angezeigt. Dort können sie entweder durch das korrekte Taxon 

ersetzt oder aus der zu importierenden Datei gelöscht werden. 

Das Fenster zeigt den Schlüsselcode der unbekannten Taxa, die Taxanamen sowie 

die vorzunehmende Veränderung (Aktion). Die letzte Spalte beinhaltet den gewählten 

(neuen) Taxonnamen, falls das unbekannte Taxon ersetzt werden soll; hierzu kann der 

unbekannte Taxonname durch einen alternativen Namen aus der Auswahlliste des 

Kombinationsfeldes (unterhalb der Tabelle) ersetzt werden. 

Zu beachten: 

• Die Standardeinstellung ist das Löschen eines Taxons. 

• Wird der Schlüsselcode DINNo verwendet, werden nur solche Taxa in der 

Auswahlliste des Kombinationsfeldes angezeigt, die eine DV-Nr. besitzen. 

Dadurch wird die bislang mögliche Zuweisung von Taxa ohne DV-Nr. unterbunden. 

Mögliche Optionen: 

• Ersetzen: Soll ein Taxon ersetzt werden, erfolgt dies durch Betätigen der 

Schaltfläche „Ersetzen durch“. In diesem Fall wird in der Spalte „Aktion“ die 

Meldung „Ersetzen“ angezeigt, und in der letzten Spalte erscheint der Namen 

des neuen Taxons. 

• Löschen: Soll ein Taxon gelöscht werden, erfolgt dies durch Betätigen der 

Schaltfläche „Löschen“. In diesem Fall wird in der Spalte „Aktion“ die Meldung 

„Löschen“ ausgegeben. Zu beachten ist hierbei, dass die aufgeführten Taxa 

standardmäßig auf die Aktion „Löschen“ eingestellt sind , sodass es nicht notwendig 

ist, diese Aktion durch explizites Drücken der Schaltfläche „Löschen“ zu 

aktivieren.


• OK: Mit einem Klicken auf die Schaltfläche „OK” werden alle gewählten Aktionen 

bestätigt und ausgeführt. Zu ersetzende Taxa werden durch den in der 

Spalte „Neuer Taxonname“ angegebenen Namen ersetzt; in die erste Spalte 

der zu importierenden Datei wird automatisch der dem neuen Namen entsprechende 

Schlüsselcode aus der Datenbank geschrieben. Sollte das neue Taxon 

in der Liste bereits existieren, wird die Abundanz des veränderten Taxons zum 

bereits bestehenden addiert. 

• Abbrechen: Die Schaltfläche „Abbrechen” widerruft alle eingetragenen Aktionen. 

Zu beachten: 

• Das Drücken der Schaltfläche „OK” veranlasst augenblicklich die Ausführung 

aller ausgewählten Aktionen. Es gibt keine weitere Sicherheitsabfrage! Man 

sollte sich daher sicher sein, dass alle Einträge in der Spalte „Aktion” korrekt 

sind. 

• Während des Imports erfolgt ein automatischer Abgleich mit der in der internen 

Datenbank enthaltenen Liste gängiger Synonyme. Dadurch bedingt sowie aufgrund 

des manuellen Ersetzens von Taxa kann es zu Unterschieden in der 

Reihenfolge der Taxa zwischen importierter Liste und der in der Software dargestellten 

Taxaliste kommen. 

• Ergänzung: Im Rahmen der Umprogrammierung für Version 3.3 wurde der Filterprozess 

(siehe Kapitel 2.6.2) neu strukturiert. Die Filterung erfolgt nun parallel 

zum Import, sodass sich die Zeit hierfür verlängert. Im Gegenzug verringert 

sich die Dauer der Berechnungen deutlich. Weitere Erläuterungen zur Neuordnung 

des Filterprozesses siehe Kapitel 2.6.2.


2.6 Berechnung im Teilprogramm „Deutschland (Perlodes)“ 

2.6.1 Einstellung des Gewässertyps 

Nach einem erfolgten Datenimport wird automatisch das Fenster für die Einstellung der 

Fließgewässertypen geöffnet. Das Fenster ist unterteilt in die Bereiche Einstellungen 

(Fensterkopf und Fensterfuß) und Anzeige (Mittelteil). Die vorzunehmenden Einstellungen 

können sich entweder auf alle Probestellen gemeinsam oder auf ausgewählte 

Stellen auswirken. Werden sie über den Kopfbereich vorgenommen, wirken sie sich 

grundsätzlich auf alle Probestellen aus. Sollen hingegen einzelne Probestellen gesonderte 

Einstellungen erhalten, können diese über die Anzeige im Mittelteil vorgenommen 

werden. 

Im Folgenden werden die möglichen Optionen beschrieben: 

• Kombinationsfeld „Staat“: Auswahl des Staates bzw. der für Deutschland möglichen 

Systeme Perlodes oder AQEM; 

• Kombinationsfeld „Fliegewässertyp“: Auswahl des Fließgewässertyps; 

• Kombinationsfeld „Taxaliste“: Einstellung der Filteroption (Berechnung mit der 

originalen oder einer gefilterten Liste [gemäß den Vorgaben der operationalen 

Taxaliste; siehe Kapitel 2.6.2]); 

• Schaltfläche „Anwenden auf alle“: Durch Drücken der Schaltfläche werden alle 

in den aktivierten Kombinationsfeldern eingestellten Optionen auf die Probestellen 

übertragen; eine Aktivierung erfolgt durch das Setzen eines Häkchens (in 

obigem Beispiel wurde die Einstellung im Kombinationsfeld „Taxaliste“ aktiviert, 

die Einstellung des Fließgewässertyps hingegen nicht).


Zu beachten: Die Filteroption bewirkt, dass die Taxalisten vor der Berechnung gefiltert 

werden (auf Basis der operationalen Taxaliste; Informationen hierzu siehe Kapitel 

2.6.2). Die Filterung wird ausschließlich für das Modul „Allgemeine Degradation“ vorgenommen; 

die Berechnung der Module „Saprobie“ und „Versauerung“ erfolgt grundsätzlich 

über die Originallisten, unabhängig von der Einstellung im Kombinationsfeld 

„Taxaliste“ (vgl. hierzu Kapitel 2.6.2). 

Um gesonderte Einstellungen für einzelne Probestellen vorzunehmen, muss auf das 

betreffende Feld in der Tabelle geklickt werden. Daraufhin klappt eine Auswahlliste auf, 

mittels derer die gewünschte Einstellung vorgenommen werden kann. Die folgende 

Abbildung zeigt ein Beispiel, bei dem die Auswahlliste der Fließgewässertypen für eine 

einzelne Probenahme angezeigt wird. 

Durch die Schaltfläche „Kopieren“ ist es möglich, von einer zuvor markierten Probestelle 

eine Kopie anzulegen. Der Probenname eines durch Kopie erzeugten Eintrags kann 

verändert werden, indem auf die entsprechende Zelle geklickt und der neue Name eingetragen 

wird; dies sollte auf alle Fälle durchgeführt werden, da doppelt vergebene 

Probenamen zu einem Programmabbruch führen können. 

Die Erstellung einer Kopie kann sinnvoll sein, wenn für eine Probestelle die Bewertung 

auf Grundlage verschiedener Typeinstufungen vorgenommen werden soll, beispielsweise 

in Fällen nicht eindeutiger Typzuweisungen. 

Zu beachten:


• Werden von einer Probestelle mehrere Kopien angelegt, müssen die Probestellenbezeichnungen 

der Kopien manuell so verändert werden, dass keine gleichlautenden 

Bezeichnungen auftreten. 

• Probestellen der Gewässertypen 10 und 20 können nicht kopiert werden, sofern 

sie sich aus Einzelproben zusammensetzen. Solche Proben sind anhand 

des Eintrags „spot samples“ in der letzten Spalte der Anzeige kenntlich gemacht. 

Dieser Eintrag kann, im Gegensatz zu allen anderen, manuell nicht verändert 

werden. 

• Probestellen der Gewässertypen 10 und 20 können hingegen kopiert werden, 

wenn sie als so genannte Mischprobe eingelesen werden. Eine Mischprobe 

liegt dann vor, wenn die Einzelproben vor dem Import über Addition verrechnet 

wurden. In diesen Fällen erscheint in der letzten Spalte der Eintrag „mixed 

sample“. 

Die gültigen Kombinationen aus Gewässertyp und Stressor (siehe Kapitel 2.9) werden 

automatisch von der Software berücksichtigt. 

Im Fußbereich des Fensters sind folgende Schaltflächen angeordnet: 

• Löschen: löscht eine Probestelle aus der Liste; 

• Export nach Excel: speichert die Tabelle mit allen vorgenommenen Einstellungen 

als Excel-Datei; 

• Abbrechen: widerruft alle Einstellungen mit anschließender Rückkehr zum 

Hauptfenster; 

• OK: bestätigt die vorgenommenen Einstellungen; 

• Hilfe: öffnet die softwareeigene Hilfedatei. 

2.6.2 Filterung von Taxalisten für das Modul „Allgemeine Degradation“ 

Unterschiede in der Bestimmungstiefe von Artenlisten sowie Fehler in der Bestimmung 

nicht sicher zu bestimmender Taxa wirken sich auf viele Bewertungsparameter aus. 

Daher wird dringend empfohlen, die Taxalisten vor der Berechnung einer Harmonisierung 

zu unterziehen, bei der „zu weit“ bestimmte Taxa auf ein sicher zu bestimmendes 

taxonomisches Niveau zurückgeführt werden. Dieser Schritt wird gemäß der operationalen 

Taxaliste, einer standardisierten Mindestanforderung an die Bestimmung 

von Makrozoobenthosproben (HAASE et al. 2006a, b), vorgenommen und bezieht sich 

ausschließlich auf die Berechnung des Moduls „Allgemeine Degradation“. 

Praktisch werden damit alle Taxa, die gemäß der Liste als nicht sicher bestimmbar 

gelten, in das nächste sicher zu bestimmende Taxon umbenannt. Anschließend werden 

identische Taxa aufaddiert. So geht beispielsweise die Steinfliege Isoperla, die in 

vielen Probenahmeprotokollen bis zur Art bestimmt wird, laut operationaler Taxaliste 

larval aber nur auf Genusebene eindeutig determinierbar ist, in die Berechnung der 

ASTERICS-Software nur mit den autökologischen Angaben zu „Isoperla sp.“ ein. 

Folgende Fälle sind im Rahmen des Filterprozesses möglich: 

• Fall 1: Heraufstufung. Ein Taxon gilt als nicht sicher bestimmbar und wird dem 

nächsthöheren, sicher zu bestimmenden Taxon zugeordnet (Pisidium subtruncatum 

wird zu Pisidium sp.);


• Fall 2: Beibehaltung: Ein Taxon gilt als sicher bestimmbar und geht als solches 

in die Berechnung ein (z. B. Elmis sp. Lv.); 

• Fall 3: Entfallen. Ein Taxon ist gemäß Mindestbestimmbarkeitsliste völlig unzureichend 

bestimmt und bleibt unberücksichtigt (z. B. Trichoptera Gen. sp.). 

Originalliste gefilterte Liste Anmerkungen 

ID_ART TAXON_NAME IZ ID_ART TAXON_NAME IZ 

6426 

Pisidium subtruncatum 

8 6425 Pisidium sp. 8 Heraufstufung 

5095 Elmis sp. Lv. 68 5095 Elmis sp. Lv. 68 Beibehaltung 

5854 

Limnius volckmari 

Lv. 

4 5853 Limnius sp. 4 

Heraufstufung und Addition 

mit vorhandenem Taxon 

5853 Limnius sp. 6 5853 Limnius sp. 6 Beibehaltung 

8670 

Trichoptera 

Gen. sp. 

4 - Entfernung 

6833 Silo nigricornis 25,6 6833 Silo nigricornis 25,6 Beibehaltung 

Die Berechnung der Module „Saprobie“ und „Versauerung“ erfolgt grundsätzlich mit 

den Originaltaxalisten, da laut FRIEDRICH & HERBST (2004) sowie BRAUKMANN & BISS 

(2004) kein der operationalen Taxaliste entsprechendes Bestimmungsniveau vorgegeben 

ist. 

Ergänzung: Um die Dauer, die für Datenimport und Berechnung benötigt wird, zu verringern, 

wurde der Filterprozess mit Veröffentlichung der Version 3.3 neu geordnet. Die 

Filterung findet nunmehr nicht erst im Zuge der Berechnungen statt, sondern bereits 

während des Datenimports. Die Orginallisten bleiben dabei erhalten, sodass jede Liste 

als Dublett in der Software geführt wird. Dies hat den Vorteil, dass die weitere Bearbeitung 

(Berechnung, Ausgabe der autökologischen Informationen) deutlich schneller erfolgen 

kann. Obwohl der Datenimport dadurch ein wenig ausgebremst wird, wird sich 

die Geschwindigikeit des Gesamtablaufs deutlich erhöhen. 

2.6.3 Hauptfenster nach einem Datei-Import 

Nachdem alle importierten Taxa erkannt sowie Gewässertyp und Filteroption für die 

Probenahmen ausgewählt worden sind, erscheint ein geringfügig verändertes Hauptfenster 

(siehe nachfolgende Abbildung). Die Schaltflächen „Speichern“, „Speichern 

unter...“, „Einstellungen“ und „Berechnung“ sind nun aktiviert.


Den Hauptteil des Fensters nehmen die (aus Excel) importierte Taxalisten ein. Die erste 

Spalte beinhaltet den gewählten Schlüsselcode (hier: DV-Nr.), die zweite den Taxonnamen 

und die dritte Spalte den Shortcode (einen im AQEM-Projekt entwickelten zusätzlichen 

Buchstabencode). Die darauf folgenden Spalten geben die Abundanzen der 

Taxa an den jeweiligen Probestellen wieder. 

Oberhalb der Tabelle sind eine Reihe von Schaltflächen angeordnet, die im Folgenden 

beschrieben werden. 

• Speichern: speichert die importierte Datei unter dem gültigen Dateinamen; 

• Speichern unter…: speichert die importierte Datei unter einem neu zu definierenden 

Dateinamen; ebenso kann der Dateityp gewählt werden (Excel oder 

ASCII); 

• Einstellungen: öffnet das Fenster „Einstellung: Typ“ zur nachträglichen Änderung 

des Gewässertyps und/oder der Filteroption; 

• Berechnung: startet die Berechnung gemäß den vorgenommenen Einstellungen; 

nähere Informationen hierzu werden Folgekapitel gegeben); 

• Autökologische Informationen: öffnet eine Tabelle, worin die ökologischen 

Kenngrößen (Indikatorwerte) der importierten Taxa aufgeführt sind; diese Zahlenwerte 

dienen als Grundlage für die Berechnung der Metrics (detailliertere Informationen 

werden in Kapitel 2.10 gegeben). 

2.6.4 Ergebnisse der Berechnung 

Die Ergebnisse werden im Fenster „Bewertung der Probenahmen“ zusammengefasst. 

Das Fenster ist in die folgenden sechs Datenblätter unterteilt: 

• Ökologische Zustandsklasse 

• Saprobie


• Allgemeine Degradation 

• Versauerung 

• Metrics 

• Taxaliste 

Die Ergebnisse lassen sich nach Excel oder Access exportieren (siehe hierzu Kapitel 

2.7), wobei durch einmaliges Betätigen der entsprechenden Schaltfläche alle genannten 

Datenblätter in einem Vorgang exportiert werden. 

Datenblatt „Ökologische Zustandsklasse“ 

Das Datenblatt „Ökologische Zustandsklasse“ gibt die Bewertung der Module (Qualitätsklassen) 

sowie die Gesamtbewertung (ökologische Zustandsklasse) wieder. Zudem 

wird angegeben, ob die Ergebnisse gesichert oder nicht gesichert sind (siehe hierzu 

die näheren Ausführung im weiteren Verlauf des Kapitels). 

Die Gesamtbewertung wird bestimmt durch das Modul mit der schlechtesten Einstufung 

(Prinzip des „worst case“). Eine nachträgliche Korrektur der Bewertungsergebnisse 

(vgl. hierzu Kapitel 1.1) kann nicht in der Software vorgenommen werden, sondern 

muss manuell nach dem Export der Ergebnisse erfolgen. 

Für die ökologische Zustandsklasse sowie die Qualitätsklassen der einzelnen Module 

wird der nachfolgend dargestellte Farbcode verwendet: 

sehr gut blau mäßig gelb 

gut grün unbefriedigend orange 

schlecht rot


Datenblatt „Saprobie“ 

Im Kopfbereich der Tabelle des Moduls „Saprobie“ werden für jede Probestelle die 

übergeordneten Informationen zu Staat, Gewässertyp, Filterstatus (hier grundsätzlich: 

original) und Stressor (hier: Saprobie) dargestellt. Farbig markiert (entsprechend des 

oben dargestellten Farbcodes) ist die Qualitätsklasse, die sich aus dem Metric (hier: 

Saprobienindex) ergibt. 

Darunter ausgegeben wird das Ergebnis des leitbildbezogenen Saprobienindexes nach 

DIN 38 410 (FRIEDRICH & HERBST 2004) sowie die ihm beigeordneten Angaben zu Abundanzsumme 

und Streuungsmaß. Die Qualitätsklasse ergibt sich aus der im Anhang 

der DIN 38 410 enthaltenen Tabelle gewässertypspezifischer Klassengrenzen. 

Ein Ergebnis wird dann als gesichert angesehen, wenn die Abundanzsumme (ökoregionunabhängig) 

mindestens einen Wert von 20 erreicht. Nach Revision der DIN 38 410 

wird das Streuungsmaß nicht mehr als Qualitätskriterium herangezogen und dient lediglich 

informativen Zwecken. 

Datenblatt „Allgemeine Degradation“ 

Im Kopfbereich der Tabelle des Moduls „Allgemeine Degradation“ werden für jede Probestelle 

die übergeordneten Informationen zu Staat, Gewässertyp, Filterstatus (original 

oder gefiltert) und Stressor (hier: allgemeine Degradation) angegeben. Farbig markiert 

(entsprechend des oben dargestellten Farbcodes) ist die Qualitätsklasse, die sich aus 

den Scores der aufgeführten Core Metrics ergibt. Die Anzahl verwendeter Core Metrics 

ist gewässertypabhängig und liegt zwischen 1 und 5. 

Darunter ausgegeben werden die für den ausgewählten Gewässertyp relevanten Core 

Metrics inklusive der Kategorien, denen sie zugeordnet sind (z. B. Toleranz). Die weiteren 

Spalten beinhalten die Metric-Ergebnisse, die daraus errechneten Scores (siehe 

hierzu Kapitel 1.1, Abschnitt: Modul „Allgemeine Degradation“) sowie die Qualitätsklassen 

der einzelnen Metrics.


Ein Ergebnis wird dann als gesichert angesehen, wenn die Abundanzsumme der Indikatortaxa 

des Faunaindexes einen Schwellenwert von 15 (Tiefland) bzw. 20 (Mittelgebirge/Alpen) 

übersteigt. Ergänzung: Mit Veröffentlichung der Version 3.3 wurden die 

bis dato starren Schwellenwerte flexibel ausgestaltet. Das bedeutet, dass die Grenzen 

nunmehr abhängig sind von der sich ergebenden Qualitätsklasse im Modul „Allgemeine 

Degradation“. 

Naturraum 

(Gewässertypen) 

Alpen/Alpenvorland/ 

Mittelgebirge (Typen 1-9) 

Tiefland 

(Typen 11-19) 

Qualitätsklasse 

Abundanzsumme 

sehr gut gut mäßig 20 

unbefr. schlecht 15 

sehr gut gut mäßig 15 

unbefr. schlecht 10 

Ergänzung: Ab der Version 3.3 werden unterhalb der Core Metrics Zusatzinformationen 

ausgegeben, die für die Interpretation der Ergebnisse hilfreich sein können. 

• Fremdtaxa: Der Metric „share of alien species“ (Neozoenanteil) wird einheitlich 

für alle Gewässertypen angegeben. Grundlage hierfür sind die im Potamon- 

Typie-Index als Neozoen ausgewiesenen Taxa. Bei Überschreitung einer 

Schwelle von 30 % erfolgt der Hinweis „high share of alien species“. 

• Artenverarmung: Stellvertretend für die Gesamtzönose wird eine Artenverarmung 

anhand der Anzahl an Indikatortaxa der Faunaindizes festgemacht. 

Schwellenwert ist hier eine Zahl von 6. Sofern die Taxazahl unterhalb dieser 

Grenze liegt, wird der Hinweis „low indicator taxa number“ ausgegeben. 

