Diplomarbeit - GSI
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2 Methoden und Material<br />
2.1 Verwendete Zelllinien und deren Kultur<br />
2.1.1 Zelllinien<br />
In der vorliegenden Arbeit wurden verschiedene Säugerzelllinien eingesetzt:<br />
AG 1522 D<br />
Hierbei handelt es sich um humane Vorhautfibroblasten von Coriell Cell Repositories aus<br />
Camden, USA. Die Zellen wachsen als geschlossener Zellrasen und sind kontaktinhibiert.<br />
Ihre Kultur erfolgte in EMEM Medium mit EBSS (BioWhittaker, Verviers, Belgien) mit<br />
1 % L-alanyl-L-Glutamine und 15 % FCS sowie 100 U/ml Penicillin und 100 µg/ml<br />
Streptomycin (alle Biochrom AG, Berlin, Deutschland). Für Experimente wurden die Fi-<br />
broblasten entweder zwei Tage, für Immunfluoreszenz-Experimente oder zehn Tage zu-<br />
vor, mit einer Zelldichte von 25000 Zellen/cm 2 oder 12500 Zellen/cm 2 , ausgesät.<br />
ATM-defiziente Fibroblasten-Zelllinie AT1BR<br />
Bei dieser Zelllinie handelt es sich um Fibroblasten von einem Ataxia telangiectasia (AT)-<br />
Patienten. Diese Zellen sind Ataxia telangiectasia mutated (ATM)-defizient. Die homozy-<br />
gote Mutation besteht aus einer Insertion von 9 Nukleotiden im ATM-Gen. Dadurch kann<br />
kein funktionsfähiges ATM gebildet werden, da die Transkription nach 753 aa abgebro-<br />
chen wird (Stankovic et al., 1998). Die Zellen stammen von der "European Collection of<br />
Animal Cell Cultures" aus Großbritannien.<br />
Die Kultivierung fand in HAM´s Medium (Biochrom AG, Berlin, Deutschland) mit<br />
20 % FCS statt. Für Experimente wurden fünf Tage voher Zellen mit einer Dichte von<br />
22500/cm 2 ausgesät.<br />
ATM-defiziente Fibroblasten-Zelllinie AT5<br />
Diese Zelllinie stammte ebenfalls von einem AT-Patienten. Die Zellen sind ATM-defizient<br />
und zusätzlich spontan immortalisiert. Jedoch liegt eine Verunreinigung mit einer un-<br />
bekannten Zellsorte vor (siehe Abbildung 3.1). Sie wurden freundlicherweise von Nuri<br />
Gueven (Queensland Institute of Medical Research, Brisbane, Australien) zur Verfügung<br />
gestellt.<br />
Die Zellen wurden in RPMI Medium (Biochrom AG, Berlin, Deutschland) und 20 % FCS<br />
kultiviert. Für Experimente wurden sie 5 Tage zuvor mit einer Dichte von 4000 Zellen/cm 2<br />
ausgesät.<br />
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