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CENTRE D’ETUDE &<br />

DE VALORISATION<br />

DES ALGUES<br />

La biodiversité algale<br />

au service du<br />

développement<br />

économique de<br />

Mayotte<br />

<strong>Tome</strong> 1<br />

Etude préliminaire sur<br />

la biodiversité algale<br />

existante<br />

Syndicat Intercommunal d’Eau et<br />

Assainissement de Mayotte<br />

ZI Kawéni - 97600 Mamoudzou<br />

2011<br />

Centre d’Etude et de Valorisation des Algues<br />

Presqu’île de Pen-Lan - BP3 - 22610<br />

Pleubian - FRANCE<br />

Tél : +33 (0) 2 96 229.350<br />

Fax : +33 (0)2 96 228 438<br />

algue@ceva.fr - www.ceva.fr


SOMMAIRE<br />

- 2 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Liste des tableaux __________________________________3<br />

Liste des figures ___________________________________3<br />

A. Rappel du contexte du projet ______________________4<br />

B. Etat des connaissances sur la biodiversité algale à<br />

Mayotte et plus généralement dans la région sud-ouest de<br />

l’Océan Indien _____________________________________6<br />

1. Etat des connaissances sur les microalgues d’eau douce ____________________7<br />

2. Etat des connaissances sur les microalgues marines _______________________9<br />

3. Etat des connaissances sur les macroalgues marines ______________________10<br />

4. Etat des connaissances sur les phanérogames marines ____________________12<br />

5. Conclusion _________________________________________________________12<br />

C. Identification des sites à échantillonner ____________13<br />

D. Campagne de collecte des échantillons à Mayotte ____16<br />

1. Déroulement de la mission ____________________________________________16<br />

2. Autorisations de prélèvement __________________________________________16<br />

3. Sites échantillonnés __________________________________________________16<br />

4. Mesures physico-chimiques ___________________________________________19<br />

E. Détermination du potentiel de valorisation des algues<br />

collectées à Mayotte _______________________________21<br />

1. Identification taxonomique des algues collectées __________________________21<br />

1.1 Phytoplancton d’eau douce __________________________________________________ 21<br />

1.2 Phytoplancton marin ________________________________________________________ 21<br />

1.3 Macroalgues marines _______________________________________________________ 24<br />

1.4 Phanérogames marines _____________________________________________________ 25<br />

1.5 Diversité spécifique spatiale __________________________________________________ 26<br />

2. Etude du potentiel de valorisation des algues collectées ____________________27<br />

2.1 Etude des débouchés potentiels des algues collectées à Mayotte ____________________ 28<br />

2.2 Evaluation de la cultivabilité des algues collectées à Mayotte________________________ 53<br />

2.3 Evaluation de la disponibilité de la ressource algale _______________________________ 57<br />

F. Conclusion _____________________________________59<br />

Bibliographie _____________________________________68<br />

Annexes ________________________________________106


Liste des tableaux<br />

- 3 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Tableau 1 : Calendrier prévisionnel de réalisation des différentes actions du projet ___________________ 5<br />

Tableau 2 : Liste des sites à échantillonner _________________________________________________ 15<br />

Tableau 3 : Liste des sites effectivement échantillonnés _______________________________________ 18<br />

Tableau 4 : Mesures physico-chimiques réalisées lors de la mission de collecte à Mayotte ____________ 20<br />

Tableau 5 : Liste des microalgues d’eau douce collectées à Mayotte lors de la mission du CEVA et<br />

occurrence par espèce _________________________________________________________________ 22<br />

Tableau 6 : Liste des microalgues marines collectées à Mayotte lors de la mission du CEVA et occurrence<br />

par espèce __________________________________________________________________________ 23<br />

Tableau 7 : Liste des macroalgues collectées à Mayotte lors de la mission du CEVA et évaluation de la<br />

disponibilité de la ressource _____________________________________________________________ 25<br />

Tableau 8 : Exemples de préparations cosmétiques utilisant des algues ou extraits d’algues __________ 39<br />

Tableau 9 : Propriétés biologiques des extraits d’algues avec application potentielle dans le secteur de la<br />

santé humaine _______________________________________________________________________ 45<br />

Tableau 10 : Propriétés épuratrices des algues identifiées à Mayotte, applicables dans le traitement des<br />

eaux usées __________________________________________________________________________ 50<br />

Tableau 11 : Evaluation de la cultivabilité des algues de Mayotte identifiées comme candidates<br />

intéressantes à la valorisation ___________________________________________________________ 54<br />

Tableau 12 : Disponibilité de la ressource algale évaluée lors de la mission de collecte organisée début<br />

Avril à Mayotte par le CEVA _____________________________________________________________ 58<br />

Tableau 14 : Liste des macroalgues de Mayotte avec en bleu les algues retenues comme candidates<br />

intéressantes à la valorisation ___________________________________________________________ 60<br />

Tableau 15 : Liste des microalgues de Mayotte avec en bleu les algues retenues comme candidates<br />

intéressantes à la valorisation ___________________________________________________________ 61<br />

Liste des figures<br />

Figure 1 : Mayotte, île de l’archipel des Comores (source : www.outre-mer.gouv.fr) ___________________ 6<br />

Figure 2 : Le lac Dziani Dzaha (source : www.malango-mayotte.fr)________________________________ 7<br />

Figure 3 : Microalgues d’eau douce décrites à Mayotte _________________________________________ 8<br />

Figure 4 : Observation au microscope de la microalgue spiruline (grossissement x1000)_______________ 8<br />

Figure 5 : Microalgues marines décrites à Mayotte ____________________________________________ 9<br />

Figure 6 : Exemple de corallinaceae, Jania sp. ______________________________________________ 10<br />

Figure 7 : Macroalgues marines décrites à Mayotte ou dans l’archipel des Comores _________________ 11<br />

Figure 8 : Liste des phanérogames décrites à Mayotte ________________________________________ 12<br />

Figure 9 : Carte des sites à échantillonner __________________________________________________ 14<br />

Figure 10 : Clément Daniel et Tristan Le Goff lors d’une plongée à Mayotte ________________________ 16<br />

Figure 11 : Carte des sites effectivement échantillonnés _______________________________________ 17<br />

Figure 12 : Licmophora sp., diatomée marine isolée à Mayotte (photo :D. Jamet) ___________________ 22<br />

Figure 13 : Phanérogames photographiées à Mayotte lors de la mission de collecte _________________ 26<br />

Figure 14 : Nombre d’espèces différentes rencontrées par échantillon ____________________________ 26<br />

Figure 15 : L’aquaculture multi-trophique intégrée ____________________________________________ 49<br />

Figure 16 : Padina sp., Caulerpa racemosa et Turbinaria ornata, macroalgues mahoraises identifiées<br />

comme candidates prometteuses à la valorisation ____________________________________________ 59<br />

Figure 17 : Classement des algues candidates à la valorisation pour des applications en alimentation<br />

humaine ____________________________________________________________________________ 62<br />

Figure 18 : Classement des algues candidates à la valorisation pour des applications en alimentation<br />

animale _____________________________________________________________________________ 63<br />

Figure 19 : Classement des algues candidates à la valorisation pour des applications en agriculture ____ 63<br />

Figure 20 : Classement des algues candidates à la valorisation pour des applications en chimie _______ 64<br />

Figure 21 :Classement des algues candidates à la valorisation pour des applications en cosmétique ____ 65<br />

Figure 22 : Classement des algues candidates à la valorisation pour des applications en santé animale _ 65<br />

Figure 23: Classement des algues candidates à la valorisation pour des applications en santé humaine _ 66<br />

Figure 24 : Classement des algues candidates à la valorisation pour des applications en épuration _____ 67


A. Rappel du contexte du projet<br />

- 4 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Par la convention du 11 mars 2011, le Syndicat Intercommunal d’Eau et d’Assainissement<br />

de Mayotte (SIEAM) mandate le Centre d’Etude et de Valorisation des Algues (CEVA) pour<br />

une étude de la biodiversité algale mahoraise en vue de développer, à Mayotte, des activités<br />

économiques basées sur cette filière. Ce projet consiste plus particulièrement en un<br />

échantillonnage des algues locales et en l’identification des espèces de microalgues et de<br />

macroalgues qui seraient des candidates intéressantes pour le développement de la filière.<br />

Les voies de valorisation envisagées sont l’alimentation humaine, la nutrition animale, la<br />

chimie fine et l’épuration des eaux.<br />

Pour mémoire, le tableau page suivante reprend le calendrier prévisionnel de réalisation des<br />

différentes actions du projet tel que présenté dans la convention (Tableau 1).<br />

Le présent document constitue le compte-rendu de la première phase du projet. Il est articulé<br />

en 5 parties, chacune correspondant à une action définie dans la convention et mise en<br />

place pour répondre aux objectifs du SIEAM :<br />

1. Etat des connaissances sur la biodiversité algale à Mayotte et plus généralement<br />

dans la région sud-ouest de l’Océan Indien<br />

2. Identification des sites à échantillonner<br />

3. Campagne de collecte des échantillons à Mayotte<br />

4. Détermination du potentiel de valorisation des algues collectées<br />

5. Synthèse.


Action<br />

1. Pilotage du projet<br />

2. Etude bibliographique<br />

3. Identification des sites<br />

à échantillonner<br />

4. Collecte des<br />

échantillons<br />

5. Détermination du<br />

potentiel de valorisation<br />

des algues collectées<br />

6. Synthèse<br />

7. Avant-projet<br />

sommaire<br />

Détail<br />

dont étape<br />

préalable de<br />

préparation du<br />

matériel<br />

liste des espèces<br />

choix de 3 / 4<br />

espèces<br />

Tableau 1 : Calendrier prévisionnel de réalisation des différentes actions du projet<br />

février<br />

7<br />

8<br />

9<br />

10<br />

mars<br />

11<br />

12<br />

13<br />

14<br />

avril<br />

15<br />

16<br />

17<br />

18<br />

19<br />

- 5 -<br />

mai<br />

20<br />

21<br />

2011 (sem.)<br />

22<br />

23<br />

juin<br />

24<br />

25<br />

26<br />

27<br />

juillet<br />

28<br />

29<br />

30<br />

31<br />

32<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

aout<br />

33<br />

34<br />

35<br />

36<br />

sept<br />

37<br />

38<br />

39


- 6 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

B. Etat des connaissances sur la biodiversité algale à<br />

Mayotte et plus généralement dans la région sud-ouest de<br />

l’Océan Indien<br />

Localisée au 12°45’S - 45°10’E, l’île volcanique de Mayotte est située à l’extrémité Nord du<br />

canal du Mozambique, entre Madagascar et l’Afrique de l’Est. Elle fait partie de l’archipel des<br />

Comores, dans la région Sud-Ouest de l’océan Indien (Figure 1). D’une superficie de<br />

375 km², Mayotte est ceinturée d’un immense complexe récifo-lagonaire d’environ 1500 km²,<br />

le plus grand de cette région de l’océan Indien. Hotspot de biodiversité selon l’UICN<br />

(Conservation International, 2007), l’inventaire des richesses naturelles terrestres et marines<br />

de Mayotte reste pourtant bien incomplet (Arnaud & Cremades, 2009). En particulier, les<br />

espèces récifales de coraux, d’algues et de poissons sont loin d’avoir fait l’objet d’un<br />

inventaire précis (Collectivité Départementale de Mayotte & Conseil Général de Mayotte,<br />

2004). Dans le cadre de cet état des lieux des connaissances existantes sur la biodiversité<br />

algale mahoraise, nous avons donc fait le choix d’étendre la recherche à la région Sud-<br />

Ouest de l’océan Indien. En particulier, nous pensons que des espèces décrites dans les<br />

Comores ou dans la région Nord-Ouest de Madagascar sont probablement également<br />

présentes à Mayotte.<br />

Figure 1 : Mayotte, île de l’archipel des Comores (source : www.outre-mer.gouv.fr)<br />

Les algues ne constituent pas un groupe évolutif unique mais désignent un ensemble<br />

d’organismes pouvant appartenir à des groupes phylogénétiques très différents. L’Annexe 1<br />

liste les taxons actuellement classés sous le terme « algues ». Cette définition a subi de<br />

nombreuses modifications au cours du temps et devrait encore évoluer dans le futur, avec le


- 7 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

progrès de la génomique notamment. Pour résumer, Reviers (2002) définit les algues<br />

comme des « organismes généralement inféodés aux zones humides, le plus souvent<br />

photosynthétiques et possédant de la chlorophylle a (la photosynthèse a pu être perdue<br />

secondairement), dont l’appareil végétatif n’a pas la même complexité que celui des<br />

embryophytes (i.e. plantes terrestres) […] ». Ce terme regroupe donc à la fois les<br />

microalgues et les macroalgues, ce qui peut poser problème dans cette première étape<br />

bibliographique d’inventaire de la biodiversité algale mahoraise.<br />

Les notions de « genre » et d’« espèce » que l’on retrouvera dans la suite du compte-rendu<br />

sont illustrées au travers d’exemples choisis en Annexe 2.<br />

1. Etat des connaissances sur les microalgues d’eau douce<br />

Les cours d’eau, lacs et retenues collinaires de Mayotte recèlent de diverses microalgues,<br />

organismes unicellulaires constituant le phytoplancton. La richesse taxonomique en<br />

microalgues d’eau douce semble varier en fonction des saisons et selon les secteurs de l’île.<br />

Ainsi, Coste et al. (2009), constatent que les stations au nord de l’île sont plus riches en<br />

diatomées que celles au sud. Ils observent également que la diatomée Achnantes<br />

subhudsonis est plutôt caractéristique des stations du Nord-Ouest de l’île (Bouyouni,<br />

Bougoumouhé) alors que Nitzschia inconspicua se rencontre préférentiellement dans les<br />

stations du sud (Bé). D’autre part, les communautés phytoplanctoniques sont généralement<br />

plus importantes à la saison des pluies, quand le lessivage des sols enrichit les points d’eau<br />

en nutriments et matière organique (Leboulanger, 2008).<br />

Concernant l’inventaire des microalgues de Mayotte, Leboulanger (2008) fait état de 114<br />

taxons différents dans les retenues collinaires de Dzoumogné et de Combani. Il observe en<br />

outre une forte prévalence des chlorophycées et des cyanobactéries dans les communautés,<br />

la chlorophycée Didymocystis sp. étant retrouvée dans 97 % des échantillons. Jusqu’à<br />

preuve du contraire, Leboulanger (comm. pers.) a d’autre part conclu à l’absence totale<br />

d’organismes eucaryotes dans le lac de cratère Dziani Dzaha (Figure 2). Le cortège<br />

phytoplanctonique n’y est constitué que de cyanobactéries.<br />

Figure 2 : Le lac Dziani Dzaha<br />

(source : www.malangomayotte.fr)


- 8 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

La synthèse bibliographique de l’ensemble de ces données permet de lister un total de 28<br />

taxons différents (Figure 3).<br />

Figure 3 : Microalgues d’eau douce décrites à Mayotte (Réf. : Charpy et al., 2007 ; Coste et<br />

al.,2008 ; Le Boulanger, 2008)<br />

La spiruline Arthrospira platensis (Figure 4), cyanobactérie d’eau douce particulièrement<br />

intéressante du point de vue nutritionnel, n’a encore jamais été décrite à Mayotte. On peut<br />

toutefois noter sa présence dans la région sud-ouest de Madagascar (Langlade & Charpy,<br />

2008 ; Jariosa et al., 2006 ; Tabutin et al., 2002).<br />

Figure 4 : Observation au microscope de la microalgue spiruline (grossissement x1000)


2. Etat des connaissances sur les microalgues marines<br />

- 9 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Les microalgues qui constituent le phytoplancton marin sont à la base de la chaîne<br />

alimentaire du lagon. Elles sont surtout étudiées pour l’analyse de la production primaire<br />

tandis que les études descriptives restent rares (Mounien, 2003). Une revue bibliographique<br />

détaillée permet de lister un total de 25 taxons de microalgues marines décrits à Mayotte ou<br />

plus généralement dans la région Sud-Ouest de l’océan Indien (Figure 5).<br />

Figure 5 : Microalgues marines décrites à Mayotte ou plus généralement dans la région Sud-<br />

Ouest de l’Océan Indien (Réf. : AFSSET, 2010 ; Andréfouët & Payri, 2002 ; Andrianasolo, 2005 ;<br />

ARVAM, 2002 ; Charpy et al., 2007 ; Grzebyk et al., 1994 ; Guiry & Guiry, 2011 ; Houlbrèque et<br />

al., 2006 ; Mounien, 2003)<br />

Parmi celles-ci, on compte un grand nombre de cyanobactéries. Des études ont montré que<br />

les cyanobactéries dominaient généralement les communautés planctoniques dans les<br />

lagons d’atoll ou dans les sites côtiers de la Grande Barrière de Corail en Australie<br />

(Houlbrèque et al., 2006). Des relevés en milieu océanique – de la pente externe du récif de<br />

Mayotte jusqu’au grand large – montrent également une grande diversité au sein des<br />

cyanobactéries benthiques (Bergman, 2001 in Mounien, 2003). Leur prédominance à<br />

Mayotte pourrait être en lien avec les teneurs élevés en éléments nutritifs mesurés dans le<br />

milieu (valeurs moyennes : 0,86 µmol/L d’azote et 0,43 µmol/L de phosphore ; Vacelet et al.,<br />

1999 in Mounien, 2003). En raison de leur toxicité potentielle, les cyanobactéries sont suivies<br />

avec attention à Mayotte. Par exemple, en avril 2010, une efflorescence à Lyngbya<br />

majuscula a provoqué des syndromes d’irritation cutanée et respiratoire chez une<br />

soixantaine de personnes ayant fréquenté la plage de N’Gouja (AFSSET, 2010). Le préinventaire<br />

ZNIEFF fait état de 8 espèces de cyanobactéries à Mayotte, soulignant le peu de<br />

connaissances disponibles (Rolland et al., 2005). Nous listons ici 12 taxons de<br />

cyanobactéries.<br />

Les microalgues dinoflagellés font aussi l’objet d’un suivi régulier à Mayotte. En effet,<br />

certaines d’entre elles, comme Gambierdiscus toxicus, Prorocentrum sp. ou Ostreopsis sp.,<br />

produisent des toxines causant la ciguatera chez l’homme (CAREX et al., 2002 ; Grzebyk et<br />

al., 1994). Le pré-inventaire ZNIEFF fait état de 11 espèces de dinoflagellés à Mayotte<br />

(Rolland et al., 2005). Nous en listons ici 8 taxons.


- 10 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

L’expédition Tara Océans a fait escale à Mayotte au cours de l’année 2010 (Tara Océans,<br />

2011). Des échantillons de phytoplancton marin ont été prélevés dans le lagon et sont en<br />

cours de traitement. Cette initiative devrait contribuer de manière notable à améliorer les<br />

connaissances sur la biodiversité des microalgues marines de l’île de Mayotte.<br />

3. Etat des connaissances sur les macroalgues marines<br />

Les macroalgues sont divisées en 3 groupes selon leur pigmentation : algues vertes, algues<br />

brunes et algues rouges (Annexe 1). Chacun de ces groupes est caractérisé par la présence<br />

de chlorophylle qui confère la couleur verte aux végétaux. Chez les algues brunes et rouges,<br />

les pigments surnuméraires se substituent au vert de la chlorophylle. Il s’agit des<br />

xanthophylles et des caroténoïdes (dont la fucoxanthine). Chez les algues rouges, il s’agit de<br />

des phycoérythrines et phycocyanines (Floc’h et al., 2006).<br />

Un inventaire réalisé au début des années 1990 fit état de 270 espèces de macroalgues<br />

dans le lagon de Mayotte (Coquegniot et al., 1991, in Rolland et al., 2005). Ces données non<br />

pour l’heure toujours pas été publiées (Thomassin, comm. pers.).<br />

Une revue bibliographique approfondie nous permet de lister un total de 81 taxons d’algues<br />

décrites à Mayotte ou plus généralement dans l’archipel des Comores. Parmi celles-ci, 15<br />

appartiennent au phylum des algues brunes, 18 au phylum des algues vertes et 48 au<br />

phylum des algues rouges (Figure 7). Parmi ces dernières, on compte un grand nombre de<br />

Corallinaceae (Figure 6). Ces algues calcaires jouent un rôle prépondérant dans l’édification<br />

des récifs, certaines conditionnant l’implantation des jeunes larves de corail. De manière plus<br />

générale, les algueraies constituent un lieu privilégié pour la reproduction et l’alimentation de<br />

la faune marine (Gigou et al., 2009). D’après Rolland et al. (2005), le groupe taxonomique<br />

des algues possède donc un intérêt patrimonial certain.<br />

Figure 6 : Exemple de corallinaceae, Jania sp. (photo prise lors de la mission de collecte<br />

réalisée par le CEVA à Mayotte)


- 11 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Figure 7 : Macroalgues marines décrites à Mayotte ou dans l’archipel des Comores (Réf. :<br />

Andréfouët & Payri, 2002 ; Ballorain, 2010 ; Collectivité départementale de Mayotte, 2010 ;<br />

Conservatoire du littoral, 2011 ; Frouin & Bigot, 2008 ; Gigou et al., 2009 ; Gravier-Bonnet et al.,<br />

2006 ; Guiry & Guiry, 2011 ; Mounien, 2003 ; Silva et al., 1996 ; Quod et al., 2007 ; Rolland et al.,<br />

2005)<br />

Comme évoqué au précédent paragraphe, l’expédition Tara Océans a fait escale à Mayotte<br />

au cours de l’année 2010 (Tara Océans, 2011). La mission avait également pour objectif<br />

d’inventorier les macroalgues du lagon (Thomassin, comm. pers.). Ces données fourniront<br />

un état des lieux actualisé de la biodiversité des macroalgues de l’île.


4. Etat des connaissances sur les phanérogames marines<br />

- 12 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

A ce stade, il est intéressant de faire un point sur les phanérogames marines. Ces<br />

organismes, qui ne sont pas des algues mais des végétaux supérieurs pourvus d’un système<br />

racinaire, présentent en effet des potentialités de valorisation intéressantes.<br />

Le groupe des phanérogames compte moins de 60 espèces (Ballorain, 2010). A Mayotte, 14<br />

taxons sont décrits (Figure 8). Elles forment des herbiers mixtes ou monospécifiques qui<br />

couvrent une surface totale d’environ 100 km² (Gargominy, 2003). Dans le cadre du plan de<br />

gestion du lagon de Mayotte, les herbiers à phanérogames ont été identifiés comme espaces<br />

remarquables. Ils constituent en effet un site d’alimentation privilégié pour les tortues<br />

marines et les dugongs et un lieu de nurserie pour de nombreuses espèces de poissons. Ils<br />

ont également une fonction de protection des côtés, de rétention sédimentaire et<br />

d’oxygénation des eaux (CAREX et al., 2002).<br />

Figure 8 : Liste des phanérogames décrites à Mayotte (Réf. : Ballorain, 2010 ; CAREX et al.,<br />

2002 ; Dinhut, 2005 ; Frouin & Bigot, 2008 ; Rolland et al., 2005 ; Valentin & de Vanssay, 2004)<br />

En raison de la forte valeur patrimoniale de ces herbiers de phanérogames (Rolland et al.,<br />

2005), l’exploitation des peuplements naturels ne peut pas être envisagée.<br />

En métropole, le long des côtes atlantiques, des échouages massifs de phanérogames sont<br />

observés à certains moments de l’année. Une valorisation de ces échouages est mise en<br />

place avec des débouchés dans le domaine de l’agriculture notamment. A Mayotte, aucun<br />

échouage massif de ce type n’a jusqu’à présent été observé.<br />

5. Conclusion<br />

La biodiversité mahoraise est exceptionnelle et bien inventoriée en partie. Certains groupes<br />

comme les plantes supérieures, les oiseaux, les mammifères ou encore les coraux durs ont<br />

fait l’objet de nombreuses études. Au contraire, pour d’autres groupes, la connaissance<br />

scientifique reste insuffisante voire inexistante. En particulier, les macroalgues et le<br />

phytoplancton semblent ne pas susciter un intérêt majeur de la part des naturalistes. Ce<br />

constat récent a fait émerger une réelle volonté d’améliorer la connaissance de ces groupes<br />

taxonomiques méconnus, notamment au travers du plan d’action local pour la biodiversité<br />

(Direction de l’Agriculture et de la Forêt, 2005). Gageons que cette présente étude


- 13 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

contribuera à répondre aux objectifs de connaissance et de mise en valeur de la biodiversité<br />

mahoraise.<br />

C. Identification des sites à échantillonner<br />

La mission de collecte doit durer 7 jours. Un échantillonnage des sites à visiter en priorité est<br />

donc réalisé avant le départ afin d’optimiser le temps de travail sur place (Figure 9 et Tableau<br />

2). Plusieurs critères ont été pris en compte pour le choix de ces sites :<br />

- Nous ciblerons les sites eutrophisés. En effet, comme décrit dans la convention,<br />

l’objectif du projet est d’identifier les algues qui pourront soutenir le développement<br />

d’activités économiques et qui soient donc facilement cultivables. De tels spécimens<br />

peuvent être isolés notamment en milieu eutrophisé.<br />

- Les données du SDAGE nous renseignent sur l’état des masses d’eau. Suivant le<br />

même argument que précédemment, les masses d’eau en état moyen à médiocre<br />

seront prioritairement échantillonnées.<br />

- La littérature fournit également un certain nombre d’informations. Ainsi, Leboulanger<br />

(2008) observe une grande diversité spécifique dans le lac Dziani Karihani et une<br />

eutrophisation des berges des deux retenues collinaires de Mayotte.<br />

- Une équipe de l’IRD travaille actuellement sur le phytoplancton du lac de cratère<br />

Dziani Dzaha. Nous avons donc choisi de ne pas échantillonner sur ce site, des<br />

informations étant disponibles par ailleurs.<br />

- Il convient de parvenir à une bonne répartition géographique de l’échantillonnage si<br />

l’on veut cribler un maximum de la biodiversité. Ainsi, bien que les masses d’eau du<br />

sud de l’île semblent moins riches et en moins mauvais état que les masses d’eau du<br />

nord de l’île, nous avons décidé d’échantillonner quelques sites dans la partie sud de<br />

l’île.<br />

- Concernant la récolte de macroalgues en plongée, l’objectif visé est d’échantillonner<br />

dans un maximum de « biotopes » ou « habitats ». Le biotope est un ensemble<br />

d’éléments caractérisant un milieu physico-chimique déterminé et uniforme.<br />

Quelques exemples de biotopes identifiés à Mayotte sont le récif-barrière (zone de<br />

déferlement), les récifs effondrés, la pente externe du récif, les vasières, les herbiers.<br />

- Enfin, dans un souci d’efficacité, les sites échantillonnés seront la plupart du temps<br />

accessibles en voiture ou en bateau.