Zu beachten: Bei der Ergebnisdarstellung von Probestellen der Gewässertypen 10 und 

20 wird zwischen den Varianten „Potamon-Typie-Index (spot samples)“ und „Potamon- 

Typie-Index (mixed sample)“ unterschieden. Die zuerst genannte Variante bezeichnet 

die Verrechnung von Einzelproben, die zuletzt genannte Variante diejenige von Mischproben 

(zur abweichenden Beschriftung der beiden Varianten im Datenblatt „Metrics“ 

siehe weiter unten; nähere Informationen zu Mischproben siehe abschließenden Abschnitt 

des Kapitels 2.6.1 unter dem Punkt „zu beachten“).


Datenblatt „Versauerung“ 

Im Kopfbereich der Tabelle des Moduls „Saprobie“ werden für jede Probestelle die 

übergeordneten Informationen zu Staat, Gewässertyp, Filterstatus (hier grundsätzlich: 

original) und Stressor (hier: Versauerung) angegeben. Farbig markiert (entsprechend 

des oben dargestellten Farbcodes) ist die Qualitätsklasse, die sich aus dem Metric 

(hier: Säureklasse) ergibt. 

Sofern es sich um versauerungsgefährdete Gewässer handelt (Typen 5 und 5.1) wird 

darunter das Ergebnis der Säureklasse nach Braukmann & Biss (2004) sowie das Ergebnis 

des Saprobienindexes ausgegeben. Der Saprobienindex wird in diesem Modul 

als Qualitätskriterium für die Aussagekraft der Säureklasse verwendet. 

Ein Ergebnis wird dann als gesichert angesehen, wenn die saprobielle Güteklasse 

„gut“ oder „sehr gut“ und gleichzeitig der Saprobienindex gesichert ist; es wird als nicht 

gesichert angesehen, falls der Saprobienindex nicht gesichert ist. Ergänzung: Im Falle 

saprobiell belasteter Messstellen ist der Metric gemäß der Ausführungen von BRAUK- 

MANN & BISS (2004) nicht anwendbar und der Hinweis „not applicable“ (Fenster Versauerung) 

bzw. „nicht anwendbar“ (Fenster „Ökologische Zustandsklasse“) wird ausgegeben. 

Zusammenfassend ergibt sich demnach das folgende Schema: 

Qualitätsklasse Saprobie Ergebnis Saprobie ist... Ergebnis Versauerung ist... 

gut oder sehr gut gesichert gesichert (reliable) 

gut oder sehr gut nicht gesichert nicht gesichert (not reliable) 

mäßig oder schlechter nicht anwendbar (not applicable) 

Ergänzung: Ab der Version 3.3 wird die Versauerung auch für Tieflandgewässer (Typen 

11 bis 19) angegeben, dort allerdings rein informell und ohne Relevanz für die Bestimmung 

der ökologischen Zustandsklasse.


Datenblatt „Metrics“ 

Das Datenblatt „Metrics” zeigt die Ergebnisse aller Metrics, die von der Software berechnet 

werden können. Die meisten dieser Metrics werden nicht für die Berechnung 

der ökologischen Zustandsklasse herangezogen, sind aber unter Umständen hilfreich


bei der Interpretation der Ergebnisse. Hinweise zur Berechnung der Metrics (inklusive 

Referenzen) werden in Kapitel 4 gegeben. 

Zu beachten: Auf Grund der zusammenfassenden Darstellung der Metric-Ergebnisse 

wird bei den Gewässertypen 10 und 20 nicht zwischen „spot samples“ und „mixed 

sample“ differenziert. Die Information, welcher Art die Probe ist, kann im Feld "Number 

of samples" aus der Anzahl eingelesener Proben abgelesen werden: die Zahl „1“ steht 

für eine Mischprobe (mixed sample), eine Zahl größer als 1 für Einzelproben (spot 

samples). 

Datenblatt „Taxaliste“ 

Auf dem Datenblatt „Taxaliste“ werden die in die Software importierten Originaltaxalisten 

den gefilterten Listen gegenübergestellt. Ziel ist es, den Filterprozess, der vor der 

Berechnung des Moduls „Allgemeine Degradation“ programmintern durchgeführt wird, 

für den Anwender transparent zu machen. Dargestellt werden die ID_Art und der Taxonname 

der importierten wie auch der gefilterten Taxalisten sowie die Individuenzahlen 

der Taxa an den einzelnen Probestellen. 

Zu beachten: 

• Wird die Berechnung mit den Originaltaxalisten durchgeführt, bleiben die Spalten 

„ID_Art (gefiltert)“ und „Taxonname (gefiltert)“ leer. 

• Die Reihenfolge der Taxa kann numerisch (anhand der Schlüsselcodes oder 

Individuenzahlen) bzw. alphabetisch (anhand der Taxanamen) sortiert werden. 

Nötig ist dafür ein einmaliger bzw. zweimaliger Klick (für aufsteigende bzw. absteigende 

Sortierung) auf die jeweilige Spaltenüberschrift.


2.7 Export der Ergebnisse nach Excel oder Access 

Die Bewertungsergebnisse können nach Excel und/oder Access exportiert und so gespeichert 

werden. Die zugehörigen Schaltflächen – „Export nach Excel“ und „Export 

nach Access“ – befinden sich in der linken unteren Ecke des Fensters „Bewertung der 

Probenahmen“. 

Zu beachten: 

• Durch Drücken der entsprechenden Schaltfläche werden automatisch die Inhalte 

aller sechs Datenblätter exportiert und innerhalb einer Datei gespeichert. 

• Aufgrund der Spaltenbegrenzung bei Excel (maximale Anzahl: 256) und der 

mehrspaltigen Ergebnisdarstellung in ASTERICS ist ein Export nach Excel nur 

bis zu maximal 50 Probenahmen möglich. Hinsichtlich des Exports nach Access 

gibt es keine derlei Beschränkungen. 

Gleichzeitig mit dem Export werden die Versionsdaten der aktuellen Softwareversion 

ausgegeben. Diese bestehen aus den Nummern der ASTERICS-Version, der Taxa- 

Datenbank sowie der Gewässertypen-Datenbank. Bei Excel werden diese in die Datei- 

Informationen geschrieben (abrufbar über das Menü Datei/Eigenschaften), bei Access 

in ein gesondertes Tabellenblatt. 

Export nach Access 

Durch Drücken der Schaltfläche „Export nach Access“ werden Bewertungsergebnisse, 

Metric-Ergebnisse sowie Taxalisten in eine Accessdatei exportiert und unter dem Dateinamen 

„Zusammenfassung“ oder einem selbst zu wählenden Namen gespeichert. 

Die Accessdatei besteht aus den Tabellen 

• Oekologische_Zustandsklasse: beinhaltet die Gesamtbewertung, die Bewertung 

der einzelnen Module sowie die Angabe, ob Ergebnisse gesichert sind oder 

nicht; 

• Module: beinhaltet die Ergebnisse der einzelnen Module, darunter die Namen 

der Core Metrics, numerische Ergebnisse, Scores sowie die Qualitätsklassen in 

textlicher Form (inklusive der Ergebnisse von Saprobienindex und Säureklasse); 

• Metrics: beinhaltet die Ergebnisse aller vom Programm berechneten Metrics; 

• Taxaliste: beinhaltet eine Gegenüberstellung von orginalen und gefilterten Taxalisten 

(nur Taxanamen und Schlüsselcodes, ohne Abundanzen); 

• Abundanzen: beinhaltet die Abundanzen der originalen und gefilterten Taxalisten; 

• _Metadaten: beinhaltet die Versionsnummern der Software (ASTERICS- 

Version, Version der Taxa-Datenbank, Version der Gewässertypen- 

Datenbank). 

Die Zuordnung der Informationen zu den Probenstellen zwischen den Tabellen Oekoloische_Zustandsklasse, 

Module, Metrics und Abundanzen erfolgt über das Schlüsselfeld 

ID_Probenname. Die Zuordnung der Informationen zu den Taxa zwischen den 

Tabellen Abundanzen und Taxaliste erfolgt über das Schlüsselfeld ID_Art.


2.8 Berechnung im Teilprogramm „Deutschland (AQEM System)“ 

Die inhaltlichen Details des Teilprogramms „Deutschland (AQEM System)“ sind im 

AQEM manual (verfügbar über www.aqem.de) dargestellt. Das System deckt fünf der 

deutschen Gewässertypen ab und hat zum Ziel, den Einfluss degradierter Gewässermorphologie 

auf das Makrozoobenthos zu bewerten; die Metrics unterscheiden sich 

daher von den im Teilprogramm „Deutschland (Perlodes)“ verwendeten. 

Taxalisten, die mit dem System berechnet werden, sollten mit einer „Multi-Habitat- 

Sampling“-Methode, wie sie im AQEM manual beschrieben wird, erhoben sein, andernfalls 

sind die Bewertungsergebnisse nicht interpretierbar. 

2.8.1 Einstellung des Gewässertyps 

Nachdem alle Taxa erfolgreich importiert sind, wird automatisch das Fenster für die 

Einstellung der Fließgewässertypen und Stressoren geöffnet. 

Im oben gezeigten Beispiel wurden die Taxalisten von 12 Probenahmen importiert. Für 

jede importierte Liste können Staat, Fließgewässertyp, Stressor sowie der Status der 

Taxaliste(n) (original oder gefiltert) gewählt werden. Die Einstellungen können entweder 

für alle Taxalisten gemeinsam oder für jede Liste getrennt vorgenommen werden: 

• Im oberen Bereich des Fensters befinden sich drei Kombinationsfelder in denen 

die Einstellungen für Staat, Gewässertyp und Stressor vorgenommen werden 

können. Mit Hilfe des vierten Kombinationsfelds kann eine Filteroption aktiviert 

werden, die bewirkt, dass die Taxaliste(n) vor der Berechnung gefiltert werden


(vgl. Abschnitt 2.6.2). Wenn die Kontrollfelder oberhalb der Kombinationsfelder 

markiert sind, werden durch Drücken der Schaltfläche “Anwenden auf alle” die 

gewählten Einstellungen auf alle Probenahmen der importierten Datei übertragen. 

• Die Einstellungen zu Staat, Gewässertyp, Stressor oder Status der Taxaliste 

können einzeln vorgenommen werden, indem auf eine der Zellen in der Tabelle 

dreifach geklickt wird. Es klappt eine Auswahlliste auf, mittels derer die gewünschte 

Einstellung vorgenommen werden kann. Die folgende Abbildung 

zeigt ein Beispiel, bei dem die Auswahlliste der Fließgewässertypen für eine 

einzelne Probenahme angezeigt wird. 

Welche Kombinationen dieser Felder möglich sind, wird in Kapitel 2.9 angegeben. 

Eine Reihe weiterer Optionen sind im Fenster „Einstellungen: Typ und Stressor“ möglich: 

• Die Schaltfläche „Export nach Excel” speichert die Tabelle mit den vorgenommenen 

Einstellungen in Form einer Excel-Datei. 

• Jede Probenahme kann durch drücken der Schaltfläche „Kopieren“ verdoppelt 

werden, um Probenahmen mit nicht eindeutiger Typzuordnung parallel mit einem 

anderem Typ berechnen zu können. 

• Jede Probenahme kann durch Drücken der Schaltfläche „Löschen“ aus der Liste 

entfernt werden. 

• Die Schaltfläche „OK” bestätigt die vorgenommenen Änderungen und kehrt 

zum Hauptfenster zurück.


• Die Schaltfläche „Abbrechen” widerruft alle vorgenommenen Änderungen und 

kehrt zum Hauptfenster zurück. 

• Die Schaltfläche „Hilfe” öffnet die Hilfedatei. 

2.8.2 Hauptfenster nach einem Datei-Import 

Nachdem alle importierten Taxa erkannt sowie Gewässertyp und Stressor für die Probenahmen 

ausgewählt worden sind, erscheint ein leicht verändertes Hauptfenster, wie 

in folgender Abbildung dargestellt: die Schaltflächen „Speichern“, „Speichern unter...“, 

„Einstellungen“ und „Berechnung“ sind nun aktiviert. Die erste Spalte der Tabelle im 

Hauptfenster zeigt den gewählten Schlüsselcode, die zweite den Taxonnamen und die 

dritte Spalte den Shortcode. Die darauf folgenden Spalten geben die Abundanz der 

Taxa in den jeweiligen Probenahmen wieder. 

Eine Reihe weiterer Optionen sind im Hauptfenster nach einem Datei-Import möglich: 

• Die Schaltfläche „Speichern“ speichert die importierte Datei unter dem gültigen 

Dateinamen. 

• Die Schaltfläche „Speichern unter…“ speichert die importierte Datei unter einem 

neu zu definierenden Dateinamen; ebenso kann der Dateityp gewählt 

werden (Excel oder ASCII). 

• Die Schaltfläche „Einstellungen“ öffnet das Fenster „Einstellungen: Typ und 

Stressor“, in dem der Fließgewässertyp, der zu bewertende Stressor und der 

Status der Taxaliste(n) ausgewählt werden können. Zu beachten ist, dass nicht 

alle denkbaren Kombinationen aus Gewässertyp und Stressor möglich sind. 

Nähere Informationen hierzu in Kapitel 2.9.


• Die Schaltfläche „Berechnung“ startet die Berechnung gemäß den Einstellungen, 

die für die einzelnen Probenahmen vorgenommen wurden. Nähere Informationen 

hierzu unter in Kapitel 2.8.3. 

• Die Schaltfläche „Autökologische Informationen“ öffnet ein großes Datenblatt, 

worin die ökologischen Zahlenwerte jedes Taxons der importierten Taxalisten 

aufgeführt sind. Diese Zahlenwerte dienen als Grundlage für die Berechnung 

der unterschiedlichen Metrics. Detailliertere Informationen werden im Fenster 

„Autökologische Informationen“ gegeben. 

2.8.3 Ergebnisse der Berechnung 

Die Ergebnisse werden in dem Fenster „Bewertung der Probestellen“ zusammengefasst. 

Das Fenster ist in zwei Datenblätter unterteilt: „Zusammenfassung” (Ergebnisse 

der Bewertung) und „Metrics” (Ergebnisse aller vom Programm berechneter Metrics). 

Es ist möglich, beide Datenblätter getrennt als Excel-Dateien zu speichern. 

Datenblatt „Zusammenfassung“ 

Das Datenblatt „Zusammenfassung”, das automatisch als erstes erscheint, gibt die 

Berechnungsergebnisse für das Modul „Degradation der Gewässermorphologie“ („degradation 

in stream morphology“) wieder. Ergebnisse werden nur dann dargestellt, 

wenn eine der gültigen Kombinationen aus Gewässertyp und Stressor im Fenster „Einstellungen: 

Typ und Stressor” ausgewählt wurde. Ansonsten erscheint das Ergebnis 

„unkown“. Die Metrics werden in Kapitel 4 am Ende dieses Handbuchs beschrieben. 

Oben abgebildet ist das Datenblatt „Zusammenfassung“ (Stressor „Degradation der 

Gewässermorphologie“). Für jede Probenahme werden zunächst im Kopf der Tabelle 

der Staat, der Gewässertyp, der Status der Taxaliste(n) (original oder gefiltert), der 

bewertete Stressor sowie die Qualitätsklasse wiedergegeben. Es wird der nachfolgend 

beschriebene Farbcode verwendet:


5 (high = sehr gut) blau 

4 (good = gut) grün 

3 (moderate = mäßig) gelb 

2 (poor = unbefriedigend) orange 

1 (bad = schlecht) rot 

Ebenfalls ausgegeben werden der Metric-Name, das Ergebnis der Core Metrics sowie 

die resultierende Klasse für jeden einzelnen Metric. 

Die Qualitätsklasse des Moduls „Degradation der Gewässermorphologie“ errechnet 

sich aus dem Mittelwert der Klassen der Core Metrics, wobei der German Fauna Index 

mit 50 % gewichtet wird. 

Datenblatt „Metrics“ 

Das Datenblatt „Metrics” zeigt die Ergebnisse aller Metrics, die vom Programm berechnet 

werden. Die meisten dieser Metrics werden nicht für die Berechnung der Qualitätsklasse 

herangezogen, sind aber unter Umständen hilfreich bei der Interpretation der 

Ergebnisse. 

Die Metrics werden in Kapitel 4 (Beschreibung der in das Programm integrierten Metrics) 

erläutert.


2.9 Mögliche Kombinationen aus Gewässertyp und Stressor 

Die nachfolgende Tabelle zeigt diejenigen Kombinationen aus Fließgewässertyp und 

Stressor, die von der Software im Rahmen des deutschen Bewertungssystems Perlodes 

berücksichtigt werden. 

Fließgewässertyp 

Typ 1.1: Bäche der Kalkalpen 

Typ 1.2: Kleine Flüsse der Kalkalpen 

Typ 2.1: Bäche des Alpenvorlandes 

Typ 2.2: Kleine Flüsse des Alpenvorlandes 

Typ 3.1: Bäche der Jungmoräne des Alpenvorlandes 

Typ 3.2: Kleine Flüsse der Jungmoräne des Alpenvorlandes 

Typ 4: Große Flüsse des Alpenvorlandes 

Typ 5: Grobmaterialreiche, silikatische Mittelgebirgsbäche 

Typ 5.1: Feinmaterialreiche, silikatische Mittelgebirgsbäche 

Typ 6: Feinmaterialreiche, karbonatische Mittelgebirgsbäche 

Typ 6_K: Feinmaterialreiche, karbonatische Mittelgebirgsbäche (Keuper) 

Typ 7: Grobmaterialreiche, karbonatische Mittelgebirgsbäche 

Typ 9: Silikatische, fein- bis grobmaterialreiche Mittelgebirgsflüsse 

Typ 9.1: Karbonatische, fein- bis grobmaterialreiche Mittelgebirgsflüsse 

Typ 9.1_K: Karbonatische, fein- bis grobmaterialreiche Mittelgebirgsflüsse (Keuper) 

Typ 9.2: Große Flüsse des Mittelgebirges 

Typ 10: Kiesgeprägte Ströme 

Typ 11: Organisch geprägte Bäche 

Typ 12: Organisch geprägte Flüsse 

Typ 14: Sandgeprägte Tieflandbäche 

Typ 15: Sand- und lehmgeprägte Tieflandflüsse 

Typ 15_groß: Große sand- und lehmgeprägte Tieflandflüsse 

Typ 16: Kiesgeprägte Tieflandbäche 

Typ 17: Kiesgeprägte Tieflandflüsse 

Typ 18: Löss-lehmgeprägte Tieflandbäche 

Typ 19: Kleine Niederungsfließgewässer in Fluss- und Stromtälern 

Typ 20: Sandgeprägte Ströme 

Typ 21_N: Seeausflussgeprägte Fließgewässer (Nord) 

Typ 21_S: Seeausflussgeprägte Fließgewässer (Süd) 

Typ 22: Marschengewässer 

Typ 23: Rückstau- bzw. brackwasserbeeinflusste Ostseezuflüsse 

Allgemeine 

Degradation 

Stressor 

Saprobie 

Versauerung


Die nachfolgende Tabelle zeigt diejenigen Kombinationen aus Fließgewässertyp und 

Stressor, die von der Software im Rahmen des AQEM Systems berechnet werden. 

Diese können im Fenster „Einstellungen: Typ und Stressor“ ausgewählt werden. 

Staat Fließgewässertyp 

Deutschland 

(AQEM System) 

Typ 5: Grobmaterialreiche, silikatische Mittelgebirgsbäche 

Typ 9: Silikatische, fein- bis grobmaterialreiche 

Mittelgebirgsflüsse 

Typ 11: Organisch geprägte Bäche 

Typ 14: Sandgeprägte Tieflandbäche 

Typ 15: Sand- und lehmgeprägte Tieflandflüsse 

Schweden Tieflandbäche im Norden von Schweden 

Niederlande Tieflandbäche 

Tschechische 

Republik 

Bäche mittlerer Höhenlagen im Norden von 

Schweden (Small mid-altitude streams in Northern 

Sweden) 

Bäche mittlerer Höhenlagen borealer Mittelgebirge 

(Small mid-altitude streams in Boreal highlands) 

Bäche höherer Lagen des borealen Mittelgebirges 

(Small high-altitude streams in Boreal highlands) 

Mittelgroße Tieflandflüsse im Süden von Schweden 

Bäche des Hügellandes 

Schottergeprägte Flüsse östlicher Mittelgebirge 

Mittelgebirgsbäche der Karpaten 

Mittelgebirgsflüsse der Karpaten 

Österreich Mittelgebirgsflüsse im Böhmischen Massiv 

Nicht vergletscherte Bäche der kristallinen Alpen 

Kalkreiche Flüsse im Alpenvorland (Mid-sized 

calcareous pre-alpine streams) 

Flüsse in der Ungarischen Tiefebene 

Italien Silikatische Bäche der südlichen Alpen 

Kalkreiche Mittelgebirgsbäche des südlichen Apennin 

Kalkreiche Mittelgebirgsflüsse des südlichen Apennin 

Tieflandbäche in der Po-Ebene 

Portugal Mittelgebirgsbäche im Süden von Portugal 

Tieflandbäche im Süden von Portugal 

Allgemeine Degradation 

Degradation der Gewässermorphologie 

Stressor 

Organische Verschmutzung 

Versauerung


Staat Fließgewässertyp 

Tieflandflüsse im Süden von Portugal 

Griechenland Kalkreiche Flüsse im Westen von Griechenland 

Mittelgebirgsflüsse höherer Lagen im Nordosten 

von Griechenland 

Mittelgebirgsflüsse höherer Lagen im zentralen und 

nördlichen Griechenland 

Mittelgebirgsbäche im zentralen Griechenland (nur 

Sommer) 


Degradation der Gewässermorphologie 

Stressor 

Organische Verschmutzung 

Versauerung


2.10 Autökologische Informationen 

Für alle importierten Taxa werden in diesem Datenblatt die autökologischen Informationen 

aufgelistet, die auch Grundlage zur Berechnung der Metrics darstellen. Diese 

Informationen entstammen der Taxadatenbank. 

