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Isolierung und Charakterisierung von Bakterien aus ...

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Material <strong>und</strong> Methoden<br />

V.4 Anzucht <strong>und</strong> Extraktion <strong>von</strong> <strong>Bakterien</strong>kulturen<br />

V.4.1 Anzucht <strong>von</strong> <strong>Bakterien</strong> in Flüssigkulturen<br />

Zum Animpfen <strong>von</strong> Flüssigkulturen wurden die <strong>Bakterien</strong> <strong>aus</strong> der Cryobank-Sammlung<br />

aufgetaut <strong>und</strong> auf einer Agarplatte des jeweiligen Anzuchtmediums angezogen. Dar<strong>aus</strong><br />

wurden 100 ml Schüttelkulturen unter Verwendung <strong>von</strong> 300 ml Erlenmeyerkolben an-<br />

geimpft. Diese dienten nach 24 h Inkubation bei 28 °C <strong>und</strong> 125 rpm zum Animpfen der<br />

Großansätze. Großansätze wurden, wenn nicht anders beschrieben, für 1 Woche bei<br />

28 °C <strong>und</strong> 125 rpm inkubiert.<br />

V.4.2 Extraktion <strong>von</strong> Kulturansätzen in 100 ml <strong>und</strong> 200 ml Maßstab<br />

Um einen ersten Überblick über die biologische Aktivität <strong>und</strong> produzierten Metabolite<br />

zu bekommen, wurden 304 Isolate in 100 ml bzw. 200 ml Kulturansätzen angeimpft.<br />

Die Anzucht der Isolate erfolgte in dem jeweiligen Wachstumsmedium (TM, GYM30).<br />

Eine genaue Übersicht der Medien <strong>und</strong> Isolate findet sich im Anhang.<br />

Die Extraktion der Zellen <strong>und</strong> des Kulturüberstandes erfolgte zusammen. Die Kultur<br />

wurde im Verhältnis 1:1 mit Ethylacetat aufgefüllt <strong>und</strong> mit dem Ultra-Turax T25 (mind.<br />

30 s lang/13000 Umdrehungen) homogenisiert. Das Homogenisat wurde in einen<br />

Scheidetrichter überführt <strong>und</strong> gut durchgemischt. Die wässrige Phase wurde verworfen<br />

<strong>und</strong> die Lösungsmittel-Phase (Extraktphase) mit 50 ml Milli-Q Wasser gewaschen, um<br />

Zellbestandteile zu entfernen. Anschließend wurde die Ethylacetat-Phase in einen<br />

R<strong>und</strong>kolben überführt <strong>und</strong> mittels des Rotationsverdampfers getrocknet.<br />

Der getrockneten Extrakt wurde in 1 ml 100 % Methanol aufgenommen, durch einen<br />

0,2 µm Filter filtriert, in HPLC-Vials überführt <strong>und</strong> bis zu weiteren Analyse bei -20 °C<br />

gelagert.<br />

V.4.3 Extraktion <strong>von</strong> Kulturansätzen in 5 L <strong>und</strong> 10 L Maßstab<br />

Bei Isolaten, die ein interessantes Metabolitmuster aufwiesen, wurden Kulturen <strong>von</strong> 5<br />

oder 10 Litern angezogen. Dieses erfolgte bei Bacillus subtilis subsp. spizizenii (gtP20b)<br />

in GYM30, TSB, SGCY <strong>und</strong> Hafermehlmedium, bei Streptomyces sp. (C42) in CN<br />

Medium <strong>und</strong> bei Bacillus amyloliquefaciens (gtH22, gtH2, gtH1, M2, C4, C5, B45,<br />

D21a, gtK5 <strong>und</strong> gtI11) in TM <strong>und</strong> GYM30 Medium.<br />

Die Zellen <strong>und</strong> der Kulturüberstand wurden separat extrahiert. Dabei stellte sich her<strong>aus</strong>,<br />

dass sich die Sek<strong>und</strong>ärmetabolite, bei allen untersuchten Stämmen, in größerer Menge<br />

immer in den Zellen befanden. Deshalb wurden nur noch die Zellen weiterbearbeitet<br />

<strong>und</strong> der Überstand verworfen.<br />

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