- 14 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Figure 9 : Carte des sites à échantillonner ; point rouge : prélèvement de phytoplancton<br />

terrestre, point bleu : prélèvement de phytoplancton marin, point jaune : prélèvement de<br />

macroalgues marines


Phytoplancton terrestre : ��<br />

N° sur<br />

Fig.9<br />

Localisation<br />

Tableau 2 : Liste des sites à échantillonner<br />

- 15 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Coordonnées GPS Mode de<br />

x (lon) y (lat)<br />

prélèvement<br />

1<br />

Rivière Bandram (amont de la<br />

retenue collinaire Dzoumounuyé)<br />

45° 6'50.43"E 12°42'58.84"S<br />

2<br />

Rivière Maré (aval de la retenue<br />

collinaire Dzoumounyé)<br />

45° 7'17.41"E 12°43'23.15"S<br />

3 Rivière Bouyouni 45° 8'26.34"E 12°44'13.84"S<br />

4 Rivière Mgombani 45°10'36.04"E 12°43'49.45"S<br />

5 Rivière Kouénilajoli 45°13'29.81"E 12°45'58.33"S<br />

6 Rivière Majimbini (lavoir) 45°13'15.71"E 12°47'22.78"S<br />

7 Rivière Kwalé 45°12'11.13"E 12°48'34.67"S<br />

8 Elevage avicole Tsararano 45°11'28.07"E 12°49'51.18"S<br />

9 Rivière Dagoni 45°11'33.83"E 12°54'37.12"S<br />

10 Rivière Kanibé 45° 6'40.72"E 12°57'53.94"S<br />

11 Rivière Sirkalé 45° 8'57.53"E 12°56'60.71"S<br />

12 Rivière Coconi 45° 7'16.97"E 12°50'22.41"S<br />

13 Lac Dziani Karihani 45° 7'13.89"E 12°47'47.43"S<br />

14 Retenue collinaire Combani 45° 8'37.25"E 12°46'30.38"S<br />

15 Rivière Andrianabé 45° 5'13.23"E 12°45'47.25"S<br />

16 Rivière Mroni Kavani 45° 3'27.76"E 12°43'27.95"S<br />

Phytoplancton marin : ��<br />

flacon<br />

N° sur<br />

Fig.9<br />

Localisation<br />

Coordonnées GPS<br />

x (lon) y (lat)<br />

Mode de<br />

prélèvement<br />

1<br />

45° 6'70.60"E 12°40'50.02"S<br />

2 45° 8'20.38"E 12°43'26.36"S<br />

3 45°10'51.12"E 12°43'39.26"S<br />

4 45°13'13.38"E 12°44'36.64"S<br />

5 Côte Est<br />

45°14'10.85"E 12°46'27.77"S<br />

6 45°12'24.04"E 12°48'39.64"S<br />

7 45°12'17.89"E 12°51'37.88"S<br />

8 45°11'53.40"E 12°53'53.70"S<br />

9 45° 9'39.26"E 12°58'34.78"S flacon ou filet à<br />

10<br />

45° 8'20.31"E 12°59'30.94"S plancton<br />

11 45° 6'16.59"E 12°57'37.31"S<br />

12 45° 8'48.14"E 12°55'43.84"S<br />

13 45° 8'10.27"E 12°53'36.32"S<br />

14 Côte Ouest<br />

45° 6'41.77"E 12°50'14.92"S<br />

15 45° 6'12.22"E 12°47'39.94"S<br />

16 45° 4'52.05"E 12°45'55.49"S<br />

17 45° 3'16.07"E 12°43'30.97"S<br />

18 45° 4'45.19"E 12°40'51.03"S<br />

Macroalgues marines : ��<br />

N° sur<br />

Fig.9<br />

Localisation<br />

Coordonnées GPS<br />

x (lon) y (lat)<br />

Mode de<br />

prélèvement<br />

1<br />

2<br />

Secteur Nord-Est<br />

45°14'10.26"E<br />

45°13'36.66"E<br />

12°42'13.56"S<br />

12°44'23.69"S<br />

3<br />

4<br />

Secteur Sud<br />

45°12'50.58"E<br />

45°13'54.24"E<br />

12°53'51.35"S<br />

12°55'32.94"S plongée<br />

5<br />

45° 8'16.55"E 12°55'44.45"S<br />

6 Secteur Ouest<br />

44°56'44.89"E 12°50'47.99"S<br />

7 45° 4'26.97"E 12°49'52.60"S


- 16 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

D. Campagne de collecte des échantillons à Mayotte<br />

1. Déroulement de la mission<br />

La mission s’est déroulée du 04 au 10 avril 2011. Tristan LE GOFF et Clément DANIEL, du<br />

CEVA, ont été désignés pour réaliser cette mission en raison de leur habilitation à la plongée<br />

professionnelle (classe IB). Le CEVA a fourni l’ensemble du matériel nécessaire aux<br />

prélèvements tandis que Gilbert TIRARD, de la société MARAYVA, s’est chargé de<br />

l’organisation logistique sur place. Concernant les trajets en mer et les opérations de<br />

plongée, nous avons travaillé avec Jacky HEZETTE du club de plongée de l’hôtel Trévani.<br />

Figure 10 : Clément Daniel et Tristan Le Goff lors d’une plongée à Mayotte<br />

2. Autorisations de prélèvement<br />

Les demandes d’autorisation de prélèvement d’organismes aquatiques ont été adressées<br />

aux services de la DAAF (Direction de l’Alimentation, de l’Agriculture et de la Forêt) et des<br />

Affaires Maritimes de Mayotte avant le début de la mission. L’arrêté signé par le Préfet<br />

Hubert DERACHE autorisant les prélèvements de phytoplancton et de macroalgues dans le<br />

lagon est disponible en annexe (Annexe 3).<br />

3. Sites échantillonnés<br />

Nous avions identifié la saison des pluies comme période favorable pour les prélèvements<br />

(cf. convention du 11 mars 2011). C’est pourquoi la mission a eu lieu au début du mois<br />

d’avril, avant le début de la saison sèche. Cependant, les conditions climatiques ne se sont<br />

pas révélées idéales pour le prélèvement de phytoplancton terrestre. En effet, des pluies<br />

intenses ont entraîné un lessivage très important des sols. En conséquence, la plupart des<br />

cours d’eau étaient chargés de matières en suspension rendant inutile tout prélèvement. Les<br />

eaux chargées en matières en suspension sont en effet généralement assez pauvres en<br />

phytoplancton en raison de la limitation de la photosynthèse par la turbidité élevée. Il est


- 17 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

d’autre part très difficile de séparer la fraction phytoplanctonique à analyser de la fraction<br />

particulaire, rendant ce genre d’échantillon inexploitable.<br />

L’effort d’échantillonnage initialement prévu sur le phytoplancton terrestre a donc été reporté<br />

en partie sur les espèces marines. Seuls 6 points ont finalement été échantillonnés à terre,<br />

en privilégiant les zones les plus en amont des cours d’eau et donc susceptibles d’être moins<br />

chargées en matières en suspension. La figure et le tableau ci-dessous correspondent au<br />

plan d’échantillonnage effectivement réalisé. Pour le phytoplancton, le numéro du point<br />

correspond au numéro de l’échantillon prélevé.<br />

Figure 11 : Carte des sites effectivement échantillonnés ; point rouge : prélèvement de<br />

phytoplancton terrestre, point bleu : prélèvement de phytoplancton marin, point jaune :<br />

prélèvement de macroalgues et de phanérogames marines


Phytoplancton terrestre : ��<br />

Tableau 3 : Liste des sites effectivement échantillonnés<br />

- 18 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

N° sur Fig.<br />

11<br />

Date du prélèvement<br />

Coordonnées GPS<br />

x (lon) y (lat)<br />

Mode de<br />

prélèvement<br />

2001<br />

45°10'43.80"E 12°44'18.06"S<br />

2002<br />

2003<br />

2004<br />

04/04/2011<br />

45° 8'51.96"E<br />

45° 8'45.84"E<br />

45° 8'34.80"E<br />

12°45'21.42"S<br />

12°46'17.46"S<br />

12°46'39.06"S<br />

flacon<br />

1021<br />

1022<br />

10/04/2011<br />

45° 6'26.28"E<br />

45° 6'18.72"E<br />

12°42'58.80"S<br />

12°42'53.64"S<br />

Phytoplancton marin : ��<br />

N° sur Fig.<br />

11<br />

Date du prélèvement<br />

Coordonnées GPS<br />

x (lon) y (lat)<br />

Mode de<br />

prélèvement<br />

1001<br />

45°11'15.54"E 12°43'33.18"S<br />

1002 45° 8'56.04"E 12°43'21.66"S<br />

1003 45° 4'50.82"E 12°45'59.46"S<br />

1004 45° 6'54.90"E 12°41'21.96"S<br />

1005<br />

1006<br />

05/04/2011<br />

45° 4'41.28"E<br />

45°10'37.92"E<br />

12°40'43.02"S<br />

12°56'47.28"S<br />

1007 45°12'40.86"E 12°53'57.12"S<br />

1008 45°12'23.76"E 12°51'39.60"S<br />

1009<br />

1010<br />

45°12'34.26"E<br />

45°14'70.26"E<br />

12°48'43.80"S<br />

12°46'24.24"S<br />

flacon<br />

1011<br />

45° 9'41.58"E 12°58'47.82"S<br />

1012 45° 6'12.12"E 12°57'42.90"S<br />

1013 45° 8'90.06"E 12°53'37.74"S<br />

1014 06/04/2011<br />

45° 8'40.02"E 12°56'00.72"S<br />

1015 45° 6'33.24"E 12°50'19.98"S<br />

1016 45° 6'11.82"E 12°47'39.90"S<br />

1017 45° 4'50.82"E 12°45'59.46"S<br />

1018<br />

1019<br />

1020<br />

08/04/2011<br />

09/04/2011<br />

45°12'38.22"E<br />

45°13'51.30"E<br />

45°10'10.62"E<br />

12°44'20.64"S<br />

12°55'36.90"S<br />

12°41'34.20"S<br />

filet à plancton<br />

Macroalgues et phanérogames marines : ��<br />

N° sur Fig.<br />

11<br />

Date du prélèvement<br />

Coordonnées GPS<br />

x (lon) y (lat)<br />

Mode de<br />

prélèvement<br />

M_1 06/04/2011 45° 5'10.59"E 12°57'48.31"S<br />

M_2<br />

45° 6'20.28"E 12°50'27.78"S<br />

M_3 45° 5'29.88"E 12°50'42.18"S<br />

M_4<br />

M_5<br />

07/04/2011<br />

45° 4'30.18"E<br />

44°56'43.50"E<br />

12°49'53.76"S<br />

12°50'48.36"S<br />

M_6 45° 0'34.79"E 12°46'18.97"S<br />

M_7 45° 3'48.01"E 12°40'22.53"S<br />

M_8<br />

45°12'44.64"E 12°43'55.26"S<br />

M_9<br />

M_10<br />

M_11<br />

08/04/2011<br />

45°16'27.06"E<br />

45°16'47.10"E<br />

45°13'51.30"E<br />

12°52'18.12"S<br />

12°52'29.16"S<br />

12°55'36.90"S<br />

plongée<br />

M_12 45°13'46.02"E 12°56'40.74"S<br />

M_13 45°12'17.10"E 12°58'25.32"S<br />

M_14<br />

45°10'10.62"E 12°41'34.20"S<br />

M_15 45° 9'53.76"E 12°42'43.14"S<br />

M_16 09/04/2011<br />

45°13'59.82"E 12°43'24.78"S<br />

M_17 45°13'24.96"E 12°40'31.02"S<br />

M_18 45°13'90.32"E 12°40'11.98"S


- 19 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

En résumé, 6 sites ont été échantillonnés pour le phytoplancton terrestre, 20 pour le<br />

phytoplancton marin et 18 pour les macroalgues du lagon.<br />

Concernant le phytoplancton, trois flacons de 250mL ont été prélevés sur chaque site et<br />

immédiatement fixés avec 1mL d’une solution de Lugol. Ils ont été conservés au frais et à<br />

l’obscurité jusqu’à analyse.<br />

Pour les macroalgues, les plongeurs sont restés dans la zone des 10 premiers mètres. En<br />

dessous, la diversité algale est de plus en plus réduite. Au fur et à mesure de la prospection<br />

sur les différents sites, 3 individus de chaque nouvelle espèce de macroalgue rencontrée ont<br />

été récoltés. Il s’agit donc d’un échantillonnage de la biodiversité à l’échelle de l’île et non<br />

pas à l’échelle de chaque site. Au total, une centaine de planches de macroalgues marines<br />

ont été séchées et ramenées en métropole pour identification.<br />

Des échantillons de phanérogames marines ont également été prélevés, sans qu’un<br />

inventaire exhaustif ne soit conduit. Seules 2 espèces ont été séchées et ramenées en<br />

métropole pour identification.<br />

4. Mesures physico-chimiques<br />

Pour les besoins de la mission, le CEVA a également acquis une sonde de mesure multiparamètres<br />

(sonde Multi 1970i, WTW). La température, la salinité, la quantité d’oxygène<br />

dissous et le pH ont donc été mesurés sur un certain nombre de sites échantillonnés<br />

(Tableau 4). Ces informations nous renseignent sur les conditions favorables de croissance<br />

des algues rencontrées. Elles s’avèreront utiles dans la seconde phase du projet pour<br />

approcher plus rapidement les conditions optimales à mettre en place pour la culture de telle<br />

ou telle espèce identifiée.<br />

Les points de mesure en eau douce correspondent au secteur de la retenue collinaire de<br />

Dzoumounuyé. L’échantillon 1022 a été prélevé au niveau de la retenue, à proximité du mur<br />

bordant le lac au sud-est. Ceci explique la valeur forte enregistrée pour la température. La<br />

concentration d’oxygène dissous et le pH y sont les plus élevés de toute la campagne<br />

attestant d’une forte productivité primaire et par conséquent d’une quantité importante de<br />

phytoplancton dans la masse d’eau. Ce résultat pourra être confirmé par l’examen<br />

microscopique de cet échantillon dans l’étape suivante d’identification taxonomique des<br />

algues collectées. A l’inverse, le point 1021 montre des valeurs faibles de pH et d’oxygène<br />

dissous. Ceci pourrait être lié au fait que cet échantillon a été prélevé dans un ruisseau, en<br />

eau courante. Or la sonde est moins adaptée à ce type de milieu qu’aux étendues d’eaux<br />

stagnantes telles que les lacs ou l’océan.<br />

En ce qui concerne le milieu marin, de manière générale, les masses d’eau montrent une<br />

bonne oxygénation. Le pH est remarquablement stable, compris entre 8,0 et 8,1, lié au fait<br />

que le milieu marin est un milieu très tamponné. Seul le point 1013 enregistre un pH<br />

beaucoup plus faible et paradoxalement, une forte teneur en oxygène dissous. Cette<br />

observation témoigne assurément d’un phénomène local. En effet, il est peu probable que la<br />

sonde ait montré un dysfonctionnement alors que les valeurs mesurées par la suite sont<br />

revenues à la normale. Deux hypothèses peuvent être émises pour expliquer cette baisse du<br />

pH :<br />

(1) l’acidification de la masse d’eau est liée au fonctionnement général de la mangrove.<br />

Une des plus grandes mangroves de l’île de Mayotte (200 ha) s’étend dans la baie de


- 20 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Chirongui où l’échantillon 1013 a été prélevé. Le sédiment de cette mangrove se<br />

caractérise par un pH légèrement acide compris entre 6,6 et 6,8 en raison de la<br />

présence de bactéries nitrifiantes (Herteman, 2010). Toutefois, d’autres mesures<br />

réalisées à proximité de zones de mangroves n’ont pas conduit à la même<br />

observation (ex. 1014, également dans la baie de Chirongui ou 1008 dans l’anse<br />

d’Hajangoua).<br />

(2) une pollution externe acidifie le milieu à cet endroit. Plusieurs sources potentielles de<br />

pollution peuvent être identifiées en amont de cette masse d’eau, au niveau du village<br />

de Poroani. Il s’agit d’anciennes carrières, d’une décharge et d’un défaut de<br />

l’assainissement dans un lotissement (Cardon & Soula, comm. pers.). Au regard de la<br />

carte des sources de pollutions urbaines et industrielles établie dans le cadre du plan<br />

de gestion du lagon de Mayotte (Annexe 4 : Sources de pollution et de dégradation à<br />

Mayotte – pollutions urbaines et industrielles (CAREX et al., 2002) & zoom sur la baie de<br />

Poroani.Annexe 4), cette hypothèse semble la plus probable. En effet, des rejets<br />

urbains significatifs y sont mis en évidence.<br />

Tableau 4 : Mesures physico-chimiques réalisées lors de la mission de collecte à Mayotte<br />

(T = température, S = salinité, O2 = oxygène dissous)<br />

Date Heure Milieu N° point<br />

T<br />

(°C)<br />

S<br />

(‰)<br />

O2<br />

(mg/L)<br />

O2<br />

(%)<br />

pH<br />

10/04/2011 16:00 eau douce 1021 29,3 0,0 3,7 52,8 7,4<br />

10/04/2011 16:15 eau douce 1022 33,0 0,0 10,5 135,3 9,5<br />

05/04/2011 09:10 marin 1001 29,0 34,9 5,8 90,3 8,1<br />

05/04/2011 09:43 marin 1002 29,4 34,2 5,7 89,6 8,1<br />

05/04/2011 10:16 marin 1003 29,8 35,0 6,1 96,2 8,1<br />

05/04/2011 10:51 marin 1004 29,5 35,1 6,9 113,0 8,0<br />

05/04/2011 12:22 marin 1005 30,3 35,0 7,0 112,8 8,1<br />

05/04/2011 15:30 marin 1006 29,8 34,7 6,2 97,5 8,0<br />

05/04/2011 16:11 marin 1007 29,9 33,1 6,5 102,4 8,1<br />

05/04/2011 16:51 marin 1008 30,4 34,4 6,3 102,3 8,1<br />

05/04/2011 17:20 marin 1009 30,2 33,6 6,2 98,6 8,0<br />

05/04/2011 18:00 marin 1010 29,8 35,0 6,1 98,6 8,1<br />

06/04/2011 10:26 marin 1011 29,7 34,7 *5,2 86,4 8,0<br />

06/04/2011 10:54 marin 1012 29,9 34,6 5,8 92,6 8,1<br />

06/04/2011 13:41 marin 1013 30,7 35,1 8,4 117,0 7,1<br />

06/04/2011 14:45 marin 1014 30,3 34,9 5,8 93,3 8,0<br />

06/04/2011 15:47 marin 1015 29,6 35,1 6,1 98,0 8,1<br />

06/04/2011 16:06 marin 1016 29,9 35,1 6,0 95,5 8,1<br />

06/04/2011 16:28 marin 1017 30,1 34,9 6,1 98,6 8,1<br />

08/01/1900 08:55 marin 1018 29,4 35,1 5,6 85,0 8,1<br />

08/04/2011 - marin 1019 29,6 35,2 5,8 90,0 8,1<br />

09/04/2011 - marin 1020 29,5 35,1 6,4 101,0 8,1<br />

* cette valeur a été déduite par extrapolation : O2(%) = 12,024*O2 (mg/L)+23,359 ; R²=0,84.


- 21 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

E. Détermination du potentiel de valorisation des algues<br />

collectées à Mayotte<br />

1. Identification taxonomique des algues collectées<br />

En raison de la courte durée de la mission, l’inventaire de la biodiversité algale réalisé par le<br />

CEVA au début du mois d’avril 2010 à Mayotte ne pouvait être exhaustif. Néanmoins, il<br />

permet de fournir des données actualisées sur des groupes peu documentés comme les<br />

microalgues. Il a aussi comme intérêt de fournir une première évaluation de la disponibilité<br />

de la ressource en macroalgues.<br />

1.1 Phytoplancton d’eau douce<br />

Le traitement des échantillons de phytoplancton d’eau douce collectés à Mayotte a<br />

été confié à Mme Dominique JAMET, phytoplanctonologue de l’Université du Sud<br />

Toulon-Var. Il a consisté en une identification taxonomique jusqu’au niveau du genre,<br />

voire de l’espèce, de chaque microalgue rencontrée. Le tableau ci-dessous fait la<br />

synthèse des taxons collectés. Il renseigne également sur l’occurrence de chaque<br />

espèce, i.e. le nombre d’échantillons dans lesquels cette espèce a été identifiée<br />

(Tableau 5). Nous rappelons que 6 échantillons d’eau douce ont été prélevés.<br />

L’examen microscopique de ces échantillons a révélé que l’échantillon 2002 ne<br />

contenait aucune microalgue mais beaucoup de matières en suspension.<br />

L’échantillon 2001 était quant à lui très pauvre en nombre de cellules<br />

phytoplanctoniques. L’espèce présente dans le plus grand nombre d’échantillons est<br />

la Bacillariophyceae (= diatomée) Navicula sp. (4 échantillons sur 5). C’est une<br />

espèce qu’on retrouve à la fois dans les milieux marins et d’eau douce. Un bloom<br />

important de Cyanophyceae (= cyanobactérie) Anabaena sp. a d’autre part été<br />

observé dans l’échantillon 1022. Au total, 30 taxons différents ont pu être identifiés.<br />

1.2 Phytoplancton marin<br />

Comme pour le phytoplancton d’eau douce, le traitement des échantillons de<br />

phytoplancton marin collectés à Mayotte a été confié à Mme Dominique JAMET de<br />

l’Université du Sud Toulon-Var. Il a consisté en une identification taxonomique<br />

jusqu’au niveau du genre, voire de l’espèce, de chaque microalgue rencontrée. Le<br />

tableau ci-dessous fait la synthèse des taxons collectés. Il renseigne également sur<br />

l’occurrence de chaque espèce, i.e. le nombre d’échantillons dans lesquels cette<br />

espèce a été identifiée (Tableau 6). Ici, un total de 20 échantillons d’eau de mer a été<br />

prélevé permettant d’identifier 44 taxons différents. La cyanobactérie Oscillatoria sp.<br />

a été identifiée dans chacun de ces 20 échantillons.


- 22 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Tableau 5 : Liste des microalgues d’eau douce collectées à Mayotte lors de la mission<br />

du CEVA et occurrence par espèce<br />

Famille Espèce Occurrence<br />

Cyclotella sp. 1<br />

Gomphonema sp. 1<br />

Bacillariophyceae<br />

Navicula sp<br />

Nitzschia sp<br />

4<br />

3<br />

Stephanodiscus sp. 1<br />

Synedra acus 2<br />

Chroomonas minuta 1<br />

Cryptophyceae Cryptomonas ovata 3<br />

Hillea fusiformis 1<br />

Cyanophyceae<br />

Anabaena sp.<br />

Anabaena spiroïdes<br />

2<br />

2<br />

Dinophyceae<br />

Gymnodinium sp1<br />

Peridinium sp<br />

1<br />

2<br />

Ankistrodesmus sp. 2<br />

Botryococcus braunii 3<br />

Chlamydomonas sp. 1<br />

Chlorella sp. 1<br />

Coenococcus planctonica 1<br />

Crucigenia tetrapedia 1<br />

Chlorophyceae<br />

Hyaloraphidium contortum<br />

Oocystis sp<br />

3<br />

3<br />

Scenedesmus sp. 1<br />

Scenedesmus sp1 1<br />

Scenedesmus sp2 1<br />

Scenedesmus sp3 1<br />

Sphaerocystis shroeteri 1<br />

Tetraëdron minimum 2<br />

Euglenophyceae<br />

Trachelomonas volvocina<br />

Trachelomonas hispida<br />

3<br />

1<br />

Zygnematophyceae Staurastrum sp 3<br />

Figure 12 : Licmophora sp., diatomée<br />

marine isolée à Mayotte (photo :D. Jamet)


- 23 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Tableau 6 : Liste des microalgues marines collectées à Mayotte lors de la mission du<br />

CEVA et occurrence par espèce<br />

Famille Espèce Occurrence<br />

Actinoptychus sp. 1<br />

Asterionella sp. 2<br />

Bacteriatrum sp. 1<br />

Cerataulina sp . 1<br />

Chaetoceros danicus 2<br />

Chaetoceros sp. 4<br />

Chaetoceros sp1 1<br />

Chaetoceros sp2 1<br />

Cocconeis sp. 2<br />

Coscinodiscus sp 1<br />

Cyclotella sp. 12<br />

Cylindrotheca closterium 14<br />

Diplonéis crabro 1<br />

Bacillariophyceae Guinardia sp. 4<br />

Hemiaulus sp. 2<br />

Licmophora sp. 2<br />

Navicula sp. 7<br />

Nitzschia sp. 14<br />

Pleurosigma sp. 4<br />

Pseudohimantidium pacificum 1<br />

Pseudonitzschia delicatissima 10<br />

Pseudonitzschia seriata 2<br />

Rhizosolenia sp. 4<br />

Rhizosolenia sp1 2<br />

Rhizosolenia sp2 2<br />

Thalassionema frauenfeldii 3<br />

Thalassionema nitzschoïdes 1<br />

Cryptophyceae<br />

Hillea fusiformis<br />

Rhodomonas sp.<br />

2<br />

1<br />

Cyanophycea Oscillatoria sp. 20<br />

Achradina sp. 1<br />

Ceratium fusus 2<br />

Ceratium horridum 1<br />

Ceratium sp. 1<br />

Dinophysis acuminata 1<br />

Gymnodinium sp. 2<br />

Dinophyceae<br />

Gymnodinium sp1<br />

Gymnodinium sp2<br />

14<br />

7<br />

Oxytoxum sp. 1<br />

Peridiniella sp. 1<br />

Prorocentrum micans 1<br />

Protoperidinium pallidum 1<br />

Protoperidinium sp. 1<br />

Scripsiella sp. 5


1.3 Macroalgues marines<br />

- 24 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

L’identification taxonomique des macroalgues collectées à Mayotte a été réalisée au<br />

CEVA, par Tristan LE GOFF. Pour cela, plusieurs ouvrages de référence ont été<br />

utilisés :<br />

� Calumpong H.P. and Meñez E.G. 1997. Field guide to the common mangroves,<br />

seagrasses and algae of the Philippines. Bookmark, Makati City, Philippines.<br />

197 p.<br />

� Magruder W.H. and Hunt J.W. 1979. Seaweeds of Hawaii: a photographic<br />

identification guide. The Oriental Publishing Company, Honolulu, Hawaii. 116 p.<br />

� Oliveira E.C., Österlund K. and Mtolera M.S.P. 2005. Marine plants of Tanzania –<br />

A field guide to the seaweeds and seagrasses. Stockholm University, Botany<br />

Department, Sweden. 267 p.<br />

� Sahoo D., Sahoo N. and Sahoo D. 2001. Seaweeds of Indian Coast. A. P. H.<br />

Publishing Corporation, New Delhi, India. 283 p.<br />

� Scullion Littler D., Littler M.M., Bucher K.E. and Norris J.N. 1989. Marine plants of<br />

the Caribbean : a field guide from Florida to Brazil. Smithsonian Institution Press,<br />

USA. 263 p.<br />

� Silva P.C., Basson P.W. and Moe R.L. 1996. Catalogue of the benthic marine<br />

algae of the Indian Ocean. University of California Publications in Botany, vol 79.<br />

1259 p.<br />

Les identifications ont été conduites jusqu’au genre voire jusqu’à l’espèce. Bien<br />

souvent, la connaissance du genre suffit pour étudier les voies de valorisation<br />

existantes. Au total, 40 taxons ont été identifiés parmi lesquels 12 algues vertes, 7<br />

algues brunes et 21 algues rouges dont 7 calcifiées et 14 non calcifiées (Tableau 7 et<br />

document PDF Alguier.pdf).<br />

Les planches d’algues collectées et séchées ont été compilées en un alguier dont<br />

une copie est remise au SIEAM. Il permet notamment de mieux appréhender la taille<br />

des différentes espèces identifiées.


- 25 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Tableau 7 : Liste des macroalgues collectées à Mayotte lors de la mission du CEVA et<br />

évaluation de la disponibilité de la ressource<br />

Phylum Famille Espèce<br />

Algues brunes<br />

Algues rouges<br />

calcifiées<br />

Algues rouges<br />

non calcifiées<br />

Algues vertes<br />

1.4 Phanérogames marines<br />

Disponibilité de la ressource<br />

Dictyopteris sp. courant 3<br />

Dictyotaceae<br />

Dictyota spp.<br />

Lobophora sp.<br />

abondant<br />

courant<br />

9<br />

3<br />

Padina spp. abondant 9<br />

Sargassum sp. abondant à la dérive 9<br />

Sargassaceae Turbinaria decurrens abondant 9<br />

Turbinaria ornata abondant 9<br />

Corallinaceae Jania sp. abondant 9<br />

Actinotrichia fragilis abondant 9<br />

Galaxauraceae Galaxaura obtusata courant 3<br />

Galaxaura rugosa abondant 9<br />

Peyssonnelia capensis abondant 9<br />

Peyssonneliaceae Peyssonnelia simulans abondant 9<br />

Peyssonnelia spp. abondant 9<br />

Bonnemaisoniaceae Asparagopsis taxiformis abondant 9<br />

Cystocloniaceae Hypnea pannosa courant 3<br />

Dasyaceae Dasya pilosa courant 3<br />

Dumontiaceae<br />

Dudresnaya sp.<br />

Gibsmithia sp.<br />

rare<br />

rare<br />

0<br />

0<br />

Gelidiaceae Ptilophora pinnatifida rare 0<br />

Cryptonemia undulata courant 3<br />

Halymeniaceae<br />

Halymenia durvillei<br />

Halymenia formosa<br />

courant<br />

courant<br />

3<br />

3<br />

Halymenia sp. rare 0<br />

Kallymeniaceae Hormophora sp. abondant 9<br />

Rhizophyllidaceae Portieria harveyi courant 3<br />

Rhodomelaceae Amansia glomerata abondant 9<br />

Rhodymeniaceae Botryocladia sp. rare 0<br />

Caulerpa mexicana peu présent 1<br />

Caulerpaceae Caulerpa racemosa courant 3<br />

Caulerpa serrulata peu présent 1<br />

Dasycladaceae Neomeris vanbosseae courant 3<br />

Halimedaceae Halimeda spp. courant 3<br />

Avrainvillea erecta courant 3<br />

Chlorodesmis sp. peu présent 1<br />

Udoteaceae<br />

Rhipidosiphon sp.<br />

Rhipilia sp.<br />

courant<br />

courant<br />

3<br />

3<br />

Udotea sp1 courant 3<br />

Udotea sp2 peu présent 1<br />

Valoniaceae Ventricaria ventricosa courant 3<br />

Comme pour les macroalgues, l’identification des phanérogames collectées à<br />

Mayotte a été réalisée au CEVA, par Tristan LE GOFF.<br />

Il s’agissait ici de Halodule sp. et de Halophila sp. (Figure 13). L’inventaire des<br />

phanérogames ne faisait pas partie des objectifs de la mission de collecte.<br />

Cependant, la liste complète des espèces décrites à Mayotte est disponible au<br />

chapitre B, paragraphe 4.


Halodule sp. Halophila sp.<br />

- 26 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Figure 13 : Phanérogames photographiées à Mayotte lors de la mission de collecte<br />

1.5 Diversité spécifique spatiale<br />

La diversité spécifique spatiale fait référence à la variabilité géographique du nombre<br />

d’espèces d’algues rencontrées. Dans le cadre de la mission de collecte organisée<br />

par le CEVA, seule la diversité spécifique des microalgues a pu être évaluée. En<br />

effet, la stratégie de collecte appliquée aux macroalgues et phanérogames marines a<br />

consisté à relever tout nouvel individu identifié plutôt que conduire un inventaire total<br />

sur chaque site. Cette stratégie ne permet pas d’évaluer la diversité spécifique<br />

spatiale des macroalgues et phanérogames marines de l’île de Mayotte. Elle<br />

renseigne uniquement sur la biodiversité globale à l’échelle de l’île.<br />

Le graphique ci-dessous illustre la diversité spécifique rencontrée par site<br />

échantillonné, pour les microalgues marines et les microalgues d’eau douce (Figure<br />

14).<br />

Figure 14 : Nombre d’espèces différentes rencontrées par échantillon ( �: eau douce,<br />

prélèvement flacon ; �: marin, prélèvement flacon ; �: marin, prélèvement filet)


- 27 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Seuls six échantillons d’eau douce ont pu être prélevés, dont un ne contenant aucune<br />

microalgue. Il est donc difficile de conclure quant à la diversité spécifique spatiale<br />

réelle du phytoplancton d’eau douce à Mayotte. Toutefois, cette campagne met en<br />

évidence une plus forte richesse spécifique au niveau des sites de la retenue<br />

collinaire de Dzoumounuyé (1022) et de la retenue collinaire de Combani (2003 et<br />

2004).<br />

Vingt échantillons ont été prélevés en mer. Contrairement au phytoplancton d’eau<br />

douce, la campagne de collecte a donc permis de réaliser un bon échantillonnage<br />

des microalgues marines. Le prélèvement au filet à plancton permet de capter plus<br />

de cellules dans la colonne d’eau et donc en probabilité plus d’espèces différentes.<br />

Ceci explique la plus forte diversité spécifique observée sur les sites 1019 et 1020 où<br />

le prélèvement a été réalisé au filet à plancton. Pour les autres sites, la diversité<br />

spécifique varie de 2 à 13 espèces différentes par site.<br />

2. Etude du potentiel de valorisation des algues collectées<br />

Dans un souci de respect des délais de réalisation annoncés, l’étude du potentiel de<br />

valorisation des algues de Mayotte est uniquement conduite sur les espèces collectées lors<br />

de la mission du CEVA à Mayotte en avril 2011.<br />

Pour conclure à l’intérêt de valoriser telle ou telle espèce d’algue, deux conditions doivent<br />

être remplies :<br />

� L’espèce présente des débouchés à court ou moyen terme dans un ou plusieurs des<br />

domaines suivants : alimentation humaine, alimentation animale, agriculture, chimie fine<br />

(dont cosmétique et pharmaceutique), épuration des eaux, biomatériaux. Les espèces<br />

pour lesquelles les débouchés n’existent qu’à long terme, après une phase de recherche<br />

et développement, ne seront pas mises en avant.<br />

� L’espèce est cultivable. Pour certaines, les techniques sont d’ores et déjà maîtrisées.<br />

Pour d’autres, les techniques restent à développer mais la culture paraît envisageable.<br />

ou<br />

La ressource est suffisamment disponible pour que des pratiques durables de récolte<br />

puissent être mises en place. Ce dernier critère n’a de sens que pour les macroalgues. Il<br />

est en effet inenvisageable de développer une filière économique de valorisation de<br />

microalgues basé sur leur récolte. Dans le cas des microalgues, nous ne tiendrons donc<br />

compte que de l’aspect ‘cultivabilité’.<br />

Pour conduire cette étude, nous nous sommes basés sur les connaissances en termes de<br />

valorisation et de techniques de culture d’algues acquises au CEVA depuis sa création. Une<br />

revue bibliographique (publications scientifiques, ouvrages, brevets) a permis d’apporter des<br />

éléments supplémentaires.