Die erste Spalte gibt den Taxonnamen an, die nächsten Spalten enthalten die Abundanzen 

der Taxa an den einzelnen Probestellen. In den darauf folgenden Spalten 

erscheinen die autökologischen Informationen und ökologischen Summenparameter, 

die mit der Ausgabe der übergeordneten Taxa beginnen. Es können die Informationen 

zu den originalen wie auch zu den gefilterten Taxalisten angezeigt werden (entsprechend 

der Schaltflächen am oberen Rand). 

Die autökologischen Informationen lassen sich durch Betätigen der Schaltfläche „Export 

nach Excel“ als Excel-Datei speichern.


Die Abkürzungen in den Spaltenköpfen werden nachfolgend erklärt: 

Abkürzung Erläuterung 

Taxonomische Einheiten 

TaxaGroup Name der taxonomischen Gruppe 

Family Familienname 

Subfamily Unterfamilienname 

s - - Deutscher Saprobienindex 

sin Saprobiewert (neue Version) 

sgn Gewichtungsfaktor (neue Version) 

sio Saprobiewert (alte Version) 

sgo Gewichtungsfaktor (alte Version) 

z - - Präferenz für Biozönotische Regionen (jeweils x von 10 Punkten) 

zeu Eukrenal (Quellen) 

zhy Hypokrenal (Quellbäche) 

zer Epirhithral (Obere Forellenregion) 

zmr Metarhithral (Untere Forellenregion) 

zhr Hyporhithral (Äschenregion) 

zep Epipotamal (Barbenregion) 

zmp Metapotamal (Brassenregion) 

zhp Hypopotamal (Brackwasser-Region) 

zli Litoral (Seenufer, Altarme, Weiher) 

zpr Profundal (Seeböden) 

zSou Zitat 

h - - Habitatpräferenzen (jeweils x von 10 Punkten) 

hpe Pelal (unverfestigte Feinsedimente: Schlick, Schlamm) 

har Argyllal (verfestigte Feinsedimente: Lehm, Ton) 

hps Psammal (Fein- bis Grobsand) 

hak Akal (Fein- bis Mittelkies) 

hli Lithal (Grobkies, Steine, große Blöcke) 

hph Phytal (Algen, Moose, höhere Wasserpflanzen) 

hpo POM (Totholz, Falllaub, Getreibsel, Detritus) 

hot andere 

hSou Zitat 

Strömungspräferenzen 

cup Kodierung: 1 = limnobiont (LB); 2 = limnophil (LP), 3 = limno- bis rheophil (LR); 4 = 

rheo- bis limnophil (RL), 5 = rheophil (RP); 6 = rheobiont (RB); 7 = indifferent (IN) 

cSou Zitat 

f - - Ernährungstypen (jeweils x von 10 Punkten) 

fgr Weidegänger und Schaber 

fmi Minierer 

fxy Holzfresser 

fsh Zerkleinerer 

fga Sammler und Sedimentfresser 

faf aktive Filtrierer 

fpf passive Filtrierer 

fpr Räuber 

fpa Parasiten 

fot andere 

fSou Zitat 

Versauerung



acidclass Säureklasse nach Braukmann (alt) 

acidclass 

new Säureklasse nach Braukmann und Biss (neu) 

l - - Fortbewegungstyp (jeweils x von 10 Punkten) 

lss schwebend / treibend 

lsd schwimmend / tauchend 

lbb grabend / bohrend 

lsw kriechend / laufend 

lse (semi)sessil 

lot andere 

s - - Saprobische Valenz nach Zelinka & Marvan (jeweils x von 10 Punkten) 

szx xenosaprob 

szo oligosaprob 

szb beta-mesosaprob 

sza alpha-mesosaprob 

szp polysaprob 

szs Saprobiewert 

szg Gewichtungsfaktor 

mas - Ephemeroptera-basierte Indizes (Italien) (Mayfly Average Score) 

masg MAS Gruppe 

mass MAS Wert 

masl MAS Wert (große Flüsse) 

masgl MAS Group (große Flüsse) 

NS - Saprobische Valenz (Niederlande) (jeweils x von 10 Punkten) 

NSX xenosapro 

NSO oligosaprob 

NSB beta-mesosaprob 

NSA alpha-mesosaprob 

NSP polysaprob 

IVD0 - Deutscher Fauna-Index 

IVD01 Wert für D01 (sandgeprägte Tieflandbäche) 

IVD02 Wert für D02 (organisch geprägte Bäche) 

IVD03 Wert für D03 (sand- und lehmgeprägte Tieflandflüsse) 

IVD04 Wert für D04 (grobmaterialreiche, silikatische Mittelgebirgsbäche) 

IVD05 Wert für D05 (silikatische, fein- bis grobmaterialreiche Mittelgebirgsflüsse) 

– diverse – 

Mod1 Index Sensitiver Taxa (Österreich) 

cz - Saprobische Valenz (Tschechien) (jeweils x von 10 Punkten) 

czx xenosaprob 

czo oligosaprob 

czb beta-mesosaprob 

cza alpha-mesosaprob 

czp polysaprob 

czsi Saprobiewert 

czv Gewichtungsfaktor 


AcidScore Säureindex nach Hendrikson & Medin 

ECO_P Potamon Typie Index nach Schöll et al. 

RTI Rhithron Typie Index nach Braukmann und Biss



RIB Rheoindex nach Banning 

AHT1 Steinbesiedler 

rst r- und K-Strategen 

SAI Schwedischer Säureindex gemäß operationale Taxaliste 

FI - Fauna-Index (Deutschland) 

FI011 Fauna-Index Typ 1.1 (Bäche der Kalkalpen) 

FI012 Fauna-Index Typ 1.2 (Kleine Flüsse der Kalkalpen) 

FI021 Fauna-Index Typ 2.1 (Bäche des Alpenvorlandes) 

FI022 Fauna-Index Typ 2.2 (Kleine Flüsse des Alpenvorlandes) 

FI031 Fauna-Index Typ 3.1 (Bäche der Jungmoräne des Alpenvorlandes) 

FI032 Fauna-Index Typ 3.2 (Kleine Flüsse der Jungmoräne des Alpenvorlandes) 

FI04 Fauna-Index Typ 4 (Große Flüsse des Alpenvorlandes) 

FI05 Fauna-Index Typ 5 (Grobmaterialreiche, silikatische Mitelgebirgsbäche) 

Fauna-Index Typ 9 (Silikatische, fein- bis grobmaterialreiche Mittelgebirgsflüs- 

FI09 

se) 

FI091 

Fauna-Index Typ 9.1 (Karbonatische, fein- bis grobmaterialreiche Mittelgebirgsflüsse) 

FI092 Fauna-Index Typ 9.2 (Große Flüsse des Mittelgebirges) 

FI091_K Fauna-Index Typ 9.1 Keuper (Silikatische, fein- bis grobmaterialreiche Mittelgebirgsflüsse 

– Keupergewässer) 

FI11_12 Fauna-Index Typ 11/12 (Organisch geprägte Bäche und Flüsse) 

FI14_16 Fauna-Index Typ 14/16 (Sand- und kiesgeprägte Tieflandbäche) 

FI15_17 Fauna-Index Typ 15/17 (Sand-, lehm- und kiesgeprägte Tieflandflüsse) 

FI152 Fauna-Index Typ 15_groß (Große sand- und lehmgeprägte Tieflandflüsse) 

FI19 Fauna-Index Typ 19 (Kleine Niederungsfließgewässer in Stromtälern) 

sal - Salinitätspräferenz gemäß Venedig-System 

salfr Süßwasser, Salinität < 0,5 psu 

salol oligohalin, Salinität 0,5 - < 5 psu 

salme mesohalin, Salinität 5 - < 18 psu 

salpo polyhalin, Salinität 18 - < 30 psu 

saleu euhalin, Salinität 30 - < 40 psu 

salSou Zitat 

l - LTI (Lake Outlet Index) nach Brunke 

ltiv LTI-Wert 

ltig Gewichtungsfaktor 

Port1 Wert des Portugisischen Index 

bmwp- Biological Monitoring Working Party (Großbritannien, Spain) 

bmwp BMWP-Wert (Großbritannien) 

bmwpe BMWP-Wert (Spanien) 

bmwphu BMPW-Wert (Hungarn) 

bmwpcz BMPW-Wert (Tschechien) 

bmwppl BMPW-Wert (Polen) 

bmwpgr1 BMPW-Wert (Griechenland), für Abundanzen 1% bis 10% 

bmwpgr BMPW (Griechenland), Code der Gruppenzugehörigkeit 


LIFE Wert des britischen LIFE Index 

Awic Wert des britischen Awic Index 

asdi Wert des österreichischen Strukturindex



SiRo Saprobiewert (Rumänien) 

slszs Saprobiewert (Slovakei) 

slszg Gewichtungsfaktor zum Saprobiewert (Slovakei) 

Neozoa_D Neozoenkennung (1 = Neozoe, 0 = kein Neozoe) 

SPEAR-Indizes 

SPEAR_pe 

st 

Einstufungen des SPEAR pesticides 

SPEAR_org Einstufungen des SPEAR organic 

SPEAR_art Einstufungen des SPEAR toxic


3. Batch modus 

Asterics 3.1 ist in der Lage, ohne Benutzereingaben selbstständig größerer Mengen an 

Taxalisten einzulesen und die Ergebnisse automatisiert abzuspeichern. 

Der Aufruf dieser Funktionalität kann entweder über eine Kommandozeile geschehen 

oder aus einem anderen Programm heraus. Dadurch ergibt sich eine einfache Möglichkeit, 

Asterics an bestehende Systeme anzubinden, durch Aufruf einer Steuerdatei 

(batch file) die Berechung zu starten und völlig selbstständig durchführen zu lassen. 

Für einen automatisierten Berechnungsvorgang werden alle erforderlichen Informationen 

dem Programm als Parameter beim Aufruf übergeben. In einer Log-Datei werden 

alle bei dem automatisierten Berechnungsvorgang durchgeführten Aktionen protokolliert. 

Der Aufruf muss in folgender Form erfolgen: 

asterics.exe/methode:Methode/taxa:Taxadatei/typ:Typdatei/export: Exportdatei 

/log:Logdatei 

Die Parameter /methode, /taxa, /typ, /export und /log können folgende Werte annehmen: 

/methode 

Gibt die der Berechnung zugrunde liegende Methode an. 

Folgende Werte sind möglich: 

- Deutschland (Perlodes) oder Perlodes 

- Deutschland (AQEM System) oder AQEM 

- Schweden oder Sweden 

- Niederlande oder Netherlands 

- Tschechische Republik oder Czech Republic 

- Österreich oder Austria 

- Italien oder Italy 

- Portugal 

- Griechenland oder Greece 

- Europa oder Europe 

/taxa 

Gibt die Datei an, welche die Taxaliste beinhaltet. Mögliche Formate sind MS-Excel 

und Text (csv) gemäß der Beschreibung in Kapitel 2.3. Bei der Endung '.xls' wird MS- 

Excel als Importformat festgelegt, sonst Text (csv). Der verwendete Taxacode wird 

automatisch aus der Überschriftenzeile der Taxadatei ermittelt. 

Erkannte Taxacodes: 

- ID_Art, ID-Art 

- Shortcode 

- DINNo, DV-Nr, DV-No 

- Taxon_Name, Taxonname


/typ 

Gibt die Datei an, welche den Gewässertyp und die Taxafilterung je Probenstelle beinhalten. 

Mögliches Format ist Text (csv). Der Dateiaufbau muß wie folgt sein: 

Für Methode 'Perlodes' und 'AQEM' ist zusätzlich die Taxalistenfilterung (original/gefiltert) 

anzugeben. 

1. Zeile – Überschrift – probe;streamtype;filter 

2. bis Anzahl Probenstelle Zeile – Daten – sample1;5;original 

Für Methode 'Österreich' und 'Schweden' ist zusätzlich der Stressor (degradation in 

stream morphology/organic pollution/acidification) anzugeben. 

1. Zeile – Überschrift – probe;streamtype;stressor 

2. bis Anzahl Probenstelle Zeile – Daten – sample1;mid-sized calcareous 

pre-alpine streams;organic pollution 

Für alle anderen Methoden: 

1. Zeile – Überschrift – probe;streamtype 

2. bis Anzahl Probenstelle Zeile – Daten – sample1;Medium sized lowland 

streams of southern portugal 

/export 

Gibt die Exportdatei an. Die Dateiendung entspricht gleichzeitig dem Exportformat. 

Wird die Endung '.xls' erkannt, erfolgt der Export im MS-Excel-Format, sonst im MS- 

Access-Format gemäß der Beschreibung in Kapitel 2.7. Eine bereits vorhandene Exportdatei 

wird automatisch überschrieben. 

Zu beachten: In der aktuellen Programmversion ist der Export nach MS-Access nur für 

die Methode 'Perlodes' verfügbar. 

/log 

Gibt die Logdatei an. In dieser Datei werden die Informationen zum automatischen 

Durchlauf der Berechnung gespeichert. Wenn die angegebene Logdatei vorhanden ist, 

werden die aktuellen Informationen an diese Datei angehängt. 

/test:ein 

Aktiviert den Testmodus. Im Testmodus werden die Taxa- und Typliste eingelesen und 

alle Prüfungen durchgeführt. Die Berechnung der Metrics und der Export werden nicht 

durchgeführt. 

Zu beachten: Die Groß-/Kleinschreibung bei den Parametern und deren Werten stellt 

keinen Einfluss dar. 

Beispiel: 

asterics.exe /methode:"perlodes" /Taxa:"c:\temp\MonsterID_ART.txt" 

/export:"c:\temp\export.mdb" /log:"c:\temp\test.log" /typ:"c:\temp\typliste.csv"


Logdatei: 

In der Logdatei werden die zur Berechnung angegebenen Daten, die durchgeführten 

Funktionen und erforderliche Datenänderungen sowie Fehler aufgelistet. 

Folgende Schritte werden angezeigt: 

#Start 

Zeigt die verwendete Programmversion. 

Beispiel: #Start - ASTERICS-Auto 3.1 

#DatumStart 

Zeigt Datum und Uhrzeit des Programmstarts an. 

Beispiel: #DatumStart: 08.06.2007 09:29:52 

#Parameter 

Listet die an das Programm übergebenen Parametern auf. 

Beispiel: 

#Parameter 

Methode: perlodes 

Taxadatei: 

C:\Daten\ECOPROF\Aqem\Batch\MusterDatensatz\Taxaliste_mit_TN.txt 

Typedatei: C:\Daten\ECOPROF\Aqem\Batch\MusterDatensatz\typliste.csv 

Exportdatei: C:\Daten\ECOPROF\Aqem\Batch\MusterDatensatz\export.mdb 

Logdatei: C:\Daten\ECOPROF\Aqem\Batch\MusterDatensatz\Log4.log 

Testmodus: Aus 

#Taxa eingelesen 

Gibt die Anzahl der aus der Taxadatei eingelesenen Taxa an 

Beispiel: #Taxa eingelesen: 158 

#Taxa ersetzt 

Gibt die Anzahl und die Taxa an, welche beim Importvorgang ersetzt wurden. 

Beispiel: 

#Taxa ersetzt: 2 

Baetis ersetzt durch Baetis sp. 

Hydropsyche ersetzt durch Hydropsyche sp. 

#Taxa gelöscht 

Gibt die Anzahl und die Taxa an, welche beim Importvorgang gelöscht wurden. 

Beispiel: 

#Taxa gelöscht: 2 

Liponeura decipiens - Gruppe gelöscht 

Cottus gobio gelöscht 

#Probenstellen eingelesen 

Gibt die Anzahl der aus der Taxadatei eingelesenen Probenstellen an. 

Beispiel: #Probenstellen eingelesen: 6


#Typliste eingelesen 

Gibt die Anzahl der aus der Typedatei eingelesenen Probenstellen und die Änderungen 

an. 

Beispiel: 

#Typliste eingelesen: 6 

Probenstelle konnte in der Taxaliste nicht gefunden werden. 

Probenstelle gelöscht, da kein Gewässertyp angegeben 

wurde. 

#Probenstellen gelöscht 

Gibt die Anzahl der aus der Probenstellenliste gelöschten Probenstellen an. 

Probenstellen werden aus der Liste für die Berechnung gelöscht, wenn die Zuordnung 

mit dem Gewässertyp und/oder mit dem Stressor nicht korrekt ist (siehe 

Typliste einlesen). 

Beispiel: 

#Probenstellen gelöscht: 1 

#Berechnung durchgeführt 

Zeigt an, dass die Berechnung der Probenstellen durchgeführt wurde. 

#Export durchgeführt 

Zeigt an, dass der Export nach 'Exportdatei' der Probenstellen durchgeführt 

wurde. 

#DatumEnde: 08.06.2007 09:32:48 

Zeigt Datum und Uhrzeit des Programmendes an. 

Beispiel: #DatumEnde: 08.06.2007 09:32:48 

#Ende 

Kennzeichnet das Ende der Logdatei 

Folgende Fehler können angezeigt werden: 

#Fehler: Einlesen der Daten nicht möglich – BatchMonsterDataSet 

#Fehler: Schlüsselcode ungültig 

#Fehler: Taxadatei konnte nicht gefunden werden. 

#Fehler: Typedatei konnte nicht gefunden werden. 

#Fehler: Exportdatei kann nicht erstellt werden. Export kann nicht durchgeführt werden. 

#Fehler: Template ist nicht vorhanden. Export kann nicht durchgeführt werden. 

Weitere unerwartete Fehler werden ebenfalls mit dem prefix '#Fehler:' in die Logdatei 

geschrieben.


Zulässige Einstellungen für die Typliste: 

Streamtype: 

Methode 'Perlodes' 

Für diese Methode genügt es, wenn die Typnummer angegeben wird. 

Folgende Typnummern können verwendet werden: 

01.1, 01.2, 02.1, 02.2, 03.1, 03.2, 4, 5, 05.1, 6, 06_K, 7, 9, 09.1, 09.1_K, 

09.2, 10, 11, 12, 14, 15, 15_groß, 16, 17, 18, 19, 20, 21_N, 21_S, 22, 23 

Methode 'AQEM' 

Für diese Methode genügt es, wenn die Typnummer angegeben wird. 

Die führende Null (0) kann dabei entfallen. 

