17.12.2012 Aufrufe

Isolierung und Charakterisierung von Bakterien aus ...

Isolierung und Charakterisierung von Bakterien aus ...

Isolierung und Charakterisierung von Bakterien aus ...

MEHR ANZEIGEN
WENIGER ANZEIGEN

Erfolgreiche ePaper selbst erstellen

Machen Sie aus Ihren PDF Publikationen ein blätterbares Flipbook mit unserer einzigartigen Google optimierten e-Paper Software.

Material <strong>und</strong> Methoden<br />

Die Zellen wurden zuerst abzentrifugiert <strong>und</strong> das Frischgewicht bestimmt. Das Zellpel-<br />

let wurde mit 100 % Methanol versetzt, mit dem Ultra Turax homogenisiert <strong>und</strong> unter<br />

gelegentlichem Schütteln für 2 h bei 22 °C stehen gelassen. So wurde gewährleistet,<br />

dass möglichst viele Metabolite <strong>aus</strong> den Zellen in das Lösungsmittel Methanol überge-<br />

hen. Danach wurde die Suspension bei 10000 rpm für 13 min abzentrifugiert <strong>und</strong> der<br />

Überstand durch einen Faltenfilter filtriert. Der Extrakt wurde in einen vorher leer ge-<br />

wogenen R<strong>und</strong>kolben aufgefangen <strong>und</strong> mit dem Rotationsverdampfer einrotiert. Nach<br />

dem vollständigen Entfernen des Methanols wurde der R<strong>und</strong>kolben erneut gewogen, um<br />

die Menge des getrockneten Extraktes zu ermitteln. Dieser wurde in 5-10 ml 100 %<br />

Methanol aufgenommen, im Ultraschallbad behandelt <strong>und</strong> die Suspension erneut zentri-<br />

fugiert (10 min bei 10000 rpm), um sämtliche Zellbestandteile zu entfernen. Der Über-<br />

stand wurde in einem kleinen Spitzkolben (das Leergewicht wurde vorher bestimmt)<br />

einrotiert <strong>und</strong> der trockene Kolben erneut gewogen. Der trockene Extrakt wurde in 2 ml<br />

100 % MeOH in einem Eppendorfgefäß aufgenommen <strong>und</strong> abzentrifugiert. In dem Ep-<br />

pendorfgefäß blieb das Fett zurück, welches ebenfalls gewogen wurde <strong>und</strong> zur Berech-<br />

nung des Gewichtes des Rohextraktes mit einbezogen wurde. Der Überstand wurde in<br />

HPLC-Vials überführt <strong>und</strong> bis zur weiteren Analyse bei -20 °C gelagert.<br />

V.5 Aktivitätstests<br />

Um <strong>aus</strong> den 348 <strong>Bakterien</strong>-Isolaten die Auswahl einzugrenzen, wurden die Wirkungen<br />

<strong>von</strong> 304 Rohextrakten gegen <strong>aus</strong>gewählte Testorganismen untersucht. Reinsubstanzen<br />

wurden erweiterten Bioaktivitätstests wie den Enzymassay <strong>und</strong> den cytotoxischen Tes-<br />

tungen unterzogen.<br />

V.5.1 Antimikrobielle Aktivität<br />

Die Bioaktivitätstests wurden nach Lang et al. 2007 modifiziert (Lang et al., 2007). In<br />

den Tests wurde die Hemmung der Extrakte auf das Wachstum <strong>von</strong> verschiedenen Mik-<br />

roorganismen getestet. Es wurden sowohl prokaryotische als auch eukaryotische Mik-<br />

roorganismen in den Testsystemen verwendet:<br />

Prokaryotische Testorganismen:<br />

nicht-pathogene Mikroorganismen<br />

Bacillus subtilis (DSM 347): Häufiges Gram-positives Bakterium.<br />

Staphylococcus lentus (DSM 6672): Gram-positives Bakterium.<br />

32

Hurra! Ihre Datei wurde hochgeladen und ist bereit für die Veröffentlichung.

Erfolgreich gespeichert!

Leider ist etwas schief gelaufen!