- 28 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

2.1 Etude des débouchés potentiels des algues collectées à<br />

Mayotte<br />

Nous avons suivi une démarche méthodologique en trois étapes. D’abord, nous<br />

avons conduit une étude bibliographique complète des applications possibles de<br />

chacune des algues identifiées lors de la mission de collecte du CEVA. Ces données<br />

ont permis d’établir un score pour chaque algue selon le nombre et la rapidité de<br />

mise en œuvre des applications existantes. Dans ce paragraphe, seules les algues<br />

ayant obtenu un score élevé et donc considérées comme les meilleures candidates à<br />

la valorisation sont concernées. Nous en détaillons ici les débouchés potentiels dans<br />

les 8 domaines d’application suivants : l’alimentation humaine, la nutrition animale,<br />

l’agriculture, la chimie, la cosmétique, la santé humaine, la santé animale et<br />

l’épuration. La bibliographie des débouchés pour les algues moins prometteuses est<br />

détaillée en annexe (Annexe 7).<br />

1.1.1 Alimentation humaine<br />

En alimentation humaine, les algues sont utilisées dans différents secteurs :<br />

(1) Consommation directe : 75% de la production mondiale de macroalgues est<br />

destiné à la consommation directe. On parle aussi d’ « algues légumes ». Cette<br />

consommation se concentre principalement dans les pays asiatiques. Plusieurs<br />

parties du monde sont également connues pour consommer les microalgues<br />

directement. Il s’agit de certains peuples autochtones d’Afrique, d’Amérique du<br />

Sud et du Mexique.<br />

Parmi les espèces identifiées à Mayotte, seules les macroalgues présentent un<br />

usage décrit en consommation directe. En particulier, les algues Padina tenuis,<br />

Dictyota sp., Caulerpa racemosa et Hypnea pannosa sont consommées en tant<br />

que « légumes » (Haque et al., 2009 ; www.niobioinformatics.in ;<br />

www.wildsingapore.com ; Ethel & Llana, 1990 ; Guezennec et al., 2006 ; Seaplant<br />

Handbook ; Trono, 2001 ; Delepine, date inconnue). L’algue rouge Asparagopsis<br />

taxiformis est quant à elle consommée comme condiment (Trono, 2001 ; Seaplant<br />

Handbook).<br />

(2) Complément alimentaire et aliment ‘santé’ : en raison de leurs nombreuses<br />

propriétés nutritionnelles, les algues sont également consommées en tant que<br />

complément alimentaire sur les secteurs de la minceur et de la santé. Elles sont<br />

une source de vitamines, de minéraux mais aussi d’acides gras essentiels tels<br />

que les omégas et de composés bioactifs intéressants. Les macroalgues sont<br />

également une source intéressante de fibres (Person et al., 2011).<br />

Parmi les algues identifiées à Mayotte, la microalgue Chlorella sp. est sans<br />

conteste celle qui possède le plus fort potentiel dans ce secteur. Cette algue<br />

possède une grande valeur nutritionnelle. Elle est largement utilisée comme<br />

complément alimentaire au Japon et dans les pays d’Asie (Madere, 2011). Elle<br />

fait partie des 3 microalgues autorisées à la consommation en France. Elle est<br />

utilisée en complément alimentaire pour sa richesse en protéines (Liu et al.,<br />

2002), en vitamines (B, C et E) et minéraux (Winston & Goldber, 2003) ainsi qu’en<br />

acides gras essentiels – en particulier dans les souches d’origine marine (Seto et<br />

al., 1991 ; Matsunaga and Takeyama, 1997 ; EP2275101, 2011). Elle constitue<br />

également une source de caroténoïdes (Takada, 1989 ; Matsumura et al., 1994 ;


- 29 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Johannisbauer et al., 2010 ; Feng Chen, 2011) et montre un potentiel antioxydant<br />

(Abdel-Baky et al., 2002 ; Nishikawa, 2002 ; Clampit, 2007 ; Bias, 2010). De<br />

nombreux compléments à base de chlorelle sont commercialisés à travers le<br />

monde : « Nutritek » chez New Roots Herbal, « Chlorelle » chez Gourmet<br />

Nutrition, « Chlorella » chez Swiss Natural Sources, « Ultra Algues » chez Le<br />

Naturaliste, « Greens+ » chez Genuine Health, « Bonté verte » chez Bolthouse,<br />

« Green Blends Cleansing » chez Earthrise, « Sun Chlorella tablets » chez Sun<br />

Chlorella, … (Guillou et al., 2006). L’une des molécules les plus intéressantes<br />

extraites de Chlorella est le β-1,3-glucane, un composé stimulant le système<br />

immunitaire possédant d’autre part une activité anti-radicaux libres et<br />

hypolipidémiante. Plusieurs autres effets bénéfiques sur la santé sont rapportés<br />

en lien avec la consommation de chlorelle (Spolaore et al., 2006). Cette algue<br />

protègerait des effets néfastes des rayons UV, lutterait contre le stress et la<br />

fatigue, accroîtrait la vitalité et le bien-être, préviendrait l’ostéoporose et se<br />

montrerait hypolipidémiante et hypocholestérolémiante (diminution des taux de<br />

lipides et de cholestérol dans le sang). Les industriels revendiquent également<br />

une action détoxifiante vis-à-vis des métaux lourds, toxines et autres polluants<br />

(Gillou et al., 2006 ; Meredith, 2006 ; Loizou, 2009 ; Madere, 2011).<br />

En plus de la chlorelle, d’autres algues identifiées à Mayotte présentent un<br />

potentiel de valorisation dans le secteur des compléments alimentaires. La<br />

macroalgue Padina montre par exemple un intérêt comme source de minéraux, et<br />

en particulier comme source de calcium (Gutierrez, 2002 ; Manivannan et al.,<br />

2008 ; Haque et al., 2009). Les laboratoires Texinfine commercialisent d’ailleurs<br />

un extrait de Padina pavonica pour l’amélioration de la densité osseuse et de<br />

l’élasticité et du tonus de la peau (Dictyolone ® 500,<br />

http://www.healthexceluk.co.uk/dictyolone.php). Cette algue possède aussi une<br />

activité antioxydante naturelle justifiant son usage dans le domaine des<br />

compléments alimentaires (Matsuka et al., 2003). Ce potentiel plus ou moins fort<br />

d’activité antioxydante est observé chez d’autres espèces telles que les<br />

macroalgues Sargassum, Turbinaria, Dictyopteris undulata et les microalgues<br />

Oscillatoria, Navicula, Chaetoceros, Chlorella, Chlamydomonas, Scenedesmus,<br />

Botryococcus braunii et Anabaena (Le Lann, 2006 ; Cornish & Garbary, 2010 ;<br />

Yazawa et al., 2010 ; Babu & Wu, 2008 ; Yamaguchi et al., 2004 ; Affan et al.,<br />

2007 ; Karawita et al., 2007 ; Lee et al., 2009 ; Kang et al., 2011 ; Natrah et al.,<br />

2007 ; Goh et al., 2010 ; Maoka & Ito, 1995 ; Nishikawa et al., 2002 ; Abdel-Baky<br />

et al., 2002 ; Rao et al., 2006 ; Pant et al., 2011). Ce potentiel antioxydant peut<br />

être en lien avec une richesse en caroténoïdes de l’algue. En effet, les<br />

caroténoïdes qui sont les pigments constitutifs de l’algue possèdent une activité<br />

antioxydante notable. C’est le cas notamment de l’astaxanthine et de la lutéine<br />

(Rao et al., 2006 ; Feng Chen, 2011). L’activité antioxydante peut également être<br />

liée à la richesse en polyphénols de l’algue. C’est le cas notamment pour<br />

Sargassum et Turbinaria decurrens (Le Lann, 2006). Ces deux espèces montrent<br />

également une grande richesse en fucanes, un groupe de polysaccharides qui<br />

possèdent de nombreuses propriétés biologiques – antioxydant, anticoagulant,<br />

antiviral, anti-cancer – et qui peuvent être utilisés dans la formulation de<br />

compléments alimentaires (Holdt & Kraan, 2011). D’autre part, un effet<br />

prébiotique des alginates de Sargassum wightii, Sargassum ilicifolium,<br />

Sargassum myriocystum et de Turbinaria ornata, Turbinaria decurrens et<br />

Turbinaria conoides est décrit (Brault et al., 2003). Chaetoceros calcitrans montre<br />

une grande qualité nutritionelle (Natrah et al., 2007) et constitue une source de<br />

vitamine E (Goh et al., 2009).


- 30 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Certaines algues identifiées à Mayotte sont également des sources potentielles<br />

intéressantes d’acides gras, notamment d’acides gras essentiels. Ces derniers ne<br />

sont pas synthétisés pas notre organisme et doivent être apportés par notre<br />

alimentation. Il en existe plusieurs types :<br />

� DHA ou acide docosahexaénoique de la famille des omégas-3<br />

� EPA ou acide eicosapentaénoique, précurseur du DHA<br />

� ALA ou acide alpha-linolénique de la famille des omégas-3<br />

� ARA ou acide arachidonique de la famille des omégas-6<br />

L’importance nutritionnelle de ces acides gras pour l’organisme est aujourd’hui<br />

unanimement reconnue. Ils permettent notamment un bon fonctionnement du<br />

système cardio-vasculaire et du cerveau. Actuellement, ces acides gras<br />

essentiels sont principalement produits à partir d’huiles de poissons. Cependant,<br />

avec la raréfaction des ressources et les craintes de pollution affectant ces<br />

stocks, de nouvelles sources d’acides gras sont recherchées (Ratledge, 1997 ;<br />

Carlsson et al., 2007 ; Salomez, 2009). Dans ce contexte, certaines algues<br />

identifiées à Mayotte offriraient des potentialités intéressantes. Il s’agit notamment<br />

de la macroalgue Dictyopteris divaricata (EPA/DHA ; Fujimoto et al., 2004), de la<br />

cyanobactérie Oscillatoria (oméga-7 ; Matsunaga & Takeyama, 1997), des<br />

diatomées Navicula et Nitzschia (EPA ; Carlsson et al., 2007) ainsi que des<br />

chlorophycées Chlorella (surtout pour les espèces marines : EPA/GLA = acide<br />

gamma-linolénique/SDA = acide stéaridonique), Chlamydomonas (GLA/SDA),<br />

Scenedesmus (GLA/SDA), Scenedesmus dimorphus (oméga-3), Botryococcus<br />

braunii (oméga-3) et Ankistrodesmus (GLA/SDA) (Seto et al., 1991 ; Matsunaga &<br />

Takeyama, 1997 ; Moore & Solorio, 2009 ; EP2275101, 2011).<br />

Les algues entrent également dans la composition d’aliments ‘santé’. Après une<br />

étape de fermentation, les microalgues Chlorella, Chlamydomonas ou<br />

Scenedesmus sont utilisées dans la préparation d’une boisson ‘santé’ à forte<br />

valeur nutrititive (Kurosawa & Ogaki, 1986). L’algue Chlorella, et en particulier<br />

l’espèce Chlorella vulgaris, est utilisée dans la formulation d’un bonbon<br />

permettant de maintenir une bonne hygiène bucco-dentaire (Ribadeau-Dumas,<br />

2009). Un brevet décrit également une application des algues Sargassum sp.,<br />

Turbinaria sp., Caulerpa sp. et Hypnea sp. en tant que substitut de sel constitué<br />

en majorité de chlorure de potassium KCl dans le cadre de régime sans sel<br />

(Dunuwila & Berglund, 2005).<br />

(3) Ingrédient : les algues sont une source de molécules naturelles qui rentrent dans<br />

les préparations alimentaires.<br />

L’exemple le plus parlant est celui des colloïdes extraits de macroalgues qui sont<br />

des agents de texture largement utilisés dans le secteur alimentaire. On compte<br />

parmi ces colloïdes les alginates, qui sont extraits à partir d’algues brunes. Les<br />

alginates présentent des propriétés techniques diverses : texturants polyvalents,<br />

épaississants, agents gélifiants, stabilisants, cryo-protecteurs pour les aliments<br />

surgelés ou films comestibles. Parmi les algues identifiées à Mayotte, Padina,<br />

Sargassum, Turbinaria et Dictyota sont des alginophytes (Trono, 2001,<br />

Gopinathan & Panigrahy, 1983 ; Institut national des sciences et technologies de<br />

la mer, www.mes.tn ; McHugh, 1987 ; www.wildsingapore.com ;<br />

www.niobioinformatics.in ; Ethel & Llana, 1990). Actuellement, à l’échelle<br />

mondiale, les alginates sont essentiellement extraits à partir d’algues récoltées<br />

dans le milieu naturel (Carlsson et al., 2007). Les carraghénanes constituent une<br />

autre classe de colloïdes. Ils servent d'agent d'épaississement, de gélification, de<br />

stabilisation, d’émulsion ou de suspension dans l'industrie (Lele & Kumar, 2007 ;


- 31 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Person et al., 2011). Contrairement aux alginates, l’essentiel de la production de<br />

carraghénanes provient de la culture, la cueillette ne permettant pas de répondre<br />

à la forte demande sur ce produit (Carlsson et al., 2007). Parmi les algues<br />

identifiées à Mayotte, plusieurs algues rouges dont Hypnea et en particulier<br />

Hypnea pannosa sont des carraghénophytes (Trono, 2001 ; Tako et al., 1998 ;<br />

Deboer, 1981).<br />

Un autre exemple d’ingrédient alimentaire fourni par les algues est celui des<br />

pigments extraits de microalgues qui sont utilisés comme colorant naturel<br />

(Spolaore et al., 2006, Salomez, 2009). Parmi ces pigments, l’astaxanthine<br />

(E161j), le β-carotène (E160a) et la phycocyanine montrent un succès<br />

commercial significatif, le consommateur privilégiant de plus en plus les<br />

composés d’origine naturelle (Milledge, 2011 ; Lele & Kumar, 2007). Parmi les<br />

espèces identifiées à Mayotte, plusieurs ont été décrites comme source<br />

potentielle de colorants naturels. Pour les espèces d’eau douce il s’agit de<br />

Chlorella, Chlamydomonas, Scenedesmus, Navicula pelliculosa, Botryococcus<br />

braunii, Anabaena et Ankistrodesmus (Matsumara et al., 1994 ; Johannisbauer et<br />

al., 2010 ; Takada, 1989 ; Flachmann et al., 2005 ; Maoka & Ito, 1995). Pour les<br />

espèces marines, il s’agit entre autres d’Oscillatoria sp. (Tiwari et al., 2011).<br />

Les microalgues sont également une source de composés utilisés comme agent<br />

conservateur dans des préparations alimentaires. Par exemple, un brevet décrit<br />

une application des lipides extraits de Cyclotella sp., Navicula et Nitschia alba<br />

comme agent de stabilisation des huiles de poissons. Les lipides algaux,<br />

constitués d’acides gras polyinsaturés à longue chaîne, préviennent ici les acides<br />

gras de poissons de l’oxydation (Piechocki & Kyle, 2009). Un extrait de<br />

Chaetoceros gracilis montre aussi une action antimicrobienne potentiellement<br />

valorisable comme agent de conservation dans des produits alimentaires<br />

(Mendiola et al., 2007).<br />

D’autre part, la fermentation d’algues riches en amidon telles que les microalgues<br />

Oscillatoria, Chlorella et Chlamydomonas permet de produire de l’acide lactique,<br />

composé largement utilisé en tant qu’ingrédient alimentaire (Ueda et al., 2003).<br />

Enfin, les algues peuvent être utilisées en tant qu’ingrédient pour ajuster le goût<br />

de préparations alimentaires. C’est le cas de Caulerpa racemosa, utilisée pour<br />

masquer l’amertume (Yamamoto & Okamoto, 2006) et de Chlorella, microalgue<br />

particulièrement riche en chlorophylle (Spolaore et al., 2006).<br />

En France, la règlementation autorise la consommation de 20 macroalgues et<br />

3 microalgues parmi lesquelles la microalgue d’eau douce Chlorella sp. (Annexe 6).<br />

Aucune autre espèce collectée à Mayotte et considérée comme candidate<br />

intéressante à la valorisation ne dispose de cette autorisation.<br />

1.1.2 Alimentation animale<br />

Les macro- et microalgues sont également utilisées en alimentation animale.<br />

Autrefois, dans certaines régions côtières, le bétail était amené à paître sur les<br />

grèves. Aujourd’hui, les algues se retrouvent sous forme de farines dans la<br />

formulation des aliments pour animaux terrestres et aquacoles ou sous forme vivante,<br />

uniquement pour les microalgues, dans l’alimentation pour l’aquaculture. La fraction<br />

protéique des algues peut être utilisée dans l’alimentation des animaux terrestres et


- 32 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

aquacoles comme substitut aux tourteaux oléagineux et aux farines de poisson. Ainsi,<br />

entre 5 et 10% d’algues peuvent être utilisés dans la ration des volailles en<br />

remplacement des protéines traditionnelles ayant comme conséquence une<br />

amélioration de la coloration de la peau de l’animal et du jaune d’œuf (Spolaore et al.,<br />

2006). Les algues peuvent aussi intervenir comme compléments alimentaires en<br />

nutrition animale. Des effets prébiotiques, antioxydants, immunostimulants et autres<br />

leur sont reconnus et valorisés dans des aliments comme ceux pour les poules<br />

pondeuses, les jeunes lapins, ou dans les pierres de sels minéraux (iode...) pour<br />

bovins, ovins, caprins (Person et al., 2011). Le bénéfice de l’intégration d’algues à la<br />

ration des animaux peut donc se faire à deux niveaux : directement sur la santé et le<br />

bien-être de l’animal ou sur la qualité du produit fini (lait, chair, œuf).<br />

Comme pour le secteur de l’alimentation humaine, de nombreux usages en<br />

alimentation animale sont décrits pour la microalgue Chlorella (Guillou et al., 2006 ;<br />

Milledge, 2011 ; Kojima et al., 1990 ; Gladue & Behrens, 2002 ; Groeneweg &<br />

Schluter, 1982 ; Harel, 2004). C’est une des principales espèces cultivées pour<br />

l’alimentation en aquaculture (Spolaore et al., 2006). Les microalgues sont en effet<br />

essentielles au cours des processus d'écloserie et de nurserie de mollusques, de<br />

bivalves, de crevettes et de quelques élevages de poissons. Elles sont généralement<br />

utilisées pour nourrir les stades larvaires à juvéniles ou le zooplancton (ex. rotifères)<br />

dont se nourrissent les larves de poissons carnivores (Blackburn et al., 1997 ; Lele &<br />

Kumar, 2007 ; Person et al., 2011). Leur atout nutritionnel réside dans leur richesse<br />

en protéines et en acides gras essentiels (Spolaore et al., 2006). Plusieurs espèces<br />

de microalgues identifiées à Mayotte sont d’ailleurs mises en avant pour leur richesse<br />

en acides gras polyunsaturés pour des applications en alimentation aquacole : les<br />

cyanobactéries Oscillatoria et Anabaena, les diatomées Cyclotella, Navicula,<br />

Nitzschia et Chaetoceros, ainsi que les chlorophycées Chlorella, Chlamydomonas,<br />

Scenedesmus et Botryococcus (Wu et al., 2010). Parmi les microalgues identifiées à<br />

Mayotte, Oscillatoria, Anabaena, Navicula et Nitzschia sont également décrites<br />

comme source potentiellement intéressante de protéines pour l’alimentation<br />

d’animaux d’aquaculture (Adey & Purgason, 1998). De part cette richesse en<br />

protéines et en acides gras essentiels, les microalgues sont une véritable alternative<br />

aux farines et huiles de poisson largement utilisées en aquaculture. En effet, dans le<br />

contexte actuel de raréfaction des ressources halieutiques et en particulier des stocks<br />

réservés à la pêche minotière, une volonté de remplacer ces farines et huiles de<br />

poisson a vu le jour (Person et al., 2011). Pourtant, actuellement, seules Chlorella,<br />

Navicula et Chaetoceros sont cultivées à l’échelle commerciale pour l’alimentation en<br />

aquaculture (Spolaore et al., 2006 ; Lele & Kumar, 2007). On peut raisonnablement<br />

penser que d’autres microalgues ont un potentiel de valorisation dans ce secteur<br />

comme Chlamydomonas, Scenedesmus, Nitzschia ou encore Anabaena (Harel,<br />

2004). Concernant les macroalgues, seule Padina est décrite comme ayant un usage<br />

potentiel en alimentation aquacole (Harel, 2004). L’atout principal de cette algue<br />

brune est sa richesse en calcium qui peut être valorisée dans le domaine de l’élevage<br />

de mollusques perliers ou nacrifères. Des compléments à base de Padina<br />

permettraient d’accélérer le processus de formation des perles (Gutierrez, 2002 ;<br />

Gutierrez, 2004). D’autre part, un brevet décrit l’emploi de cette algue Padina, ainsi<br />

que de Sargassum ou de Caulerpa comme source de bromophénols dans la ration<br />

alimentaire d’animaux d’aquaculture pour améliorer la qualité organoleptique du<br />

produit (Chung et al., 2005).<br />

Comme nous l’avons dit plus haut, les algues peuvent également être valorisées en<br />

tant qu’aliment ou complément alimentaire pour les animaux terrestres d’élevage et<br />

domestiques. En particulier, les algues brunes Sargassum, Dictyota et Turbinaria,


- 33 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

ainsi que les algues rouges Asparagopsis taxiformis et Hypnea pannosa, possèdent<br />

un usage en alimentation animale (Trono, 2001 ; Seaplant Handbook). Comme pour<br />

le domaine de l’alimentation humaine, leur atout réside dans leur qualité nutritionnelle<br />

et leurs propriétés biologiques éventuelles : richesse en fucanes pour Sargassum et<br />

Turbinaria (donnée CEVA), activité antioxydante pour Padina, Sargassum, Turbinaria<br />

et Dictyopteris undulata (Matsuka et al., 2003 ; Le Lann, 2006 ; Yazawa et al., 2010),<br />

stimulation du système immunitaire (Guillou et al., 2006), stimulation des fonctions de<br />

reproduction (Nakayama, 1991), source de vitamines et d’une manière générale<br />

grande qualité nutritionnelle pour Chlorella (US3903307, 1975), stimulation de la flore<br />

intestinale des animaux non ruminants pour Chlorella et Scenedesmus (Deremaux &<br />

Wils, 2010) et source d’acides gras essentiels pour Chlorella et Chaetoceros. En<br />

particulier, un brevet décrit l’emploi de ces deux microalgues Chaetoceros ou<br />

Chlorella comme source de DHA dans la ration de poules pondeuses afin d’obtenir<br />

des œufs enrichis en oméga 3 (Akimoto et al., 2002). L’entreprise américaine Sun<br />

Chlorella commercialise également des compléments alimentaires à base de<br />

Chlorella pour les chiens et les chats (www.sunchlorellausa.com), tandis que Tanaka<br />

(1998) décrit l’emploi d’un extrait de Chlorella comme ingrédient pour la formulation<br />

d’aliment pour animaux domestiques. Enfin, en raison de leur richesse en<br />

caroténoïdes (ex. astaxanthine, lutéine), les chlorophycées d’eau douce Chlorella,<br />

Scenedesmus, Botryococcus et Ankistrodesmus peuvent être incorporées à la ration<br />

alimentaire de certains animaux (ex. volaille, saumon, truite, crevette) pour colorer<br />

leur chair et améliorer la qualité organoleptique du produit fini (Flachmann et al.,<br />

2005). Le marché mondial de l’astaxanthine pour l’aquaculture était évalué à 200<br />

millions US$ en 2004 pour un prix moyen de 2500 US$/kg. Le marché est dominé par<br />

la forme synthétique de l’astaxanthine bien que sa forme naturelle soit requise pour<br />

certaines applications (carpe koi, volaille, dorade japonaise) et préférée par le<br />

consommateur (Milledge, 2011 ; Carlsson et al., 2007).<br />

1.1.3 Agriculture<br />

Historiquement et traditionnellement, les macro-algues sont utilisées comme engrais<br />

dans le monde entier au niveau des régions côtières. Les “laisses de mer” sont<br />

épandues sur les champs. Leur teneur en minéraux permet d’améliorer la<br />

composition minérale des sols appauvris et leur richesse en colloïdes d'accroître la<br />

capacité de rétention d'eau des sols, de fixer les limons et de réduire l’érosion des<br />

terres arables. Les macro-algues brunes entrent aussi dans la formulation de<br />

supports de culture (terreaux enrichis) et d’engrais sous forme de farines ou d’extraits<br />

liquides. Les algues sont particulièrement riches en éléments fertilisants majeurs N et<br />

K, ainsi qu’en éléments fertilisants secondaires S, Ca, Mg, et en oligoéléments. Elles<br />

contiennent également des composés qui favorisent la germination, la croissance des<br />

feuilles ou des tiges, la floraison. Elles peuvent même être utilisées comme agent de<br />

protection biologique contre les maladies des plantes en agissant comme éliciteurs,<br />

c'est-à-dire en stimulant les défenses naturelles des plantes (Person et al., 2011)<br />

Parmi les algues identifiées à Mayotte, certaines ont un usage avéré en tant<br />

qu’engrais tandis que d’autres en ont une utilisation potentielle : Sargassum,<br />

Turbinaria decurrens et Hypnea pannosa sont décrites comme « engrais » (Trono,<br />

2001 ; Seaplant Handbook) ; des études ou brevets montrent que Chlorella,<br />

Scenedesmus, Botryococcus braunii, Chlamydomonas et les macroalgues Padina et<br />

Asparagopsis taxiformis améliorent la croissance et/ou la qualité du végétal (Wake et<br />

al., 1990 ; Laszlo et al., 1995 ; Faheed & Abd-El Fattah, 2008 ; Dubey & Dubey, date<br />

inconnue ; Murakami & Hisatsuka, 1998 ; Murakami, 2000 ; Sunarpi et al., 2010 ; Bai<br />

et al., 2011 ; Zamora & Sumile, 2011 ; Omezzine et al., 2009 ; Bai et al., 2007) tandis


- 34 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

que Chlorella, Chlamydomonas, Anabaena et Padina pavonica améliorent la<br />

composition du sol (Tenzer, 1985 ; Fogel et al., 1976 ; Vaishampayan et al., 2007 ;<br />

Omezzine et al., 2009). Des brevets décrivent également l’emploi des microalgues<br />

Chlorella, Chlamydomonas et Oscillatoria dans une composition utilisée comme<br />

substrat de revégétalisation de terrains nus (Chiaffredo & Figureau, 1995 ; Riley et<br />

al., 2000).<br />

Des études ou brevets établissent une activité de stimulation des défenses de la<br />

plante (i.e. éliciteur) des extraits de Turbinaria ornata, Turbinaria decurrens,<br />

Sargassum wigtii, Sargassum ilicifolium, Sargassum myriocystum (Brault et al., 2003)<br />

et Hypnea musciformis (Bi & Iqbal, 1999).<br />

Pour finir, les algues constituent également un réservoir de molécules aux propriétés<br />

potentiellement intéressantes d’un point de vue phytosanitaire. Ainsi, les extraits de<br />

Turbinaria ornata, Turbinaria decurrens et Dictyota dichotoma montrent une activité<br />

insecticide (Trono, 2001 ; Saleh et al., 1984). Une étude décrit le potentiel<br />

antibactérien et antifongique vis-à-vis des maladies affectant les végétaux d’un extrait<br />

de la cyanobactérie Anabaena oryzae (Abedin & Taha, 2008). Une activité<br />

antifongique vis-à-vis de champignons attaquant les végétaux a également été<br />

décrite sur des extraits de Padina pavonica (Omezzine et al., 2009) et de<br />

Chaetoceros lauderi (Viso et al., 1987).<br />

1.1.4 Chimie<br />

L'industrie chimique est actuellement fortement dépendante du pétrole fossile, à partir<br />

duquel sont extraits des produits chimiques, les matières plastiques et les carburants<br />

de transport. Dans le cadre du Grenelle, l'industrie chimique française s'est engagée<br />

à passer d'une utilisation de 5 à 8% de matières premières d'origine végétale à 15%<br />

d'ici à 2017. Ce taux de substitution devrait atteindre 50% d’ici 2050, encourageant<br />

ainsi le développement de la chimie verte. Un certain nombre de produits chimiques<br />

pourrait être obtenus à partir des algues et plus particulièrement des microalgues.<br />

Les algues constituent d’autre part un réservoir intéressant pour le secteur des<br />

matériaux bio-sourcés. L’exemple le plus connu est le fil d’alginate de calcium qui<br />

permet de fabriquer les compresses hémostatiques que l’on retrouve dans les<br />

hôpitaux du monde entier (Person et al., 2011).<br />

(1) Chimie fine :<br />

Les algues constituent un immense réservoir de molécules originales, offrant des<br />

débouchés potentiels dans le domaine de la chimie fine. De l’acide lactique est<br />

obtenu par fermentation d’algues riches en amidon telles qu’Oscillatoria,<br />

Chlorella et Chlamydomonas (Ueda et al., 2003). L’algue rouge Asparagopsis<br />

taxiformis contient des acides acryliques halogénés (Woolard et al., 1979). La<br />

diatomée Cyclotella est capable de produire de la bêta-chitine (Tsuji et al., 2009).<br />

En 1997, Su et al. isolent un nouveau composé de type bis-indole de l’algue<br />

verte Caulerpa serrulata qu’ils baptisent caulersine. Les indoles sont les réactifs<br />

de départ de la synthèse d'un grand nombre de composés organiques (ex.<br />

pigments, composants de parfums, médicaments, etc.). Les algues brunes<br />

Dictyopteris (Kornprobst, 1999) et Dictyota contiennent des terpènes. Ces<br />

composés conférent des propriétés déterrentes à Dictyota menstrualis (Cruz-<br />

Rivera & Hay, 2003) et une action antifouling à Dictyota friabilis et Dictyota<br />

dichotoma (Shin, 2001 ; Blunt et al., 2008). Les extraits apolaires de Hypnea<br />

pannosa montrent eux aussi un caractère déterrent (Ceh et al., 2005). Ce


- 35 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

mécanisme constitue pour l’algue un moyen de défense vis-à-vis des brouteurs.<br />

Comme Dictyota friabilis et Dictyota dichotoma, les algues Sargassum (Shin,<br />

2005) et Asparagopsis taxiformis (Manilal et al., 2010) possèdent une action<br />

antifouling. Les extraits de la microalgue Oscillatoria ont quant à eux une action<br />

spécifique algicide (Chauhan et al., 1992). L’intérêt de ces molécules antifouling<br />

extraites d’algues est qu’elles ne présentent pas de risque pour l’environnement,<br />

contrairement aux molécules utilisées jusqu’à présent. Concernant les molécules<br />

originales, les cyanobactéries Oscillatoria et Anabaena identifiées lors de la<br />

mission de collecte produisent des toxines qui ont des débouchés potentiels<br />

dans le domaine médical notamment (Bhakuni & Rawat, 2005 ; Blackburn et al.,<br />

1997 ; Monserrat et al., 2001). Il faut noter que parmi les cyanobactéries, le plus<br />

grand nombre de molécules actives provient du genre Lyngbya et en particulier<br />

de l’espèce Lyngbya majuscula à partir de laquelle plus de 70 molécules ont été<br />

isolées et caractérisées. Cette espèce est rencontrée à Mayotte. Dans des cas<br />

spécifiques d’importantes proliférations cellulaires, ces microalgues sont<br />

associées à la production de toxines qui peuvent par exemple servir de modèles<br />

pour l’obtention de médicaments originaux (Guillou et al., 2006 ; Osbrone et al.,<br />

2008).<br />

Certaines enzymes extraites d’algues montrent une activité particulière. Ainsi la<br />

cyanobactérie Oscillatoria contient des enzymes agarolytiques, ce qui peut avoir<br />

un débouché en algoculture (Kaladharan & Seetha, 2000). Un brevet japonais<br />

décrit l’emploi d’une enzyme isolée chez la chlorophycée Botryococcus braunii<br />

dans le cadre d’une réaction d’extension de la chaîne carbonée d’un acide gras<br />

(Fukuda et al., 2003).<br />

D’autres propriétés des algues peuvent être valorisées dans les processus de<br />

traitement chimique. Un brevet américain décrit par exemple l’emploi de la<br />

microalgue Anabaena comme bio-flocculant dans un procédé de traitement des<br />

boues issues de l’exploitation de minerai (Leslie et al., 1984). Oscillatoria<br />

synthétise des exo-polymères qui sont utilisés dans une composition limitant le<br />

dépôt de calcaire et la formation de tarte (Perry, 2007). L’algue Hypnea pannosa<br />

est incorporée à de la glace afin d’obtenir une meilleure conservation des<br />

aliments (Pinto Pedrosa et al., 2009). Les diatomées Cyclotella et Nitzschia sont<br />

utilisées dans un procédé d’obtention d’oxides métalliques (Rorrer et al., 2007).<br />