Folgende Typnummern können verwendet werden: 

5, 9, 11, 14,15 

Methode 'Schweden' 

• Small lowland streams in Northern Sweden 

• Small mid-altitude streams in Northern Sweden 

• Small mid-altitude streams in Boreal Highlands 

• Small high-altitude streams in Boreal Highlands 

• Small lowland streams in South Swedish lowlands 

Methode 'Niederlande' 

• Small Dutch lowland streams 

Methode 'Tschechische Republik' 

• Mid-sized streams in eastern lower mountainous areas of Central 

Europe 

• Small streams in lower mountainous areas of the Carpathian area 

• Mid-sized streams in lower mountainous areas of the Carpathian area 

Methode 'Österreich' 

• Mid-sized streams in Hungarian Plains 

• Mid-sized calcareous pre-alpine streams 

• Small crystaline non glaciated alpine streams 

• Mid-sized streams in the Bohemian Massif 

Methode 'Italien' 

• Small-sized, calcareous, 200-800m (South Apennines) 

• Mid-sized, calcareous, 200-800m (North Apennines) 

• Small streams in the lowlands of the Po valley,


Methode 'Griechenland' 

• (Summer) Mid-sized calcareous streams in Western Greece 

• (Summer) Mid-sized high-altitude streams in North-Eastern Greece 

• (Summer) Mid-size high-altitude streams in Central and North Greece 

• (Winter) Mid-sized calcareous streams in Western Greece 

• (Winter) Mid-sized high-altitude streams in North-Eastern Greece 

• (Winter) Mid-size high-altitude streams in Central and North Greece 

Methode 'Europa' 

• Standard 

Stressor: 

Methode 'Österreich' 

• degradation in stream morphology 

• organic pollution 

Methode 'Schweden' 

• organic pollution 

• acidification 

• Filter 

• Methode 'Perlodes' und 'AQEM' 

• original 

• gefiltert


4. Beschreibung der in der Software verwendeten Metrics 

Die Software ASTERICS berechnet eine große Anzahl biologischer Indizes (sogenannter 

„Metrics“). Für die Bewertung der einzelnen Fließgewässertypen werden jeweils 

ausgewählte, gut geeignete Metrics verwendet. Um die Interpretation der Daten zu 

erleichtern, werden darüber hinaus auch die Ergebnisse aller der in die Software integrierten 

Metrics angezeigt. 

In diesem Kapitel werden Informationen zum Berechnungsmodus der einzelnen Metrics 

gegeben, auf welchen Stressor sie sich beziehen, und wie sie mit den Vorgaben 

der Wasserrahmenrichtlinie harmonisieren. Die Reihenfolge der Metrics orientiert sich 

dabei an jener innerhalb des Datenblatts „Metrics“. Zur Orientierung sind in nachfolgender 

Tabelle die Seitenzahlen der wichtigsten Metrics aufgeführt: 

ab Seite 56 Abundanz, Taxazahl 

Saprobienindex (nach ZELINKA & MARVAN) 

ab Seite 58 Deutscher Saprobienindex (DIN 38 410): alt und neu 

ab Seite 62 Saprobienindizes: Niederlande, Tschechien, Rumänien, Slovakei 

ab Seite 64 BMWP und ASPT (England, Spanien, Ungarn, Tschechien und weitere) 

ab Seite 68 Danish Stream Fauna Index, Belgian Biotic Index, Mayfly Average Score 

ab Seite 75 Diversitätsmaße (Simpson, Shannon-Wiener, Margalef) 

Eveness 

ab Seite 77 Säureindizes (BRAUKMANN, HENDRIKSON & MEDIN) 

Seite 79 Deutscher Faunaindex (AQEM-System) 

Seite 80 Deutscher Faunaindex (Perlodes) 

Seite 81 Lake Outlet Index 

ab Seite 82 Potamon-Typie-Index (Mischprobe, Einzelprobe) 

Seite 85 r- und K-Strategen 

Seite 87 Präferenz für Biozönotische Regionen 

Seite 89 Strömungspräferenz 

ab Seite 90 Rheoindex (nach BANNING) 

Seite 92 Rhithron-Typie-Index (RTI) 

ab Seite 93 Habitatpräferenz, Aufenthaltstyp (nach BRAUKMANN) 

ab Seite 95 Ernährungstypen, RETI 

Seite 97 Fortbewegungstyp 

Seite 98 Salinitätspräferenz 

ab Seite 99 Anzahl EPT-Taxa, Abundanz, EPT% 

ab Seite 105 SPEAR-Indizes


Abundanz [Individuen/m 2 ] 

Formel: 

Abundanz 

∑ 

= i 

n 

ni: Individuenanzahl des i-ten Taxons 

i 

Folgt den Vorgaben der Wasserrahmenrichtlinie bezüglich: 

Taxonomische 

Zusammensetzung 

Abundanz 

Geeignet zur Bewertung folgender Stressoren: 

Organische Belastung 

Taxazahl 

Degradation der 

Gewässermorphologie 

Versauerung 

Formel: 

Summe der einzelnen Taxa in den importierten Taxalisten. 


Taxonomische Zusam- 

Abundanz 

mensetzung 






Versauerung 

Verhältnis sensitive/insensitive 

Taxa 



taxa 


Diversität 

andere 

Diversität 

andere 

Fünf Saprobiestufen sind definiert : 

- xenosaprob (szx) sZ&Mx 

- oligosaprob (szo) sZ&Mo 

- beta-mesosaprob (szb) sZ&Mb 

- alpha-mesosaprob (sza) sZ&Ma 

- polysaprob (szp) sZ&Mp 

Wenn Informationen über die saprobielle Valenz eines Taxon vorliegen, werden 10 Punkte auf die verschiedenen 

Saprobiestufen verteilt: bevorzugt eine Art zu 40% die xenosaprobe Zone (Stufe 1) und zu 

60% die oligosaprobe Zone (Stufe 2), so werden für dieses Taxon der Stufe 1 vier Punkte und der Stufe 

2 sechs Punkte zugeordnet. Alle anderen Stufen werden für diese Art mit 0 bewertet. 

Formeln: 

Derjenige prozentuale Anteil der Lebensgemeinschaft, der eine bestimmte Saprobiestufe repräsentiert, 

wird folgendermaßen bestimmt : 

∑ 

s 

v ⋅ ni 

100 

⋅ 

10 

Z &M 

i 

SV Z &M 

v = 

i 

∑ni 

i 

v: saprobielle Valenzen (xenosaprob, oligosaprob, beta-mesosaprob, alpha-mesosaprob, polysaprob) 

ni: Anzahl der Individuen oder Häufigkeitsklassen des i ten Taxons 

..... Fortsetzung nächste Seite



Der Saprobiewert (szs) sZ&Ms wird wie folgt berechnet: 

0 ⋅ sZ 

&M 

x + 1⋅ 

sZ 

&M 

o + 2 ⋅ sZ 

&M 

a + 3⋅ 

sZ 

&M 

b + 4 ⋅ sZ 

&M 

p 

sZ 

&M 

s = . 

10 

Der Saprobienindex nach Zelinka & Marvan wird wie folgt berechnet: 

∑s 

Z &M 

si 

⋅ sZ 

&M 

gi 

⋅ ni 

i 

SI Z & M = 

∑s 

Z &M 

gi 

⋅ ni 

i 

sZ&Mg: Gewichtungsfaktor (szg) 

i: im Saprobienindex eingestufte Art {sZ&Mg≠0} 

Für die Metrics xeno [%] (HK) und oligo [%] (HK) werden die Individuenzahlen wie folgt in Häufigkeitsklassen 

umgerechnet: 

f 

( n) 

⎧0 

⎪ 

⎪ 

1 

⎪2 

⎪ 

3 

= ⎨ 

⎪4 

⎪5 

⎪ 

⎪6 

⎪ 

⎩7 

für n 

für 0 

für 2 

= 0 

für 320 

< n < 2 

≤ n < 21 

für 21 ≤ n < 41 

für 41 ≤ n < 81 

für 81 ≤ n < 160 

für 161 ≤ n ≤ 320 

< n 

Spaltenüberschriften in der autökologischen Datenbank: 

szx Saprobiestufe (Zelinka & Marvan): xenosaprob (x von 10 Punkten) 

szo Saprobiestufe (Zelinka & Marvan): oligosaprob (x von 10 Punkten) 

szb Saprobiestufe (Zelinka & Marvan): beta-mesosaprob (x von 10 Punkten) 

sza Saprobiestufe (Zelinka & Marvan): alpha-mesosaprob (x von 10 Punkten) 

szp Saprobiestufe (Zelinka & Marvan): polysaprob (x von 10 Punkten) 

szs Saprobien-Index (Zelinka & Marvan): Saprobiewert 

szg Saprobien-Index (Zelinka & Marvan): Gewichtungsfaktor 


Taxonomische 


Abundanz 

Verhältnis 

sensitive/insensitive taxa 

Diversität 





Versauerung 

Allgemeine 

Degradation 

andere


Deutscher Saprobienindex (DIN 38 410)_alte Version 

(inkl. Streuungsmaß, Abundanzziffer, Anzahl der Indikatortaxa) 

Dieser Index wird wie der Deutsche Saprobienindex (neue Version) berechnet, allerdings mit einer 

Indikatorartenliste, die weniger Taxa enthält. Abweichungen gibt es zudem bei Zuordnung des Index zu 

den Gewässergüteklassen. 

Formel: 

Die Berechnung des Deutschen Saprobienindex orientiert sich an der Berechnung des Saprobienindex 

(PANTLE & BUCK, modif. durch MARVAN). Anstelle der Individuenzahl wird eine statistische Verteilung 

in Form von Klassen benutzt. 

f 

( n) 

⎧0 

⎪ 

⎪ 

1 

⎪2 

⎪ 

3 

= ⎨ 

⎪4 

⎪5 

⎪ 

⎪6 

⎪ 

⎩7 

für n = 0 

für 0 < n < 2,5 

für 2,5 ≤ n < 10,5 

für 10, 

5 

für 30, 

5 

für 100, 

5 

für 300, 

5 

für 1000,5 

Gewässergüteklasse 

⎧I 

⎪ 

⎪ 

I - II 

⎪II 

⎪ 

GK = ⎨II 

- III 

⎪III 

⎪ 

⎪III 

- IV 

⎪ 

⎩IV 

≤ n < 30,5 

≤ n < 100,5 

≤ n < 300,5 

≤ n < 1000, 

5 

≤ n 

für SI < 1.5 

für 1.5 

für 1.8 

≤ SI < 1.8 

≤ SI < 2.3 

für 2.3 ≤ SI < 2.7 

für 2.7 ≤ SI < 3.2 

für 3.2 

für 3.5 

≤ SI < 3.5 

≤ SI 


sio Deutscher Saprobienindex (alte Version) Saprobiewert 

sgo Deutscher Saprobienindex (alte Version) Gewichtungsfaktor 


Taxonomische 


Abundanz 



Weitere Kommentare: 



Versauerung 


taxa 

Allgemeine 

Degradation 

Diversität 

andere 

Referenz: 

DEV (DEUTSCHES INSTITUT FÜR NORMUNG E.V.) 1992. Biologisch-ökologische Gewässergüteuntersuchung: 

Bestimmung des Saprobienindex (M2). In: Deutsche Einheitsverfahren zur Wasser-, Abwasser- 

und Schlammuntersuchung. VCH Verlagsgesellschaft mbH, Weinheim, 1-13.


Deutscher Saprobienindex (neue Version) 

Streuungsmaß 

Abundanzziffer 

Anzahl der Indikatortaxa 


Formel: 

Dieser Index wird wie der Deutsche Saprobienindex (alte Version) berechnet, allerdings mit einer erweiterten 

Liste von Indikatorarten. Abweichungen gibt es zudem bei Zuordnung des Index zu den Gewässergüteklassen. 

Die Berechnung des Deutschen Saprobienindex orientiert sich an der Berechnung des Saprobienindex 

(PANTLE & BUCK, modif. durch MARVAN). Anstelle der Individuenzahl wird eine statistische Verteilung 

in Form von Klassen benutzt. 

f 

( n) 

⎧0 

⎪ 

⎪ 

1 

⎪2 

⎪ 

3 

= ⎨ 

⎪4 

⎪5 

⎪ 

⎪6 

⎪ 

⎩7 

für n = 0 

für 0 < n < 2,5 

für 2,5 ≤ n < 10,5 

für 10, 

5 

für 30, 

5 

für 100, 

5 

für 300, 

5 

für 1000,5 

≤ n < 30,5 

≤ n < 100,5 

≤ n < 300,5 

≤ n < 1000, 

5 

≤ n 

Der Saprobienindex wird folgendermaßen berechnet: 

∑sG 

si 

⋅ sG 

gi 

⋅ f ( ni 

) 

i SI G = 

, 

∑sG 

gi 

⋅ f ( ni 

) 

i 

sGs: Saprobiewert 

sGg: Gewichtungsfaktor 

i: im Saprobienindex eingestufte Art {sGg≠0} 

Folgende Werte stehen mit dem Saprobienindex in Beziehung: 

Streuungsmaß 

SM = 

2 

∑( 

sGsi 

− SIG 

) ⋅ sGg 

i ⋅ f ( ni 

) 

i 

( t −1) 

⋅∑ 

sGg 

i ⋅ f ( ni 

) 

i 

t: Anzahl der Indikatortaxa 

Abundanzziffer 

AZ = ∑ f ( ni 

) 

i 

i: im Saprobienindex eingestufte Art 

Anzahl der Indikatortaxa 

Anzahl der im Saprobiensystem eingestuften Taxa 


Dargestellt sind die Grenzen der „saprobiellen Qualitätsklassen“ für die Gewässertypen.


Typ 

Grund- 

zustand 

„Saprobielle Qualitätsklasse“ 

sehr gut gut mäßig unbefriedigend schlecht 

1.1 1,05 d1,20 >1,20-1,80 >1,80-2,55 >2,55-3,25 >3,25 

1.2 1,20 d1,35 >1,35-1,90 >1,90-2,60 >2,60-3,30 >3,30 

2.1 1,45 d1,60 >1,60-2,10 >2,10-2,75 >2,75-3,35 >3,35 

2.2 1,60 d1,70 >1,70-2,20 >2,20-2,80 >2,80-3,40 >3,40 

3.1 1,35 d1,45 >1,45-2,00 >2,00-2,65 >2,65-3,35 >3,35 

3.2 1,45 d1,60 >1,60-2,10 >2,10-2,75 >2,75-3,35 >3,35 

4 1,45 d1,60 >1,60-2,10 >2,10-2,75 >2,75-3,35 >3,35 

5 1,35 d1,45 >1,45-2,00 >2,00-2,65 >2,65-3,35 >3,35 

5.1 1,45 d1,60 >1,60-2,10 >2,10-2,75 >2,75-3,35 >3,35 

6 1,60 d1,70 >1,70-2,20 >2,20-2,80 >2,80-3,40 >3,40 

6_K 1,60 d1,70 >1,70-2,20 >2,20-2,80 >2,80-3,40 >3,40 

7 1,45 d1,60 >1,60-2,10 >2,10-2,75 >2,75-3,35 >3,35 

9 1,45 d1,60 >1,60-2,10 >2,10-2,75 >2,75-3,35 >3,35 

9.1 1,60 d1,70 >1,70-2,20 >2,20-2,80 >2,80-3,40 >3,40 

9.1_K 1,65 d1,80 >1,80-2,25 >2,25-2,85 >2,85-3,40 >3,40 

9.2 1,65 d1,80 >1,80-2,25 >2,25-2,85 >2,85-3,40 >3,40 

10 1,75 d1,85 >1,85-2,30 >2,30-2,90 >2,90-3,45 >3,45 

11 1,65 d1,80 >1,80-2,25 >2,25-2,85 >2,85-3,40 >3,40 

12 1,85 d2,00 >2,00-2,40 >2,40-2,95 >2,95-3,45 >3,45 

14 1,65 d1,80 >1,80-2,25 >2,25-2,85 >2,85-3,40 >3,40 

15 1,75 d1,85 >1,85-2,30 >2,30-2,90 >2,90-3,45 >3,45 

15_groß 1,75 d1,85 >1,85-2,30 >2,30-2,90 >2,90-3,45 >3,45 

16 1,55 d1,65 >1,65-2,15 >2,15-2,75 >2,75-3,40 >3,40 

17 1,75 d1,85 >1,85-2,30 >2,30-2,90 >2,90-3,45 >3,45 

18 1,65 d1,80 >1,80-2,25 >2,25-2,85 >2,85-3,40 >3,40 

19 1,80 d1,90 >1,90-2,35 >2,35-2,90 >2,90-3,45 >3,45 

20 1,80 d1,90 >1,90-2,35 >2,35-2,90 >2,90-3,45 >3,45 

21_Nord 1,95 d2,05 >2,05-2,45 >2,45-2,95 >2,95-3,50 >3,50 

21_Süd 1,60 d1,70 >1,70-2,20 >2,20-2,80 >2,80-3,40 >3,40 

22 1,80 d1,90 >1,90-2,35 >2,35-2,90 >2,90-3,45 >3,45 

23 2,00 d2,10 >2,10-2,50 >2,50-3,00 >3,00-3,50 >3,50 

Spaltenüberschriften in der autökologischen Datenbank 

sin Deutscher Saprobienindex (neue Version) Saprobiewert 

sgn Deutscher Saprobienindex (neue Version) Gewichtungsfaktor 


Taxonomische 


Abundanz 


taxa 

Diversität 





Versauerung 

Allgemeine 

Degradation 

andere 

Weitere Kommentare:


Referenzen: 

ROLAUFFS, P., HERING, D., SOMMERHÄUSER, M., JÄHNIG, S. & RÖDIGER, S. (2003): Leitbildorientierte biologische 

Fließgewässerbewertung zur Charakterisierung des Sauerstoffhaushaltes. Umweltbundesamt 

Texte 11/03: 137 S. 

MEIER, C., BÖHMER, J., BISS, R.; FELD, C., HAASE, P., LORENZ, A., RAWER-JOST, C., ROLAUFFS, P., SCHIN- 

DEHÜTTE, K., SCHÖLL, F., SUNDERMANN, A., ZENKER, A. & HERING, D. (2006): Weiterentwicklung und Anpassung 

des nationalen Bewertungssystems für Makrozoobenthos an neue internationale Vorgaben. 

Abschlussbericht im Auftrag des Umweltbundesamtes, unveröffentlicht.


Niederländischer Saprobienindex 

Formel: 

Dieser Index wird genau wie der Saprobienindex nach ZELINKA & MARVAN berechnet, allerdings ohne 

einen Gewichtungsfaktor. 


NSX Niederländische Saprobiestufe xenosaprob (x von 10 Punkten) 

NSO Niederländische Saprobiestufe oligosaprob (x von 10 Punkten) 

NSB Niederländische Saprobiestufe beta-mesosaprob (x von 10 Punkten) 

NSA Niederländische Saprobiestufe alpha-mesosaprob (x von 10 Punkten) 

NSP Niederländische Saprobiestufe polysaprob (x von 10 Punkten) 


Taxonomische 


Abundanz 


taxa 

Diversität 





Versauerung 

Allgemeine 

Degradation 

andere 

Tschechischer Saprobienindex 

Formel: 

Dieser Index wird genau wie der Saprobienindex nach ZELINKA & MARVAN berechnet, inklusive des 

Gewichtungsfaktors, allerdings mit einer geringfügig geänderten Taxaliste 


szx Saprobiestufe zelinka&marvan: xenosaprob (x von 10 Punkten) 

szo Saprobiestufe zelinka&marvan: oligosaprob (x von 10 Punkten) 

szb Saprobiestufe zelinka&marvan: beta-mesosaprob (x von 10 Punkten) 

sza Saprobiestufe zelinka&marvan: alpha-mesosaprob (x von 10 Punkten) 

szp Saprobiestufe zelinka&marvan: polysaprob (x von 10 Punkten) 

szs Saprobienindex zelinka&marvan: Saprobiewert 

szg Saprobienindex zelinka&marvan: Gewichtungsfaktor 


Taxonomische 


Abundanz 


taxa 

Diversität 





Versauerung 


andere 


Referenz: 

Czech Standard No. 757716 (Water quality-Biological analysis-Determination of Saprobic index).


Rumänischer Saprobienindex 

Formel: 

Dieser Index wird wie der Saprobienindex nach PANTLE & BUCK (modif. durch MARVAN) berechnet, 

allerdings ohne einen Gewichtungsfaktor. 


SiRo Rumänischer Saprobienindex (Saprobiewert) 


Taxonomische 

Verhältnis sensiti- 

Abundanz 

Diversität 


ve/insensitive taxa 



Organische Be- 

Allgemeine 

Gewässermorpho- Versauerung 

andere 

lastung 

Degradation 

logie 

Slovakischer Saprobienindex 

Formel: 

Dieser Index wird wie der Saprobienindex nach ZELINKA & MARVAN berechnet, inklusive des Gewichtungsfaktors, 

allerdings mit einer geänderten Taxaliste 


slszs Slovakischer Saprobienindex (Saprobiewert) 

slszg Slovakischer Saprobienindex (Gewichtungsfaktor) 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine DegraGewässermorpho- 

Versauerung 

andere 

lastungdationlogie


BMWP (Biological Monitoring Working Party) 

Formel: 

Bestimmte Makroinvertebratenfamilien werden anhand ihrer Empfindlichkeit gegenüber organischer 

Belastung eingestuft. Der BMWP ist die Summe der vergebenen Werte aller in einer Taxaliste vorkommenden 

Familien. Jede Familie wird nur einmal gezählt, unabhängig von der Anzahl der vorhandenen 

Arten. 


bmwp BMWP Score 

bmwpf BMWP Family 


Taxonomische Zu- 


Abundanz 

Diversität 

sammensetzungve/insensitive 

taxa 





Versauerung 

andere 

lastungdationlogie 


Referenz: 

ARMITAGE, P.D., D. MOSS, J.F. WRIGHT & M.T. FURSE 1983. The performance of a new biological water 

quality score system based on macroinvertebrates over a wide range of unpolluted running-water sites. 