Enfin, la richesse en lipides de certaines microalgues implique des débouchés en<br />

tant que tensioactif (agent de surface largement employé dans les détergents par<br />

exemple) ou lubrifiant. C’est le cas des cyanobactéries Oscillatoria et Anabaena,<br />

des diatomées Cyclotella, Navicula, Nitzschia et Chaetoceros ainsi que des<br />

chlorophycées Chlorella, Chlamydomonas, Scenedesmus, Botryococcus et<br />

Ankistrodesmus pour lesquelles plusieurs brevets ont été déposés (Brown et al.,<br />

2010 ; Pettersen, 2010 ; He et al., 2011). Ici encore, l’intérêt d’avoir recours à ces<br />

molécules d’origine naturelle est qu’elles sont biodégradables et ne présentent<br />

pas de risque pour l’environnement.<br />

Les pigments d’origine algale tels que la chlorophylle ou les caroténoïdes<br />

possèdent également des débouchés dans le domaine de la chimie fine. Un<br />

brevet décrit par exemple l’emploi de poudre de Chlorella dans du tabac, la<br />

teneur élevée en chlorophylle permettant d’atténuer les mauvaises odeurs<br />

(Ohshiro, 2001). Un autre brevet décrit l’emploi des phycobiliprotéines<br />

d’Anabaena variabilis comme pigment pour l’analyse en cytométrie de flux<br />

(Wolfers et al., 2010). Les phycobiliprotéines comme la phycocyanine et la<br />

phycoérythrine sont par ailleurs utilisées pour des applications pharmaceutiques


- 36 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

avec le diagnostic de contrôle par exemple (Person et al., 2011). D’autres<br />

molécules que les pigments algaux ont des applications dans le domaine<br />

médical. Les protéines de Chlorella vulgaris ont un effet cryoprotecteur qui peut<br />

être utilisé pour protéger les enzymes labiles à la congélation dans des<br />

préparations médicales (Guillou et al., 2006). Des extraits de la cyanobactérie<br />

Oscillatoria montrent une activité de facteur de croissance valorisable dans le<br />

domaine de la recherche médicale pour les cultures cellulaires ou tissulaires<br />

(Dubois et al., 1990).<br />

(2) Matériaux bio-sourcés :<br />

Des travaux récents ont montré que les algues et leurs extraits pouvaient être<br />

utilisés comme charge ou additif fonctionnel dans des matériaux composites à<br />

matrice thermodurcissable ou thermoplastique. Des développements sont en<br />

cours dans le secteur des thermoplastiques pour films d’emballage et pour<br />

pièces injectées (Person et al., 2011). En France, un projet de recherche se<br />

consacre actuellement à l’évauation des co-produits de microalgues (fraction<br />

lipidique) comme alternative aux liants bitumeux issus du pétrole fossile (Projet<br />

Algoroute, http://www.slideshare.net/Atlanpole/projet-algoroute).<br />

Parmi les algues identifiées à Mayotte, deux espèces font l’objet de travaux sur<br />

leur emploi dans des thermoplastiques. Zhang et al. (2000) ont travaillé sur<br />

l’incorporation de Chlorella dans un composite de type PVC. Un brevet récent est<br />

paru sur l’incorporation de carraghénanes de l’algue rouge Hypnea dans un<br />

matériau thermoplastique (Brocker et al., 2009).<br />

Un brevet décrit la méthode de préparation et d’utilisation d’un enduit<br />

comprenant des microalgues. Sont citées en particulier les diatomées Cyclotella,<br />

Navicula, Nitzschia et Chaetoceros ainsi que les chlorophycées Chlorella,<br />

Chlamydomonas, Scenedesmus, Botryococcus et Ankistrodesmus (McDaniel,<br />

2005). Un projet conduit par la société hollandaise Algicoat de production de<br />

peintures avec des molécules extraites de microalgues en est au stade R&D<br />

(Person et al., 2011).<br />

Un polysaccharide extrait de Chaetoceros didymus est utilisé comme agent<br />

réducteur de frottements dans le cadre du traitement de surfaces en contact avec<br />

des eaux courantes (Jourdan & Vanlaer, 2003).<br />

La poudre de diatomées Cyclotella est décrite comme agent stabilisant dans la<br />

fabrication de matériaux accumulateurs de calories pour la conception de<br />

panneaux photovoltaïques (Schneider et al., 1980).<br />

Les algues sont également une source de cellulose qui peut être valorisée dans<br />

le domaine des matériaux. Ainsi, un brevet décrit l’emploi de cellulose extraite<br />

d’algues, en particulier de la cyanobactérie Anabaena, comme agent fixateur de<br />

nicotine dans un traitement pharmaceutique anti-tabac. Cependant, l’algue<br />

préférée pour cette application est l’algue verte Cladophora (Bo et al., 2005).<br />

Enfin, il est possible d’incorporer de la poudre de Chlorella dans les filtres de<br />

cigarettes, la microalgue ayant alors l’effet de retenir les substances toxiques<br />

telles que la nicotine, le monoxyde de carbone ou les goudrons contenues dans<br />

la fumée (Yamaguchi, 1981).


1.1.5 Cosmétique<br />

- 37 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Les algues sont un ingrédient clé de la réussite de la cosmétique marine française.<br />

Les extraits de microalgues et de macroalgues sont de nature très diverse (ex.<br />

antioxydant, hydratant, fraction lipidique) et sont utilisés dans une gamme très large<br />

de produits cosmétiques. Leur caractère « naturel » en fait leur principal atout, le<br />

potentiel de croissance du marché des cosmétiques naturels et bio étant important<br />

(Person et al., 2011). Quelques exemples de produits commercialisés sont listés<br />

dans le tableau ci-dessous (Tableau 8).<br />

(1) Soin de la peau :<br />

Les algues ou extraits d’algues peuvent être utilisées dans des préparations<br />

cosmétiques en tant qu’agent hydratant. C’est le cas notamment des<br />

macroalgues Padina pavonica (plusieurs extraits commercialisés par la société<br />

Alban Müller, extrait commercialisé par la société α-mar, www.icpconcepts.com),<br />

Caulerpa racemosa (Ito et al., 2005), Hypnea musciformis (du fait de teneurs<br />

élevées en floridosine et taurine, donnée interne CEVA), Dictyopteris (Lukowski<br />

et al., 2011) et de la microalgue Chlorella (Wahi, 2009). Un extrait de Chlorella<br />

est également utilisé dans une préparation pour maintenir le niveau de<br />

céramides dans la peau et ainsi limiter les phénomènes de déshydratation<br />

(Koenig & Van Gompel, 2009).<br />

De manière plus générale, certaines algues ou extraits d’algues trouvent une<br />

application dans des soins protecteurs favorisant le renforcement de la peau. Il<br />

s’agit notamment des macroalgues Padina pavonica (www.icpconcepts.com),<br />

Sargassum filipendula, Sargassum fusiforme, Sargassum muticum, Hypnea<br />

musciformis (Cosmetic ingredients database) et des microalgues de la famille<br />

des diatomées Nitzschia delicatissima ou Nitzschia seriata et Chaetoceros<br />

compressus, Chaetoceros affinis ou Chaetoceros decipiens (gamme Protection<br />

de la société EUOKO, www.euoko.com) ainsi que la chlorophycée Scenedesmus<br />

(Cosmetic ingredients database).<br />

Des extraits d’Oscillatoria montrent une activité de facteur de croissance et sont<br />

donc valorisables dans des préparations cosmétiques en tant qu’agent stimulant<br />

la régénération cellulaire (Dubois et al., 1990). La société suisse Annané<br />

commercialise un produit à base de Scenedesmus isolé dans le désert du Sahel<br />

dont l’extrait améliorerait la capacité des cellules de la peau à régénérer<br />

(www.ananne.com). Des études s’intéressent d’autre part aux effets cicatrisants<br />

des polysaccharides de Caulerpa racemosa (donnée interne CEVA).<br />

Une action protectrice contre les UV est mise en évidence dans de nombreux<br />

extraits d’algues, en particulier chez les macroalgues Padina boryana,<br />

Sargassum muticum et Turbinaria ornata en raison de leur teneur en<br />

fucoxanthines (Johnsen et al., 2008), chez Caulerpa racemosa (le<br />

dihydrocinnamate extrait de cette algue présente des analogies structurales<br />

importantes avec les esters cinnamiques antisolaires utilisés en cosmétique,<br />

donnée interne CEVA), chez Asparagopsis armata (donnée interne CEVA) et<br />

chez la cyanobactérie Oscillatoria (Dubois et al., 1990 ; Wachi et al., 1993 ;<br />

Matsunaga & Takeyama, 1997). On peut rappeler ici que les chlorophycées<br />

Chlorella, Chlamydomonas et Ankistrodesmus sont capables de synthétiser des<br />

quantités importantes de bêta-carotènes (Matsumura et al., 1994), pigments qui


- 38 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

ont une action filtrante vis-à-vis des rayons UV et qui de fait sont parfois<br />

incorporés dans les crèmes solaires (http://betacarotene.fr/).<br />

De nombreuses études et brevets sont également parus concernant le rôle des<br />

algues ou extraits d’algues sur la pigmentation de la peau. Certains extraits ont la<br />

capacité d’inhiber la synthèse de mélanine procurant un effet blancheur (utilisé<br />

par exemple pour le traitement des tâches). D’autres stimulent au contraire la<br />

mélanogénèse ayant pour effet une coloration de la peau (ex. autobronzant).<br />

Ainsi, un extrait méthanolique de Dictyota dichotoma est utilisé dans des<br />

préparations cosmétiques comme promoteur de la synthèse de mélanine (Kamei<br />

et al., 2004). Ces mêmes auteurs décrivent l’emploi d’extraits de Sargassum,<br />

Dictyota, Dictyota spinosum et Dictyopteris comme agent éclaircissant de la peau<br />

(Kamei et al., 1998). Un brevet décrit également l’emploi d’extrait de Padina<br />

arborescens, Padina australis, Padina crassa, Padina japonica ou Padina minor<br />

comme inhibiteur de la synthèse de mélanine pour des préparations cosmétiques<br />

(Kawasaki et al., 2008). Des principes actifs extraits des algues vertes du genre<br />

Caulerpa ou des microalgues Chlamydomonas et Chlorella vulgaris entrent<br />

également dans la composition de soins éclaircissants pour la peau (Matsushita<br />

et al., 2004 ; Nakahara et al., 2010 ; Kyrou et al., 2000).<br />

Certains soins ciblés pour les peaux à imperfections contiennent des<br />

microalgues telles que Chaetoceros compressus, Chaetoceros affinis,<br />

Chaetoceros decipiens, Nitzschia delicatissima et Nitzschia seriata (gamme<br />

Blemishes de la société EUOKO, www.euoko.com). Un extrait de la<br />

cyanobactérie Oscillatoria peut aussi être utilisé dans le cadre d’un traitement<br />

dermatologique contre l’acné (Dubois et al., 1990).<br />

(2) Soins anti-âge :<br />

De nombreux principes actifs anti-âge sont extraits de macro- et de microalgues.<br />

Les laboratoires Lancôme, Estée Lauder, L’Oréal ou encore Sisley<br />

commercialisent des soins anti-âge à base d’extraits de Padina pavonica<br />

(Tableau 8). On trouve également des préparations à base de Hypnea<br />

musciformis (laboratoire Swisa Beauty), cette algue contenant des principes<br />

actifs anti-âge (donnée interne CEVA). Les microalgues Scenedesmus<br />

(Mekideche, 2007), Chaetoceros gracilis (Ogawa, 2005), Nitzschia delicatissima<br />

et Nitzschia seriata sont également revendiquées pour leur action anti-âge pour<br />

des préparations cosmétiques (www.euoko.com). Cette action anti-âge est<br />

souvent en lien avec une propriété antioxydante de l’extrait. C’est le cas<br />

notamment pour les macroalgues Padina et en particulier Padina crassa<br />

(Matsuka et al., 2003 ; Kawasaki et al., 2008), Caulerpa racemosa (Yamashita et<br />

al., 2004 ; Yamashita et al., 2004b ; Hatani & Maeda, 2004), Hypnea et en<br />

particulier Hypnea charoides ou Hypnea japonica (Matsuka et al., 1995),<br />

Dictyopteris undulata (Yazawa et al., 2010), Sargassum micracanthum (Blunt et<br />

al., 2007) et les microalgues Oscillatoria (Fujitani et al., 2002 ; Yamaguchi et al.,<br />

2004), Anabaena (en raison de la teneur en phycocyanine pour Bermejo & Acien,<br />

2009 ; Pant et al., 2011), Chlamydomonas et en particulier Chlamydomonas<br />

reinhardtii (Maoka & Ito, 1995 ; Nishikawa, 2002), Chlorella (Brin & Goutelard,<br />

1998 ; Golz-Berner & Zastrow, 2002 ; Nishikawa, 2002 ; Fujitani et al., 2002 ;<br />

Clampitt, 2007) et Scenedesmus (Brin & Goutelard, 1998 ; Nishikawa, 2002 ;<br />

http://www.cnrs.fr/cw/dossiers/doschim/decouv/peau/radicaux_libres.html).


Algue(s)<br />

concernées<br />

Padina pavonica<br />

extract<br />

Sargassum<br />

filipendula extract /<br />

Hypnea musciformis<br />

extract<br />

Turbinaria ornata /<br />

Sargassum<br />

Dictyopteris<br />

membranaceae<br />

extract<br />

Tableau 8 : Exemples de préparations cosmétiques utilisant des algues ou extraits d’algues<br />

Produit commercialisé Société Action / Caractéristiques Références<br />

A.DS.11 α-mar<br />

Hydratant, anti-âge, aprèsrasage<br />

- 39 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

http://www.icpconcepts.com/ADS11-extract.aspx<br />

Absolue Lancôme Anti-âge http://www.lancome.fr/_fr/_fr/absolue.aspx<br />

Sisleya Elixir Sisley Anti-âge http://www.sisley-cosmetics.com/fr-fr/soin-anti-age-sisleya-elixir<br />

Protect ami / Padinami /<br />

HPS3<br />

Alban Müller<br />

Protection, renforcement,<br />

hydratation, anti-âge<br />

http://www.icpconcepts.com/cosmetic-product.aspx<br />

Hair Lotion Texinfine Soin capillaire http://www.icpconcepts.com/hair-lotion.aspx<br />

Duo Reparation Texinfine Anti-âge http://www.icpconcepts.com/duo-reparation.aspx<br />

Re-Nutriv Estée Lauder Anti-âge (5000€/L)<br />

Pro-Collagen Marine<br />

Cream<br />

Elemis Anti-vieillissement http://www.elemis.com/SkinCare/ProductDetails.aspx?pid=53<br />

Age Perfect L’Oréal Soin re-substanceur yeux<br />

Hand lotion / Clay pack Nu Skin<br />

Line Reversal Peptide<br />

Serum / Anti-aging<br />

Creme<br />

Swisa Beauty<br />

Daily Moisture Skinceuticals<br />

AlgoMonoï Pacifique Sud<br />

Dictyopteris extract Ila Bio<br />

Dictyopteris Oil, CODIF<br />

Skin Protecting<br />

Richesse en oligo-éléments et en<br />

acides gras<br />

Actif éclaircissant, inhibant la<br />

synthèse de mélanine<br />

Effet lissant et repulpant des<br />

lèvres, effet volumateur de buste<br />

http://courses.monoprix.fr/magasin-en-ligne/achat-acheter-Age-<br />

Perfect-soin-re-substanceur-yeux-anti-relachementrenutritionpaupiere-et-contour-a-la-graine-de-soja-peaux-mature-<br />

1894466,,,.html<br />

http://www.cosmeticanalysis.com/cosmeticingredients/sargassum-filipendula-extract.html <br />

http://www.cosmeticanalysis.com/cosmetic-ingredients/hypneamusciformis-extract.html <br />

http://www.pacifiquesud.com/fr/13-16/cosmetiques/monoi-detahiti/originaux.html<br />

http://www.ilabio.com/skin-lightning.html<br />

http://www.codif-recherche-et-nature.com/actifscosmetiques.php?id_actif=34&indication=4


Asparagopsis armata Ysaline Algues et Mer Conservateur http://www.algues-et-mer.com/cosmetique<br />

Microalgues<br />

méditerranéennes<br />

dont Chaetoceros et<br />

Nitzschia<br />

Chaetoceros<br />

calcitrans<br />

Gamme Protection /<br />

Gamme Radiance /<br />

Gamme Blemishes (peau<br />

à imperfections)<br />

EUOKO<br />

Richesse en lipides, glucides,<br />

iode et acides aminés. Effet<br />

hydratant, lipolytique,<br />

restructurant<br />

pâte de microalgues SATMAR Applications cosmétiques Guillou et al., 2006<br />

Chlorella Dermochlorella CODIF<br />

Activateur de synthèse de<br />

collagène<br />

- 40 -<br />

http://www.euoko.com/Product.aspx?pid=420<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

http://www.codif-recherche-etnature.com/fr/s06_catalogue/s06p02_fiche.php?prod=8<br />

Chlorella Sun Chlorella Cream Sun Chlorella Anti-âge http://www.sunchlorellausa.com/Sun-Chlorella-Cream.html<br />

Chlorella vulgaris<br />

extract<br />

Sahel Scenedesmus<br />

extract<br />

Naturalance Special<br />

Tagescreme<br />

Aloe Softfoaming<br />

Cleanser<br />

Blue Nature<br />

Channoine<br />

Em for Men Emsana<br />

Cellular Serum Platinum<br />

Rare / Creme contour<br />

des yeux<br />

La Prairie<br />

Sunright Lip Balm SPF15 Nu Skin<br />

Firming Day Cream Phytomer<br />

Anti-aging creme<br />

Lavender hand & Body<br />

Lotion<br />

Soraya<br />

Beauty &<br />

Nature<br />

Young Living<br />

Cura noctis Ananné<br />

Skin conditioning<br />

Crème de nuit pour peaux<br />

sèches<br />

http://www.cosmeticanalysis.com/cosmetic-ingredients/chlorellavulgaris-extract.html <br />

http://www.ananne.com/#/oc-en/boutique-product/cura-noctisdry-skin/ingredients


- 41 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Une action anti-rides est également revendiquée pour les extraits d’Oscillatoria<br />

(Dubois et al., 1990) et de Chlorella (Guglielmo & Montanari, 2004). Plus<br />

spécifiquement, un principe actif extrait de Caulerpa sp. et en particulier de<br />

Caulerpa okamurae montre une action d’inhibition de l’enzyme hyaluronidase<br />

pour des propriétés anti-rides (Ehata et al., 1997 ; Kawasaki et al., 2008).<br />

D’autres extraits stimulent la production de collagène, en particulier les extraits<br />

de Sargassum, Asparagopsis et Dictyopteris (Kamei et al., 1998b ; Kamei et al.,<br />

2006).<br />

(3) Beauté :<br />

Les laboratoires Pacifique Sud commercialisent des produits de beauté pour le<br />

corps à base de Sargassum et de Turbinaria ornata (AlgoMonoï ®,<br />

www.pacifiquesud.com). D’autres exemples sont listés dans le Tableau 8. Un<br />

principe actif extrait de Caulerpa sp. stimulant la lipolyse est utilisé dans des<br />

compositions minceur (Takita & Negi, 2000 ; Takita et al., 2003). Deux brevets<br />

décrivent l’emploi d’extraits de Chlorella ou d’Oscillatoria dans le traitement et la<br />

prévention des vergetures (Montanari & Guglielmo, 2008 ; Dubois et al., 1990).<br />

Les sécrétions de la diatomée Chaetoceros teres sont utilisées dans la<br />

formulation de sels de bains (Aubert, 1980). Un brevet décrit l’emploi de<br />

microalgues dans la préparation de boues thermales. Il s’agit en particulier des<br />

cyanobactéries des genres Oscillatoria et Anabaena, des diatomées Cyclotella<br />

sp. et Nitzschia palea ou Nitzschia thermalis ainsi que des chlorophycées<br />

Chlamydomonas sp., Scenedesmus quadricauda, Scenedesmus acutiformis ou<br />

Scenedesmus obliquus et Ankistrodesmus falcatus (Counilh, 2003).<br />

Enfin, des algues ou extraits d’algues sont utilisés dans la préparation de soins<br />

capillaires, certains stimulants par exemple la repousse du cheveu. Des extraits<br />

de Padina crassa ou Padina japonica, de Sargassum nipponicum ou Sargassum<br />

fulvellum, de Dictyota dichotoma, de Turbinaria conoides, de Caulerpa<br />

okamurae, de Hypnea charoides, Hypnea japonica, Hypnea saidana ou Hypnea<br />

variabilis, ou encore de Dictyopteris latiscula ou Dictyopteris polypodioides sont<br />

utilisés dans un traitement pour des cheveux abîmés (Hasebe & Yamada, 2008).<br />

Un extrait de Hypnea musciformis ou Hypnea japonica est également utilisé dans<br />

un soin pour la beauté des cheveux (Yamaguchi, 2004) tandis que Hypnea<br />

musciformis peut également servir à la formulation d’un soin des cils (donnée<br />

interne CEVA). Des extraits de Chlorella, d’Oscillatoria et de Chlamydomonas<br />

montrant une inhibition de la testostérone-5α-reductase, ils sont utilisés dans la<br />

formulation d’un soin favorisant la repousse des cheveux (Fujitani et al., 2002b ;<br />

Nakahara et al., 2010b). Les deux microalgues Chlorella et Scenedesmus<br />

présentent de fortes teneurs en vitamines B1, B2 et PP. Leurs extraits<br />

hydroglycoliques peuvent être utilisés dans la formulation de compositions pour<br />

le traitement du système capillaire (Brin & Goutelard, 1998).<br />

(4) Formulation :<br />

En dehors des molécules utilisées comme véritable principes actifs cosmétiques,<br />

les algues ou extraits d’algues sont également utilisés comme ingrédients ou<br />

additifis cosmétiques. Un exemple est l’extrait d’Asparagopsis armata qui est<br />

utilisé comme conservateur dans les préparations cosmétiques. En effet, en<br />

raison de sa teneur composés organo-halogénés, cet extrait montre une activité<br />

biocide naturelle (donnée interne CEVA ; www.algues-et-mer.com/cosmetique).


- 42 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

L’intérêt de l’utilisation d’algues en formulation cosmétique est leur richesse en<br />

lipides, voire en particulier en acides gras polyinsaturés. En raison de cette<br />

richesse en lipides, des usages en cosmétique sont cités pour les algues<br />

suivantes : Sargassum, Dictyota, Asparagopsis et Dictyopteris (Lukowski et al.,<br />

2011), mais aussi Padina (donnée interne CEVA) et les microalgues Navicula,<br />

Chlorella, Chlamydomonas, Scenedesmus, Botryococcus, Ankistrodesmus et<br />

Anabaena (He et al., 2011 ; EP2275101).<br />

Les algues ou extraits d’algues peuvent aussi servir d’humectant dans des<br />

formulations cosmétiques, en particulier Sargassum niponicum, Sargassum<br />

fulvellum, Turbinaria ornata, Hypnea charoides, Hypnea japonica, Hypnea<br />

saidana, Hypnea variabilis et Dictyopteris divaricata (Kawasaki et al., 2008). Les<br />

humectants permettent de retenir l’eau dans le produit. Les algues ou extraits<br />

d’algues peuvent aussi servir d’agent anti-inflammatoire comme Sargassum<br />

horneri ou Sargassum micracanthum (Kawasaki et al., 2008), Asparagopsis<br />

armata (donnée interne CEVA), Chlamydomonas deberyna (Lovasi et al., 1985)<br />

ou l’association de microalgues Chlorella et Scenedesmus (Brin & Goutelard,<br />

1998). Les pigments phycocyanine extraits de la cyanobactérie Anabaena<br />

peuvent également être valorisés en formulation cosmétique (Bermejo & Acien,<br />

2009). Enfin, un brevet décrit l’emploi d’un extrait de Caulerpa racemosa comme<br />

additif pour des préparations cosmétiques (Kawasaki et al., 2008).<br />

1.1.6 Santé humaine<br />

De nombreux métabolites d’origine algale montrant une activité biologique<br />

intéressante pour des applications en médecine et en pharmaceutique ont été isolés<br />

ces dernières années (Smit, 2004 ; Carlsson et al., 2007 ; Person et al., 2011).<br />

Certaines molécules montrent une activité antivirale. C’est le cas de molécules<br />

extraites de Dictyota dichotoma et Caulerpa prolifera (Ballesteros et al., 1992), de<br />

Sargassum micracanthum (Blunt et al., 2007), d’Asparagopsis armata (donnée<br />

interne CEVA), de Hypnea sp (Kornprobst, 1999), d’Oscillatoria (Dubois et al., 1990 ;<br />

Keeffe & Perryman, 2009), de Chlorella pyrenoidosa (Winston & Goldber, 2003) et<br />

d’Ankistrodesmus convolutus (Kok et al., 2011). Padina arborescens, Sargassum<br />

patens, Caulerpa et Hypnea charoides montrent notamment une action contre les<br />

virus herpès (Smit, 2004). Un polysaccharide sulfaté (= naviculane) extrait de<br />

Navicula directa montre une action antivirale contre le virus herpès et le virus<br />

responsable de la grippe (Prestegard et al., 2009). Deux brevets décrivent également<br />

l’emploi d’un extrait de Sargassum et plus particulièrement de Sargassum fusiforme<br />

pour le traitement d’affections virales à HIV ou herpès (Teas, 2007 ; Lee & Canki,<br />

2010). D’autres extraits montrent une action contre le virus du SIDA, en particulier<br />

ceux de Dictyota dichotoma ou Dictyota patens (Ninomiya et al., 1995) et ceux<br />

d’Oscillatoria trichoides, Oscillatoria raoi ou Oscillatoria limnetica (Pham & Durand-<br />

Chastel, 2005). Les fucanes extraits des algues brunes telles que Turbinaria<br />

possèdent également un potentiel antiviral (donnée interne CEVA).<br />

Certaines molécules d’origine algale ont une action antibactérienne. En particulier,<br />

des études ont mis en évidence une action antibactérienne pour les extraits de<br />

Padina pavonica (El-Fatimy & Said, 2011), Sargassum crassifolium (Trono, 2001),<br />

Dictyota dichotoma (Kawai et al., 1999 ; Ballesteros et al., 1992), Caulerpa prolifera<br />

(Ballesteros et al., 1992), Asparagopsis taxiformis (Trono, 2001 ; Vedhagiri et al.,<br />

2009 ; Manilal et al., 2009), Dictyopteris membranaceae (Ben Aoun et al., 2010),<br />

Oscillatoria (Ghasemi et al., 2007 ; Sethubathi & Prabu, 2010 ; Kull et al., 2011), en


- 43 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

particulier Oscillatoria princeps (Mathivanan et al., 2010), Chlorella (Ghasemi et al.,<br />

2007) et en particulier Chlorella pyrenoidosa (Abedin & Taha, 2008),<br />

Chlamydomonas (Ghasemi et al., 2007 ) et en particulier Chlamydomonas reinhardtii<br />

(Renukadevi et al., 2011), Scenedesmus (Ghasemi et al., 2007) et en particulier<br />

Scenedesmus quadricauda (Abedin & Taha, 2008), Navicula delognei f. elliptica<br />

(Findlay & Patil, 1984 ; Guillou et al., 2006), Nitzschia longissima (Selvaraj et al.,<br />

1989), Chaetoceros lauderi (Viso et al., 1987), Botryococcus braunii (Association of<br />

Biotechnology and Pharmacy, 2010), Anabaena oryzae (Abedin & Taha, 2008) et<br />

Anabaena constricta (Feng Chen, 2011).<br />

Les algues ou extraits d’algues possèdent également une action antifongique. On<br />

peut citer dans ce cas les macroalgues Sargassum hornschuchii et Dictyota<br />

dichotoma (Ballesteros et al., 1992), Caulerpa racemosa (en raison de la présence de<br />

caulerpicine, Trono, 2001), le Falkenbergia rufolanosa qui est la forme<br />

tétrasporophytique de l’algue Asparagopsis armata (Ballesteros et al., 1992) et<br />

Dictyopteris membranaceae (Ben Aoun et al., 2010) ; les cyanobactéries Oscillatoria<br />

(Katircioglu et al., 2006) et Anabaena oryzae (Abedin & Taha, 2008) ; la diatomée<br />

Chaetoceros lauderi (Gueho et al., 1977 ; Viso et al., 1987) et les chlorophycées<br />

Chlorella, Scenedesmus (Ghasemi et al., 2007) et Chlamydomonas (Renukadevi et<br />

al., 2011).<br />

Une action antimicrobienne est décrite chez les algues brunes Sargassum<br />

cristaefolium (Le Lann, 2006) Turbinaria ornata (Vijayabaskar & Shiyamala, 2011) et<br />

Turbinaria decurrens (Le Lann, 2006), ainsi que chez la microalgue Chlorella<br />

(Matsunaga & Takeyama, 1997).<br />

Les extraits de Dictyota caribea et Turbinaria turbinata possèdent une action antiparasite<br />

in vitro vis-à-vis de Trypanosoma cruzi, parasite responsable de la<br />

trypanosomiasis, une des maladies parasitaires la plus importante du monde (Leon-<br />

Deniz et al., 2009). La microalgue Chlorella a également une propriété insecticide,<br />

notamment contre les moustiques (Meredith, 2006).<br />

Enfin, certains extraits sont préconisés dans le cadre du traitement ou la prévention<br />

d’infections nosocomiales. Il s’agit en particulier des extraits de Sargassum sp,<br />

Dictyota sp, Asparagopsis sp, Dictyopteris sp et de cyanobactéries de la famille des<br />

Oscillatoriales telles que Oscillatoria redekei (Lukowski et al., 2011).<br />

Une activité d’immuno-stimulation (stimulation des défenses immunitaires) a été mise<br />

en évidence pour des extraits de certaines algues comme Asparagopsis armata<br />

(donnée interne CEVA) et Oscillatoria (Dubois et al., 1990). D’autre part, la<br />

cyanobactérie Anabaena peut produire de grandes quantités de phycocyanine<br />

(Bermejo & Acien, 2009), molécule possédant une activité de stimulation du système<br />

immunitaire (Tiwari et al., 2011). Au contraire, les extraits polysaccharidiques de<br />

Chlorella stigmatophora ont un effet immuno-suppresseur qui peut trouver une<br />

application dans le traitement des maladies auto-immunes ou contre le rejet des<br />

organes greffés (Guillou et al., 2006 ; Arya & Gupta, 2011).<br />

Des propriétés anti-cancer et anti-tumorales sont également observées. Le terme<br />

« tumeur » est générique et désigne toute excroissance de cellules. Il existe des<br />

tumeurs malignes – ou cancer – et des tumeurs bénignes (kyste, fibrôme, etc.).<br />

Une activité anti-cancer est décrite pour les extraits de Cyclotella (Vournakis et al.,<br />

2000), Chlorella (Shinpo, 1988 ; Nifantiev, 2003 ; Guillou et al., 2006) et Anabaena<br />

(Bermejo & Acien, 2009 ; Tiwari et al., 2011). Différents modes d’actions sont


- 44 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

revendiqués. Les extraits de Sargassum cristaefolium, Sargassum crassifolium,<br />

Turbinaria decurrens ou Turbinaria conoides (Le Lann, 2006), Turbinaria ornata<br />

(Kornprobst, 1999), de Padina pavonica, Dictyota dichotoma, Caulerpa prolifera ou<br />

Dictyopteris membranaceae (Ballesteros et al., 1992) et d’Oscillatoria nigroviridis<br />

(Guillou et al., 2006) agissent comme cytotoxiques (i.e. toxicité vis-à-vis des cellules<br />

cancéreuses). Une propriété antimitotique bloquant la division des cellules<br />

cancéreuses est observée pour les extraits de Padina pavonica, Dictyota dichotoma,<br />

Caulerpa prolifera et du Falkenbergia rufolanosa (Ballesteros et al., 1992) et de<br />

Turbinaria ornata (Deslandes et al., 2000). Une propriété apoptotique (la molécule<br />

induit directement la mort de la cellule cancéreuse) est également décrite pour les<br />

extraits d’algues de la famille des Dictyotales (i.e. Padina et Dictyota ; Gutierrez et al.,<br />

1998), de Caulerpa racemosa (Ito et al., 2001) et Nitzschia sp (Prestegard et al.,<br />

2009). Enfin, une action anti-tumorale est observée pour les extraits de Padina<br />

pavonica (Taskin et al., 2010), Sargassum crassifolium, Hypnea pannosa et<br />

Dictyopteris jamaicensis (Trono, 2001), Turbinaria et Asparagopsis armata (donnée<br />

interne CEVA), Caulerpa taxifolia (Smit, 2004), Chlorella vulgaris (Guillou et al., 2006)<br />

et Anabaena sp. (Pant et al., 2011).<br />

Certaines molécules d’origine algale présentent un potentiel d’application dans le<br />

traitement des maladies cardio-vasculaires. Un extrait de Caulerpa taxifolia ou<br />

Caulerpa prolifera pourrait être utilisé pour lutter contre l’artériosclérose (=<br />

épaississement de la paroi des vaisseaux sanguins, souvent accompagné d’un dépôt<br />

de cholestérol ou « athérome ») (Ninomiya et al., 1998), tandis que les extraits<br />

d’Oscillatoria agardhii (Konetschny-Rapp et al., 1996) et les fucoidanes de Padina, de<br />

Dictyota ou de Sargassum (Johnson, 2009) sont indiqués contre la thrombose (=<br />

formation d’un caillot sanguin). Un diterpène extrait de Dictyota présente un potentiel<br />

d’application dans le traitement de l’insuffisance cardiaque (Patil et al., 1993). La<br />

microviridine, une molécule isolée chez la cyanobactérie Oscillatoria agardhii, inhibe<br />

quant à elle la sérine protéase qui est une enzyme intervenant dans certains troubles<br />

cardiovasculaires (Guillou et al., 2006). Les extraits d’Asparagopsis armata (donnée<br />

interne CEVA) et les fucanes de Turbinaria, de Sargassum (donnée interne CEVA)<br />

ou de Dictyota menstrualis (Albuquerque et al., 2004) possèdent une activité anticoagulante<br />

tandis que les extraits de microalgues Cyclotella (Vournakis &<br />

Finkielsztein, 2008) et Nitzschia (Prestegarrd et al., 2009) sont hyper-coagulants. Ces<br />

deux activités antagonistes sont observées pour les extraits de Hypnea japonica et<br />

Hypnea charoides (Nakajima et al., 1991 ; Smit, 2004). Les extraits de Caulerpa<br />

racemosa (caulerpicine ; Trono, 2001) et Chlorella (Meredith, 2006) jouent le rôle<br />

d’hypo-tenseurs en cas d’hypertension. Un effet hypolipidémiant de l’extrait de<br />

Caulerpa racemosa (Smit, 2004) est également observé. Enfin, les extraits de<br />

Scenedesmus possèdent une action hypocholestérolémiante permettant de diminuer<br />

le taux de cholestérol sanguin (Rolle & Pabst, 1981).<br />

De nombreuses autres propriétés biologiques potentiellement applicables dans le<br />

domaine médical sont décrites pour les algues que nous avons identifiées à Mayotte<br />

(Tableau 9).


- 45 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Tableau 9 : Propriétés biologiques des extraits d’algues avec application potentielle<br />

dans le secteur de la santé humaine<br />

Action / Rôle Espèce(s) ou taxon(s) concerné(s)<br />

Anti-allergique<br />

Anti-diabétique<br />

Anti-douleur / anesthésiant<br />

Anti-inflammatoire<br />

Anti-oxydant<br />

- Chlorella (Gedouin & Vallee, 2001)<br />

- Caulerpa taxifolia ou Caulerpa prolifera<br />

(Ninomyia et al., 1998)<br />

- Oscillatoria limnetica (Perez Gutierrez et al.,<br />

2008)<br />

- Cyclotella (Leclere et al., 2004 ; Grimaud &<br />

Gutierrez, 2007)<br />

- Oscillatoria willei (Rajavell et al., 2009)<br />

- Caulerpa racemosa (Trono, 2001)<br />

- Caulerpa mexicana (Babosa Brito de Matta<br />

et al., 2001)<br />

- Sargassum (fucanes, donnée CEVA)<br />

- Turbinaria (fucanes, donnée CEVA)<br />

- Caulerpa sp (Ehata et al., 1997)<br />

- Caulerpa mexicana (Babosa Brito de Matta<br />

et al., 2001)<br />

- Dictyopteris membranaceae (Ben Aoun et<br />

al., 2010)<br />

- Oscillatoria planktothrix (Molteni, 2010)<br />

- Cyclotella (Clayton & Rutter, 2010)<br />

- Navicula (Clayton & Rutter, 2010)<br />

- Chlorella (Brin & Goutelard, 1998 ; Guillou<br />

et al., 2006)<br />

- Scenedesmus (Brin & Goutelard, 1998)<br />

- Padina (Matsuka et al., 2003)<br />

- Dictyopteris membranaceae (Cornish &<br />

Garbary, 2010)<br />

- Dictyopteris undulata (Yazawa et al., 2010)<br />

- Oscillatoria annae (Rajavell et al., 2011 ;<br />

Vawhal Pallavi et al., 2011)<br />

- Chaetoceros sp (Goh et al., 2009 ; Goh et<br />

al., 2010)<br />

- Chlorella (Nishikawa, 2002 ; Abdel-Baky et<br />

al., 2002)<br />

- Chlamydomonas (Nishikawa, 2002)<br />

- Chlamydomonas reinhardtii (Maoka & Ito,<br />

1995 ; Renukadevi et al., 2011)<br />

- Scenedesmus (Nishikawa, 2002)<br />

- Scenedesmus acutus ou Scenedesmus<br />

dimorphus (Abdel-Baky et al., 2002)<br />

- Botryococcus braunii (Rao et al., 2006)<br />

- Anabaena (Pant et al., 2011)


Anti-ulcéreux<br />

Bronchoconstricteur<br />

- 46 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

- Padina arborescens (fucoidanes, Kimura et<br />

al., 2000)<br />

- Sargassum (fucanes, donnée CEVA)<br />

- Turbinaria (fucanes, donnée CEVA)<br />

- Dictyopteris undulata (Yamada et al., 1990)<br />

- Chlorella (Milledge, 2011)<br />

- Anabaena (phycocyanine, Bermejo & Acien,<br />

2009 ; Tiwari et al., 2011)<br />

- Hypnea charoides ou Hypnea japonica<br />

(prostaglandines, Nakajima et al., 1991)<br />

Caries - Hypnea charoides (Saeki, 1993)<br />

Cicatrisant<br />

Contractant utérin<br />

- Sargassum (fucanes, donnée CEVA)<br />

- Turbinaria (fucanes, donnée CEVA)<br />

- Oscillatoria (Dubois et al., 1990)<br />

- Cyclotella (Vournakis & Finkielsztein, 2008)<br />

- Hypnea charoides ou Hypnea japonica<br />

(prostaglandines, Nakajima et al., 1991)<br />

Constipation - Chlorella (Meredith, 2006 ; Milledge, 2011)<br />

Dépression - Padina (Serrar & Gutierrez, 2010)<br />

Douleurs articulaires - Caulerpa sp (Ehata et al., 1997)<br />

Hémorroïdes<br />

Maladies neurologiques<br />

Maladies neurologiques<br />

(Alzheimer)<br />

Maladies osseuses ou<br />

cartilagineuses<br />

- Anabaena (phycocyanine, Bermejo & Acien,<br />

2009 ; Tiwari et al., 2011)<br />

- Anabaena (anatoxine-a ; Bhakuni & Rawat,<br />

2005)<br />

- Sargassum macrocarpum (Goto et al.,<br />

2003)<br />

- Chlorella (Meredith, 2006)<br />

- Scenedesmus (Krause-Hielscher et al.,<br />

2011)<br />

- Certaines Padina dont Padina pavonica<br />

(Gutierrez, 2004)<br />

Maladies du foie - Dictyota sp (Patil et al., 1993)<br />

Maladies hormonales - Sargassum crassifolium (Trono, 2001)<br />

Maladies liées à une<br />

déficience en iode<br />

Pansement anti-bactérien<br />

Parodontite (= inflammation<br />

des tissus de soutien des dents,<br />

ex. gencive)<br />

Plaies et brûlures de la<br />

cornée<br />

- Chlorella (Sawai et al., 1990)<br />

- Chlamydomonas (Speitling et al., 2011)<br />

- Anabaena (Speitling et al., 2011)<br />

- Caulerpa (Takita & Nakajima, 1997)<br />

- Oscillatoria (Dubois et al., 1990)<br />

Relaxation musculaire - Hypnea valendiae (Kazlauskas, 1984)


- 47 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Certaines algues, comme l’algue brune Sargassum sp. (http ://tcm.healthinfo.org/Herbology.Materia.Medica/haizao-properties.htm)<br />

ou la microalgue Chlorella<br />

(Winston & Goldberg, 2003) sont couramment utilisées dans la médecine traditionelle<br />

chinoise. En particulier, Chlorella est utilisée comme traitement anti-tumoral.<br />

Une étude a montré que les acides gras extraits de la microalgue Botryococcus<br />

braunii amélioraient l’absorption d’une molécule médicamenteuse – le flurbiprofène –<br />

par la peau (Fang et al., 2004). Ces extraits de Botryococcus braunii pourraient donc<br />

être utilisés dans des compositions pharmaceutiques à application cutanée pour en<br />

améliorer l’efficacité. Un brevet revendique également l’emploi des acides gras polyinsaturés<br />

extraits de Chlorella, Chlamydomonas ou Scenedesmus dans la formulation<br />

de compositions pharmaceutiques (EP2275101, 2011).<br />

D’autre part, la fermentation d’algues riches en amidon telles que les microalgues<br />

Oscillatoria, Chlorella et Chlamydomonas permet de produire de l’acide lactique,<br />

composé utilisé dans les formulations pharmaceutiques (Ueda et al., 2003),<br />

notamment dans les traitements anti-verrues (www.eurekasante.fr).<br />

Enfin, un brevet décrit l’emploi d’huiles de microalgues marquées au 12 C ou 14 C pour<br />

le diagnostic des maladies liées au métabolisme des graisses. Les microalgues qui<br />

peuvent être utilisées pour l’extraction de ces huiles sont en particulier Nitzschia,<br />

Chlorella et Anabaena (Kyle, 1997).<br />

En conclusion sur ce paragraphe, bien que l’effort de recherche académique dans ce<br />

domaine soit fort, peu de produits ont été développés à ce jour (Smit, 2004 ; Milledge,<br />

2011 ; Olaizola, 2003). Les molécules les plus utilisées commercialement dans le<br />

domaine médical restent celles décrites et utilisées dans l’industrie alimentaire :<br />

alginate, carraghénane et agar. Les alginates sont utilisés dans l’industrie<br />

pharmaceutique en raison de leur capacité de chélation et de leur capacité à former<br />

une solution très visqueuse. On les retrouve dans les pâtes pour empreintes<br />

dentaires, comme anti-acides pour les brûlures d’estomac ou les reflux gastriques.<br />

Dans le secteur médical, ils interviennent au niveau du traitement des plaies dans les<br />

compresses hémostatiques, les pansements hydrocolloïdes pour brûlures. On les<br />

retrouve également dans la composition de foies artificiels. Les carraghénanes<br />

présentent quant à eux plusieurs possibilités d’utilisation comme produits<br />

pharmaceutiques : anti-tumoraux, antiviraux, anticoagulants, des activités<br />

d’immunomodulation ont également été explorées. (Person et al., 2011).<br />

1.1.7 Santé animale<br />

Une utilisation des algues est également rapportée en santé animale, notamment en<br />

aquaculture où la présence de microalgues dans les bassins permet d’améliorer la<br />

qualité sanitaire du milieu et d’observer de meilleurs résultats de production en terme<br />

de survie, croissance et qualité du produit (Spolaore et al., 2006).<br />

Les extraits polysaccharidiques de Chlorella autotrophica montrent une action<br />

antivirale in vitro, en bloquant la réplication des virus de la fièvre africaine du porc et<br />

de la septicémie hémorragique des salmonidés (Guillou et al., 2006). Une action<br />

antibactérienne est également mise en évidence chez Chlorella minutissima,<br />

notamment vis-à-vis des bactéries de type Vibrio. Ceci expliquerait que les bassins<br />

aquacoles nourris avec ces microalgues restent exempts de Vibrios (Kokou et al.,<br />

2011). Un brevet décrit l’emploi d’oméga 3 DHA extrait de Chlorella pour la<br />

prévention et le traitement des maladies parasitaires chez l’animal. D’autres algues


- 48 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

telles que la chlorophycée Botryococcus ou les diatomées Cyclotella et Nitzschia<br />

peuvent également être utilisées pour cet usage (Kiy et al., 2000). Comme décrit plus<br />

haut, la microalgue Chlorella a aussi une propriété insecticide, notamment contre les<br />

moustiques (Meredith, 2006). Un brevet décrit l’emploi de glycolipides extraits de<br />

Chlorella dans une préparation vétérinaire pour stimuler le système immunitaire de<br />

l’animal (Soma et al., 1993).<br />

Des extraits des cyanobactéries Anabaena wisconsinense et Oscillatoria curviceps<br />

montrent une activité antibactérienne et antifongique vis-à-vis de souches<br />

pathogènes piscicoles (El-Sheekh et al., 2008). La diatomée Chaetoceros possède<br />

également une activité antibactérienne, aussi bien vis-à-vis de souches affectant les<br />

mammifères que de souches affectant les animaux d’aquaculture (Wang, 1999). Une<br />

étude conduite dans une ferme crevetticole a permis de montrer que la présence de<br />

cette microalgue dans les bassins permettait de garder le milieu exempt de bactéries<br />

potentiellement pathogènes telles que Vibrio vulnificus (Wang, 2003). Incorporée à la<br />

nourriture, la microalgue Chaetoceros permet également d’épurer les crustacés,<br />

bivalves ou mollusques sur le plan bactériologique avant leur commercialisation<br />

(Wang, 1999).<br />

Des applications en santé animale sont également recensées pour quelques<br />

macroalgues identifiées à Mayotte. Les fucoidanes de Sargassum polycystum ont<br />

une action antivirale vis-à-vis du virus du Syndrôme des tâches blanches qui touche<br />

les crevettes Penaeus monodon. Ces fucoidanes de Sargassum polycystum inhibent<br />

aussi la croissance des bactéries Vibrio harveyi, Staphylococcus aureus et<br />

Escherichia coli (Chotigeat et al., 2004). Un extrait de Sargassum horneii, Sargassum<br />

thungergii ou Dictyota dichotoma est utilisé comme anti-parasitaire pour lutter contre<br />

les parasites des bivalves telles que les huîtres, les huîtres perlières ou les Pectinidés<br />

(Kusumi et al., 1996).<br />

Des extraits de l’algue rouge Asparagopsis taxiformis possèdent une action contre les<br />

pathogènes de la crevette Penaeus monodon, en particulier une action<br />

antibactérienne vis-à-vis de plusieurs souches de Vibrio (Manilal et al., 2009).<br />

Pour finir, un extrait de Padina pavonica est décrit comme moyen de traitement de la<br />

dépression chez l’animal (Serrar & Gutierrez, 2010).<br />

1.1.8 Epuration<br />

Les macroalgues et microalgues peuvent être efficacement utilisées dans le<br />

traitement et l’épuration des eaux usées, des déchets solides ou semi-solides (ex.<br />

lisiers et fumiers d’origine agricole, déchets et co-produits de l’industrie agroalimentaire)<br />

et des gaz industriels. Cet usage est connu sous le terme de<br />

biorémédiation ou plus précisément de phycorémédiation. Les algues jouent un rôle<br />

de dépolluant en absorbant les excès de nutriments, en captant les polluants et en<br />

fixant le CO2 ou les oxydes d’azote NOx et de souffre SOx. Le lagunage est un<br />

exemple mis en pratique depuis des décennies de procédé de traitement des eaux<br />

faisant intervenir des microalgues. Des systèmes plus intensifs sont aujourd’hui à<br />

l’étude (Craggs et al., 2011) et certaines technologies sont disponibles<br />

commerciallement (AIWPS, http ://www.oswaldgreen.com/). Les systèmes de bassins<br />

à haut rendement algal (HRAP = High Rate Algal Pond) semblent être les plus<br />

rentables avec des productivités envisagées de 50 tonnes de microalgues produites<br />

par hectare et par an (Carlsson et al., 2007).


- 49 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

L’intérêt des procédés de traitement faisant appel aux algues est qu’ils résultent en<br />

une production de biomasse qui pourra être valorisable par ailleurs. Les déchets sont<br />

en quelque sorte transformés en produits (Carlsson et al., 2007 ; Person et al., 2011).<br />

Potentiellement, toutes les algues peuvent être utilisées pour leur capacité<br />

d’épuration vis-à-vis des nutriments tels que les nitrates NO3 et les phosphates PO4.<br />

En effet, elles requièrent d’importantes quantités d’azote et de phosphore pour leur<br />

croissance et la synthèse des protéines, des acides nucléiques et des<br />

phospholipides. Cependant, et contrairement à d’autres, certaines espèces d’algues<br />

ont la capacité de se développer dans des milieux très riches en nutriments. Celles-ci<br />

sont donc préférentiellement utilisées dans le cadre du traitement des effluents<br />

d’origine agricole ou des eaux usées domestiques par exemple. De ce point de vue,<br />

la culture d’algues à proximité des activités fortement productrices d’azote et de<br />

phosphore (ex. urbanisation, agriculture, aquaculture) est considérée comme un<br />

moyen de réduire l’impact de l’eutrophisation et d’améliorer ainsi la qualité du milieu<br />

environnant. Le concept d’aquaculture multi-trophique intégrée ou IMTA s’inscrit dans<br />

cette optique (Figure 15). Les effluents de l’élevage de poissons ou de crevettes sont<br />

recyclés après épuration par les algues. La production d’algues qui en résulte peut<br />

alors servir pour l’élevage de coquillages (ex. ormeaux). Les bénéfices de cette<br />

gestion intégrée des systèmes d’élevage sont tant écologiques qu’économiques. Des<br />

revenus supplémentaires sont générés par la vente de coquillages ou d’algues. Les<br />

effluents sont épurés et éventuellement recyclés en système fermé, réduisant ainsi la<br />

consommation d’eau. D’autre part, il faut rappeler que les apports en sels nutritifs<br />

représentent 10 à 50% des coûts de production pour la culture de microalgues. Les<br />

effluents aquacoles constituent donc une source alternative et à moindre coût de sels<br />

nutritifs.<br />

Figure 15 : L’aquaculture multi-trophique intégrée (http ://climatide.wgbh.org/2011/02/greenerfish-farming/)<br />

Par ailleurs, certaines espèces d’algues ont la capacité de fixer les métaux lourds tels<br />

que l’arsenic, le cadmium ou le mercure. Ces composés peuvent poser de vrais<br />

problèmes en termes de qualité du milieu, de biodiversité et de santé publique. Il est<br />

important d’en réduire l’impact. Cette action dépolluante est, pour certaines algues,


- 50 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

en lien avec la capacité des polysaccharides de paroi (alginates, carraghénanes) à se<br />

lier aux métaux lourds (Person et al., 2011). Pour les microalgues, les mécanismes<br />

impliqués sont divers : adsorption, échange d’ions, liaison covalente, précipitation,<br />

réactions d’oxydo-réduction, chélation, etc. (Algal Bioprocess Technology).<br />

(1) Traitement des eaux usées :<br />

Les eaux usées qui peuvent faire l’objet d’une épuration par les algues<br />

concernent entre autres les eaux usées domestiques, industrielles et agricoles.<br />

Les algues vont en capter les nutriments, les métaux lourds et autres polluants.<br />

La capacité des algues à capter et fixer les métaux lourds a été largement<br />

documentée (Fiset et al., 2008). La mise en contact des eaux usées avec des<br />

algues peut aussi conduire à la neutralisation des contaminants via l’oxydation<br />

des molécules et à la dégradation des composés aromatiques sulfonatés. On<br />

constate également pour certains taxons un effet sur la charge bactérienne et la<br />

demande biologique en oxygène (BOD, en anglais). L’oxygène produit lors de la<br />

photosynthèse – 1,5 à 1,9 kg O2 par kg de microalgues – réduit le besoin<br />

d’aération des bassins ce qui est utile étant donné que certains polluants sont<br />

dégradés par voie aérobie et peuvent être volatilisés par l’agitation mécanique<br />

(Algal Bioprocess Technology). Le tableau ci-dessous liste les applications<br />

potentielles des algues en tant qu’épuratrices des effluents liquides (Tableau 10).<br />

Tableau 10 : Propriétés épuratrices des algues identifiées à Mayotte, applicables dans<br />

le traitement des eaux usées<br />

Action Espèce(s) ou taxon(s) concerné(s)<br />

Absorption des nutriments<br />

(N, P)<br />

- Sargassum natans et Sargassum fluitans<br />

(Campbell, 2005)<br />

- Dictyota sp (Adey, 1982 ; Adey 1990 ; Adey,<br />

1998)<br />

- Asparagopsis armata, sous sa forme<br />

tétrasporophytique (Schuenhoff et al., 2006)<br />

- Oscillatoria sp (Craggs et al., 1997 ;<br />

Hashimoto & Furukawa, 1989 ; Shushu &<br />

Chipeta, 2002)<br />

- Anabaena sp (Chi et al., 1995 ; Pant et al.,<br />

2011)<br />

- Navicula sp (Fukami et al., 2005 ; Keve, 2009)<br />

- Chaetoceros (Lefebvre et al., 1996 ; Wang,<br />

2003)<br />

- Chlorella (Groeneweg & Schluter, 1982 ; Wang<br />

et al., 2010)<br />

- Chlorella vulgaris (Galang, 2010 ; Cruz et al.,<br />

2011)<br />

- Chlorella sorokiniana (de-Bashan et al., 2008)<br />

- Scenedesmus (Van Coillie et al., 1990 ;<br />

Craggs et al., 2011 ; Park et al., 2011)<br />

- Scenedesmus quadricauda (Patil, 1991 ; Xiao<br />

et al., 2011)<br />

- Scenedesmus falcatus (Groeneweg &<br />

Schluter, 1982)<br />

- Botryococcus braunii (Yokoyama, 1993 ;


Absorption<br />

des métaux<br />

lourds<br />

Absorption<br />

des<br />

polluants<br />

Métaux lourds<br />

- 51 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Orpez et al. ; An et al., 2003 ; Shen et al.,<br />

2008)<br />

- Ankistrodesmus falcatus (Patil, 1991)<br />

- Sargassum (Fiset et al., 2008)<br />

- Dictyota sp (Adey, 1982 ; Adey 1990 ; Adey,<br />

1998)<br />

- Caulerpa lentillifera (Apiratikul et al., 2004)<br />

- Chlorella sp (Green et al., 1990)<br />

- Anabaena subcylindrica (El-Sheekh et al.,<br />

2005)<br />

- Anabaena variabilis (Parameswari et al., 2010)<br />

� Arsenic - Chlorella regularis (Hishinuma et al., 2008)<br />

� Cadmium<br />

- Padina sp (Kaewsarn & Yu, 2001)<br />

- Hypnea valentiae (Aravindhan et al., 2010)<br />

- Scenedesmus protuberans (Karaca, 2008)<br />

- Scenedesmus obliquus (Monteiro et al., 2009)<br />

� Chrome - Turbinaria ornata (Aravindhan et al., 2004)<br />

� Cuivre<br />

� Plomb<br />

- Chlorella vulgaris (Greene et al., 1991)<br />

- Chlamydomonas (Greene et al., 1991)<br />

- Anabaena subcylindrica (El-Sheekh et al.,<br />

2005)<br />

- Chlorella vulgaris (Greene et al., 1991)<br />

- Chlamydomonas (Greene et al., 1991)<br />

- Scenedesmus protuberans (Karaca, 2008)<br />

- Anabaena subcylindrica (El-Sheekh et al.,<br />

2005)<br />

� Mercure - Chlorella sp (Dubey & Dubey, 2011)<br />

� Nickel<br />

� Acétonitrile<br />

� Cobalt<br />

- Hypnea valentiae (Rajasimman & Murugaiyan,<br />

2011)<br />

- Scenedesmus protuberans (Karaca, 2008)<br />

- Chlorella sorokiniana (Algal Bioprocess<br />

Technology, Lele & Kumar, 2007)<br />

- Sargassum natans (Kuyucak & Volesky, 1988)<br />

- Anabaena subcylindrica (El-Sheekh et al.,<br />

2005)<br />

� Fluoranthène - Cyclotella caspia (Liu et al., 2006)<br />

� Manganèse<br />

� Pétrole<br />

� Phénanthrène<br />

� Phénol<br />

� P-nitrophénol<br />

- Anabaena subcylindrica (El-Sheekh et al.,<br />

2005)<br />

- Chlorella sp (Wang et al., 2010)<br />

- Chlorella (Algal Bioprocess Technology)<br />

- Scenedesmus (Algal Bioprocess Technology)<br />

- Chlorella sorokiniana, Chlorella vulgaris (Algal<br />

Bioprocess Technology)<br />

- Anabaena variabilis (Algal Bioprocess<br />

Technology)<br />

- Chlorella vulgaris, Chlorella pyrenoidosa (Algal<br />

Bioprocess Technology)<br />

� Rhodamine-B - Turbinaria conoides (Hii et al, 2009)


� Salicylate<br />

� Uranium et<br />

éléments<br />

radio-actifs<br />

� Vert de<br />

malachite<br />

� Zinc<br />

Neutralisation des polluants<br />

(oxydation)<br />

Désulfonation (dégradation<br />

des composés aromatiques<br />

sulfonatés)<br />

Diminution de la BOD<br />

(demande biologique en<br />

oxygène)<br />

Diminution de la charge<br />

bactérienne<br />

(2) Traitement des déchets solides ou semi-solides :<br />

- 52 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

- Chlorella sorokiniana (Algal Bioprocess<br />

Technology)<br />

- Chlorella CV, Chlorella CP (Dunlop et al.,<br />

2005)<br />

- Chlamydomonas (Bikutaa & Onuki, 1990 ;<br />

Dunlop et al., 2005)<br />

- Scenedesmus SR, Scenedesmus SE (Dunlop<br />

et al., 2005)<br />

- Caulerpa racemosa var. cylindracea (Bekçi et<br />

al., 2009)<br />

- Chlorella vulgaris (Greene et al., 1991)<br />

- Chlamydomonas (Greene et al., 1991)<br />

- Anabaena (Zou et al., 2008)<br />

- Oscillatoria (Haerther et al., 2003)<br />

- Navicula (Haerther et al., 2003)<br />

- Nitzschia (Haerther et al., 2003)<br />

- Chlamydomonas (Haerther et al., 2003)<br />

- Scenedesmus (Haerther et al., 2003)<br />

- Ankistrodesmus (Haerther et al., 2003)<br />

- Chlorella vulgaris (Luther & Soeder, 1992)<br />

- Scenedesmus obliquus (Luther & Soeder,<br />

1992)<br />

- Sargassum natans et Sargassum fluitans<br />

(Campbell, 2005)<br />

- Oscillatoria (Haerther et al., 2003)<br />

- Navicula (Haerther et al., 2003)<br />

- Nitzschia (Haerther et al., 2003)<br />

- Chlorella vulgaris (Braddock & Coppinger,<br />

2011)<br />

- Chlamydomonas (Haerther et al., 2003)<br />

- Scenedesmus (Haerther et al., 2003)<br />

- Scenedesmus quadricauda (Patil, 1991)<br />

- Ankistrodesmus (Haerther et al., 2003)<br />

- Ankistrodesmus falcatus (Patil, 1991)<br />

- Oscillatoria willei (Uma et al., 2002)<br />

- Chlorella vulgaris (Galang, 2010)<br />

Des particules déshydratées de l’algue rouge Hypnea, en mélange avec des<br />

particules déshydratées d’algues brunes du phylum des Phaeophyta, sont<br />

utilisées pour le traitement des déchets solides ou semi-solides d’origine urbaine<br />

ou industrielle (boues). Les particules d’algues stimulent les populations<br />

microbiennes permettant une accélération rapide de la fermentation des déchets<br />

et une augmentation du taux d’évaporation conduisant à une diminution de<br />

l’écoulement de lixiviats et de l’émission de mauvaises odeurs. Les nuisances<br />

liées au traitement de ces déchets sont donc réduites (Garcia-Blairsy Reina &<br />

Miro Espinos, 2008a).


(3) Traitement des gaz industriels :<br />

- 53 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Les extraits polysaccharidiques de l’algue rouge Hypnea peuvent être utilisés<br />

pour la dépollution des gaz industriels. Ils permettent une réduction des teneurs<br />

en oxydes d’azote NOx, en oxydes de souffre SOx, en soufre total réduit et en<br />

dioxines dans les gaz rejetés dans le milieu (Garcia-Blairsy Reina & Miro Espinos,<br />

2008b).<br />

Un brevet décrit l’emploi de microalgues en culture pour capter les gaz à effet de<br />

serre contenus dans les fumées industrielles (ex. CO2, méthane CH4, protoxyde<br />

d’azote N2O, chlorofluorocarbonés CFCs, hydrofluorocarbonés HFCs,<br />

perfluorocarbonés PFCs, hexafluorure de soufre SF6, ozone O3). Les microalgues<br />

utilisées pour cette invention ont une forte capacité de fixation de ces gaz et sont<br />

résistantes aux composés toxiques contenues dans les fumées (Sox et toxicité<br />

éventuelle des gaz à effet de serre). Il s’agit en particulier des diatomées<br />

Chaetoceros curvisetus, Chaetoceros debilis, Chaetoceros didymus et<br />

Chaetoceros socialis (Jeong et al., 2011).<br />

La microalgue Chlorella, et en particulier Chlorella vulgaris, a également la<br />

capacité de fixer le CO2 contenu dans les effluents gazeux (Bernard et al., 2010 ;<br />

Garcia-Gonzalez et al., 2011). C’est le cas de beaucoup de microalgues vertes,<br />

mais seules deux espèces de Chlorella ont la capacité d’utiliser le CO2 émis par<br />

les usines d’électricité à charbon (12 à 15% de CO2) pour leur production de<br />

lipides (Oh et al., 2011). Un brevet décrit aussi l’utilisation d’effluents gazeux issus<br />

de la fermentation pour la culture de Chlorella (Chiba et al., 1976).<br />

Les microalgues Chlamydomonas acidophila (Bernard et al., 2010),<br />

Scenedesmus quadricauda (Xiao et al., 2011) et Scenedesmus productocapitatus<br />

(Kim et al., 2011) peuvent également être utilisées pour leur capacité à<br />

épurer les effluents gazeux en fixant le CO2.<br />

2.2 Evaluation de la cultivabilité des algues collectées à Mayotte<br />

Pour mettre en place une filière durable de valorisation des algues de Mayotte, il faut<br />

garantir un approvisionnement de matière. Une des solutions envisagées pour<br />

répondre à cette condition est l’implantation de culture d’algues à terre ou en mer. La<br />

cultivabilité des algues de Mayotte identifiées comme candidates intéressantes à la<br />

valorisation a donc été évaluée (Tableau 11). En effet, pour certaines espèces, les<br />

techniques de culture sont connues et mises en œuvre à l’échelle commerciale<br />

depuis de nombreuses années. Pour d’autres espèces, un premier travail de mise au<br />

point des techniques de culture sera nécessaire et plus ou moins long avant de<br />

pouvoir lancer une production effective.