Water Res. 17, 333-347. 

ASPT (Average Score per Taxon) 

Formel: 

Der ASPT entspricht dem BMWP dividiert durch die Anzahl der Familien, die in der Taxaliste vorkommen. 

Jede Familie, die mit mehr als 2 Individuen in der Probe vorkommt, wird gezählt. 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

lastung 

Degradation 

logie 


Referenz: 

ARMITAGE, P.D., D. MOSS, J.F. WRIGHT & M.T. FURSE 1983. The performance of a new biological water 

quality score system based on macroinvertebrates over a wide range of unpolluted running-water 

sites.- Water Res. 17, 333-347.


BMWP (Biological Monitoring Working Party) (Spanische Version) 

Formel: 

Dieser Index wird genau wie der BMWP berechnet, allerdings mit kleinen Unterschieden in den eingestuften 

Familien und ihrer Werte. 


bmwpe BMWP Wert Spanien 

bmwpef BMWP Familie Spanien 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

lastung 

Degradation 

logie 


Referenz: 

ALBA-TERCEDOR, J. & A. SANCHEZ-ORTEGA 1988. Un metodo rapido y simple para evaluar la calidad 

biologica de las aguas corrientes basado en el de Hellawell (1978). Limnetica 4, 51-56. 

BMWP (Biological Monitoring Working Party) (Ungarische Version) 

Formel: 

Dieser Index wird genau wie der BMWP berechnet, allerdings mit Unterschieden in den eingestuften 



bmwphu BMWP-Wert Ungarn 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

lastung 

Degradation 

logie 

ASPT (Average Score per Taxon – Ungarische Version) 

Formel: 


Jede Familie wird gezählt. 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

lastung 

Degradation 

logie


BMWP (Biological Monitoring Working Party) (Tschechische Version) 

Formel: 




bmwpzc BMWP-Wert Tschechien 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

lastung 

Degradation 

logie 

ASPT (Average Score per Taxon – Tschechische Version) 

Formel: 


Jede Familie wird gezählt. 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

lastung 

Degradation 

logie 

BMWP (Biological Monitoring Working Party) (Polnische Version) 

Formel: 




bmwppl BMWP-Wert Polen 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

lastung 

Degradation 

logie


BMWP (Biological Monitoring Working Party) (Griechische Version) 

Formel: 

Dieser Index wird entsprechend dem BMWP berechnet, allerdings mit Unterschieden in den eingestuften 

Familien und ihrer Werte sowie einer abundanzabhängigen Indikatorwertzuweisung (siehe unten) 


bmwpgr1 BMPW-Wert Griechenland (nur für Abundanzen 1% bis 10%) 

bmwpgr BMPW Griechenland (Code der Gruppenzugehörigkeit) 


Taxonomische 


Abundanz 


taxa 

Diversität 





Versauerung 

Allgemeine 

Degradation 

andere


DSFI (Danish Stream Fauna Index) 

Diversity Groups 

Formel: 

Die Grundlage des DSFI ist das Auftreten sogenannter “Diversitäts-Gruppen” (DG) und “Indikator- 

Gruppen” (IG). 

Diversitäts-Gruppen: 

Den folgenden Taxa wurde der Wert +1 zugeordnet: 

Tricladida 

Gammarus (Gattung) 

jede Gattung der Plecoptera 

jede Familie der Ephemeroptera 

Elmis (Gattung) 

Limnius (Gattung) 

Elodes (Gattung) 

Rhyacophilidae 

Ancylus (Gattung) 

jede Familie der köchertragenden Trichoptera 

Den folgenden Taxa wurde der Wert –1 zugeordnet: 

Oligochaeta (Gruppe), nur wenn 100 oder mehr Individuen in der Probe vorkommen 

Helobdella (Gattung) 

Erpobdella (Gattung) 

Asellus (Gattung) 

Sialis (Gattung) 

Psychodidae 

Chironomus (Gattung) 

Eristalinae (Unterfamilie) 

Sphaerium (Gattung) 

Lymnaea (Gattung) 

Der Zahlenwert der Diversitäts-Gruppen (DG) ist die Summe der Werte aus obiger Liste, 

jedes Taxon aus der Probe wird nur einmal gezählt. 

Indikator Gruppen (IG): 

IG 1: 

Taxa Taxonom. Ebene Mindestanzahl Individuen 

Brachyptera Gattung 2 

Capnia Gattung 2 

Leuctra Gattung 2 

Isogenus Gattung 2 

Isoperla Gattung 2 

Isoptena Gattung 2 

Perlodes Gattung 2 

Protonemura Gattung 2 

Siphonoperla Gattung 2 

Ephemeridae Familie 2 

Limnius Gattung 2 

Glossosomatidae Familie 2 

Sericostomatidae Familie 2 

IG 2: 


Asellus Gattung 5 

Chironomus Gattung 5 

Amphinemura Gattung 2


Taeniopteryx Gattung 2 

Ametropodidae Familie 2 

Ephemerellidae Familie 2 

Heptageniidae Familie 2 

Leptophlebiidae Familie 2 

Siphlonuridae Familie 2 

Elmis Gattung 2 

Elodes Gattung 2 

Rhyacophilidae Familie 2 

Goeridae Familie 2 

Ancylus Gattung 2 

IG 3: 


Chironomus Gattung 5 

Gammarus Gattung 10 

Caenidae Familie 2 

alle anderen Trichoptera 5 

IG 4: 


Gammarus Gattung 10 

Asellus Gattung 2 

Caenidae Familie 2 

Sialis Gattung 2 

alle anderen Trichoptera 2 

IG 5: 


Oligochaeta 100 

Eristalinae 2 

Gammarus Gattung < 10 

Baetidae Familie 2 

Simuliidae Familie 25 

IG 6: 


Tubificidae Familie 2 

Psychodidae Familie 2 

Chironomidae Familie 2 

Eristalinae 2 

IG DSFI 

IG 1-Gruppen e 2 Und Anzahl an DG´s d -2 – 

-1 d DG d 3 5 

4 d DG d 9 6 

e 10 7 

IG 1-Gruppen = 1 Und Anzahl an DG´s d -2 – 

-1 d DG d 3 4 

4 d DG d 9 5 

e 10 6 

IG 1-Gruppen = 0 Und Anzahl von Asellus sp. e 5 gehe zu IG 3 

Oder Anzahl von Chironomus sp. e 5 gehe zu IG 4 

Anders gehe zu IG 2


IG 2-Gruppen > 0 Und Anzahl an DG´s d -2 4 

-1 d DG d 3 4 

4 d DG d 9 5 

e 10 5 

IG 2-Gruppen = 0 Und Anzahl von Chironomus sp. e 5 gehe zu IG 4 


-1 d DG d 3 4 

4 d DG d 9 4 

e 10 4 

IG 4-Gruppen e 2 Und Anzahl an DG´s d -2 3 

-1 d DG d 3 3 

4 d DG d 9 4 

e 10 – 

IG 4-Gruppen = 1 Und Anzahl an DG´s d -2 2 

-1 d DG d 3 3 

4 d DG d 9 3 

e 10 – 

Oligochaeta e 100 gehe zu IG 5 

Eristalinae e 2 gehe zu IG 6 

IG 5-Gruppen e 2 Und Anzahl an DG´s d -2 2 

-1 d DG d 3 3 

4 d DG d 9 3 

e 10 – 

IG 5-Gruppen = 1 Oder Anzahl Oligochaeta e 100 

Und Anzahl an DG´s d -2 2 

-1 d DG d 3 2 

4 d DG d 9 3 

e 10 – 


-1 d DG d 3 1 

4 d DG d 9 – 

e 10 – 


dsfis DSFI Familie 

dsfi1 DSFI Indikator Gruppe 1 







Taxonomische 


Abundanz 


taxa 

Diversität 





Versauerung 


andere 


Referenz: 

SKRIVER, J., N. FRIBERG & J. KIRKEGAARD, 2001. Biological assessment of running waters in Denmark: 

introduction of the Danish Stream Fauna Index (DSFI). Verhandlungen der Internationale Vereinigung 

für Theoretische und Angewandte Limnologie, 27(4), 1822-1830.


BBI (Belgian Biotic Index) 

Formel: 

Grundlage des BBI ist eine Liste von Werten und eine Berechnungsmatrix. 

Wert Gruppe Taxonomische Ebene 

1 Plecoptera Gattung 

Heptageniidae 

2 Trichoptera (köchertragend) Familie 

3 Ancylidae Gattung 

Ephemeroptera (außer Heptageniidae) Gattung 

4 Aphelocheirus Gattung 

Odonata Gattung 

Gammaridae Gattung 

Mollusca (außer Spaeriidae) Gattung 

5 Asellidae Gattung 

Hirudinea Gattung 

Sphaeriidae Gattung 

Hemiptera (außer Aphelocheirus) 

6 Tubificidae 

Chironomus thummi + plumosus Art 

7 Syrphidae + Eristalinae Familie 

Taxa mit mindestens zwei Individuen werden entsprechend der taxonomischen Ebenen in obiger Liste 

gezählt (z. B. jede Gattung der Plecoptera mit 2 oder mehr Individuen). Für die Berechnung wird die 

Anzahl der Taxa mit den niedrigsten in der Probe vorkommenden Werten benötigt sowie die Gesamtzahl 

der Taxa. Diese Zahlen werden für die folgenden Matrix benötigt: 

niedrigster Taxa mit gesamte Anzahl Taxa 

Wert diesem Wert 0-1 2-5 6-10 11-15 >15 

1 e 2 – 7 8 9 10 

1 = 1 5 6 7 8 9 

2 e 2 – 6 7 8 9 

2 = 1 5 5 6 7 8 

3 > 2 – 5 6 7 8 

3 1-2 3 4 5 6 7 

4 e 1 3 4 5 6 7 

5 e 1 2 3 4 5 – 

6 e 1 1 2 3 – – 

7 e 1 0 1 1 – – 


bbif BBI Familie 

bbig BBI Indikator Group 


Taxonomische Zu- 


Abundanz 

Diversität 

sammensetzungve/insensitive 

taxa 




Allgemeine 


andere 

lastung 

Degradation 

logie 

Referenzen: 

DE PAUW, N. & G. VANHOOREN 1983. Method of biological quality assessment of watercourses in Belgium. 

Hydrobiologia 100, 153-168. 

DE PAUW, N., P.F. GHETTI, D.P. MANZINI & D.R. SPAGGIARI 1992. Biological assessment methods for 

running water. In: River Water Quality. Ecological Assessment and Control. (eds. P.J. Newman, M.A. 

Piavaux & R.A. Sweeting), Commission of the European Communities, EUR 14606 En-Fr, 217-248.


IBE (Indice Biotico Esteso) 

Güteklasse 

Systematic Units 

Formel: 

Die Berechnung des IBE verläuft ähnlich wie die des BBI. 

Grundlage ist die folgende Liste von Systematischen Einheiten (Systematic Units = SU): 

Taxonomische Gruppe Ebene der SU 

Plecoptera Gattung 

Trichoptera Familie 

Ephemeroptera Gattung 

Coleoptera Familie 

Odonata Gattung 

Diptera Familie 

Heteroptera Familie 

Crustacea Familie 

Gastropoda Familie 

Bivalvia Familie 

Tricladida Gattung 

Hirudinea Gattung 

Oligochaeta Familie 

Megaloptera Gruppe 

Planipennia Gruppe 

Nematoda Gruppe 

Nematomorpha Gruppe 

Um die Systematischen Einheiten zählen zu dürfen, ist eine Mindestanzahl an Individuen nötig. Für alle 

Plecoptera und einige Ephemeroptera (Heptageniidae und Leptophlebiidae) gibt es zwei verschiedene 

Mindestgrenzen, eine niedrige und eine hohe. In den Fällen, in denen „1 SU“ und „> 1 SU“ unterschieden 

werden (siehe obige Tabelle) werden verschiedene Abundanzgrenzen für diese Taxa benutzt. 

Wenn alle Taxa unter „1 SU“ gesammelt werden, muss die höhere Grenze benutzt werden. 

Der IBE wird dann mit Hilfe der folgenden Matrix berechnet: 

Faunist. Anzahl von Anzahl der SU 

Gruppe SU in dieser 

- Gruppe 0-1 2-5 6-10 11-15 16-20 21-25 26-30 31-35 36-... 

Plecoptera > 1 – – 8 9 10 11 12 13* 14* 

(Leuctra°) = 1 – – 7 8 9 10 11 12 13* 

Ephemeroptera > 1 – – 7 8 9 10 11 12 – 

(außer Baetidae, = 1 – – 6 7 8 9 10 11 – 

Caenidae°°) 

Trichoptera und > 1 – 5 6 7 8 9 10 11 – 

Baetidae, = 1 – 4 5 6 7 8 9 10 – 

Caenidae 

Gammaridae und/ alle – 4 5 6 7 8 9 10 – 

oder Atyidae und/ oberen 

oder Palaemonidae abwesend 

Asellidae und/ alle – 3 4 5 6 7 8 9 – 

oder Niphargidae oberen 

abwesend 

Oligochaeta oder alle 1 2 3 4 5 – – – – 

Chironomidae oberen 

abwesend 

andere all – – – – – – – – – 

Organismen oberen 

abwesend


° Wenn Leuctra das einzige Taxon der Plecoptera ist und keine Ephemeroptera (außer Baetidae und 

Caenidae) gefunden wurden, muss Leuctra auf der Ebene der Trichoptera in der Matrix eingeordnet 

werden. 

°° Baetidae und Caenidae müssen auf der Ebene der Trichoptera in der Matrix eingeordnet werden. 

– Zweifelhaftes Bewertung wegen: ungeeignete Besammlung, driftende Organismen eingeschlossen, 

instabile besiedelte Umgebung oder Fließgewässertypen, bei denen IBE nicht angewendet werden darf. 

* Diese Werte sind selten in italienischen Fließgewässern protokolliert worden. 

In denjenigen Fällen, in denen „1 SU“ and „>1 SU“ unterschieden werden (siehe obige Tabelle), werden 

verschiedene Grenzen benutzt. Im Falle von „1 SU“, muss die höhere Grenze benutzt werden, ansonsten 

wird die niedrigere Grenze verwendet. 

Die Güteklasse ist in folgender Weise mit dem IBE verknüpft: 

IBE Klasse 

> 9 I 

8-9 II 

6-7 III 

4-5 IV 

1-3 V 


ibef IBE Familie 

ibeg IBE Indicator Group 

ibell IBE Grenze (niedrig) 

ibelh IBE Grenze (hoch) 


Taxonomische 


Abundanz 


taxa 

Diversität 





Versauerung 

Allgemeine 

Degradation 

andere 


Referenz: 

GHETTI, P.F. 1997. Manuale di applicazione Indice Biotico Esteso (I.B.E.). I macroinvertebrati nel 

controllo della qualità degli ambienti di acque correnti. Provincia Autonoma di Trento, Agenzia 

provinciale per la protezione dell’ambiente.


MAS (Mayfly Average Score) 

Integrity Class 

Operational Units 

MTS 

Formel: 

Zur Berechnung des MAS wird lediglich die Gruppe der Ephemeroptera benutzt. Den verschiedenen 

Taxa werden folgende Werte zugewiesen: 

Wert Operationale Einheit 

(Operational Unit = OU) 

1 Baetis rhodani/Baetis buceratus Bewertungstaxa 

Caenis gr. macrura 

Siphlonurus 

3 Brachycercus Hilfstaxa 

Caenis Gr. 3 

Ephemerella/Serratella 

Habroleptoides 

Paraleptophlebia 

Ephoron 

Potamanthus 

Oligoneuriella 

Thraulus 

Torleya 

Ecdyonurus 

Choroterpes 

Acentrella 

Baetidae Gr. A 

Baetidae Gr. B 

Centroptilum 

Cloeon 

Procloeon (einfache Kiemen) 

Pseudocentroptilum/Procloeon (doppelte Kiemen) 

5 Caenis Gr. 5 Indikatortaxa 

Ephemera 

Epeorus 

Heptagenia 

Electrogena 

Rhithrogena Gr. A 

Rhithrogena Gr. B 

Rhithrogena Gr. C 

Rhithrogena Gr. D 

Rhithrogena Gr. E 

Rhithrogena Gr. F 

Habrophlebia 

Siphlonurus (wenn mindestens 2 andere 5´er-Werte 5 der OU’s vorhanden sind) 

Die Ephemeroptera-Gesamtsumme (Mayfly Total Score = MTS) ist die Summe aller Werte der OU´s in 

der Probe. Jede OU wird nur einmal gezählt. Die Einheiten mit dem Wert 5 werden nur dann gezählt, 

wenn mindestens 2 Individuen vorhanden sind. Sind weniger als zwei andere Einheiten mit einem Wert 

5 vorhanden, so wird Siphlonurus als eine Einheit mit dem Wert 1 gewertet. 

Die MTS wird folgendermaßen berechnet: 

MTS 

MAS = 

number of OUs 

Die Zahl der OU´s wird ebenfalls zur Bestimmung der Integritätsklasse benötigt: 

Es gibt zwei unterschiedliche Listen, eine Standardliste und eine Liste für große Flüsse. 

Spaltenüberschriften in der autökologischen Datenbank:


masg MAS Gruppe 

mass MAS Wert 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 





Organische Belas- 


Versauerung 

andere 

tungdationlogie 

Weitere Kommentare: Ein detailliertes Handbuch ist in Arbeit (BUFFAGNI et al., 2002 in preparation). 

Referenzen: 

BUFFAGNI, A. 1997. Mayfly community composition and the biological quality of streams. In: Landolt P. & 

M. Sartori (ed.). Ephemeroptera & Plecoptera: Biology-Ecology-Systematics, MTL, Fribourg, 235-246. 

BUFFAGNI, A. 1999. Pregio naturalistico, qualità ecologica e integrità della comunità degli Efemerotteri. 

Un indice per la classificazione dei fiumi italiani. Acqua & Aria 8, 99-107. 

BUFFAGNI, A. et al. 2002. Gli Efemerotteri e la qualità ecologica dei corsi d’acqua. Quad. Ist. Ric. Acque 

(In preparation). 

MAS (Mayfly Average Score) (Large Rivers) 

Integrity Class 

Operational Units 

MTS 

Dieser Index wird genauso berechnet wie der MAS, allerdings mit anderen Werten für die einzelnen 

Arten. 


masl MAS Wert (große Flüsse) 

masgl MAS Gruppe (große Flüsse) 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

tung 

Degradation 

logie 

Diversität (Simpson-Index) 

Formel: 

ni 

⋅ ( ni 

−1) 

DSimpson 

= 1 −∑ 

A⋅ 

A −1 

i 

( ) 

A: Abundanz 

ni: Zahl der Individuen der i ten Art 


Taxonomische 


Abundanz 






Allgemeine 


tung 

Degradation 

logie 


Referenz: 

SIMPSON, E. H. 1949. Measurement of Diversity. Nature 163, 688. 

Diversität 

andere


Diversität (Shannon-Wiener-Index) 

Formel: 

D 

S−W 

s 

⎛ ni 

⎞ ⎛ ni 

⎞ 

= −∑ 

⎜ ⎟ ⋅ ln⎜ 

⎟ 

= ⎝ A ⎠ ⎝ A 

i 1 

⎠ 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

tung 

Degradation 

logie 


Referenz: 

SHANNON, C. E. & W. WEAVER 1949. The Mathematical Theory of Communication. The University of 

Illinois Press, Urbana, IL. 

Diversität (Margalef-Index) 

Formel: 

D M 

= ( i −1) 

/ ln 

( A) 

i = Gesamtzahl der Taxa 

A = Gesamtzahl der Individuen/m² 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

tung 

Degradation 

logie 


Referenz: 

MARGALEF, R. 1984. The Science and Praxis of Complexity. Ecosystems: Diversität and Connectivity as 

measurable components of their complication. In Aida, et al. (Ed.). United Nations University, Tokyo, 

228-244. 

Evenness 

Formel: 

DS 

−W 

evenness = 

ln( 

t) 

t: Taxazahl 

Ds-w = Shannon-Wiener-Index 


Taxonomische 


Abundanz 






Allgemeine 


tung 

Degradation 

logie 

Diversität 

andere


Säureklassen (nach BRAUKMANN & BISS 2004) 

Säureklasse 1 (permanent neutral = nicht sauer) 

Säureklasse 2 (überwiegend neutral bis episodisch schwach sauer) 

Säureklasse 3 (periodisch kritisch sauer) 

Säureklasse 4 (periodisch stark sauer) 

Säureklasse 5 (permanent extrem sauer) 

Formel: 

Bestimmte Säureindikatorarten erhalten einen Wert von 1 bis 5. 

Zur Bewertung einer Probe werden die Häufigkeitsklassen aller Indikatorarten, beginnend bei 

den säureempfindlichsten Taxa der S96äureklasse 1, solange addiert, bis ein Schwellenwert 

von „4“ erreicht wird. 

Die Indikation, in der die Summe von 4 erreicht wird, bestimmt die Säurezustandsklasse. 


Acidclass new Säureklasse nach Braukmann & Biss 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

tung 

Degradation 

logie 


Metrik fließt in die Bewertung folgender Gewässertypen ein: 

5 (Silikatische Mittelgebirgsbäche: Gneis, Granit, Schiefer und übrige Vulkangebiete) 

5.1 (Feinmaterialreiche, silikatische Mittelgebirgsbäche: Buntsandstein, Sandbedeckung) 

Referenz: 

BRAUKMANN, U. 2000: Hydrochemische und biologische Merkmale regionaler Bachtypen in Baden- 

Württemberg. Landesanstalt für Umweltschutz Baden-Württemberg, Oberirdische Gewässer, Gewässerökologie 

56, 501pp. 

BRAUKMANN, U. & BISS, R. (2004): Conceptual study – An improved method to assess acidification in 

German streams by using benthic macroinvertebrates. Limnologica 34 (4): 433-450.


Säureindex (Hendrikson & Medin) 

Formel: 

Der Index wird berechnet als die Summe der höchsten Werte der Kriterien I – V unten. 

I. Anwesenheit von Eintagsfliegen, Steinfliegen und Köcherfliegen mit unterschiedlicher pH- 

Toleranz 

Taxa mit einem Indikatorwert von 3: 3 Punkte 




Maximalwert 3 Punkte, der Indikatorwert steht in Tabelle 1. 

II. Anwesenheit von Amphipoden 

Die Anwesenheit von Amphipoden ergibt einen Wert von 3 Punkten 

Maximalwert 3 Punkte 

III. Anwesenheit von Gruppen die empfindlich auf Versauerung reagieren, wie Hirudinea, 

Elmidae, Gastropoda und Bivalvia; jede ergibt einen Wert von 1 Punkt. 


IV. Verhältnis der Individuenzahl von Eintagsfliegen der Gattung Baetis und Nigrobaetis zu 

Steinfliegen (Plecoptera) 

Verhältnis > 1 scores 2 points 

Verhältnis 0.75 – 1 scores 1 point 

Verhältnis < 0.75 score 0 points 


V. Anzahl anwesender Taxa 

> = 32 Taxa ergibt 2 Punkte 

17 – 31 Taxa ergibt 1 Punkt 

< = 16 Taxa ergibt 0 Punkte 


Der Gesamtmaximalwert ist 14 Punkte. 


AcidScore Säurewert Hendrikson & Medin 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

tung 

Degradation 

logie 


Referenz: 

HENRIKSON, L. & M. MEDIN 1986. Biologisk bedömning av försurningspåverkan på Lelångens tillflöden 

och grundområden 1986. Aquaekologerna, Rapport till länsstyrelsen i Älvsborgs län.


Deutscher Fauna Index D01 





Formel: 

Grundlage des „Deutschen Fauna Index“ sind artspezifische Bewertungen (verschiedene Werte für 

jeden Gewässertyp)und er wird folgendermaßen berechnet: 

∑ sci 

⋅ a 

i 

Gesamtwert = N 

a 

N 

∑ 

i 

i 

i 

i = Nummer des Indikatortaxons 

N =Gesamtzahl der Indikatortaxa 

sci = Wert des i ten Taxons 

ai = Abundanzklasse des i ten Taxons 

Die Werte liegen zwischen –2 (Taxa, die bevorzugt in Flüssen mit stark degradierter Morphologie vorkommen) 

und +2 (Taxa, die bevorzugt in Flüssen mit narturnaher Morphologie vorkommen, z. B. xylophage 

Taxa). 

Klassengrenzen für Abundanzklassen 

f 

( n) 

⎧0 

⎪ 

⎪ 

1 

⎪2 

⎪ 

3 

= ⎨ 

⎪4 

⎪5 

⎪ 

⎪6 

⎪ 

⎩7 

für n = 0 

für 0 

< n < 2,5 

für 2,5 ≤ n < 10,5 

für 10, 

5 

für 30, 

5 

für 100, 

5 

für 300, 

5 

für 1000,5 

≤ n < 30,5 

≤ n < 100,5 

≤ n < 300,5 

≤ n < 1000, 

5 

≤ n 


IVD01 Deutscher Fauna Index Indikatorwert D01 






Taxonomische 


Abundanz 


taxa 

Diversität 





Versauerung 

Allgemeine 

Degradation 

andere 


Referenz: 

LORENZ, A., HERING, D., FELD, C. K. & ROLAUFFS, P. (2004): A new method for assessing the impact of 

hydromorphological degradation on the macroinvertebrate fauna in five German stream types. 

Hydrobiologia 516: 107-127.


Fauna-Index Typ 1.1 






Fauna-Index Typ 4 

Fauna-Index Typ 5 

Fauna Index Typ 9 

Fauna Index Typ 9.1 

Fauna Index Typ 9.2 

Fauna Index Typ 11/12 



Fauna Index Typ 15_groß 

Die Berechnung des Fauna-Index erfolgt anhand der gleichen Formel wie der „Deutsche Fauna Index 

D01 bis D05“. 

Dieser Metric erwies sich im Rahmen verschiedener Praxistests als für die Bewertung besonders geeignet 

und wurde durchverschiedene Experten überarbeitet. Die Taxaliste enthält nun mehr eingestufte 

Taxa, um eine stabilere Grundlage zu erhalten und für weitere Fließgewässertypen wurden die Indikatortaxa 

bestimmt. 


FI011 Fauna Index Indikatorwert Typ 1.1 






FI04 Fauna Index Indikatorwert Typ 4 





FI091_K Fauna Index Indikatorwert Typ 9.1 (Keuper) 

FI11_12 Fauna Index Indikatorwert Typ 11/12 



FI152 Fauna Index Indikatorwert Typ 15_groß 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

tung 

Degradation 

logie 


Referenz: 

MEIER, C., BÖHMER, J., BISS, R.; FELD, C., HAASE, P., LORENZ, A., RAWER-JOST, C., ROLAUFFS, P., SCHINDE- 

HÜTTE, K., SCHÖLL, F., SUNDERMANN, A., ZENKER, A. & HERING, D. (2006): Weiterentwicklung und Anpassung 

des nationalen Bewertungssystems für Makrozoobenthos an neue internationale Vorgaben. Abschlussbericht 

im Auftrag des Umweltbundesamtes. http://www.fliessgewaesserbewertung.de [Stand 

Mai 2006]. 

LORENZ, A., HERING, D., FELD, C. K. & ROLAUFFS, P. (2004): A new method for assessing the impact of 

hydromorphological degradation on the macroinvertebrate fauna in five German stream types. Hydrobiologia 

516: 107-127. 

Lake Outlet Typology Index (quan) (LTI(quan))


Formel: 

Zuerst werden die Abundanz der Probenahme in Häufigkeitsklassen (Ai) übersetzt und dann mit der 

folgenden Formel berechnet: 

LTI(quan) 

T 

∑ 

i= 

1 = T 

( LTI 

∑ 

i= 

1 

i 

⋅ A ⋅W 

) 

( A ⋅W 

) 

LTI (quan) Quantitativer Lake Outlet Typology Index 

LTIi 

Ökologiewert des Taxon (siehe Feld ltiv) 

Wi 

Wichtungsfaktor des Taxon (siehe Feld ltig) 

Ai, 

Relative Häufigkeitsklasse des i ten Taxon 

i Laufende Nr. der bewerteten Taxa 

i 

i 

i 

i 

Die Taxa erhalten einen Ökologiewert (ltiv) zwischen 1 und 5; je höher der Wert, desto spezifischer ist 

das Taxon für die Seenausfüsse. Der Wertebereich des LTI reicht von 1,0 bis 5,0. 


ltiv 


Taxonomische 


Abundanz 






Versauerung 

Verhältnis 

sensitive/insensitive 

taxa 

Allgemeine 

Degradation 

Diversität 

andere 

Referenz: 

BRUNKE, M. (2004): Stream typology and lake outlets – a perspective towards validation and assessment 

from nothern Germany (Schleswig-Holstein) – Limnologica 34, 460-478.


Potamon-Typie-Index (PTI) einer Mischprobe 

Formel: 

Zunächst wird die Zahl der Individuen eines Taxons in Abundanzklassen (Ai) übersetzt: 

(Ai) number of individuals 

0 0 0 

1 1 3 

2 4 12 

3 13 42 

4 43 142 

5 143 480 

6 481 1519 

7 1520 ∞ 

T 

∑ 

i= 

1 PTI = T 

δ PTI 

= 

( W 

∑ 

i= 

1 

⎛ 

⎜ 

⎜ 

⎜ 

⎜ 

⎝ 

i 

( G 

T 

∑ 

i= 

1 

⋅ G 

i 

i 

⋅ A ) 

⋅ A ) 

i 

i 

± δPTI 

2 ⎞ 

(( Wi 

− PTI) 

⋅Gi 

⋅ Ai 

) ⎟ 

⎟ 

T ⎟ 

( T −1) 

⋅∑ 

( Gi 

⋅Ai 

) ⎟ 

i= 

1 ⎠ 

PTI Potamon-Typie-Index 

ECOPi 

Ökologiewert des Taxon (siehe Feld ECO_P) 

Wi 

Ai, 

Gi 

W = 6 − ECOP 

i 

i 

Relative Abundanz des i ten Taxon 

G 

i 

i = 2 

( 5 ) W − 

T Anzahl der bewerteten Taxa 

i Laufende Nr. der bewerteten Taxa 

Voraussetzungen für die Gültigkeit: 

Formel Erklärung 

[1] δ PTI < 0, 

3 

Vorgabe einer maximal zulässigen Standardabweichung 

für ∂PTI 

[2] ( ) 2 

T min ≥ ECOmax 

− ECOmin 

+ 1 

Die geforderte minimale Anzahl der eingestuften 

Taxa. Tmin wird aus der Anzahl der besetzten 

ECO-Klassen geschätzt 

[3] 

T N 

100% 

⋅∑ 

( ∑ Ai 

, k ) 

Das Abundanzverhältnis AV der eingestuften 

zu allen Taxa muss größer als 50 % sein 

AV = 

S 

∑( ∑ A 

j= 

1 k = 1 

i= 

1 k = 1 

N 

j, 

k 

) 

> 50% 

Die Taxa erhalten einen Ökologiewert (ECOP) zwischen 1 und 5; je höher der Wert, desto spezifischer 

ist das Taxon für die Fließgewässerlängszone Potamal. Das Ergebnis des PTI reicht von 1,0 bis 5,0. 

Die Zuordnung der PTI-Werte in ökologische Zustandsklassen geschieht wie folgt:


ökologische Zustandsklasse PTI 

PTI 

(Asterics 3.1.1) (Asterics 3.3) 

1 sehr gut 1,00 - 1,90 1,00 - 1,80 

2 gut 1,91 - 2,60 1,81 - 2,60 

3 mäßig 2,61 - 3,40 2,61 - 3,40 

4 unbefriedigend 3,41 - 4,10 3,41 - 4,20 

5 schlecht 4,11 - 5,00 4,21 - 5,00 


ECO_P 


Taxonomische 


Abundanz 






Versauerung 

Verhältnis 


taxa 

Allgemeine 

Degradation 

Diversität 

andere 

Referenz: 

SCHÖLL, F., HAYBACH, A., & KÖNIG, B. (2005): Das erweiterte Potamontypieverfahren zur ökologischen 

Bewertung von Bundeswasserstraßen (Fließgewässertypen 10 und 20: kies- und sandgeprägte 

Ströme, Qualitätskomponente Makrozoobenthos) nach Maßgabe der EU-Wasserrahmenrichtlinie. 

Hydrologie und Wasserwirtschaft 49 (5), 234 – 247. 

Potamon-Typie-Index (PTI) von Einzelproben 

Formel: 

Die Vorgehensweise entspricht weitestgehend derjenigen der Mischprobe, jedoch wird hier die Verteilung 

der Organismen über die Einzelproben bei der Berechnung des PTI und der weiteren Indizes 

berücksichtigt. Die genaueren Angaben der Berechnung können der Programmdokumentation der BfG 

(Bundesamt für Gewässerkunde) entnommen werden. 

Voraussetzungen für die Gültigkeit: 

Formel Erklärung 

[1] δ PTI < 0, 

3 

Vorgabe einer maximal zulässigen Standardabweichung 

für ∂PTI 

[2] ( ) 2 

T min ≥ ECOmax 

− ECOmin 

+ 1 

Die geforderte minimale Anzahl der eingestuften 

Taxa. Tmin wird aus der Anzahl der besetzten 

ECO-Klassen geschätzt 

[3] 

T N 

100% 

⋅∑ 

( ∑ Ai 

, k ) 

Das Abundanzverhältnis AV der eingestuften 

zu allen Taxa muss größer als 50 % sein 

AV = 

S 

∑( ∑ A 

j= 

1 k = 1 

i= 

1 k = 1 

N 

j, 

k 

) 

> 50% 


ECO_P 


Taxonomische 


Abundanz 





Versauerung 

Verhältnis 


taxa 

Allgemeine 

Degradation 

Diversität 

andere


r- und K-Strategen 

Formel: 

rst = 

∑ no1 

+ no0 

∑ no1 

∑ 

no1 = Taxa Wert “1” im Feld “rst” (r-Stratege) 

no0 = Taxa Wert “0” im Feld “rst” (k-Stratege) 

Die Formel gibt die Beziehung zwischen r- und K-Strategen wieder. 


rst 


Taxonomische 


Abundanz 






Allgemeine 


tung 

Degradation 

logie 


Diversität 

andere 

Referenz: 

SCHÖLL, F., HAYBACH, A., & KÖNIG, B. (2005): Das erweiterte Potamontypieverfahren zur ökologischen 

Bewertung von Bundeswasserstraßen (Fließgewässertypen 10 und 20: kies- und sandgeprägte Ströme, 

Qualitätskomponente Makrozoobenthos) nach Maßgabe der EU-Wasserrahmenrichtlinie. Hydrologie 

und Wasserwirtschaft 49 (5), 234 – 247. 

Portuguese Index 

Formel: 

PI = Summe (relative Abundanz der Familie x, Punkte der Familie nach der Liste)/summe (relative Abundanz 

der Familien, die in der Punkteliste stehen). Maximalwert = 7; Minimalwert = 1. 


Port1 Wert des Portuguese Index 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

tung 

Degradation 

logie 

Referenz: 

Neuer Metric entwickelt in AQEM.


Anzahl sensitiver Taxa (Österreich) 

Formel: 

Zählt die sensitiven Taxa, die im Feld bestimmt werden können (entsprechend einer Österreichischen 

Liste). 


Mod1 Austrian Sensitive Taxa score 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

tung 

Degradation 

logie 

Referenz: 

MOOG, O., A. CHOVANEC, J. HINTEREGGER & A. RÖMER 1999. Richtlinie zur Bestimmung der saprobiologischen 

Gewässergüte von Fließgewässern. Bundesministerium für Land- und Forstwirtschaft, Wien.


Zonierung (prozentualer Anteil einer Lebensgemeinschaft, der eine bestimmte Zone 

bevorzugt) 

• Krenal (Quelle) [%] 

• Hypocrenal (Quellbach) [%] 

• Epirhithral (obere Forellenregion) [%] 

• Metarhithral (untere Forellenregion) [%] 

• Hyporhithral (Äschenregion) [%] 

• Epipotamal (Barbenregion) [%] 

• Metapotamal (Brassenregion) [%] 

• Hypopotamal (Brackwasser) [%] 

• Litoral [%] 

• Profundal [%] 

• 

Formel: 

keine Daten verfügbar [%] 

Wenn Informationen über eine Zonenpräferenz vorhanden sind, werden 10 Punkte an die verschiedenen 

Zonen vergeben: wenn z. B. eine Art zu 40% das Epirhithral (Typ 1) und zu 60% das Hyporhithral 

(Typ 2) bevorzugt, werden für Typ 1 4 und Für Typ 2 6 Punkte vergeben. Alle anderen Parameter sind 

0. Sind keine Informationen über eine Zonenpräferenz vorhanden, so sind alle Parameter 0. 

Die Gesamtsumme aller Parameter muss entweder 0 oder 10 ergeben. 

Der prozentuale Anteil der individuellen Präferenzen wird aus den oben genannten Einstufungen und 

der Abundanz aller Taxa errechnet (inklusive der nicht eingestuften Taxa). Der Anteil der Taxa für die 

alle Parameter 0 sind wird unter „keine Daten verfügbar“ eingeordnet. 


zeu Präferenz für Krenal (Quelle) (x von 10 Punkten) 

zhy Präferenz für Hypocrenal (Quellbach) (x von 10 Punkten) 

zer Präferenz für Epirhithral (obere Forellenregion) (x von 10 Punkten) 

zmr Präferenz für Metarhithral (untere Forellenregion) (x von 10 Punkten) 

zhr Präferenz für Hyporhithral (Äschenregion) (x von 10 Punkten) 

zep Präferenz für Epipotamal (Barbenregion) (x von 10 Punkten) 

zmp Präferenz für Metapotamal (Brassenregion) (x von 10 Punkten) 

zhp Präferenz für Hypopotamal (Brackwasser) (x von 10 Punkten) 

zli Präferenz für Litoral (x von 10 Punkten) 

zpr Präferenz für Profundal (x von 10 Punkten) 


Taxonomische 


Abundanz 


taxa 

Diversität 





Versauerung 

Allgemeine 

Degradation 

andere 


Referenz: 

Die Information über die Zonenpräferenz sind entnommen aus: 

(Erste Priorität): MOOG, O. (Ed.) 1995. Fauna Aquatica Austriaca. 1. Auflage, Wasserwirtschaftskataster, 

Bundesministerium für Land- und Forstwirtschaft, Wien. 

(Zweite Priorität): SCHMEDTJE, U. & M. COLLING 1996. Ökologische Typisierung der aquatischen Makrofauna. 

Informationsberichte des Bayerischen Landesamtes für Wasserwirtschaft 4/96. 

(Dritte Priorität): Durch das AQEM-Konsortium zusammengestellte Informationen.


Index der Biozönotischen Regionen 

Formel: 

REGi = Zonierungsindex für Taxon i 

REGi = Σ (euci + hyci + …profi)/10 

euci = eucrenale Valenz von Taxon i 

hyci = hypocrenale Valenz von Taxon i 

…etc. 

Ai = Abundanz von Taxon I 


Zeu Präferenz für Krenal (Quelle) (x von 10 Punkten) 

Zhy Präferenz für Hypocrenal (Quellbach) (x von 10 Punkten) 

Zer Präferenz für Epirhithral (obere Forellenregion) (x von 10 Punkten) 

Zmr Präferenz für Metarhithral (untere Forellenregion) (x von 10 Punkten) 

Zhr Präferenz für Hyporhithral (Äschenregion) (x von 10 Punkten) 

Zep Präferenz für Epipotamal (Barbenregion) (x von 10 Punkten) 

Zmp Präferenz für Metapotamal (Brassenregion) (x von 10 Punkten) 

Zhp Präferenz für Hypopotamal (Brackwasser) (x von 10 Punkten) 

Zli Präferenz für Litoral (x von 10 Punkten) 

Zpr Präferenz für Profundal (x von 10 Punkten) 


Taxonomische 


Abundanz 


Taxa 





Versauerung 

Allgemeine 

Degradation 

Diversität 

andere


Strömungspräferenz (prozentualer Anteil einer Lebensgemeinschaft, der eine bestimmte 

Strömungsgeschwindigkeit bevorzugt) 

• Typ LB (limnobiont, kommt nur in Stillgewässern vor) [%] 

• Typ LP (limnophil, kommt bevorzugt in Stillgewässern vor, strömungsmeidend, 

selten in langsam fließenden Gewässern) [%] 

• Typ LR (limno- bis rheophil, kommt bevorzugt in Stillgewässern vor; auch regelmäßig 

in langsam fließenden Gewässern) [%] 

• Typ RL (rheo- bis limnophil, kommt üblicherweise in Fließgewässern vor; bevorzugt 

langsam fließende Gewässer und strömungsberuhigte Zonen, auch in 

Stillgewässern) [%] 

• Typ RP (rheophil, kommt in Fließgewässern vor, bevorzugt Zonen mit mäßiger 

bis hoher Strömungsgeschwindigkeit) [%] 

• Typ RB (rheobiont, kommt in Fließgewässern vor, an Zonen mit hoher Strömungsgeschwindigkeit 

gebunden) [%] 

• Typ IN (indifferent, keine Präferenz für eine bestimmte Strömungsgeschwindigkeit) 

[%] 

• keine Daten verfügbar [%] 

• 

Formel: 

Typ RP (rheophil, kommt in Fließgewässern vor, bevorzugt Zonen mit mäßiger 

bis hoher Strömungsgeschwindigkeit) [%] (HK) (eingestufte Taxa = 100%) 

Bestimmten Taxa lässt sich eine Strömungspräferenz zuordnen. Diese Präferenz kann LB, LP, LR, RL, 

RP, RB oder IN sein. Jede Art hat nur eine Präferenz. 