- 54 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Tableau 11 : Evaluation de la cultivabilité des algues de Mayotte identifiées comme<br />

candidates intéressantes à la valorisation<br />

Délai de mise<br />

en place d’une<br />

culture<br />

Court terme<br />

Espèce ou Taxon Commentaires & Références<br />

Padina spp<br />

Navicula sp<br />

Chaetoceros sp<br />

Chlorella sp<br />

Chlamydomonas sp<br />

- Culture en lagon et en mer ouverte<br />

de Padina boergesenii en Inde<br />

(Ganesan et al., 1999). Cette espèce<br />

est décrite à Mayotte (Andréfouët &<br />

Payri, 2002)<br />

- Culture en mer de Padina pavonica, à<br />

Malte, par l’ICP<br />

(www.healthexceluk.co.uk/dictyolone.<br />

php)<br />

- Navicula sp cultivée en bassin ouvert<br />

en Israël par la société Seambiotic<br />

(www.seambiotic.com). Recyclage<br />

des gaz industriels d’une usine<br />

d’électricité à charbon.<br />

- Navicula incerta considérée comme<br />

relativement facile à cultiver (Kang et<br />

al., 2011)<br />

- Production de Navicula en écloserie<br />

d’ormeaux (Lavens & Sorgeloos,<br />

1996) mais la culture semble limitée à<br />

de petits volumes (process type<br />

laboratoire plutôt qu’industriel)<br />

(Ronquillo & Ronquillo, 2010)<br />

- Une des microalgues les plus<br />

cultivées pour l’aquaculture (Spolaore<br />

et al., 2006)<br />

- C’est la deuxième microalgue la plus<br />

cultivée au monde, derrière la<br />

Spiruline. Environ 2000 tonnes<br />

sèches sont produites par an<br />

(Spolaore et al., 2006)<br />

- Espèce robuste, facile à cultiver et à<br />

maintenir en bassin ouvert<br />

(Chaumont, 1993 ; Quilliam, 2011)<br />

- Exemples de producteurs : Tawain<br />

Chlorella Industries (Taïwan),<br />

Chlorella Industry, Nihon Chlorella<br />

(Japon), Sewon (Corée), Sun<br />

Chlorella Indonesia Manufacturing<br />

Corporation (Indonésie), Taïwan<br />

Chlorella (Chine)<br />

- Espèce facile à cultiver, avec des<br />

techniques peu coûteuses (Wagner,<br />

2010)<br />

- Chlamydomonas acidophila, espèce<br />

extrêmophile qui supporte des pH<br />

très faibles � moins de problèmes de<br />

contamination (Bernard et al., 2010)


Moyen terme<br />

Scenedesmus sp<br />

Sargassum sp<br />

Dictyopteris sp<br />

- 55 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

- Espèce robuste, facile à cultiver et à<br />

maintenir en bassin ouvert<br />

(Chaumont, 1993 ; Quilliam, 2011)<br />

- Plusieurs études démontrant la<br />

faisabilité (Chennubhotla et al., 1986 ;<br />

Chennubhotla, 1988), notamment<br />

pour des essais de repeuplement<br />

(Yoon et al., 2011)<br />

- Brevet japonais décrivant une<br />

technique de culture de Sargassum<br />

(Kimura & Tanaka, 2006)<br />

- Fucales, cycles connus<br />

- Dictyopteris membranaceae cultivée<br />

en mer par la société CODIF<br />

International (Moro et al., 2010)<br />

Caulerpa racemosa - Culture envisageable par bouturage,<br />

par analogie avec d’autres espèces<br />

Caulerpa serrulata<br />

de Caulerpa (ex. Caulerpa lentillifera<br />

Caulerpa mexicana<br />

cultivée en bassin aux Philippines,<br />

Seaplant Handbook)<br />

Hypnea pannosa<br />

Asparagopsis<br />

taxiformis<br />

Oscillatoria sp<br />

Anabaena sp<br />

Cyclotella sp<br />

Nitzschia sp<br />

Botryococcus braunii<br />

- Hypnea cultivée avec succès en Inde<br />

(Seaplant Handbook)<br />

- Hypnea musciformis peut être<br />

cultivée (Deboer, 1981)<br />

- Culture habituellement conduite à<br />

faible profondeur. Nécessité d’évaluer<br />

la faisabilité de la culture en flottant.<br />

- Asparagopsis armata cultivée en mer<br />

- ou à terre pour la forme<br />

tétrasporophytique – par la société<br />

Algues et Mer (www.algues-etmer.com/recoltes)<br />

- Essais de culture d’Oscillatoria sp à<br />

l’échelle laboratoire (Chen et al.,<br />

2009) et pilote (Mohan et al., 2010)<br />

- Essais de culture d’Anabaena sp en<br />

raceway de 300L (Chen et al., 2009)<br />

- Essais de culture de Cyclotella en<br />

raceways de 100m², 200m² et<br />

1000m² (Jarvis, 2008)<br />

- Production de Nitzschia en écloserie<br />

d’ormeaux (Lavens & Sorgeloos,<br />

1996) mais la culture semble limitée à<br />

de petits volumes (process type<br />

laboratoire plutôt qu’industriel)<br />

(Ronquillo & Ronquillo, 2010)<br />

- “Botryococcus braunii is cultured<br />

commercially and their productions<br />

are established in different parts of<br />

the world”(Association of<br />

Biotechnology and Pharmacy, 2010)<br />

- Ne fait pas partie des espèces<br />

décrites par Spolaore et al. (2006)


Long terme<br />

Ankistrodesmus sp<br />

Dictyota spp<br />

Turbinaria ornata<br />

Turbinaria decurrens<br />

- 56 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

comme produites massivement<br />

- La culture de cette espèce est<br />

réalisable mais nous émettons un<br />

doute quant à sa mise en œuvre à<br />

court terme<br />

- Ankistrodesmus braunii est une<br />

espèce facile à cultiver<br />

(www.engg.uaeu.ac.ae/)<br />

- Essais de culture d’Ankistrodesmus<br />

gracilis en laboratoire, à grande<br />

échelle : 250 et 850L (Sipauba-<br />

Tavares & Pereira, 2008)<br />

- Essais de culture de Dictyota<br />

dichotoma à l’échelle laboratoire<br />

(Russella, 1970 ; Yotsukura, 1995)<br />

- Essai de culture à l’échelle<br />

laboratoire (Chennubhotla, 1988)<br />

- Fucales, cycles connus<br />

- Etude démontrant la capacité à<br />

régénérer à partir d’un fragment<br />

(Chennubhotla et al., 1986)<br />

- Fucales, cycles connus<br />

La culture de microalgues à l’échelle commerciale ne concerne que quelques<br />

espèces (Blackburn et al., 1997). Elle est principalement réalisée en système ouvert<br />

(Spolaore et al., 2006), avec des espèces robustes, supportant des conditions de<br />

culture « extrêmes » leur offrant un avantage compétitif sur les autres espèces. Ainsi,<br />

la Chlorella est cultivée dans un milieu très riche en éléments nutritifs. La<br />

cyanobactérie Arthrospira platensis, plus connue sous le nom de Spiruline, est<br />

cultivée à pH élevé et Dunaliella est cultivée en milieu hypersalin. Les microalgues ne<br />

possédant pas cette capacité de développement en conditions extrêmes seront plus<br />

sensibles à la contamination et devront être cultivées en système fermé type<br />

photobioréacteur. Cependant, ces systèmes fermés sont plus coûteux et il sera alors<br />

judicieux de cibler les marchés à haute valeur ajoutée (Milledge, 2011).<br />

De plus en plus, les industriels de la cosmétique refusent de travailler avec des<br />

algues récoltées dans le milieu naturel. Ils privilégient une matière première issue<br />

d’une culture durable. Avec la beauté et la richesse de son lagon et la mise en place<br />

d’Aires Marines Protégées, Mayotte dispose d’un atout supplémentaire vis-à-vis du<br />

développement d’une cosmétique marine basée sur les extraits d’algues.<br />

Autant que possible, la mise en place de « champs » de culture en mer ou à terre<br />

devra s’intégrer avec les sources d’énergie et de nutriments disponibles. La culture<br />

de macroalgues en mer pourra par exemple bénéficier des éléments nutritifs dissous<br />

libérés en quantité à proximité de cages à poissons. La culture de microalgues à terre<br />

pourra bénéficier des éléments nutritifs contenus dans les eaux usées domestiques<br />

ou agricoles et pourra recycler le CO2 libéré par les activités industrielles. Cette<br />

approche permettra de réduire les coûts de production et d’augmenter la rentabilité et<br />

la productivité du système.


- 57 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Ce travail d’évaluation de la cultivabilité des algues de Mayotte a également été<br />

mené pour les espèces moins prometteuses du point de vue de la valorisation<br />

(Annexe 8).<br />

2.3 Evaluation de la disponibilité de la ressource algale<br />

La seconde solution envisagée pour garantir un approvisionnement en matière pour<br />

la mise en place d’une filière durable de valorisation des algues de Mayotte est la<br />

récolte dans le milieu naturel. Cette pratique doit être menée de façon raisonnée,<br />

avec la mise en place de pratiques durables, pour ne pas nuire aux peuplements et à<br />

la biodiversité locale.<br />

La mission de collecte qui s’est déroulée en Avril 2011 a permis non seulement<br />

d’inventorier la biodiversité algale mais aussi de réaliser une première évaluation de<br />

la biomasse disponible pour chaque espèce. Cette donnée permet de déterminer<br />

dans quelle mesure la récolte d’algues dans les populations naturelles peut être<br />

envisagée (Tableau 12). A ce stade de l’étude et dans l’état actuel des connaissances,<br />

la récolte dans les populations naturelles ne semble donc envisageable que pour les<br />

algues Asparagopsis taxiformis, Turbinaria spp., Sargassum sp. et Caulerpa<br />

racemosa. Cependant, la durée de la mission de collecte n’a pas permis de réaliser<br />

une cartographie précise de l’ensemble des peuplements algaux de Mayotte et une<br />

évaluation plus approfondie de la distribution et de la taille de ces peuplements<br />

permettra certainement d’apporter de nouveaux résultats. Cette étape sera d’ailleurs<br />

une condition préalable à la mise en place de tout plan de récolte raisonné.<br />

En résumé, les conclusions sur la faisabilité de la récolte présentées ici restent donc<br />

soumises à vérification.<br />

Rappel : la récolte dans le milieu n’est envisageable que pour les macroalgues. En<br />

effet, il serait insensé de vouloir filtrer les masses d’eau pour en isoler les<br />

microalgues désirées.


- 58 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Tableau 12 : Disponibilité de la ressource algale évaluée lors de la mission de collecte organisée<br />

début Avril à Mayotte par le CEVA<br />

Espèce ou Taxon<br />

Asparagopsis taxiformis<br />

Padina spp.<br />

Turbinaria ornata<br />

Turbinaria decurrens<br />

Dictyota spp.<br />

Sargassum sp.<br />

Hypnea pannosa<br />

Disponibilité<br />

de la ressource<br />

Abondante<br />

Abondante à la<br />

dérive (cette<br />

algue n’a pas été<br />

observée à l’état<br />

fixé lors de la<br />

mission)<br />

Courante<br />

Profondeur<br />

de récolte<br />

~ 5 m<br />

~ 10 m<br />

Se développe<br />

généralement<br />

vers 10 m de<br />

fond<br />

~ 5 m<br />

Dictyopteris sp ~ 10 m<br />

Caulerpa racemosa ~ 10 m<br />

Caulerpa serrulata<br />

Caulerpa mexicana<br />

Peu présente ~ 10 m<br />

Faisabilité de la récolte<br />

Récolte envisageable mais les<br />

peuplements les plus importants<br />

observés lors de la mission du CEVA<br />

se trouvaient dans une zone à forts<br />

courants<br />

Algue abondante et proche de la<br />

surface mais récolte peu<br />

envisageable car algue imbriquée<br />

dans les coraux<br />

Récolte envisageable pour ces<br />

algues de grande taille. Les<br />

peuplements peuvent être importants<br />

sur la barrière récifale mais zone à<br />

forts courants<br />

Algue abondante mais récolte peu<br />

envisageable du fait de la petite taille<br />

de cette algue<br />

Récolte envisageable pour ces<br />

algues de grande taille :<br />

(1) dans les populations dérivantes<br />

mais problème d’approvisionnement<br />

non garanti ou (2) dans les champs<br />

de sargasses qui seraient identifiés<br />

(cartographie à mener)<br />

Récolte peu envisageable car algue<br />

imbriquée dans les coraux<br />

Récolte peu envisageable du fait de<br />

la petite taille de cette algue<br />

Algue qui forme généralement des<br />

tapis denses et étendus. A Mayotte,<br />

la récolte sera envisageable si des<br />

peuplements importants sont<br />

identifiés (cartographie à mener)<br />

Récolte peu envisageable, sauf si<br />

des peuplements importants sont<br />

identifiés (cartographie à mener)


F. Conclusion<br />

- 59 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Cette première étude du potentiel de valorisation de la biodiversité algale de Mayotte,<br />

conduite par le CEVA à la demande du SIEAM, se révèle riche d’enseignements.<br />

La mission d’inventaire qui s’est déroulée en Avril 2011, complétée d’une revue<br />

bibliographique, permet de faire un point sur la biodiversité du milieu marin et dulçaquicole<br />

en macroalgues et microalgues. Quelques 200 taxons différents sont recensés à ce jour<br />

(Tableau 13 et Tableau 14). Mayotte se caractérise donc par une relative grande richesse<br />

algale. Le lagon de Mayotte, un des plus grands et des plus beaux au monde, constitue la<br />

principale richesse de l’île. La biodiversité de la faune aquatique (en particulier mammifères<br />

marins et tortues) et la mise en place récente d’aires marines protégées sont des atouts qui<br />

contribuent à l’image de marque de Mayotte. Les algues ne sont pour l’heure pas valorisées<br />

mais les conclusions de cette étude indiquent qu’elles abritent également une grande<br />

richesse.<br />

L’étude bibliographique des applications existantes des algues met en évidence les taxons<br />

les plus prometteurs pour la valorisation. Au total, parmi les algues collectées lors de la<br />

mission à Mayotte, 11 macroalgues et 11 microalgues ressortent comme candidates<br />

intéressantes pour supporter le développement de la filière Algue à Mayotte (en bleu dans le<br />

Tableau 13 et le Tableau 14). Chacune de ces candidates montre un potentiel de valorisation<br />

dans au moins un domaine d’applications. Ainsi, les macroalgues Caulerpa racemosa et<br />

Hypnea pannosa ont un intérêt pour des applications en alimentation humaine (Figure 17).<br />

Padina sp. et Scenedesmus sp. ressortent pour des applications en alimentation animale<br />

(Figure 18). Turbinaria decurrens et Turbinaria ornata sont plus particulièrement valorisables<br />

pour des usages agricoles (Figure 19). Les microalgues Cyclotella sp. et Botryococcus braunii<br />

sont intéressantes pour des applications en chimie (Figure 20). Pour des applications<br />

cosmétiques ce sont entre autres Oscillatoria sp. et Scenedesmus sp. qui ressortent (Figure<br />

21). Oscillatoria sp. a également un potentiel de valorisation dans le domaine de la santé<br />

humaine (Figure 23) tandis que Chaetoceros sp. est plus intéressante pour des applications<br />

en santé animale (Figure 22). Enfin, Hypnea pannosa, Chlamydomonas sp. et Navicula sp.<br />

ont un intérêt particulier pour des applications dans le domaine de l’épuration (Figure 24).<br />

Tous domaines confondus, c’est la microalgue Chlorella sp. qui ressort comme la plus<br />

intéressante pour le développement de de la filière Algue à Mayotte. Elle fait toujours partie<br />

des trois ou quatre premières de liste par domaine d’application.<br />

Figure 16 : Padina sp., Caulerpa racemosa et Turbinaria ornata, macroalgues mahoraises<br />

identifiées comme candidates prometteuses à la valorisation


Macroalgues = 86 taxons différents<br />

- 60 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Tableau 13 : Liste des macroalgues de Mayotte avec en bleu les algues retenues comme<br />

candidates intéressantes à la valorisation (b = recensées dans la bibliographie, i = identifiées<br />

lors de la mission de collecte d’Avril 2011)<br />

Acanthophora spicifira (b) Halimeda spp. (i) Neogoniolithon megalocystum (b)<br />

Actinotrichia fragilis (i) Halymenia durvillei (i) Neogoniolithon propinquum (b)<br />

Amansia glomerata (i) Halymenia floresia (b) Neogoniolothon frutescens (b)<br />

Amphiroa anceps (b) Halymenia formosa (i) Neomeris vanbosseae (i)<br />

Amphiroa foliacea (b) Halymenia sp. (i) Padina spp. (i)<br />

Amphiroa fragilissima (b) Hormophora sp. (i) Peyssonnelia capensis (i)<br />

Asparagopsis taxiformis (b, i) Hydrolithon farinosum (b) Peyssonnelia simulans (i)<br />

Avrainvillea erecta (i) Hydrolithon improcerum (b) Peyssonnelia spp. (b,i)<br />

Botryocladia sp. (i) Hydrolithon onkodes (b) Pneophyllum mauritianum (b)<br />

Caulerpa mexicana (i) Hydrolithon reinboldii (b) Polystrata dura (b)<br />

Caulerpa racemosa (i) Hypnea pannosa (i) Portieria harveyi (i)<br />

Caulerpa serrulata (i) Hypnea sp. (b) Portieria hornemannii (b)<br />

Chlorodesmis sp. (i) Jania rubens (b) Ptilophora pinnatifida (i)<br />

Cruoria indica (b) Jania sp. (i) Rhipidosiphon sp. (i)<br />

Cryptonemia undulata (i) Laurencia papillosa (b) Rhipilia sp. (i)<br />

Dasya pilosa (i) Leptophytum ferox (b) Sargassum sp. (i)<br />

Dictyopteris sp. (i) Liagora valida (b) Spongites yendoi (b)<br />

Dictyota spp. (i) Lithophyllum bamleri (b) Sporolithon dimotum (b)<br />

Digenea simplex (b) Lithophyllum kotschyanum (b) sporolithon erythraeum (b)<br />

Dudresnaya sp. (i) Lithophyllum prototypum (b) Sporolithon lemoinei (b)<br />

Fosliella fertilis (b) Lithophyllum pygmaeum (b) Sporolithon sp. (b)<br />

Galaxaura marginata (b) Lithophyllum tamiense (b) Tricleocarpa cylindrica (b)<br />

Galaxaura obtusata (i) Lithoporella melobesioides (b) Turbinaria decurrens (i)<br />

Galaxaura rugosa (b, i) Lithothamnion australe (b) Turbinaria ornata (i)<br />

Galaxaura sp. (b) Lobophora sp. (i) Udotea sp1 (i)<br />

Galaxaura subverticilata (b) Mesophyllum funafutiense (b) Udotea sp2 (i)<br />

Gibsmithia sp. (i) Mesophyllum mesomorphum (b) Ventricaria ventricosa (i)<br />

Gracilaria salicornia (b) Neogoniolithon brassica-florida (b)<br />

Gracilaria sp. (b) Neogoniolithon caribaeum (b)


Microalgues = 116 taxons différents<br />

- 61 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Tableau 14 : Liste des microalgues de Mayotte avec en bleu les algues retenues comme<br />

candidates intéressantes à la valorisation (b = recensées dans la bibliographie, i = identifiées<br />

lors de la mission de collecte d’Avril 2011, en gras = espèces marines)<br />

Achnantes subhudsonis (b) Diplonéis crabro (i) Pleurosigma sp. (i)<br />

Achradina sp. (i) Eunotia minor (b) Prochlorococcus sp. (b)<br />

Actinoptychus sp. (i) Gambierdiscus toxicus (b) Prorocentrum arenarium (b)<br />

Amphora copulata (b) Geitlerinema sp. (b) Prorocentrum belizeanum (b)<br />

Amphora pediculus (b) Gephyrocapsa oceanica (b) Prorocentrum hoffmanianum (b)<br />

Amphora subturgida (b) Gomphonema bourbonense (b) Prorocentrum lima (b)<br />

Anabaena sp. (i) Gomphonema clevei (b) Prorocentrum micans (i)<br />

Anabaena sp. (b) Gomphonema designatum (b) Prorocentrum sp. (b)<br />

Anabaena spiroïdes (i) Gomphonema sp. (i) Protoperidinium pallidum (i)<br />

Ankistrodesmus sp. (i) Guinardia sp. (i) Protoperidinium sp. (i)<br />

Aphanizomenon sp. (b) Gymnodinium sp. (i) Pseudohimantidium pacificum (i)<br />

Asterionella sp. (i) Gymnodinium sp1 (i) Pseudonitzschia delicatissima (i)<br />

Bacteriatrum sp. (i) Gymnodinium sp2 (i) Pseudonitzschia seriata (i)<br />

Botryococcus braunii (i) Gymnodinium sp3 (i) Rhizosolenia sp. (i)<br />

Cerataulina sp. (i) Hemiaulus sp. (i) Rhizosolenia sp1 (i)<br />

Ceratium fusus (i) Hillea fusiformis (i) Rhizosolenia sp2 (i)<br />

Ceratium horridum (i) Hyaloraphidium contortum (i) Rhodomonas sp. (i)<br />

Ceratium sp. (i) Hydrocoleum sp. (b) Richelia sp. (b)<br />

Chaetoceros danicus (i) Licmophora sp. (i) Scenedesmus sp. (i)<br />

Chaetoceros sp. (i) Lyngbya majuscula (b) Scenedesmus sp1 (i)<br />

Chaetoceros sp1 (i) Lyngbya sp. (b) Scenedesmus sp2 (i)<br />

Chaetoceros sp2 (i) Navicula sp. (i) Scenedesmus sp3 (i)<br />

Chlamydomonas sp. (i) Navicula sp. (i) Scripsiella sp. (i)<br />

Chlorella sp. (i) Nitzschia acidoclinata (b) Sphaerocystis shroeteri (i)<br />

Chroococcus sp. (b) Nitzschia amphibia (b) Staurastrum sp. (b,i)<br />

Chroomonas minuta (i) Nitzschia closterium (b) Stephanodiscus sp. (i)<br />

Cocconeis placentula (b) Nitzschia frustulum (b) Symploca sp. (b)<br />

Cocconeis sp. (b) Nitzschia inconspicua (b) Synechococcus sp. (b)<br />

Cocconeis sp. (i) Nitzschia sp. (i) Synechocystis sp. (b)<br />

Coelastrum reticulatum (b) Nitzschia sp. (i) Synedra acus<br />

Coenococcus planctonica (i) Nitzschia tropica (b) Teilingia sp. (b)<br />

Coscinodiscus sp. (i) Nodularia sp. (b) Tetraëdron minimum (b, i)<br />

Cosmarium sp. (b) Oocystis sp. (i) Tetraedron triangulare (b)<br />

Crucigenia tetrapedia (i) Oscillatoria sp. (b, i) Thalassionema frauenfeldii (i)<br />

Cryptomonas ovata (i) Ostreopsis sp. (b) Thalassionema nitzschoïdes (i)<br />

Cyclotella sp. (i) Oxytoxum sp. (b,i) Thalassiothrix frauenfeldii (b)<br />

Cylindrospermopsis raciborskii (b) Peridiniella sp. (i) Trachelomonas hispida (i)<br />

Cylindrotheca closterium (i) Peridinium sp. (i) Trachelomonas sp. (b)<br />

Didymocystis sp. (b) Phormidium sp. (b) Trachelomonas volvocina (i)<br />

Dinophysis acuminata (i) Planktolyngbya sp. (b) Trichodesmium sp. (b)


Weight<br />

1,00e 3.1 Alimentation humaine<br />

9,56e-2<br />

9,56e-2<br />

1,71e-1<br />

8,55e-2<br />

4,27e-2<br />

4,27e-2<br />

1,71e-1<br />

1,15e-2<br />

1,15e-2<br />

1,15e-2<br />

1,15e-2<br />

1,15e-2<br />

1,15e-2<br />

8,81e-3<br />

1,10e-2<br />

5,48e-3<br />

5,48e-3<br />

1,10e-2<br />

1,10e-2<br />

1,10e-2<br />

1,10e-2<br />

1,10e-2<br />

1,10e-2<br />

1,10e-2<br />

5,48e-3<br />

9,56e-2<br />

1,91e-2<br />

1,28e-2<br />

6,38e-3<br />

1,91e-2<br />

1,91e-2<br />

9,56e-3<br />

9,56e-3<br />

1,91e-2<br />

1,91e-2<br />

9,56e-3<br />

9,56e-3<br />

3,71e-1<br />

Effects<br />

algue légume<br />

condiment<br />

aliment fonctionnel<br />

substitut de sel<br />

boisson 'santé'<br />

bonbon pour bonne hygiène bucco-dentaire<br />

complément alimentaire<br />

grande qualité nutritionnelle<br />

source de minéraux<br />

source de protéines<br />

source de vitamines<br />

source de calcium<br />

source d'acides gras poly-insaturés<br />

richesse en fucanes<br />

antioxydant<br />

antioxydant<br />

propriété liée à la richesse en polyphénols<br />

bien-être/énergie (contre stress/fatigue)<br />

détoxifiant<br />

hypocholestérolémiant<br />

hypolipidémiant<br />

effet prébiotique<br />

renforcement du système immunitaire<br />

prévention de l'ostéoporose<br />

protection UV<br />

formulation<br />

colloïdes<br />

alginates<br />

carraghénanes<br />

pigment/colorant<br />

conservateur<br />

conservateur<br />

agent stabilisant pour huile de poisson<br />

acide lactique<br />

goût<br />

goût<br />

masquage goût amer<br />

autorisation de consommation en France<br />

Causes<br />

Weight<br />

Chlorella sp.<br />

Caulerpa racemosa<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

- 62 -<br />

� �<br />

� � � � � � �<br />

�<br />

5,70<br />

2,53<br />

Hypnea pannosa<br />

Turbinaria ornata<br />

�<br />

� �<br />

�<br />

�<br />

Turbinaria decurrens<br />

Caulerpa serrulata<br />

�<br />

�<br />

� �<br />

� �<br />

Caulerpa mexicana<br />

Sargassum sp.<br />

� �<br />

� �<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

Dictyota spp.<br />

Asparagopsis taxiformis<br />

�<br />

� �<br />

�<br />

Chlamydomonas sp.<br />

Scenedesmus sp.<br />

� �<br />

�<br />

� �<br />

�<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

�<br />

Padina spp.<br />

Botryococcus braunii<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

� � � �<br />

� � � � � � �<br />

Oscillatoria sp.<br />

Navicula sp.<br />

Navicula sp<br />

Cyclotella sp.<br />

Cyclotella sp.<br />

Anabaena sp.<br />

Ankistrodesmus sp.<br />

Dictyopteris sp.<br />

� � � �<br />

�<br />

� � � �<br />

�<br />

� �<br />

� � � �<br />

Figure 17 : Classement des algues candidates à la valorisation pour des applications en<br />

alimentation humaine (voir légende ci-dessous)<br />

Légende<br />

: Usage identifié pour l’algue considérée – Développement possible à court terme<br />

�<br />

Nitzschia sp.<br />

Nitzschia sp<br />

Chaetoceros sp.<br />

: Usage identifié pour une autre espèce appartenant au même genre que l’algue considérée –<br />

Développement possible à moyen terme<br />

: Application existante pour l’algue considérée mais sans commercialisation ou brevet à ce jour<br />

(travaux en phase de recherche ou laboratoire) – Développement envisageable à long terme<br />

: Application inexistante pour l’algue considérée – Développement non envisageable à ce jour<br />