Die Strömungspräferenz der Lebensgemeinschaft wird aus den oben genannten Einstufungen und der 

Abundanz aller Taxa errechnet (inklusive der nicht eingestuften Taxa). Der Anteil der Taxa ohne Strömungspräferenz 

wird unter „keine Daten verfügbar“ eingeordnet. 


Präferenz für einen bestimmten Strömungstyp (x von 10 Punkten); LB = limnobiont; LP 

= limnophil; LR = limno- bis rheophil; RL = rheo- bis limnophil; RP = rheophil; RB = 

cup 

rheobiont; IN = indifferent) 


Taxonomische 


Abundanz 


Taxa 

Diversität 





Versauerung 

Allgemeine 

Degradation 

andere 


Referenz: 

Die Informationen zur Strömungspräferenz sind entnommen aus: 

SCHMEDTJE, U. & M. Colling 1996. Ökologische Typisierung der aquatischen Makrofauna. Informationsberichte 

des Bayerischen Landesamtes für Wasserwirtschaft 4/96.


Rheoindex (nach Banning) (Individuenzahlen) 

Formel: 

Rheoindex( 

Individuenzahlen) 

= 

2 ∗ 

2 ∗∑ 

( hi 

RIB1 

) 

∑( hi 

RIB1 

) + 2 ∗∑ 

( hi 

RIB2 

) + ∑ 

hiRIB1 = relative Abundanz der Taxa mit einer “1” im Feld “RIB” 



Berechnung der relativen Abundanz eines Taxons: 

noind 

relative Abundanz = 

totind 

* 100 

noind = Zahl der Individuen eines Taxon 

totind = Gesamtzahl aller Individuen 


RIB 


Taxonomische 


Abundanz 




Gewässermorpho- 

logie 

Versauerung 

Verhältnis 


taxa 

Allgemeine 

Degradation 

( h RIB 

i 

3 

) 

Diversität 

andere 


Der Rheo-Index gibt das Verhältnis der rheophilen und rheobionten Taxa eines Fließgewässers zu den 

Stillwasserarten und Ubiquisten an. Es werden die Anteile verschiedener Strömungstypen berücksichtigt, 

was letztendlich auf die biologisch wirksamen Strömungsverhältnisse im untersuchten Gewässerabschnitt 

schließen lässt. Die Berechnung des Rheo-Index soll Störungen aufzeigen, die sich durch die 

Veränderung des Strömungsmusters (durch Ausbau und/oder Aufstau) in der Biozönose einstellen. 

Referenz: 

BANNING, M. (1998): Auswirkungen des Aufstaus größerer Flüsse auf das Makrozoobenthos dargestellt 

am Beispiel der Donau. Essener ökologische Schriften 9. Westarp-Wiss., Hohenwarsleben.


Rheoindex (nach Banning) (Häufigkeitsklassen) 

Die Individuenzahlen werden wie folgt in Häufigkeitsklassen umgerechnet: 

f 

( n) 

Formel: 

⎧0 

⎪ 

⎪ 

1 

⎪2 

⎪ 

3 

= ⎨ 

⎪4 

⎪5 

⎪ 

⎪6 

⎪ 

⎩7 

für n = 0 

für 0 < n < 2,5 

für 2,5 ≤ n < 10,5 

für 10, 

5 

für 30, 

5 

für 100, 

5 

für 300, 

5 

für 1000,5 

≤ n < 30,5 

≤ n < 100,5 

≤ n < 300,5 

≤ n < 1000, 

5 

≤ n 

Rheoindex( 

Abundanzklassen) 

= 

2 ∗ 

2 ∗∑ 

( ai 

RIB1 

) 

∑ ( ai 

RIB1 

) + 2 ∗∑ 

( ai 

RIB2 

) + ∑ 

aiRIB1 = Abundanzklasse des i ten Taxon mit einer “1” im Feld “RIB” 




RIB 


Taxonomische 


Abundanz 





logie 

Versauerung 

Verhältnis 


taxa 

Allgemeine 

Degradation 

( a RIB 

i 

3 

) 

Diversität 

andere 


s.o. 

Referenz: 

BANNING, M. (1998): Auswirkungen des Aufstaus größerer Flüsse auf das Makrozoobenthos dargestellt 

am Beispiel der Donau. Essener ökologische Schriften 9. Westarp-Wiss., Hohenwarsleben.


Rhithron-Typie-Index (RTI) 

Formel: 

n 

∑ 

= 

ECOi² 

i 1 

RTI = 

number _ of _ scored _ taxa 

ECOi= Ökologiewert des Taxons i 

Die Taxa erhalten einen Ökologiewert (ECOi) zwischen 1 und 5; je höher der Wert, desto spezifischer 

ist das Taxon für die Fließgewässerlängszone Rhithral. Der RTI reicht von 1 bis 25. In der Praxis treten 

in der Regel Ergebnisse von 5 bis 18 auf. 


RTI 


Taxonomische 


Abundanz 





logie 

Versauerung 

Verhältnis 


taxa 

Allgemeine 

Degradation 

Diversität 

andere 


Für den RTI wurden anhand von Literaturangaben ökologische Indikationen für die Fließgewässerlängszone 

Rhithral festgelegt (BAYERISCHES LANDESAMT FÜR WASSERWIRTSCHAFT 1996; BUNDESMINISTE- 

RIUM F. LAND- UND FORSTWIRTSCHAFT ÖSTERREICH 1995). 

Referenz: 

BISS, R., KÜBLER, P., PINTER I., BRAUKMANN, U. (2002): Leitbildbezogenes biologisches Bewertungsverfahren 

für Fließgewässer (aquatischer Bereich) in der Bundesrepublik Deutschland – Ein erster Beitrag 

zur integrierten ökologischen Fließgewässerbewertung – UBA-Texte 62/02 als CD-rom, Hrsg. 

Umweltbundesamt Berlin.


Mikrohabitat-Präferenz (prozentualer Anteil einer Lebensgemeinschaft, der ein bestimmtes 

Mikrohabitat bevorzugt) 

• Typ Pel (Pelal: unverfestigte Feinsedimente; Korngröße < 0,063 mm) [%] 

• Typ Arg (Argyllal: verfestigte Feinsedimente; Korngröße < 0,063 mm) [%] 

• Typ Psa (Psammal: Sand; Korngröße 0,063-2 mm) [%] 

• Typ Aka (Akal: Fein- bis Mittelkies; Korngröße 0,2-2 cm) [%] 

• Typ Lit (Lithal: Grobkies, Steine, Blöcke; Korngröße > 2 cm) [%] 

• Typ Phy (Phytal: Algen, Moose, höhere Wasserpflanzen, Teile von Uferpflanzen) 

[%] 

• Typ POM (particulate organic matter, z.B. Holz, CPOM, FPOM) [%] 

• Typ Oth (sonstige Habitate) [%] 

• 

Formel: 


Die Mikrohabitat-Präferenz wird auf die gleiche Art berechnet wie die Präferenz für eine biozönotische 

Region (siehe oben). 


hpe Präferenz für das Mikrohabitat Pelal (x von 10 Punkten) 

har Präferenz für das Mikrohabitat Argyllal (x von 10 Punkten) 

hps Präferenz für das Mikrohabitat Psammal (x von 10 Punkten) 

hak Präferenz für das Mikrohabitat Akal (x von 10 Punkten) 

hli Präferenz für das Mikrohabitat Lithal (x von 10 Punkten) 

hph Präferenz für das Mikrohabitat Phytal (x von 10 Punkten) 

hpo Präferenz für das Mikrohabitat POM (x von 10 Punkten) 

hot Präferenz für andere Mikrohabitate (x von 10 Punkten) 


Taxonomische 


Abundanz 


Taxa 

Diversität 





Versauerung 


andere 


Referenz: 

Die Informationen zu Mikrohabitat-Präferenzen sind entnommen aus: 



(Zweite Priorität): Durch das AQEM-Konsortium zusammengestellte Informationen.


Steinbesiedler nach Braukmann (AHT 1) 

Formel: 


f 

( n) 

⎧0 

⎪ 

⎪ 

1 

⎪2 

⎪ 

3 

= ⎨ 

⎪4 

⎪5 

⎪ 

⎪6 

⎪ 

⎩7 

AHT1 

= 

für n = 0 

für 0 < n < 2,5 

für 2,5 ≤ n < 10,5 

für 10, 

5 

für 30, 

5 

für 100, 

5 

für 300, 

5 

für 1000,5 

≤ n < 30,5 

≤ n < 100,5 

≤ n < 300,5 

≤ n < 1000, 

5 

≤ n 

∑ ( ai 

AHT1) 

+ ( a AHT 0) 

∑( ai 

AHT1) 

∑ 

i 

AHT1 = steinbesiedelnde Taxa 

aiAHT1 = Häufigkeitsklasse des i ten steinbesiedelnden Taxons; 

Taxon mit einer “1” im AHT1 Feld 

aiAHT0 = Häufigkeitsklasse des i ten Taxons aller anderen bewerteten Taxa 

Taxon mit einer “0” im AHT1 Feld 

noind 

totind 

Berechnung der relativen Abundanz eines Taxons: relative Abundanz = * 100 

(noind = Anzahl der Individuen eines Taxons; totind = Gesamtzahl aller Individuen) 


AHT1 


Taxonomische 


Abundanz 






Versauerung 

Verhältnis 


taxa 

Allgemeine 

Degradation 

Diversität 

andere 

Referenz: 

BRAUKMANN, U. (1997): Zoozönologische und saprobiologische Beiträge zu einer allgemeinen regionalen 

Bachtypologie. – Arch. Hydrobiol. Beih. 26, 2. Aufl.; Schweizerbart’sche Verlagsbuchhandlung, 

Stuttgart.


Ernährungstypen (prozentualer Anteil der Lebensgemeinschaft) 

• Weidegänger [%] 

• Zellstecher/Blattminierer [%] 

• Holzfresser [%] 

• Zerkleinerer [%] 

• Sedimentfresser [%] 

• Aktive Filtrierer [%] 

• Passive Filtrierer [%] 

• Räuber [%] 

• Parasiten [%] 

• Sonstige [%] 

• 

Formel: 


Der Anteil von Ernährungstypen wird auf die gleiche Art berechnet wie die Präferenz für eine biozönotische 

Region (siehe oben). 


fgr Ernährungstyp Weidegänger (x von 10 Punkten) 

fmi Ernährungstyp Zellstecher/Blattminierer (x von 10 Punkten) 

fxy Ernährungstyp Holzfresser (x von 10 Punkten) 

fsh Ernährungstyp Zerkleinerer (x von 10 Punkten) 

fga Ernährungstyp Sedimentfresser (x von 10 Punkten) 

faf Ernährungstyp Aktive Filtrierer (x von 10 Punkten) 

fpf Ernährungstyp Passive Filtrierer (x von 10 Punkten) 

für Ernährungstyp Räuber (x von 10 Punkten) 

fpa Ernährungstyp Parasiten (x von 10 Punkten) 

fot andere Ernährungstypen (x von 10 Punkten) 


Taxonomische 


Abundanz 


Taxa 

Diversität 





Versauerung 


andere 


Referenz: 

Die Information zu den Ernährungstypen sind entnommen aus: 



(Zweite Priorität): SCHMEDTJE, U. & M. COLLING 1996. Ökologische Typisierung der aquatischen Makrofauna. 

Informationsberichte des Bayerischen Landesamtes für Wasserwirtschaft 4/96. 

(Dritte Priorität): Durch das AQEM-Konsortium zusammengestellte Informationen.


RETI (Rhithron Feeding Type Index) 

Formel: 

Der RETI wird folgendermaßen berechnet: 

RETI = 

∑ 

n 

gs 

+ 

∑ 

n 

xy 

+ 

∑ 

na: Individuen des Ernährungstyps a: 

gs: Weidegänger 

xy: Holzfresser 

sh: Zerkleinerer 

mi: Minierer 

gc: Sedimentfresser 

af: Aktive Filtrierer 

pf: Passive Filtrierer 

ot: Sonstige 

n 

∑n 

gs + ∑n 

xy + ∑n 

sh 

sh + ∑n mi + ∑n 

gc + ∑n 

af + ∑n 

pf + ∑ 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 


ve/insensitive Taxa 





Versauerung 

andere 

lastungdationlogie 


Referenz: 

SCHWEDER, H 1992. Neue Indizes für die Bewertung des ökologischen Zustandes von Fließgewässern, 

abgeleitet aus der Makroinvertebraten-Ernährungstypologie. Limnologie Aktuell 3, 353-377. 

n 

ot


Fortbewegungstyp (prozentualer Anteil der Lebensgemeinschaft) 

• Schwebend/treibend [%] 

• Schwimmend/tauchend [%] 

• Grabend/bohrend [%] 

• Kriechend/laufend[%] 

• (Semi)sessil [%] 

• Sonstige (z.B. kletternd) [%] 

• 

Formel: 


Der Anteil verschiedener Fortbewegungstypen wird auf die gleiche Art berechnet wie die Präferenz für 

eine biozönotische Region (siehe oben). 


lss Fortbewegungstyp: Schwebend/treibend (x von 10 Punkten) 

lsd Fortbewegungstyp: Schwimmend/tauchend (x von 10 Punkten) 

lbb Fortbewegungstyp: Grabend/bohrend (x von 10 Punkten) 

lsw Fortbewegungstyp: Kriechend/laufend (x von 10 Punkten) 

lse Fortbewegungstyp: (semi)sessil (x von 10 Punkten) 

lot Fortbewegungstyp: Sonstige (x von 10 Punkten) 


Taxonomische 


Abundanz 


Taxa 

Diversität 





Versauerung 


andere 


Referenz: 

Die Informationen zu den Fortbewegungstypen sind entnommen aus: 



(Zweite Priorität): Durch das AQEM-Konsortium zusammengestellte Informationen.


Salinitätspräferenz gemäß Venedig-System 

• freshwater [%] (< 0,5) 

• oligohalin [%] (0,5 - < 5) 

• mesohalin [%] (5 - < 18) 

• polyhalin [%] (18 - 30) 

• euhalin [%] (> 30) 

• 

Formel: 

no data available [%] 

Die Salinitätspräferenz gemäß Venedig-System wird auf die gleiche Art berechnet wie die Präferenz für 

eine biozönotische Region (siehe oben). 


salfr Süßwasser, Salinität < 0,5 psu (x von 10 Punkten) 

salol oligohalin, Salinität 0,5 - < 5 psu (x von 10 Punkten) 

salme mesohalin, Salinität 5 - < 18 psu (x von 10 Punkten) 

salpo polyhalin, Salinität 18 - < 30 psu (x von 10 Punkten) 

saleu euhalin, Salinität 30 - < 40 psu (x von 10 Punkten) 


Taxonomische 


Abundanz 


Taxa 

Diversität 





Versauerung 


andere 


Referenz: 

WOLF, B., KIEL, E., HAGGE, A., KRIEG, H.-J. & FELD, C. K. (in prep.): A salinity classification system for 

benthic macroinvertebrates in marshland streams of Lower Saxony and Schleswig-Holstein, Germany. 

Unveröffentl. Manuskript.


Taxonomische Gruppe (prozentualer Anteil) 

Formel: 

Prozentualer Anteil einer taxonomischen Gruppe an der Gesamt-Individuenzahl der Probe. 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 







Versauerung 

andere 


Taxonomische Gruppe (Taxazahl) 

Formel: 

Zählt die Anzahl von Taxa in den einzelnen taxonomischen Gruppen. 


Taxonomische 


Abundanz 







Versauerung 


Diversität 

andere 

Hololimnische Taxa (prozentualer Anteil) 

Formel: 

Prozentualer Anteil der Taxagruppen Porifera + Coelenterata + Cestoda + Trematoda + Turbellaria + 

Nematoda + Nematomorpha + Gastropoda + Bivalvia + Polychaeta + Oligochaeta + Hirudinea + 

Crustacea + Araneae + Hydrachnidia + Bryozoa an der Gesamt-Individuenzahl der Probe. 


ID_GC 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 







Versauerung 

andere 


Anzahl von EPT taxa 

Formel: 

Zählt die Anzahl von Ephemeroptera, Plecoptera und Trichoptera Taxa. 


Taxonomische 


Abundanz 







Versauerung 


Diversität 

andere


Taxonomische Gruppe (Abundanz) 

A = 

∑ 

i 

n 

i 

th 

ni 

Anzahl von Individuen des i taxon 


Taxonomische 


Abundanz 


Taxa 





Versauerung 


Diversität 

andere 

Abundanz von EPT taxa (Häufigkeitsklassen) 

Formel: 

Summe der Abundanz von Ephemeroptera, Plecoptera und Trichoptera Taxa (Häufigkeitsklassen). 


f 

( n) 

⎧0 

⎪ 

⎪ 

1 

⎪2 

⎪ 

3 

= ⎨ 

⎪4 

⎪5 

⎪ 

⎪6 

⎪ 

⎩7 

für n = 0 

für 0 < n < 2,5 

für 2,5 ≤ n < 10,5 

für 10, 

5 

für 30, 

5 

für 100, 

5 

für 300, 

5 

für 1000,5 

≤ n < 30,5 

≤ n < 100,5 

≤ n < 300,5 

≤ n < 1000, 

5 

≤ n 


Taxonomische 


Abundanz 


Taxa 





Versauerung 


Anzahl von Familien 

Formel: 

Anzahl von Familien in einer Taxaliste 


Taxonomische 


Abundanz 







Versauerung 


Diversität 

andere 

Diversität 

andere


Anzahl von Gattungen 

Formel: 

Anzahl von Gattungen in einer Taxaliste 


Taxonomische 


Abundanz 







Versauerung 


Diversität 

andere 

TROPHIC_Sel_Grazers 

Formel: 

Summe der Abundanz von Rhithrogena + Epeorus + Centroptilum + Goeridae + Hydraenidae + Elmidae 

+ Ancylus 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 







Versauerung 

andere 


Abundanz von Sel_Ephemeroptera_GS 

Formel: 

Summe der Abundanz von Rhithrogena + Ecdyonurus gr. venosus + Ephemera 


Taxonomische 

ratio sensiti- 

Abundanz 







Versauerung 


Diversität 

Habitat-Qualität 

Sel_Trichoptera_GS 

Formel: 

Summe der Abundanz von Brachycentridae + Goeridae + Sericostomatidae + Odontoceridae 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 







Versauerung 

andere 

tungdationlogie


DIPTERA_Good_G 

Formel: 

Summe der Abundanz von Dixidae + Empididae + Stratiomyidae + Dolichopodidae + Athericidae 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 







Versauerung 

Habitat Qualität 


DIPTERA_Bad_SIPH_G 

Formel: 

Summe der Abundanz von Syrphidae + Culicidae + Ceratopogonidae + Siphlonurus* (*ausschließlich 

Siphlonurus , wenn mehr als 2 andere score_5 OU (MAS) vorkommen) 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 







Versauerung 

andere 


[%] Argyllal Präferenzen 

Formel: 

[%] Type Arg / ([%] Type Phy + [%] Type Pel ) 


Taxonomische 

ratio sensiti- 

Abundanz 







Versauerung 


Diversität 


[%] Filtrierer 

Formel: 

Abundanz Aktiver Filtrierer / (Weidegänger + Zerkleinerer + Sedimentfresser + passive Filtrierer) 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 







Versauerung 


tungdationlogie


[%] Fortbewegungstypen 

Formel: 

Abundanz bohrender Taxa / (Semi)sessil 


Taxonomische 


Abundanz 







Versauerung 


Weitere Kommentare: Bislang erst an Gewässern guter Qualität getestet. 

Diversität 


Abundanz von Sel_Ephemeroptera_M 

Formel: 

Summe der Abundanz von Baetis rhodani +Ecdyonurus +Habrophlebia +Torleya +Caenis beskidensis_belfiorei 

+ Caenis beskidensis + Caenis belfiorei 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 







Versauerung 



Abundanz von Sel_Plecoptera_M 

Formel: 

Summe der Abundanz von Amphinemura +Protonemura +Nemoura +Leuctra +Perla 


Taxonomische 


Abundanz 







Versauerung 


Diversität 

andere 

Abundanz von Sel_nonEPtaxa_M 

Formel: 

Summe der Abundanz von Ancylus +Lumbriculidae +Micronecta + GyrinidaeAd + Limnephilidae 

+Odontoceridae 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 







Versauerung 


tungdationlogie


Abundanz ausgewählter Ordnungen / Abundanz der Diptera 

Formel: 

Summe der Abundanz von (Ephemeroptera +Odonata +Plecoptera +Heteroptera +Trichoptera) / Abundanz 

der Diptera 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 







Versauerung 

andere 


Abundanz von Sel_Ephemeroptera_GN 

Formel: 

Summe der Abundanz von Procloeon + Centroptilum + Ecdyonurus + Paraleptophlebia + Ephemera + 

Rhithrogena 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 







Versauerung 

andere 


Abundanz von Sel_Trichoptera_GN 

Formel: 

Summe der Abundanz von Odontoceridae + Limnephilidae + Polycentropodidae 


Taxonomische 


Abundanz 







Versauerung 


Diversität 

Habitat-Qualität


SPEAR pesticides 

Formel: 

Der Metric ist eine Maßzahl für die Veränderung der Invertebraten-Gemeinschaft durch eine 

kurzzeitige, gepulste Belastung durch Insektizide und, in geringerem Maße, durch Fungizide 

und andere Pflanzenschutzmittel. 

Die Invertebratenfauna wird an Hand ihrer ökologischen Eigenschaften in sensitive Arten 

(SPEcies At Risk) und insensitive Arten eingeteilt. Die verwendeten ökologischen Eigenschaften 

sind: 

- physiologische Sensitivität gegenüber organischen Schadstoffen 

- Generationszeit 

- Vorkommen im Gewässer zur Zeit der maximalen Insektizidanwendung in der Landwirtschaft 

- Migrationsfähigkeit als Maß für das Potential der Wiedererholung. 

Zur Bewertung einer Probe werden die logarithmierten Häufigkeiten als Individuen pro m 2 

verwendet. SPEARpesticides kann auf Art- oder Familienniveau angewendet werden. 

Für die Berechung wird die abundanzkorrigierte Summe aller sensitiven Arten durch die korrigierte 

Gesamtabundanz geteilt. Man erhält einen Wert zwischen 0 und 100 Prozent, der mit 

zunehmender Belastung abnimmt. 

SPEARpesticides 

= 

N 

∑ 

i= 

1 

N 

( log( 

a + 1) 

⋅t 

) 

∑ 

i= 

1 

log 

i 

( a + 1) 

i 

i 

⋅100 

i = Nummer des Taxons 

N = Gesamtzahl der Taxa 

ti = Klassifikation des iten Taxons 

(1 - sensitiv oder 0 - insensitiv) 

ai = Abundanz des iten Taxons 

Unbelastete Referenzstellen (Toxic Units(Daphnia magna) < -4) weisen im Mittel einen SPEARpesticides 

-Wert von > 40 auf. Bei einem Wert < 40 kann mit einer deutlichen Belastung durch Pflanzenschutzmittel 

während Runoff-Ereignissen gerechnet werden ((Toxic Units(Daphnia magna) e -4 

bis < -2). An stärker belastetet Untersuchungsstellen (Toxic Units(Daphnia magna) > -2) ist im Mittel 

mit einem Wert < 20 zu rechnen. Diese Grenzen verschieben sich in der Regel in Richtung 

höherer SPEARpesticides-Werte, falls im Oberlauf ungestörte potentielle Widererholungsgebiete 

wie z.B. bewaldete Fläche liegen, bei denen eine Ausbringung von Insektiziden auszuschließen 

ist. 


SPEARpesticides Klassifikation ti des Taxons 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

tung 

Degradation 

logie 


Der Metric dient zur Bewertung einer kurzzeitigen Belastung mit Insektiziden wie sie typisch 

ist für kleine Fließgewässer im landwirtschaftlich geprägten Raum. Die Ergebnisse werden 

durch den Zeitpunkt der Probenahme mitbestimmt. So sind die Wirkungen der Insektizide am 

stärksten im Zeitraum während und kurz nach der Anwendung (Mai bis Mitte Juli); mit 

SPEARpesticides können aber auch langfristige Veränderungen der Gemeinschaft aufgezeigt 

werden. Das Ergebnis ist weitgehend unabhängig von anderen abiotischen Parametern im 

Gewässer (z.B. Strömung, Nährstoffe, Struktur). Erreicht wird dies durch die Verwendung von 

ökologischen Eigenschaften (Traits) zur Bewertung der Gemeinschaft. 

Bestimmungsniveau: In der Software sind Werte für nahezu alle Taxa der Artliste enthalten. 

Allerdings wurde SPEARpesticides für viele Taxa auf einem deutlich gröberen Niveau entwi-


ckelt. Deshalb ist es sinnvoll, die Felddaten der Operationellen Taxaliste anzugleichen und 

außerdem möglichst einige Taxa wie folgt zusammenzufassen. Wenn im Datensatz mehr als 

5 Arten der Gruppen Oligochaeta, Hydrachnidia oder Chironomidae enthalten sind, sollten sie 

jeweils als ein Taxon zusammengefasst werden. Ebenso, wenn mehr als 5 Arten aus einer 

Familie der Diptera oder Coleoptera im Datensatz vorkommen, sollten sie als Familie zusammengefasst 

werden. 

Für eine Vielzahl der Taxa lagen keine exakten Messungen der ökologischen Eigenschaften 

vor. Hier wurde dann die Werten der nächsten verwandten Arten übernommen. 

Der Metric ist Teil einer Familie von Maßzahlen zur Bewertung der Wirkung verschiedener 

Umweltchemikalien. Es handelt sich um eine Weiterentwicklung des von Liess et al. (2001) 

vorgestellten Ansatzes, der nur die physiologische Sensitivität und die Generationszeit berücksichtigte. 

Weitere Informationen zur Anwendung des SPEAR Systems und auch die Möglichkeit 

zur automatischen Einbeziehung von Widerbesiedlungsflächen finden Sie hier: 

http://www.systemecology.eu/SPEAR/Start.html 

Referenz: 

Beketov M, Foit K, Schäfer RB, Schriever CA, Sacchi A, Capri E, Biggs JP, Wells C, Liess M. 

2009. SPEAR indicates pesticide effects in streams - Comparative use of species- 

and family-level biomonitoring data. Environmental Pollution, 157: 1841-1848 

Liess M, Schulz R, Berenzen N, Nanko-Drees J, Wogram J. 2001. Pflanzenschutzmittel- 

Belastung und Lebensgemeinschaften in Fließgewässern mit landwirtschaftlich genutztem 

Umland. UBA Texte 65, ISSN 0722-186X. 

Liess M, von der Ohe PC 2005. Analyzing effects of pesticides on invertebrate communities in 

streams. Environmental Toxicology and Chemistry. 24, (4): 954-965 

Liess M, Schäfer R, Schriever C. 2008. The footprint of pesticide stress in communities - species 

traits reveal community effects of toxicants.. Science of the Total Environment, 

406, 484-490. 

Schäfer R, Caquet T, Siimes K, Mueller, R, Lagadic L, Liess M. 2007. Effects of pesticides on 

community structure and ecosystem functions in agricultural headwater streams of 

three biogeographical regions in Europe. Science of the Total Environment. 382, 2-3, 

272-285. 

SPEAR organic 

Formel: 

Der Metric ist eine Maßzahl für die Veränderung der Invertebraten-Gemeinschaft durch toxische 

organische Schadstoffe mit einer kontinuierlichen Exposition (z.B. Petrochemikalien, 

oberflächenaktive Substanzen). 

Es wird die abundanzkorrigierte durchschnittliche Sensitivität der Invertebratenfauna berechnet. 

Zur Bewertung einer Probe werden die logarithmierten Häufigkeiten als Individuen pro m 2 

verwendet. SPEARpesticides kann auf Art- oder Familienniveau angewendet werden. 

Der Wert nimmt mit zunehmender Belastung ab. 

N 

∑ 

i= 

SPEARorganic = 1 

( log( 

a + 1) 

⋅ ) 

SPEARorganic eignet sich besonders zum relativen Vergleich von Messstellen innerhalb desselben 

Untersuchungsgebiets untereinander; für eine absolute Einstufung sind noch weitere 

Untersuchungen nötig. 


i 

N 

S 

org _ i 

i = Nummer des Taxons 

N = Gesamtzahl der Taxa 

Sorg_i = Sensitivität gegenüber organischen 

Schadstoffen des Taxons i 

= Abundanz des iten Taxons 

ai


Sorg 

Sensitivität gegenüber organischen Schadstoffen 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

tung 

Degradation 

logie 


Der Metric ist eine Maßzahl für die Veränderung der Invertebraten-Gemeinschaft durch Störung 

der Gemeinschaft auf Grund kontinuierlicher organischer Belastung. Das Ergebnis ist 

weitgehend unabhängig von anderen abiotischen Parametern im Gewässer (z.B. Strömung, 

Nährstoffe, Struktur). Zur Bewertung der Gemeinschaft wird die ökologische Eigenschaft 

„Sensitivität gegenüber organischen Schadstoffen“. 

SPEARorganic wurde in einem großen Flusssystem über einen weiten Kontaminationsgradienten 

validiert. 

Bestimmungsniveau: In der Software sind Werte für nahezu alle Taxa der Artliste enthalten. 

Allerdings wurde SPEARpesticides für viele Taxa auf einem deutlich gröberen Niveau entwickelt. 

Deshalb ist es sinnvoll, die Felddaten der Operationelle Taxaliste anzugleichen und 

außerdem möglichst einige Taxa wie folgt zusammenzufassen. Wenn im Datensatz mehr als 

5 Arten der Gruppen Oligochaeta, Hydrachnidia oder Chironomidae enthalten sind, sollten sie 

jeweils als ein Taxon zusammengefasst werden. Ebenso, wenn mehr als 5 Arten aus einer 

Familie der Diptera oder Coleoptera im Datensatz vorkommen, sollten sie als Familie zusammengefasst 

werden. 

Für eine Vielzahl der Taxa lagen keine exakten Messungen der ökologischen Eigenschaften 

vor. Hier wurde dann die Werten der nächsten verwandten Arten übernommen. 

Der Metric ist Teil einer Familie von Maßzahlen zur Bewertung der Wirkung verschiedener 

Umweltchemikalien. Weitere Informationen zur Anwendung des SPEAR Systems finden Sie 

hier: http://www.systemecology.eu/SPEAR/Start.html 

Referenz: 

Beketov M.A., Liess M., 2008. An indicator for effects of organic toxicants on lotic invertebrate 

communities: independence of confounding environmental factors over an extensive 

river continuum. Environmental Pollution, 156(3): 980-987. 

Liess M, von der Ohe PC 2005. Analyzing effects of pesticides on invertebrate communities in 

streams. Environmental Toxicology and Chemistry. 24, (4): 954-965 

Schletterer M., Füreder L., Kuzovlev V.V., Beketov M.A., 2010. Testing the coherence of several 

macroinvertebrate indices and environmental factors in a large lowland river system, 

Ecological Indicators, in print 

SPEAR[%] (nach VON DER OHE ET AL. 2007) 

Formel: 

Bestimmte Indikatorarten werden anhand ihrer Empfindlichkeit gegenüber organischen 

Schadstoffen eingeordnet und erhalten einen Wert von 1 (sensitive Arten mit sorg > -0,36)) 

oder 0 (unsensitive Arten mit sorg d -0,36). Sensitive Arten mit hoher Reproduktionsgeschwindigkeit 

(gz < 0,5; z.B. Gammarus sp.) erhalten ebenfalls einen Wert von 0. 

Zur Bewertung einer Probe werden die Häufigkeitsklassen aller Indikatorarten berücksichtigt. 

Ist die Abundanz als Individuen pro m 2 angegeben, kann die logarithmierte Häufigkeit verwendet 

werden. Bei Absence / Presence-Daten geht die Abundanz mit 1 ein. Liegen die Daten 

lediglich auf Familienniveau vor, wird die entsprechende Klassifikation verwendet. 

Für die Berechung wird die abundanzkorrigierte Summe aller Sensitiven Arten durch die Gesamtabundanz 

geteilt. Man erhält einen Wert zwischen 0 und 100 Prozent.


SPEAR[%] 

= 

N 

∑ 

i 

i= 

1 

N 

a ⋅ ti 

⋅100 

a 

∑ 

i= 

1 

i 

i = Nummer des Indikatortaxons 

N =Gesamtzahl der Indikatortaxa 

ti = Klassifikation des iten Taxons (1 oder 0) 

ai = Abundanz des iten Taxons 

Ungestörte Gemeinschaften haben gemeinhin einen Wert um 50%. Gemeinschaften mit einem 

Wert von 0 bestehen somit lediglich aus unsensitiven Arten. Für die Bewertung von Gemeinschaften 

mit weniger als 6 Arten oder 4 Familien sollte man jedoch Vorsicht walten lassen. 


sorg Sensitivität des Taxa gegenüber organischen Schadstoffen (z.B. PSM) 

gz Geringe Generationszeit oder hohe Gelegezahl des Taxa (*) führt zur Abwertung 

SPEAR[%]art Sensitivitätsklassifikation ti auf Artniveau (1 oder 0) 

SPEAR[%]fam Sensitivitätsklassifikation ti auf Familienniveau mit entsprechenden Anpassungen 


Taxonomische 


Abundanz 

Diversität 






Allgemeine 


andere 

tung 

Degradation 

logie 


Der Metric ist eine Weiterentwicklung und gleichzeitige Vereinfachung des SPEARpesticide Index zur Bewertung 

der toxischen Auswirkungen von organischen Schadstoffen (z.B. PSM) in Europäischen Fließgewässen. 

Er erfordert bei gleicher Performance keine Informationen zum Schlupfzeitpunkt oder zur 

Mobilität der Arten. Seine Anwendung wurde darüber hinaus für Referenzstellen in Finnland, Frankreich, 

Belgien, Deutschland und Spanien (Ökoregionen 1, 9, 13, 14 und 22) getestet sowie ein Toxizitätsgradient 

in Spanien (Llobregat) korrekt indiziert. 

Referenz: 

Von der Ohe, P.C., Liess, M. 2004: Relative sensitivity distribution of aquatic invertebrates to organic 

and metal compounds. Environ.Toxicol.Chem. 23: 150-156. 

Liess, M., von der Ohe, P.C. 2005: Analyzing effects of pesticides on invertebrate communities in 

streams. Environ.Toxicol.Chem. 24: 954-965. 

Von der Ohe, P.C., Prüß, A., Schäfer, R.B., Liess, M., de Deckere, E., Brack, W. 2007: Water quality 

indices across Europe - a comparison of the good ecological status of five river basins. J. Environ. 

Monit. 9: 970-978. 

von der Ohe, P.C.; de Deckere, E.; Prüß, A.; Munoz, I.; Wolfram, G.; Villagrasa, M.; Ginebreda, A.; 

Hein, M.; Brack, W. 2009: Towards an Integrated Assessment of the Ecological and Chemical Status 

of European River Basins. Integrated Environmental Assessment and Management 5: 50-61.


5. Referenzen 

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method to assess European streams using benthic macroinvertebrates, developed for the purpose 

of the Water Framework Directive. Version 1.0, February 2002. 

Braukmann, U. & Biss, R. (2004): Conceptual study – An improved method to assess acidification 

in German streams by using benthic macroinvertebrates. Limnologica 34 (4): 433-450. 

Friedrich, G. & Herbst, V. (2004): Eine erneute Revision des Saprobiensystems – weshalb und 

wozu? Acta hydrochimica et hydrobiologica 32 (1): 61-74. 

Haase, P. & Sundermann, A. (2004): Standardisierung der Erfassungs- und Auswertungsmethoden 

von Makrozoobenthosuntersuchungen in Fließgewässern. Abschlussbericht zum 

LAWA-Projekt O 4.02. http://www.fliessgewaesserbewertung.de. 

Haase, P., Sundermann, A. & Schindehütte, K (2006a): Operationale Taxaliste als Mindestanforderung 

an die Bestimmung von Makrozoobenthosproben aus Fließgewässern zur Umsetzung 

der EU-Wasserrahmenrichtlinie in Deutschland. www.fliessgewaesserbewertung.de. 

Haase, P., Sundermann, A. & Schindehütte, K (2006b): Informationstext zur Operationalen Taxaliste 

als Mindestanforderung an die Bestimmung von Makrozoobenthosproben aus Fließgewässern 

zur Umsetzung der EU-Wasserrahmenrichtlinie in Deutschland. www.fliessgewaesserbewertung.de. 

Mauch, E., Schmedtje, U., Maetze, A. & Fischer, F. (2003): Taxaliste der Gewässerorganismen 

Deutschlands. Informationsberichte des Bayerischen Landesamtes für Wasserwirtschaft 01/03. 

388 S. 

Meier, C., Hering, D., Biss, R., Böhmer, J., Rawer-Jost, C., Zenker, A., Haase, P. & Schöll, F. 

(2004a): Weiterentwicklung und Anpassung des nationalen Bewertungssystems für Makrozoobenthos 

an neue internationale Vorgaben. Vorläufiger Abschlussbericht im Auftrag des Umweltbundesamtes. 

http://www.fliessgewaesserbewertung.de. 

Meier, C., Lorenz, A., Rolauffs, P., Hering, D., Schaumburg, J., Schranz, C., Böhmer, J., Pottgiesser, 

T. & Haase, P. (2005): Abschließende Arbeiten zur Integration der Fließgewässer 

Nord- und Nordostdeutschlands in das bundesweite Typen- und Bewertungssystem. Abschlussbericht 

zum LAWA-Projekt O 21.03. http://www.fliessgewaesserbewertung.de. 

Meier, C., Böhmer, J., Biss, R.; Feld, C., Haase, P., Lorenz, A., Rawer-Jost, C., Rolauffs, P., 

Schindehütte, K., Schöll, F., Sundermann, A., Zenker, A. & Hering, D. (2006): Weiterentwicklung 

und Anpassung des nationalen Bewertungssystems für Makrozoobenthos an neue 

internationale Vorgaben. Abschlussbericht im Auftrag des Umweltbundesamtes. 

http://www.fliessgewaesserbewertung.de.


Meier, C., Haase, P., Rolauffs, P., Schindehütte, K., Schöll, F., Sundermann, A. & Hering, D 

(2008): Methodisches Handbuch Fließgewässerbewertung zur Untersuchung und Bewertung 

von Fließgewässern auf der Basis des Makrozoobenthos vor dem Hintergrund der EG- 

Wasserrahmenrichtlinie. http://www.fliessgewaesserbewertung.de. 

Pottgiesser, T. & Sommerhäuser, M. (2004): Fließgewässertypologie Deutschlands: Die Gewässertypen 

und ihre Steckbriefe als Beitrag zur Umsetzung der EU-Wasserrahmenrichtlinie. 

In: Steinberg, C., Calmano W., Wilken R.-D. & Klapper, H. (Hrsg.): Handbuch der Limnologie. 

19. Erg.Lfg. 7/04. VIII-2.1: 1-16 + Anhang. 

Pottgiesser, T., Kail, J., Seuter, S. & Halle, M. (2003): Karte der biozönotisch bedeutsamen 

Fließgewässertypen Deutschlands (Stand Dezember 2003). Unveröffentlichter Abschlussbericht 

für die Länderarbeitsgemeinschaft Wasser. 

Rolauffs, P., Hering, D., Sommerhäuser, M., Jähnig, S. & Rödiger, S. (2003): Leitbildorientierte 

biologische Fließgewässerbewertung zur Charakterisierung des Sauerstoffhaushaltes. Umweltbundesamt 

Texte 11/03: 137 pp. 

Schmedtje, U., Sommerhäuser, M., Braukmann, U., Briem, E., Haase, P. & Hering, D. (2001): 

‚Top down - bottom up‘-Konzept einer biozönotisch begründeten Fließgewässertypologie 

Deutschlands. DGL Tagungsbericht 2000 (Magdeburg): 147-151.

ASTERICS-Software-Handbuch (Version 3.3.1)

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