2,50<br />

1,94<br />

1,94<br />

1,89<br />

1,89<br />

1,89<br />

1,87<br />

1,77<br />

1,69<br />

1,56<br />

1,38<br />

1,25<br />

1,24<br />

1,11<br />

1,11<br />

1,08<br />

1,08<br />

1,04<br />

1,04<br />

1,03<br />

� �<br />

1,02<br />

1,02<br />

1,00<br />

�<br />

�<br />

�<br />


Weight Effects<br />

1,00e 3.2 Alimentation animale<br />

2,50e-1<br />

1,25e-1<br />

1,25e-1<br />

5,00e-1<br />

4,21e-2<br />

4,21e-2<br />

4,21e-2<br />

4,21e-2<br />

4,21e-2<br />

4,21e-2<br />

4,21e-2<br />

4,21e-2<br />

1,40e-2<br />

2,81e-2<br />

3,17e-2<br />

3,97e-2<br />

3,97e-2<br />

3,97e-2<br />

3,97e-2<br />

3,97e-2<br />

2,27e-2<br />

3,80e-2<br />

3,80e-2<br />

3,80e-2<br />

3,80e-2<br />

2,50e-1<br />

2,50e-1<br />

2,50e-1<br />

Weight<br />

algue fourrage<br />

animaux<br />

aquaculture<br />

complément alimentaire<br />

haute qualité nutritionnelle<br />

animaux domestiques<br />

source de protéines<br />

aquaculture<br />

source de vitamines<br />

animaux domestiques<br />

source de calcium<br />

sources d'acides gras poly-insaturés<br />

aquaculture<br />

œufs de poule enrichis en oméga 3<br />

richesse en fucanes<br />

antioxydant<br />

amélioration de la digestion, stimulation flore intestinale<br />

animaux non ruminants<br />

renforcement du système immunitaire<br />

stimulation des fonctions de reproduction<br />

colorant pour la pigmentation de la chair<br />

source de bromophénols pour la qualité organoleptique du produit fini<br />

aquaculture<br />

complément<br />

formulation<br />

chien/chat<br />

ingrédient<br />

animaux domestiques<br />

Causes<br />

Weight<br />

Chlorella sp.<br />

Padina spp.<br />

Scenedesmus sp.<br />

� � �<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

5,89<br />

2,96<br />

- 63 -<br />

�<br />

�<br />

�<br />

Sargassum sp.<br />

Navicula sp.<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

2,61<br />

2,56<br />

Nitzschia sp.<br />

Navicula sp<br />

Anabaena sp.<br />

Nitzschia sp<br />

� � � � �<br />

� � � � �<br />

� � � � �<br />

2,45<br />

2,45<br />

2,45<br />

2,45<br />

2,45<br />

2,25<br />

Turbinaria ornata<br />

Turbinaria decurrens<br />

� �<br />

� �<br />

� �<br />

Chlamydomonas sp.<br />

Dictyota spp.<br />

Hypnea pannosa<br />

Asparagopsis taxiformis<br />

�<br />

�<br />

2,25<br />

2,11<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Figure 18 : Classement des algues candidates à la valorisation pour des applications en<br />

alimentation animale (voir légende p.62)<br />

1,00e 3.3 Agriculture<br />

3,33e-1<br />

7,74e-2<br />

7,74e-2<br />

1,32e-1<br />

4,68e-2<br />

3,33e-1<br />

1,11e-1<br />

1,11e-1<br />

1,11e-1<br />

3,33e-1<br />

Effects<br />

engrais<br />

engrais<br />

amélioration de la croissance et/ou qualité du végétal<br />

amélioration de la composition et/ou qualité du sol<br />

substrat de revégétalisation<br />

produit phyto-sanitaire<br />

insecticide<br />

anti-bactérien<br />

anti-fongique<br />

éliciteur<br />

Causes<br />

Weight<br />

Turbinaria decurrens<br />

Turbinaria ornata<br />

� �<br />

� �<br />

� �<br />

5,17<br />

4,71<br />

Chlorella sp.<br />

Chlamydomonas sp.<br />

� �<br />

� �<br />

� �<br />

3,05<br />

2,58<br />

Sargassum sp.<br />

Hypnea pannosa<br />

� �<br />

� �<br />

Scenedesmus sp.<br />

Botryococcus braunii<br />

� �<br />

Oscillatoria sp.<br />

Padina spp.<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

Dictyota spp.<br />

Caulerpa racemosa<br />

�<br />

Asparagopsis taxiformis<br />

Caulerpa serrulata<br />

�<br />

� � �<br />

2,00<br />

2,00<br />

Caulerpa mexicana<br />

Dictyopteris sp.<br />

Chaetoceros sp.<br />

Oscillatoria sp.<br />

�<br />

� �<br />

�<br />

2,00<br />

1,59<br />

�<br />

1,45<br />

1,30<br />

Caulerpa racemosa<br />

Caulerpa serrulata<br />

� � �<br />

1,30<br />

1,30<br />

�<br />

Caulerpa mexicana<br />

Botryococcus braunii<br />

�<br />

� �<br />

1,29<br />

1,18<br />

Ankistrodesmus sp.<br />

Cyclotella sp.<br />

�<br />

�<br />

�<br />

� �<br />

1,11<br />

1,11<br />

Cyclotella sp.<br />

Dictyopteris sp.<br />

Cyclotella sp.<br />

Navicula sp.<br />

Nitzschia sp.<br />

Chaetoceros sp.<br />

Cyclotella sp.<br />

Navicula sp<br />

Anabaena sp.<br />

Nitzschia sp<br />

Ankistrodesmus sp.<br />

Figure 19 : Classement des algues candidates à la valorisation pour des applications en<br />

agriculture (voir légende p.62)<br />

2,29<br />

1,62<br />

1,62<br />

1,62<br />

1,37<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,08<br />


Weight<br />

1,00e 3.4 chimie<br />

5,00e-1<br />

4,17e-2<br />

2,08e-2<br />

2,08e-2<br />

4,17e-2<br />

4,17e-2<br />

6,94e-3<br />

6,94e-3<br />

6,94e-3<br />

6,94e-3<br />

6,94e-3<br />

6,94e-3<br />

4,17e-2<br />

2,08e-2<br />

2,08e-2<br />

4,17e-2<br />

4,17e-2<br />

4,17e-2<br />

4,17e-2<br />

2,08e-2<br />

2,08e-2<br />

4,17e-2<br />

4,17e-2<br />

4,17e-2<br />

4,17e-2<br />

2,08e-2<br />

2,08e-2<br />

5,00e-1<br />

5,56e-2<br />

2,78e-2<br />

2,78e-2<br />

5,56e-2<br />

1,11e-1<br />

1,11e-1<br />

1,11e-1<br />

5,56e-2<br />

Effects<br />

chimie fine<br />

propriété antifouling (qui peut être liée à la présence de terpènes)<br />

antifouling<br />

algicide<br />

propriété déterrente (qui peut être liée à la présence de terpènes)<br />

composés originaux<br />

acide lactique<br />

acides acryliques halogénés<br />

beta-chitine<br />

caulersine (bis-indole)<br />

terpènes<br />

toxines<br />

activité enzymatique<br />

agarolytique<br />

catalysant réaction d'extension d'acide gras à longue chaîne<br />

flocculant<br />

surfactant<br />

richesse en lipides > huile pour lubrifiant<br />

pigment<br />

phycobiliprotéines (ex. pour recherche médicale)<br />

chlorophylle (pour masquer odeur de tabac)<br />

composé limitant la formation de tartre/dépôt de calcaire<br />

composé incorporé dans de la glace pour une meilleure conservation des al...<br />

méthode d'obtention d'oxides métalliques<br />

domaine médical<br />

matériaux<br />

cryoprotecteur pour préparations médicales<br />

recherche médicale (ex. facteur de croissance)<br />

thermoplastique<br />

thermoplastique<br />

PVC contenant des microalgues<br />

enduit contenant des particules microalgales<br />

matériau accumulateur d'énergie solaire<br />

polymère réducteur de frottement<br />

cellulose pour traitement pharmaceutique à base de nicotine<br />

filtre à cigarettes<br />

Causes<br />

Weight<br />

Cyclotella sp.<br />

Cyclotella sp.<br />

Chlorella sp.<br />

Botryococcus braunii<br />

Anabaena sp.<br />

Navicula sp.<br />

Navicula sp<br />

Ankistrodesmus sp.<br />

� �<br />

� � � � � � � � � � � � � �<br />

� �<br />

� � � �<br />

� �<br />

3,01<br />

3,01<br />

- 64 -<br />

�<br />

� � � � � �<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

Nitzschia sp.<br />

Nitzschia sp<br />

� �<br />

Chaetoceros sp.<br />

Oscillatoria sp.<br />

� � � � � �<br />

�<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

�<br />

� �<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

Chlamydomonas sp.<br />

Scenedesmus sp.<br />

Hypnea pannosa<br />

Sargassum sp.<br />

Dictyota spp.<br />

Dictyopteris sp.<br />

Padina spp.<br />

Turbinaria ornata<br />

Turbinaria decurrens<br />

Caulerpa racemosa<br />

Asparagopsis taxiformis<br />

Caulerpa serrulata<br />

Figure 20 : Classement des algues candidates à la valorisation pour des applications en chimie<br />

(voir légende p.62)<br />

2,75<br />

2,28<br />

2,24<br />

2,11<br />

2,11<br />

2,11<br />

2,11<br />

2,11<br />

2,00<br />

1,94<br />

� �<br />

� �<br />

1,92<br />

1,86<br />

�<br />

�<br />

�<br />

1,56<br />

1,17<br />

� �<br />

�<br />

� �<br />

1,10<br />

1,06<br />

1,00<br />

1,00<br />

�<br />

1,00<br />

1,00<br />

�<br />

�<br />

1,00<br />

1,00<br />

� �<br />

1,00<br />

Caulerpa mexicana


Weight Effects<br />

1,00e 3.5 cosmétique<br />

3,13e-1 soin anti-âge<br />

6,25e-2 soin anti-âge<br />

6,25e-2 anti-ride<br />

6,25e-2 propriété antioxydante<br />

6,25e-2 inhibiteur de la hyaluronidase<br />

6,25e-2 stimulation de la production de collagène<br />

3,12e-1 soin de la peau<br />

3,91e-2 agent cicatrisant<br />

3,91e-2 hydratant cutané<br />

3,91e-2 soin protecteur, renforcement<br />

3,91e-2 soin 'santé' maintenant ou augmentant la teneur en céramides de la peau<br />

3,91e-2 pigmentation<br />

1,95e-2<br />

agent éclaircissant<br />

1,95e-2<br />

stimulation la synthèse de mélanine<br />

3,91e-2 protection UV<br />

3,91e-2 traitement de l'acné, des imperfections<br />

3,91e-2 régénération cellulaire<br />

3,13e-1 beauté<br />

4,46e-2 soins du corps<br />

1,12e-2<br />

soins du corps<br />

1,12e-2<br />

effet volumateur du buste<br />

1,12e-2<br />

minceur<br />

1,12e-2<br />

traitement et prévention des vergetures<br />

4,46e-2 soins capillaires<br />

4,46e-2 soins des cils<br />

4,46e-2 soins des lèvres (lissant, repulpant)<br />

4,46e-2 sels de bain<br />

4,46e-2 boues thermales contenant des microalgues<br />

4,46e-2 après-rasage<br />

6,25e-2 formulation<br />

1,04e-2 richesse en lipides<br />

1,04e-2 additif pour préparations cosmétiques<br />

1,04e-2 humectant<br />

1,04e-2 conservateur (biocide)<br />

1,04e-2 anti-inflammatoire<br />

1,04e-2 pigment<br />

1,04e-2<br />

phycocyanine<br />

Causes<br />

Weight<br />

Chlorella sp.<br />

Oscillatoria sp.<br />

�<br />

� �<br />

�<br />

�<br />

�<br />

� � � � � � � � � � �<br />

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�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

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- 65 -<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

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�<br />

�<br />

�<br />

� �<br />

� �<br />

� � � � � � � � � �<br />

3,98<br />

3,47<br />

Scenedesmus sp.<br />

Caulerpa racemosa<br />

Chlamydomonas sp.<br />

Dictyopteris sp.<br />

�<br />

�<br />

�<br />

Padina spp.<br />

Sargassum sp.<br />

�<br />

�<br />

� � � � �<br />

�<br />

�<br />

Caulerpa serrulata<br />

Caulerpa mexicana<br />

� �<br />

� �<br />

Asparagopsis taxiformis<br />

Hypnea pannosa<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Turbinaria ornata<br />

Anabaena sp.<br />

�<br />

�<br />

�<br />

Dictyota spp.<br />

Nitzschia sp.<br />

�<br />

�<br />

� � � � � � � �<br />

�<br />

� �<br />

�<br />

� �<br />

� �<br />

� � �<br />

�<br />

�<br />

3,18<br />

2,61<br />

2,47<br />

2,16<br />

2,14<br />

2,05<br />

1,94<br />

1,94<br />

1,70<br />

1,61<br />

1,57<br />

1,46<br />

�<br />

1,45<br />

1,37<br />

Chaetoceros sp.<br />

Nitzschia sp<br />

� � �<br />

� � �<br />

� � �<br />

Cyclotella sp.<br />

Cyclotella sp.<br />

Turbinaria decurrens<br />

�<br />

� � � �<br />

1,37<br />

1,37<br />

1,36<br />

1,36<br />

� �<br />

�<br />

�<br />

�<br />

Ankistrodesmus sp.<br />

Navicula sp.<br />

Navicula sp<br />

Botryococcus braunii<br />

�<br />

1,21<br />

1,17<br />

� � � �<br />

Figure 21 : Classement des algues candidates à la valorisation pour des applications en<br />

cosmétique (voir légende p.62)<br />

Weight Effects<br />

1,00e 3.7 santé animale<br />

1,11e-1 anti-viral<br />

1,11e-1 anti-bactérien en aquaculture<br />

1,11e-1 anti-bactérien chez les mammifères<br />

1,11e-1 anti-champignon en aquaculture<br />

1,11e-1 anti-parasite<br />

1,11e-1 insecticide<br />

1,11e-1 anti-parasite en aquaculture<br />

1,11e-1 stimulation des défenses immunitaires<br />

1,11e-1 dépression<br />

Causes<br />

Weight<br />

Chlorella sp.<br />

Chaetoceros sp.<br />

Cyclotella sp.<br />

Nitzschia sp.<br />

Cyclotella sp.<br />

Botryococcus braunii<br />

�<br />

� �<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

3,67<br />

2,78<br />

� � � � �<br />

Nitzschia sp<br />

Padina spp.<br />

�<br />

Sargassum sp.<br />

Dictyota spp.<br />

�<br />

�<br />

� �<br />

Turbinaria ornata<br />

Turbinaria decurrens<br />

Caulerpa racemosa<br />

Hypnea pannosa<br />

Asparagopsis taxiformis<br />

Caulerpa serrulata<br />

Caulerpa mexicana<br />

Dictyopteris sp.<br />

� �<br />

Figure 22 : Classement des algues candidates à la valorisation pour des applications en santé<br />

animale (voir légende p.62)<br />

1,89<br />

1,89<br />

1,89<br />

1,89<br />

1,89<br />

1,22<br />

1,22<br />

1,22<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

Oscillatoria sp.<br />

Navicula sp.<br />

�<br />

1,00<br />

1,00<br />

Chlamydomonas sp.<br />

Scenedesmus sp.<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,08<br />

1,08<br />

Navicula sp<br />

Anabaena sp.<br />

Ankistrodesmus sp.<br />

�<br />

�<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,08<br />

1,00


Weight<br />

1,00e 3.6 Santé humaine<br />

2,70e-2<br />

5,41e-3<br />

1,80e-3<br />

1,80e-3<br />

1,80e-3<br />

5,41e-3<br />

5,41e-3<br />

5,41e-3<br />

2,70e-3<br />

2,70e-3<br />

5,41e-3<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

1,35e-2<br />

3,38e-3<br />

3,38e-3<br />

3,38e-3<br />

3,38e-3<br />

1,35e-2<br />

2,70e-2<br />

6,76e-3<br />

6,76e-3<br />

6,76e-3<br />

6,76e-3<br />

2,70e-2<br />

1,35e-2<br />

1,35e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

1,35e-2<br />

1,35e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

2,70e-2<br />

Effects<br />

action contre les pathogènes<br />

virus<br />

antiviral<br />

VIH<br />

virus herpès<br />

bactérie<br />

champignon<br />

parasite<br />

anti-parasite<br />

insecticide<br />

infections nosocomiales<br />

immunostimulation<br />

immuno-supression<br />

traitement des cancers et tumeurs<br />

anti-cancer<br />

anti-cancer<br />

cytotoxique<br />

antimitotique<br />

apoptotique<br />

anti-tumoral<br />

maladies cardio-vasculaires<br />

artériosclérose<br />

thrombose<br />

insuffisance cardiaque<br />

inhibiteur de la sérine protéase (enzyme intervenant dans certains troubles c...<br />

action sur la coagulation<br />

anti-coagulant<br />

hyper-coagulant<br />

hypo-tenseur<br />

hypocholestérolémiant<br />

hypolipidémiant<br />

anti-allergique<br />

anti-diabétique<br />

anti-douleur, anesthésiant<br />

anti-inflammatoire<br />

anti-oxydant<br />

anti-ulcéreux<br />

bronchoconstricteur<br />

caries<br />

cicatrisant<br />

contractant utérin<br />

constipation<br />

dépression<br />

douleurs articulaires<br />

hémorroïdes<br />

maladies neurologiques<br />

maladies neurologiques<br />

maladie d'Alzheimer<br />

maladies osseuses ou cartilagineuses<br />

maladies du foie<br />

maladies hormonales<br />

maladies liées à une déficience en iode<br />

pansement antibactérien<br />

parodontite (inflammation des tissus de soutien des dents, ex. gencives)<br />

plaies et brûlures de la cornée<br />

relaxation musculaire<br />

médecine traditionnelle chinoise<br />

agent améliorant la biodisponibilité de substances médicamenteuses<br />

richesse en acides gras poly-insaturés<br />

acide lactique<br />

composé utilisé pour le diagnostic médical<br />

Causes<br />

Weight<br />

Chlorella sp.<br />

Oscillatoria sp.<br />

Cyclotella sp.<br />

Cyclotella sp.<br />

Caulerpa racemosa<br />

Caulerpa serrulata<br />

Caulerpa mexicana<br />

Scenedesmus sp.<br />

Chlamydomonas sp.<br />

� �<br />

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�<br />

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�<br />

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�<br />

- 66 -<br />

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�<br />

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�<br />

�<br />

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�<br />

Padina spp.<br />

Anabaena sp.<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

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�<br />

� � �<br />

�<br />

�<br />

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�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

Sargassum sp.<br />

Hypnea pannosa<br />

� �<br />

�<br />

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�<br />

�<br />

�<br />

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�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

� � �<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

Nitzschia sp.<br />

Nitzschia sp<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

� � � � � � � � � � �<br />

� �<br />

� �<br />

Navicula sp.<br />

Navicula sp<br />

� �<br />

� �<br />

� � �<br />

Dictyopteris sp.<br />

Dictyota spp.<br />

Asparagopsis taxiformis<br />

� � � �<br />

� � �<br />

� �<br />

�<br />

�<br />

�<br />

� �<br />

�<br />

�<br />

� �<br />

�<br />

�<br />

�<br />

� �<br />

�<br />

�<br />

�<br />

Chaetoceros sp.<br />

Turbinaria ornata<br />

Turbinaria decurrens<br />

Botryococcus braunii<br />

�<br />

� �<br />

� �<br />

� �<br />

� �<br />

� �<br />

� �<br />

� �<br />

� �<br />

� �<br />

2,56<br />

2,11<br />

1,76<br />

1,76<br />

1,74<br />

1,72<br />

1,72<br />

1,65<br />

1,49<br />

1,43<br />

1,43<br />

1,34<br />

1,27<br />

1,22<br />

1,22<br />

1,22<br />

1,22<br />

1,15<br />

1,11<br />

1,04<br />

1,04<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

1,00<br />

Figure 23 : Classement des algues candidates à la valorisation pour des applications en santé<br />

humaine (voir légende p.62)<br />

�<br />

�<br />

Ankistrodesmus sp.<br />


Weight Effects<br />

1,00e 3.8 épuration<br />

5,00e-1 eaux usées<br />

8,33e-2 absorption des nutriments<br />

8,33e-2 absorption des polluants<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

3,97e-3<br />

8,33e-2<br />

8,33e-2<br />

8,33e-2<br />

8,33e-2<br />

2,50e-1<br />

2,50e-1<br />

2,50e-1<br />

1,25e-1<br />

1,25e-1<br />

heavy metals<br />

arsenic<br />

cadmium<br />

chrome<br />

cuivre<br />

plomb<br />

mercure<br />

nickel<br />

acetonitrile<br />

cobalt<br />

fluoranthene<br />

manganèse<br />

pétrole<br />

phenanthrene<br />

phenol<br />

p-nitrophenol<br />

rhodamine B<br />

salicylate<br />

uranium / éléments radioactifs<br />

vert de malachite<br />

zinc<br />

neutralisation des polluants (oxydation)<br />

désulfonation<br />

diminution de la demande biologique en oxygène (BOD)<br />

diminution de la charge bactérienne<br />

déchets solides ou semi-solides<br />

accélération de la fermentation<br />

gaz industriels<br />

absorption des polluants<br />

fixation du CO2<br />

Causes<br />

Weight<br />

Hypnea pannosa<br />

Chlamydomonas sp.<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

- 67 -<br />

Navicula sp.<br />

Navicula sp<br />

� � � �<br />

� � �<br />

Chlorella sp.<br />

Oscillatoria sp.<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

Nitzschia sp.<br />

Nitzschia sp<br />

Ankistrodesmus sp.<br />

Scenedesmus sp.<br />

Chaetoceros sp.<br />

� � � � �<br />

� � � � � �<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

� � � � � � � � �<br />

� �<br />

4,00<br />

3,46<br />

� �<br />

Dictyota spp.<br />

Botryococcus braunii<br />

�<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Figure 24 : Classement des algues candidates à la valorisation pour des applications en<br />

épuration (voir légende p.62)<br />

Dans le cadre d’une réflexion à court et moyen terme et étant donné le contexte mahorais en<br />

termes d’industrialisation et de disponibilité des compétences, certains domaines<br />

d’application apparaissent plus difficiles à implanter sur le territoire. En particulier, le<br />

développement d’applications santé semble risqué car il nécessiterait la mise en œuvre de<br />

techniques et procédés de pointe. Bien que les études et les preuves de concept se<br />

multiplient dans ce domaine, l’exemple métropolitain laisse penser que le marché des<br />

produits pharmaceutiques à base d’algues n’est pas encore suffisamment établi. Ce secteur<br />

d’applications ne sera donc pas abordé en priorité à Mayotte, du moins pas dans un premier<br />

temps. C’est le cas également pour la plupart des applications en chimie fine et dans une<br />

moindre mesure pour les applications cosmétiques où des procédés lourds de traitement ou<br />

d’extraction sont requis. Au contraire, les domaines de l’alimentation et de l’agriculture qui ne<br />

nécessitent pas forcément une technologie trop pointue semblent des voies prometteuses de<br />

développement économique. De la même manière, l’utilisation des algues dans des<br />

procédés d’épuration apparaît comme une voie prometteuse à explorer.<br />

3,00<br />

3,00<br />

2,90<br />

2,33<br />

2,33<br />

2,33<br />

2,33<br />

2,01<br />

1,92<br />

1,70<br />

Sargassum sp.<br />

Padina spp.<br />

�<br />

�<br />

�<br />

1,67<br />

1,33<br />

�<br />

1,00<br />

1,00<br />

Turbinaria ornata<br />

Turbinaria decurrens<br />

� �<br />

� �<br />

Caulerpa racemosa<br />

Asparagopsis taxiformis<br />

�<br />

�<br />

1,00<br />

1,00<br />

�<br />

1,00<br />

1,00<br />

Caulerpa serrulata<br />

Caulerpa mexicana<br />

� �<br />

� �<br />

1,00<br />

1,00<br />

Dictyopteris sp.<br />

Cyclotella sp.<br />

� �<br />

1,00<br />

1,00<br />

Cyclotella sp.<br />

Anabaena sp.<br />

1,00<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />

�<br />


BIBLIOGRAPHIE<br />

Publications, ouvrages, brevets<br />

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le marché d’un nouvel aliment ou d’un ingrédient alimentaire : extension d’emploi de l’huile<br />

riche en DHA issue de la micro-algue Schizochytrium sp.<br />

Bibliographie\Afssa - Saisine n°2008-SA-0316.pdf.<br />

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ANNEXES<br />

- 106 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Annexe 1 : Taxons appartenant aux algues (Reviers, 2002 ; Gonzales, 2011) (A=aérienne, D = eau<br />

douce, M = marine, S=saumâtre, subA=subaérienne) ___________________________________ 107<br />

Annexe 2 : Nomenclature scientifique des algues ______________________________________ 108<br />

Annexe 3 : Arrêté préfectoral portant autorisation exceptionnelle de prélèvements dans le lagon de<br />

Mayotte _______________________________________________________________________ 109<br />

Annexe 4 : Sources de pollution et de dégradation à Mayotte – pollutions urbaines et industrielles<br />

(CAREX et al., 2002) & zoom sur la baie de Poroani.____________________________________ 111<br />

Annexe 5 : Sources potentielles de pollution et de dégradation du milieu lagonaire à Mayotte, liées à<br />

l’agriculture, à la pêche et aux activités portuaires (CAREX et al., 2002) _____________________ 112<br />

Annexe 6 : Liste des espèces d’algues autorisées à la consommation en Règlement (données CEVA)<br />

______________________________________________________________________________ 113<br />

Annexe 7 : Débouchés potentiels d’application des algues de Mayotte, pour les espèces d’algues<br />

considérées comme moins prometteuses pour une valorisation à court terme (MB = macroalgues<br />

brunes ; MV = macroalgues vertes ; MR = macroalgues rouges ; mm = microalgues marines ; md =<br />

microalgues d’eau douce) _________________________________________________________ 114<br />

Annexe 8 : Evaluation de la cultivabilité des algues de Mayotte, pour les espèces considérées comme<br />

moins prometteuses pour une valorisation à court terme _________________________________ 124


- 107 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Annexe 1 : Taxons appartenant aux algues (Reviers, 2002 ; Gonzales, 2011) (A=aérienne, D = eau douce, M = marine, S=saumâtre, subA=subaérienne)<br />

Règne Sous-règne, infra-règne Phylum Classe Caractéristiques<br />

PROCARYOTES Glycobacteria Cyanophyta - Cyanophyceae ou « cyanobactéries »<br />

Glaucobionta Glaucophyta - Glaucophyceae unicellulaires ; D<br />

EUCARYOTES<br />

Rhodobionta<br />

Chlorobionta, Chlorophyta<br />

Chlorobionta, Streptophyta<br />

Rhodophyta ou<br />

« algues rouges »<br />

- Cyanidiophyceae<br />

- Bangiophyceae<br />

- Florideophyceae<br />

- Prasinophyceae<br />

- Pedinophyceae<br />

- Ulvophyceae ou « algues vertes »<br />

- Chlorophyceae<br />

- Trebouxiophyceae<br />

- ordre des Prasiolales (position incertaine)<br />

- Mesostigmatophyceae<br />

- Zygnematophyceae<br />

- Klorokybophyceae<br />

- Klebsormidiophyceae<br />

- Coleochaetophyceae<br />

- Charophyceae<br />

unicellulaires<br />

unicellulaires<br />

unicellulaires<br />

unicellulaires ou coloniales<br />

unicellulaires ou filamenteuses ; D ou subA<br />

unicellulaires, filamenteuses ou foliacées ; M, D ou A<br />

D<br />

unicellulaires ou filamenteuses ; D ou S<br />

subA<br />

filamenteuses ; D ou subA<br />

D<br />

pluricellulaires ; D ou S<br />

Cryptista Cryptophyta - Cryptophyceae unicellulaires<br />

Discicristata Euglenozoa - Euglenophyceae ou « euglènes » unicellulaires ; M, D ou S<br />

Sarcomastigota Cercozoa - Chlorarachniophyceae<br />

Haptobionta Haptophyta<br />

-<br />

-<br />

Pavlovophyceae<br />

Haptophyceae ou « coccolithophoridés »<br />

- Pinguiophyceae<br />

- Bacillariophyceae ou « diatomées »<br />

- Bolidophyceae<br />

- Parmophyceae<br />

- Pelagophyceae<br />

Heterokonta<br />

Heterokontophyta<br />

ou Ochrophyta<br />

-<br />

-<br />

-<br />

Pedinellophyceae<br />

Raphidophyceae<br />

Phaeothamniophyceae<br />

- Crysomerophyceae<br />

- Xanthophyceae<br />

- Schizocladiophyceae<br />

- Phaeophyceae ou « algues brunes »<br />

- Eustigmatophyceae<br />

- Chrysophyceae<br />

Predinoflagellata - Oxyrrhea<br />

Alveolata<br />

Dinophyta ou<br />

-<br />

-<br />

Syndiniophyceae<br />

Blastodiniphyceae<br />

« dinoflagellés » - Noctiluciphyceae<br />

- Dinophyceae<br />

unicellulaires ; M<br />

unicellulaires ; M<br />

unicellulaires ; M<br />

unicellulaires ; M, D ou S<br />

M<br />

unicellulaires ; M<br />

unicellulaires ou coloniales ; M ou S<br />

unicellulaires<br />

unicellulaires ; M ou D<br />

D ou S<br />

M<br />

unicellulaires ou filamenteuses ; surtout D<br />

unicellulaires


Annexe 2 : Nomenclature scientifique des algues<br />

genre espèce<br />

Avrainvillea erecta<br />

Sargassum sp. ↔ espèce non déterminée<br />

Halimeda spp. ↔ plusieurs espèces non déterminées<br />

- 108 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire


- 109 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Annexe 3 : Arrêté préfectoral portant autorisation exceptionnelle de prélèvements dans le<br />

lagon de Mayotte


- 110 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire


- 111 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Annexe 4 : Sources de pollution et de dégradation à Mayotte – pollutions urbaines et<br />

industrielles (CAREX et al., 2002) & zoom sur la baie de Poroani.


- 112 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Annexe 5 : Sources potentielles de pollution et de dégradation du milieu lagonaire à Mayotte,<br />

liées à l’agriculture, à la pêche et aux activités portuaires (CAREX et al., 2002)


- 113 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Annexe 6 : Liste des espèces d’algues autorisées à la consommation en Règlement (données<br />

CEVA)<br />

En Règlement, les historiques de consommation significative avant l’entrée en vigueur du<br />

règlement Novel Food ainsi qu’un certain nombre d’évaluation par le Conseil Supérieur d’Hygiène<br />

Publique de Règlement (avis du CSHPF) ont permis d’établir une liste d’algues utilisables pour la<br />

consommation humaine.<br />

La microalgue Odontella aurita a reçu un avis favorable de l’AFSSA à son utilisation en tant<br />

qu’ingrédient sur la base de l’équivalence substantielle de cette microalgue avec d’autres algues<br />

alimentaire autorisées (saisine n° 2001-SA-0082) selon le règlement (CE) n° 258/97.<br />

A ce jour, 23 algues dont 3 microalgues sont utilisables. Parmi les macroalgues, on dénombre 7<br />

algues brunes, 11 algues rouges et 2 algues vertes.<br />

Nom scientifique Nom commun<br />

� Algues brunes<br />

- Ascophyllum nodosum<br />

- Fucus vesiculosus<br />

- Himanthalia elongata<br />

- Undaria pinnatifida<br />

- Laminaria digitata<br />

- Laminaria saccharina<br />

- Laminaria japonica<br />

� Algues rouges<br />

- Palmaria palmata<br />

- Porphyra umbilicalis<br />

- Porphyra tenera<br />

- Porphyra yezoensis<br />

- Porphyra dioica<br />

- Porphyra purpurea<br />

- Porphyra laciniata<br />

- Porphyra leucostica<br />

- Chondrus crispus<br />

- Gracilaria verrucosa<br />

- Lithothamnium calcareum<br />

� Algues vertes<br />

- Ulva sp.<br />

- Enteromorpha sp.<br />

� Microalgues<br />

- Spirulina sp.<br />

- Odontella aurita<br />

- Chlorella sp.<br />

Spaghetti de mer<br />

Wakame<br />

Kombu<br />

Kombu Royal<br />

Kombu<br />

Dulse<br />

Nori<br />

„<br />

„<br />

„<br />

„<br />

„<br />

„<br />

Pioca, lichen<br />

Ogonori<br />

Mäerl<br />

Laitue de mer<br />

Aonori<br />

L’huile extraite de Schizochytrium sp. à teneur élevée en DHA (32% DHA) a reçu une autorisation de<br />

mise sur le marché en application du règlement (CE) n° 258/97 par la communauté européenne<br />

(2003/427/CE et extension d’utilisation – Saisine AFSSA n° 2008-SA-0316 Saisine liée n° 2001-SA-<br />

0095). L’huile extraite d’Ulkénia sp. (32% DHA) a également reçu un avis favorable d’utilisation en<br />

alimentaire (règlement CE 2009/777/CE).


- 114 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Annexe 7 : Débouchés potentiels d’application des algues de Mayotte, pour les espèces<br />

d’algues considérées comme moins prometteuses pour une valorisation à court terme<br />

(MB = macroalgues brunes ; MV = macroalgues vertes ; MR = macroalgues rouges ;<br />

mm = microalgues marines ; md = microalgues d’eau douce)<br />

1. Alimentation humaine<br />

Application / Action Espèce(s) ou taxon(s) concerné(s)<br />

Algue légume<br />

Complément alimentaire : acides<br />

gras poly-insaturés AGPI<br />

Complément alimentaire :<br />

vitamines<br />

Complément alimentaire :<br />

antioxydant<br />

Complément alimentaire :<br />

hypocholestérolémiant<br />

Complément alimentaire :<br />

détoxifiant<br />

Formulation : colorant<br />

- Halymenia sp (MR) (Seaplant Handbook ; Win Thin,<br />

1990) et en particulier Halymenia durvillae et<br />

Halymenia dilitata (Trono, 2001)<br />

- Rhodomonas (mm) (EP2275101, 2011)<br />

- Oocystis (md) (EP2275101, 2011)<br />

- Chroomonas (md) (EP2275101, 2011)<br />

- Cryptomonas (md) (EP2275101, 2011)<br />

- Peridinium (md) (EP2275101, 2011). Aliment<br />

santé formulé à base d’AGPI extraits de<br />

Peridinium bipes (md) (Maeda et al., 1996).<br />

Peridinium triquetum riche en EPA (Ratledge,<br />

1997)<br />

- Production de vitamine B12 à partir d’Asterionella<br />

glacialis (syn. Asterionella japonica) (mm)<br />

(Suzuki et al., 2008)<br />

- Extrait de Lobophora variegata (MB) (Zubia et al.,<br />

2007)<br />

- Extrait de Gymnodinium spp (mm & md) (Sato et<br />

al., 2007) et en particulier Gymnodinium<br />

impudicum (Niwano et al., 2008)<br />

- Extrait aqueux de Scripsiella trochoidea (mm)<br />

(Sato et al., 2007)<br />

- Extraits de Cylindrotheca closterium (mm) (Affan<br />

et al., 2009)<br />

- Stanol extrait de Ptilophora subcostata (MR)<br />

induisant une diminution du taux de LDL<br />

(Ikegawa & Kobayashi, 2003)<br />

- Capacité détoxifiante vis-à-vis des métaux de<br />

Halimeda incrassata (MV) (Fallalero Linares et<br />

al., 2004)<br />

- Carotènes qui peuvent éventuellement être<br />

obtenus à partir de Gymnodinium sp (mm & md)<br />

(Johannisbauer et al., 2010)<br />

- Kétocaroténoïdes extraits de Crucigenia (md)<br />

(Flachmann et al., 2005)<br />

- Production d’astaxanthin à partir de Crucigenia<br />

(md) (Takada, 1989)


2. Alimentation animale<br />

Application / Action Espèce(s) ou taxon(s) concerné(s)<br />

Algue fourrage<br />

Complément alimentaire : apport<br />

en calcium<br />

Complément alimentaire : source<br />

d’acides gras poly-insaturés<br />

(AGPI)<br />

- 115 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

- Gymnodinium splendens (mm & md) pourrait être<br />

utilisée comme proie vivante pour l’alimentation<br />

des larves de poisson Epinephelus akaara<br />

(Rodriguez & Hirayama, 1997)<br />

- Prorocentrum sp (mm) et Pseudonitzschia sp<br />

(mm) pour l’élevage de rotifères, de larves de<br />

crevettes ou de mollusques filtreurs (Harel, 2004)<br />

- Rhodomonas (mm) et en particulier Rhodomonas<br />

baltica et Rhodomonas salina pour l’aquaculture<br />

(da Costa et al., 2005 ; Shields & Ostrowski,<br />

2006 ; Trembaly et al., 2007 ; Elston et al., 2009 ;<br />

Wallace et al., 2010)<br />

- Cocconeis sp (mm) pour le stade post-larvaire de<br />

l’élevage d’ormeau (Daume, 2006 ; Capinpin,<br />

2007 ; Takami, date inconnue ; SEAFDEC, 2011)<br />

- Cylindrotheca (mm) pour l’élevage d’artémias et<br />

de larves de crevette (Untermeyer et al., 2003).<br />

Cylindrotheca closterium (mm) fréquemment<br />

utilisée pour l’aquaculture dans la région Nord-<br />

Est du Brésil (Moura et al., 2007)<br />

- Brevet décrivant une méthode d’élevage où les<br />

poissons – notamment des clupéiformes – se<br />

nourissent de microalgues telles que Staurastrum<br />

(md), Trachelomonas (md), Cryptomonas (md) et<br />

Stephanodiscus (md) (Wu et al., 2010b)<br />

- De manière générale, les algues rouges<br />

calcifiées constituent une source potentielle de<br />

calcium pour les animaux (donnée interne CEVA)<br />

- Les diatomées (mm & md) sont particulièrment<br />

riches en AGPI (Milledge, 2011)<br />

- Microalgues riches en AGPI utilisées dans la<br />

ration alimentaire de poissons d’aquaculture pour<br />

la production d’huiles de poissons enrichies en<br />

AGPI (Wu et al., 2010) : Dynophysis (mm),<br />

Gymnodinium (mm & md), Prorocentrum (mm),<br />

Rhodomonas (mm), Pleurosigma (mm),<br />

Cylindrotheca (mm), Pseudonitzschia (mm),<br />

Staurastrum (md), Trachelomonas (md), Oocystis<br />

(md), Stephanodiscus (md), Synedra (md),<br />

Cryptomonas (md)<br />

- Autres exemples de microalgues riches en AGPI<br />

(EP2275101, 2011 ; Renaud et al., 1999 ; Maeda<br />

et al., 1996) : Rhodomonas (mm), Oocystis (md),<br />

Chroomonas (md), Cryptomonas (md),<br />

Peridinium (md)<br />

- Rhodomonas salina = une source d’AGPI<br />

intéressante pour les animaux d’élevage (Chilton


Complément alimentaire : source<br />

de bromophénols<br />

Complément alimentaire :<br />

colorant<br />

3. Agriculture<br />

- 116 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

& Lu, 2010)<br />

- Intérêt de Cryptomonas (md) pour l’élevage de<br />

Daphnia magna (Martin-Creuzburg & von Elert,<br />

2009).<br />

- Emploi de microalgues comme complément<br />

alimentaire dans la ration des poules pour<br />

produire des œufs enrichis en omégas-3<br />

(Akimoto et al., 2002) : Chroomonas (md),<br />

Cryptomonas (md), Peridinium (md)<br />

- Pour améliorer la qualité organoleptique des<br />

produits d’aquaculture : Lobophora sp (MB),<br />

Halimeda sp. (MV), Galaxaura sp. (MR),<br />

Halymenia sp (MR) (Chung et al., 2005)<br />

- Pour la pigmentation de la chair, notamment des<br />

crevettes et des salmonidés : ketocaroténoïdes<br />

extraits de Crucigenia (md) (Flachmann et al.,<br />

2005)<br />

Application / Action Espèce(s) ou taxon(s) concerné(s)<br />

Engrais : amélioration de la<br />

croissance du végétal<br />

4. Chimie<br />

- Extraits d’Halimeda macrolaba et Halimeda<br />

opuntia comme régulateurs de croissance (MV)<br />

(Trono, 2001)<br />

- Extrait de Jania rubens (MR) (El-Sheekh & El-<br />

Saied, 2000)<br />

Application / Action Espèce(s) ou taxon(s) concerné(s)<br />

Colloïdes<br />

Anti-fouling<br />

Déterrent<br />

Surfactant<br />

Lubrifiant<br />

Composés originaux<br />

- Halymenia durvillae et Halymenia dilatata (MR)<br />

sont une source de carraghénanes (Trono, 2001)<br />

- Portieria sp (MR) est un carraghénophyte<br />

(Fredericq et al., 1996 ; Jurukin Sdn Bhd), en<br />

particulier Portieria hornemanii (Trono, 2001)<br />

- Composés algicides extraits de Peridinium<br />

aciculiferum et Peridinium bipes (md) (Rengefors<br />

& Legrand, 2001 ; Wu et al., 1998)<br />

- Extrait de Scripsiella trochoidea (mm) (Van<br />

Alstyne, 1986)<br />

- Lipides extraits des microalgues (He et al.,<br />

2011) : Sphaerocystis (md), Crucigenia (md)<br />

- Huile de microalgue (Pettersen, 2010) : Oocystis<br />

(md)<br />

- Organohalogénés extraits de Neomeris annulata<br />

(MV) (Paul et al., 1993)


Pigment<br />

Activité enzymatique<br />

Composé incorporé dans de la<br />

glace pour une meilleure<br />

conservation des aliments<br />

Matériaux bio-sourcés<br />

- 117 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

- Terpènes extraits de Lobophora sp. (MB)<br />

(Kornprobst, 1999)<br />

- Terpènes (sester- and tri-terpènes) synthétisés<br />

par Rhizosolenia setigera (mm), ce qui est<br />

inhabituel pour une diatomée (Massé et al,<br />

2004a ; Massé et al., 2004b)<br />

- Dynophysis (mm) produit diverses toxines qui<br />

peuvent être utilisées pour des études<br />

toxicologiques, en recherche médicale ou comme<br />

standard analytique (Blunden, 2001 ; Miles et al.,<br />

2004 ; Blunt et al., 2008 ; Yih et al., 2010)<br />

- Toxines paralytiques, cytotoxines, neurotoxines<br />

et ichtyo-toxines isolées chez Gymnodinium (mm<br />

& md) (Guillou et al., 2006 ; Blunt et al., 2007)<br />

- Plusieurs toxines extraites de Prorocentrum sp<br />

(mm) (Hu et al., 1996 ; Grzebyk et al., 1997 ;<br />

Ten-Hagea et al., 2002 ; Guillou et al., 2006) dont<br />

l’acide okaïdique commercialisé par les<br />

laboratoires Merck (www.merck-chemicals.com) (ex.<br />

application en recherche médicale)<br />

- Toxines lipophiles extraites de Protoperidinium<br />

crassipers (Taleb et al., 2006)<br />

- Acide domoïque, neurotoxine synthétisée par<br />

Pseudonitzschia (mm). Ex d’applications :<br />

recherche médicale, étude toxicologique,<br />

standard analytique (Piletsky et al., 2009 ;<br />

Quilliam, 2011)<br />

- Composé ayant une activité apoptotique isolé<br />

chez Cocconeis scutellum (mm) (Nappo et al.,<br />

2009)<br />

- Coscinodiscus sp (mm) capable de synthétiser<br />

de la beta-chitine (Tsuji et al., 2009)<br />

- DMSP synthétisé et excrété par Cylindrotheca<br />

closterium (mm) (Van Bergejik et al., date inconnue)<br />

- Composé ichtyo-toxique synthétisé par<br />

Peridinium polonicum (md) (World Health<br />

Organization, 2003)<br />

- Phycoérythrine extraite de Galaxaura oblongata<br />

(MR) ou Halymenia ceylanica (MR) (Chiang et<br />

al., 2004)<br />

- Enzyme extraite de Gymnodinium sp (mm & md)<br />

dégradant spécifiquement les polysaccharides de<br />

paroi de la microalgue Porphyridium sp (Ucko et<br />

al., 1989)<br />

- Extraits d’Halymenia spp (MR), en particulier<br />

Halymenia discoidea, Halymenia durvillae ou<br />

Halymenia floresii (Pinto Pedrosa et al., 2009)<br />

- Enduit contenant des particules microalgales<br />

(McDaniel, 2005) à partir de : Ceratium sp (mm),<br />

Prorocentrum sp (mm), Cocconeis sp (mm),


5. Cosmétique<br />

- 118 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Staurastrum (md), Tetraedron (md),<br />

Trachelomonas (md), Stephanodiscus (md),<br />

Synedra (md), Peridinium (md)<br />

- Extrait polysaccharidique de Protoperidinium<br />

(mm) comme polymère réducteur de frottement<br />

pour le traitement des surfaces en contact avec<br />

eaux courantes (Jourdan & Vanlaer, 2003)<br />

- Exopolymère de Cocconeis (mm) en tant<br />

qu’agent de surface pour limiter la formation de<br />

tarte/calcaire (Perry, 2007)<br />

- Cellulose extraite de microalgues pour fixation de<br />

nicotine dans un traitement pharmaceutique (Bo<br />

et al., 2005) : Scrippsiella hexapraecingula (mm),<br />

Oocystis solitaria (md), Oocystis apiculata (md)<br />

et Peridinium (md)<br />

- Polypeptide extrait de Cylindrotheca fusiformis<br />

(mm) comme matrice d’immobilisation de<br />

biomolécules (Naik et al., 2005)<br />

- Synedra (md) comme agent stabilisant dans la<br />

fabrication de matériaux accumulateurs de<br />

calories pour la conception de panneaux<br />

photovoltaïques (Schneider et al., 1980)<br />

Application / Action Espèce(s) ou taxon(s) concerné(s)<br />

Soin anti-âge : propriété<br />

antioxydante<br />

Soin anti-âge : inhibiteur de la<br />

hyaluronidase<br />

Soin de la peau : action<br />

cicatrisante<br />

Soin de la peau : hydratation<br />

- Extrait de Lobophora variegata (MB) (Zubia et al.,<br />

2007)<br />

- Extrait de Jania corniculata (MR) (Shanab, 2007)<br />

- Extrait de Gymnodinium spp (mm & md) (Sato et<br />

al., 2007) et en particulier Gymnodinium<br />

impudicum (Niwano et al., 2008)<br />

- Extrait aqueux de Scripsiella trochoidea (mm)<br />

(Sato et al., 2007)<br />

- Extrait de Ptilophora subcostata (MR) (Kawasaki<br />

et al., 2008)<br />

- Extraits d’Halimeda opuntia (MV), en lien avec<br />

leur richesse en calcium (donnée interne CEVA)<br />

- Extrait de Jania rubens inscrit comme ingrédient<br />

à la liste INCI<br />

(http://ec.europa.eu/consumers/cosmetics/cosing/).<br />

Exemple de produits commercialisés par la<br />

société Phytomer : crème solaire protectrice et<br />

soin anti-tâche (www.phytomer.fr)<br />

- Microalgues marines utilisées pour leurs<br />

propriétés hydratantes dans des soins<br />

commercialisés par la société EUOKO<br />

(www.euoko.com) : Ceratium furca, Ceratium<br />

massiliense et Ceratium candelabrum,


Soin de la peau : protection<br />

Soin de la peau : régénération<br />

cellulaire<br />

Soin de la peau : protection UV<br />

Soin de la peau : action<br />

blanchissante<br />

Beauté : soins capillaires<br />

Beauté : minceur<br />

Beauté : déodorant<br />

Beauté : sels de bains<br />

Formulation<br />

- 119 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Asterionella sp, Guinardia flaccida, Rhizosolenia<br />

alata et Rhizosolenia shrubsolei, Thalassionema<br />

nitzschioides<br />

- Extrait d’Halymenia durvillae commercialisé sous<br />

l’appellation XCELL-30® par la société<br />

Greentech (Greentech, 2010)<br />

- Extrait de Galaxaura (MR) (Kamei et al., 2006)<br />

- Extrait de Gymnodinium catenatum (mm & md)<br />

(Llewellyn & Galley, 2002)<br />

- Extrait d’Halimeda opuntia (MV) (Shibuya et al.,<br />

2000)<br />

- Extraits d’Halymenia agardhii et Halymenia<br />

acuminata (MR) (Kawasaki et al., 2008)<br />

- Extrait d’Halymenia floresia (MR) (Kamei et al.,<br />

2000)<br />

- Extraits d’algues utilisés dans un soin pour la<br />

santé et la repousse des cheveux (Hibino et al.,<br />

2003) : Halimeda opuntia (MV), Galaxaura<br />

fastigitata (MR), Galaxaura verprecula (MR)<br />

- Extraits d’algues rouges utilisés dans un<br />

traitement pour cheveux abîmés (Hasebe &<br />

Yamada, 2005) : Galaxaura falcata,<br />

Peyssonnelia caulifera, Botryocladia leptopoda,<br />

Cryptonemia schmitziana, Dasya sessilis,<br />

Dudresnaya japonica, Amansia glomerata,<br />

Portieria hornemanii, Portieria japonica,<br />

Ptilophora subcostata<br />

- Microalgues marines utilisées pour leur action<br />

lypolitique dans des soins minceur<br />

commercialisés par la société EUOKO<br />

(www.euoko.com) : Ceratium furca, Ceratium<br />

massiliense et Ceratium candelabrum,<br />

Asterionella sp, Guinardia flaccida, Rhizosolenia<br />

alata et Rhizosolenia shrubsolei, Thalassionema<br />

nitzschioides<br />

- Caféin’Algue (Daniel Jouvance), soin anti-cellulite<br />

intensif à base d’Asterionella japonica (mm) –<br />

action lipolytique (www.danieljouvance.com)<br />

- Extrait d’Halimeda opuntia (MV) (Shibuya et al.,<br />

2000)<br />

- Extraits d’Asterionella japonica (mm) (Aubert,<br />

1980)<br />

- Extraits d’algues rouges utilisés comme additif<br />

pour des préparations cosmétiques (Kawasaki et<br />

al., 2008) : Actinotrichia fragilis, Peyssonnelia<br />

caulifera, Peyssonnelia japonica, Botryocladia<br />

leptopoda, Cryptonemia schmitziana, Dasya<br />

sessilis, Dudresnaya japonica, Amansia


6. Santé humaine<br />

- 120 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

glomerata (syn Melamansia glomerata)<br />

- Extrait de Portieria hornemanii (MR) utilisé<br />

comme humectant pour des préparations<br />

cosmétiques (Kawasaki et al., 2008)<br />

- Microalgues riches en acides gras poly-insaturés<br />

(EP2275101, 2011) : Rhodomonas (mm),<br />

Oocystis (md), Chroomonas (md), Cryptomonas<br />

(md), Peridinium (md)<br />

- Microalgues riches en lipides (He et al., 2011) :<br />

Sphaerocystis (md), Crucigenia (md)<br />

Application / Action Espèce(s) ou taxon(s) concerné(s)<br />

Action contre les pathogènes :<br />

propriété antivirale<br />

Action contre les pathogènes :<br />

propriété antibactérienne<br />

Action contre les pathogènes :<br />

propriété fongicide<br />

Action contre les pathogènes :<br />

propriété anti-parasitaire<br />

- Extrait d’Halimeda tuna (MV) (Ballesteros et al.,<br />

1992)<br />

- Extrait d’Avrainvillea rawsonii (Chen et al., 1994)<br />

- Galactanes sulfatés extraits de Cryptonemia<br />

crenulata (MR) ont une activité antivirale vis-à-vis<br />

des virus herpès HSV1 et HSV2 (Talarico et al.,<br />

2004)<br />

- Extraits d’Halimeda macrolaba et Halimeda<br />

opuntia (MV) (Trono, 2001)<br />

- Activité antimicrobienne des sesquiterpènes<br />

hydroquinones extraits de Peyssonnelia sp. (MR)<br />

(Lane et al., 2010)<br />

- Extrait de Botryocladia leptopoda (MR) (Rivzi,<br />

2004)<br />

- Extraits de Dasya scoparia (MR) (Zheng et al.,<br />

2001)<br />

- Extrait d’Asterionella notata (mm) (Zheng, 1990)<br />

- Extrait de Rhizosolenia alata (mm) (Venkatesan<br />

et al., 2007)<br />

- Extrait de Oocystis (md) (Ghasemi et al., 2007)<br />

- Extrait de Lobophora variegata (MB), Jania<br />

rubens (MR), Jania adherens (MR) et<br />

Botryocladia botryoides (MR) (Ballesteros et al.,<br />

1992)<br />

- Extraits d’Halimeda tuna, Halimeda macrolaba et<br />

Halimeda opuntia (MV) (Ballesteros et al., 1992,<br />

Trono, 2001)<br />

- Extrait de Oocystis (md) (Ghasemi et al., 2007)<br />

- Un extrait de Lobophora variegata montre une<br />

activité insecticide vis-à-vis des larves de deux<br />

espèces de moustiques (Manilal et al., 2011)<br />

ainsi qu’une activité anti-protozoaire vis-à-vis de<br />

Tripanozoma cruzi in vitro (Leon-Deniz et al.,<br />

2009 ; Cantillo-Ciau et al., 2010)


Anti-douleur<br />

Anti-inflammatoire<br />

Antioxydant<br />

Anticoagulant<br />

Hypercoagulant<br />

Anticancer et antitumoral<br />

- 121 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

- Propriété anti-parasitaire potentielle pour l’algue<br />

rouge Jania (donnée interne CEVA)<br />

- Activité anti-infectieuse vis-à-vis du parasite<br />

responsable du filariasis des extraits de<br />

Botryocladia leptopoda (MR) (Lakshmi et al.,<br />

2004)<br />

- Extrait de Dasya pedicellata (Süzgeç-Selçuk et al.,<br />

2011)<br />

- Acide domoïque extrait de Pseudonitzschia<br />

pungens (mm) utilisé comme vermifuge et<br />

insecticide en Asie (Guillou et al., 2006)<br />

- Saxitoxine extraite de Gymnodinium catenatum<br />

(mm & md) (Quilliam, 2011)<br />

- Extrait polysaccharidique de Lobophora variegata<br />

(MB) (Siqueira et al., 2011)<br />

- Lactones extraites de Pseudonitzschia pungens<br />

(mm) limiteraient la mise en place du processus<br />

inflammatoire (Guillou et al., 2006)<br />

- Extrait de Lobophora variegata (MB) (Zubia et al.,<br />

2007)<br />

- Extrait de Gymnodinium spp (mm & md) (Sato et<br />

al., 2007) et en particulier Gymnodinium<br />

impudicum (Niwano et al., 2008)<br />

- Extrait aqueux de Scripsiella trochoidea (mm)<br />

(Sato et al., 2007)<br />

- Extrait d’Halimeda discoidea (MV) (De Lara<br />

Isassi & Alvarez Hernanez, 1995)<br />

- Galactanes sulfatés extraits de Botryocladia<br />

occidentalis (MR) (WO2009137899, 2004 ;<br />

Farias et al., 2001)<br />

- Galactanes sulfatés extraits d’Halymenia<br />

durvillae (Fenoradosoa et al., 2009)<br />

- Extrait d’Amansia multifida (Smit, 2004)<br />

- Polysaccharides extraits de Coscinodiscus sp<br />

(mm) (Vournakis & Finkielsztein, 2008)<br />

- Un extrait d’Halimeda tuna (MV) montre une<br />

activité cytotoxique et antimitotique (Ballesteros<br />

et al., 1992)<br />

- Activité anti-cancer de Galaxaura marginata<br />

(MR), en lien avec la présence de desmostérols<br />

(Sheu et al., 1997)<br />

- Activité antimitotique d’un extrait de Jania<br />

adherens (MR) (Ballesteros et al., 1992)<br />

- Activité anticancer des stérols glycosides extraits<br />

de Peyssonnelia sp. (MR) (Lin et al., 2010). En<br />

particulier, activité cytotoxique et antimitotique<br />

des extraits de Peyssonnelia bornetii, P. rosamarina<br />

et P. squamaria (Ballesteros et al., 1992)


Cicatrisant<br />

Vasoconstricteur<br />

Maladies neurologiques<br />

Maladies du foie<br />

- 122 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

- Activité anticancer d’un extrait d’Amansia<br />

multifida (MR) (Lima et al., 1998)<br />

- Monoterpènes halogénés extraits de Portieria<br />

hornemanii (MR) ayant une activité antitumorale<br />

(Boyd et al., 1993 ; Rorrer & Cheney, 2004)<br />

- Pectenotoxine extraite de Dinophysis acuminata<br />

(mm) ayant un potentiel d’action anticancer (Yih<br />

et al., 2010)<br />

- Acide okaïdique extrait de Prorocentrum spp<br />

(mm) ayant une puissante activité cytotoxique<br />

contre la leucémie (Guillou et al., 2006)<br />

- Acide okaïdique extrait de Prorocentrum lima<br />

(mm) ayant une activité apoptotique (Knutsen &<br />

Hansen, 1997)<br />

- Polysaccharide extrait de Coscinodiscus sp (mm)<br />

pour le traitement des proliférations cellulaires<br />

(Vournakis et al., 2000)<br />

- Extrait méthanolique de Cylindrotheca (mm)<br />

ayant une activité antitumorale potentielle.<br />

Nécessité de poursuivre les recherches (Lu et al.,<br />

2007)<br />

- Caroténoides extraits de Peridinium bipes (md)<br />

ayant une activité anti-carcinogénique (Maoka et<br />

al., 2002)<br />

- Polysaccharides extraits de Coscinodiscus sp<br />

(mm) (Vournakis & Finkielsztein, 2008)<br />

- Zooxanthellatoxine extraite de Gymnodinium sp<br />

(mm & md) (Guillou et al., 2006)<br />

- Un extrait de Halimeda incrassata (MV) montre<br />

une activité neuroprotectrice (Fallalero Linares et<br />

al., 2004)<br />

- Extrait de Jania adherens (MR) utilisé dans le<br />

traitement de la maladie d’Alzheimer (Goto et al.,<br />

2003)<br />

- DHA extrait de Cryptomonas (md) peut servir<br />

pour le traitement des maladies ou désordres<br />

neurologiques (Kyle & Linsert, 2011)<br />

- Un extrait d’Halimeda monile (MV) a une action<br />

antioxydante utilisable dans le traitement des<br />

maladies du foie (Mancini Filho et al., 2009)<br />

Traitement de l’ulcère - Extrait de Peridinium bipes (Ishida et al., 1992)<br />

Richesse en AGPI<br />

- Microalgues riches en AGPI (EP2275101, 2011) :<br />

Rhodomonas (mm), Oocystis (md), Chroomonas<br />

(md), Cryptomonas (md), Peridinium (md)


7. Santé animale<br />

Application / Action Espèce(s) ou taxon(s) concerné(s)<br />

8. Epuration<br />

Application / Action Espèce(s) ou taxon(s) concerné(s)<br />

Absorption des nutriments<br />

Absorption / Neutralisation des<br />

polluants<br />

Diminution de la demande<br />

biologique en oxygène BOD<br />

Diminution de la charge<br />

bactérienne dans les eaux usées<br />

Gaz industriels<br />

-<br />

- 123 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

- Capacité de Thalassionema nitzschioides (mm) a<br />

utilisé l’azote et le phosphore présents en excès<br />

dans les eaux usées (Dunstan & Menzel, 1971)<br />

- Synedra ulna (md) et Peridinium spp (md)<br />

(Haerther et al., 2003)<br />

- Capacité de Galaxaura oblongata (MR) et de<br />

Jania rubens (MR) à absorber les métaux lourds<br />

en solution aqueuse (El Sayed, 2011)<br />

- Capacité de Prorocentrum micans (mm) à<br />

accumuler les métaux lourds (Zhao et al., 2001)<br />

- Accumulation des métaux lourds Cu et Zn par<br />

Trachelomonas (md) (Jackson & Bistricki, 1995)<br />

- Capacité d’Oocystis (md) à absorber les métaux<br />

lourds (Pb, Cd, Ni) en solution aqueuse (Karaca,<br />

2008)<br />

- Capacité d’Oocystis (md) à fixer l’uranium en<br />

solution aqueuse (Dunlop et al., 2005)<br />

- Capacité de Synedra ulna (md) et de Peridinium<br />

spp (md) à oxyder les contaminants indésirables<br />

(Haerther et al., 2003)<br />

- Synedra ulna (md) et Peridinium spp (md)<br />

(Haerther et al., 2003)<br />

- Extrait d’Asterionella notata (mm) (Zheng, 1990)<br />

- Microalgues ayant la capacité d’absorber les gaz<br />

à effet de serre tout en montrant une résistance<br />

aux substances toxiques qui peuvent être<br />

contenues dans les fumées industrielles (Jeong<br />

et al., 2011) : Prorocentrum (mm), Rhodomonas<br />

(mm)


- 124 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

Annexe 8 : Evaluation de la cultivabilité des algues de Mayotte, pour les espèces considérées<br />

comme moins prometteuses pour une valorisation à court terme<br />

Délai de mise<br />

en place d’une<br />

culture<br />

Court terme Jania sp<br />

Moyen terme Caulerpa mexicana<br />

Long terme<br />

Espèce ou Taxon Commentaires & Références<br />

Halimeda spp<br />

Ventricaria ventricosa<br />

Lobophora sp<br />

Actinotrichia fragilis<br />

Galaxaura obtusata<br />

Galaxaura rugosa<br />

Peyssonnelia capensis<br />

Peyssonnelia simulans<br />

Peyssonnelia sp1<br />

Botryocladia sp<br />

- Jania rubens cultivée en photobioréacteur<br />

par la société CODIF International (Moro et<br />

al., 2010)<br />

- Culture envisageable par bouturage, par<br />

analogie avec d’autres espèces de<br />

Caulerpa (ex. Caulerpa lentillifera cultivée<br />

en bassin aux Philippines, Seaplant<br />

Handbook)<br />

- Frein au développement de la culture de<br />

cette algue : croissance lente, algue<br />

calcifiée<br />

- Essai de culture de Halimeda incrassata à<br />

l’échelle laboratoire (Demes et al., 2009)<br />

- Halimeda serait cultivée par bouturage<br />

pour l’aquariophilie<br />

- Algue de la famille des Valoniaceae.<br />

Culture envisageable par analogie avec<br />

d’autres genres de la même famille :<br />

culture à l’échelle laboratoire de Valonia<br />

aegagropila pour étude écophysiologique<br />

(Laboratoire Environnement Ressources<br />

Languedoc Roussillon, 2004)<br />

- Essai de culture à l’échelle laboratoire de<br />

Lobophora variegata (Arnold et al., 1995)<br />

- « Lobophora variegata can be cultivated in<br />

coastal areas » (Manilal et al., 2011)<br />

- Frein au développement de la culture de<br />

cette algue : croissance lente, algue<br />

calcifiée<br />

- Essai de culture d’Actinotrichia fragilis à<br />

l’échelle laboratoire (West et al., 2008)<br />

- Frein au développement de la culture de<br />

cette algue : croissance lente, algue<br />

calcifiée<br />

- Essai de culture de Galaxaura oblongata à<br />

l’échelle laboratoire (Su et al., 2009)<br />

- Frein au développement de la culture de<br />

cette algue : croissance lente, algue<br />

calcifiée<br />

- Essai de culture de Peyssonnelia immersa<br />

à l’échelle laboratoire (Maggs & Irvine,<br />

1983)<br />

- Essai de culture de Botryocladia chiajeana<br />

à l’échelle laboratoire (Codomier et al.,<br />

1988)


Dudresnaya sp<br />

Halymenia durvillei<br />

Halymenia formosa<br />

Halymenia sp1<br />

Portieria harveyi<br />

Avrainvillea erecta<br />

Chlorodesmis sp<br />

Neomeris vanbosseae<br />

Rhipidosiphon sp<br />

Rhiphilia sp<br />

Udotea sp<br />

Amansia glomerata<br />

Cryptonemia undulata<br />

Dasya pilosa<br />

Gibsmithia sp<br />

Hormophora sp<br />

Ptilophora pinnatifida*<br />

- 125 -<br />

<strong>Tome</strong> 1 : Etude préliminaire<br />

- Essai de culture de Dudresnaya japonica à<br />

l’échelle laboratoire (Notoya & Aruga,<br />

1989)<br />

- Essais de culture à l’échelle laboratoire de<br />

Halymenia latifolia (Maggs & Guiry, 1982)<br />

et Halymenia dilatata (Kawaguchi &<br />

Lewmanomont, 1999)<br />

- Brevet chinois décrivant une technique de<br />

culture de Halymenia par bouturage (Hu et<br />

al., 2006)<br />

- Il existe peut-être une production marginale<br />

mais ce n’est pas une espèce cultivée à<br />

grande échelle (Seaplant Handbook)<br />

- Essais de culture par bouturage de<br />

Portieria hornemanii à l’échelle laboratoire<br />

(Rorrer & Cheney, 2004 ; Cruz-Uribe &<br />

Rorrer, 2006)<br />

- Aucune donnée disponible à ce jour<br />

* A l’état sauvage, Ptilophora pinnatifida se<br />

développe à des profondeurs très grandes et<br />

sera, de ce fait, difficile à mettre en culture

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