Эффективное животноводство» № 4 (179) август 2022

МС ФФЕКТИВНОЕ
ИВОТНОВОДСТВО
1№ 9 декабрь
ЭФФЕКТИВНОЕ
ЖИВОТНОВОДСТВО
61
(алиментарный путь наиболее частый, но редко
бывает и аэрогенный путь передачи) [3].
Патогенез: Попадая оральным путём, вирус проникает
в лимфоидные клетки железистого желудка
и двенадцатиперстной кишки, а далее в общий
кровоток. Основными клетками-мишенями являются
гемоцитобласты костного мозга и лимфобласты
коркового слоя тимуса – именно они поражаются
в первую очередь (максимум пораженных клеток
можно наблюдать на 6-7 день после заражения).
Также вирус может быть обнаружен в почках, легких,
печени, прямой кишке [4].
Клинические признаки: Инкубационный период
длится в среднем от 10 до 14 дней. У больной птицы
отмечается депрессия, снижения массы тела, отказ
от корма, анемия гребешка и сережек, анемия
видимых слизистых оболочек, дерматиты на крыльях,
также симптоматика может отличаться при
добавлении вторичной бактериальной инфекции.
При гематологическом исследование крови можно
заметить снижение гематокрита (ниже 27% при
норме 29-35%) сама кровь водянистая, время свертывания
увеличено, а плазма бледнее обычного [5].
Патологоанатомические изменения: Наиболее
характерно при вскрытии видна атрофия тимуса и
костного мозга, также у костного мозга из-за перерождения
может изменяться цвет от жёлтого до
серого. У части птиц уменьшается бурса, а также
иногда можно заметить кровоизлияния на слизистой
оболочке железистого желудка и мышцах [6].
Гистологические изменения: В костном мозге мы
можем наблюдать атрофию и аплазию всех клеток,
кроветворные клетки замещаются жировой тканью,
иногда отмечается некроз остаточных клеток. Сильное
лимфоидное истощение наблюдается в тимусе,
бурсе, селезенке, лимфоидной ткани кишечника и
др. В тимусе также атрофируется корковое и мозговое
вещество [6].
Диагноз: Ставят комплексно с учётом эпизоотологических
данных; клинических признаков; патологоанатомических
изменений и лабораторной диагностики
(реакция нейтрализации – РН; полимеразная
цепная реакция – ПЦР; метод флюоресцирующих
антител – МФА; иммуноферментный анализ – ИФА;
электронная микроскопия).
Дифференциальный диагноз: ИАЦ следует дифференцировать
от болезни Марека; инфекционной
бурсальной болезни; различных аденовирусов и
реовирусов; интоксикации сульфаниламидами и
микотоксинами.
Лечение: Специфические методы лечения отсутствуют.
Для подавления вторичной бактериальной
инфекции применяют антибиотики широкого спектра
действия.
Профилактика: Для эффективной профилактики
ИАЦ должны быть приняты надлежащие меры биобезопасности,
такие как дезинфекция помещений,
где содержатся куры, кормушек, различного оборудования
для кормления, а также поддержание
хорошей вентиляции. Следует использовать эффективные
системы по удалению помёта. Посторонние
лица не должны допускаться на территорию
производства, а работникам следует ходить в
чистой сменной одежде и обуви. Также необходимо
проводить дезинсекцию и дератизацию для
предотвращения распространения механической
передачи инфекции.
Вакцинация: Для специфической профилактики
применяют следующие вакцины:
1. «АвиПро Тимовак» – Вакцина против инфекционной
анемии цыплят живая сухая. Профилактика
и предотвращение инфекционной анемии цыплят
на племенных и коммерческих яичных хозяйствах.
Состав: гомогенат тушек СПФ-эмбрионов кур,
инфицированных вирусом инфекционной анемии
цыплят (ИАЦ, штамм «Cux-1»).
Порядок применения: вакцина предназначена
для однократного применения методом выпаивания
с питьевой водой. Вакцинация домашней птицы
проводится с 8-недельного возраста.
2. «Nobilis® CAV P4» – Живая сухая вакцина
против вирусной анемии цыплят с растворителем.
Состав: каждая доза вакцины содержит не менее,
чем 3,0 lg ТЦД 50 вируса инфекционной анемии цыплят,
штамм «26Р4».
Лекарственная форма: вакцина представляет
собой однородную сухую пористую массу бледно-розового
цвета.
Способ введения: для подкожного и внутримышечного
введения.
3. «СЕВАК CIRCOMUNE» – живая аттенуированная
вакцина для профилактики инфекционной
анемии цыплят.
Состав: СЕВАК CIRCOMUNE содержит в жидкой
форме аттенуированный вирус инфекционной анемии
цыплят, штамм «Del Rose».
Показания: для активной иммунизации здоровых
цыплят ремонтного молодняка и родительского
стада кур против инфекционной анемии цыплят.
Вакцинированные куры передают материнские
антитела потомству, которые защищают цыплят
от инфекционной анемии цыплят.
Способ применения и дозы: вакцину применяют
цыплятам однократно в возрасте 9-12 недель методом
прокола перепонки крыла. Цыплятам одну дозу
вакцины вводят методом прокола перепонки крыла
специальным двух игольным аппликатором. Вакцина
должна быть использована в течение одного часа.
Заключение. Инфекционная анемия цыплят является
иммунодепрессивной инфекционной болезнью,
которая причиняет существенные экономические
убытки. Связано это с нарушением роста кур, снижением
количества и качества продукции получаемой
от кур, высокой конверсией корма, падежом, а также
с иммуносупрессией, которая провоцирует рост
вторичной бактериальной микрофлоры. Для того,
чтобы предотвратить эпизоотию и экономический
ущерб, необходимо строго придерживаться всех
правил санитарии и содержания птиц, соблюдать
программу вакцинаций, а также пристально следить
за поголовьем кур, чтобы вовремя заметить первые
признаки инфекционного процесса и оперативно
купировать зарождающийся очаг болезни.
Исследование выполнено за счет гранта Российского
научного фонда № 22-26-20084, https://
rscf.ru/project/22-26-20084/.
ЛИТЕРАТУРА
1. Джавадов Э.Д. Вирусные болезни птицы: диагностика и
профилактика / Э.Д. Джавадов // Наше сельское хозяйство.
Ветеринария и животноводство. – 2015. – №10. – С. 28-31.
2. Джавадов Э.Д. К вопросу об инфекционной анемии цыплят /
Э.Д. Джавадов //Современные вопросы ветеринарной медицины
и биологии: материалы первой научной конференции,
Уфа, 21-22 ноября 2000. – С. 133-135.
3. Алиев А.С. Вирусная анемия – скрытая угроза промышленному
птицеводству / А.С. Алиев [и др.] // Птица и птицепродукты. –
2012. – №6. – С. 30-33.
4. Li Y., Yan N., Wang Y., Liu A., Liu C., Lan X., Wang X. Molecular
evolution and pathogenic of chicken anemia virus isolates in China /
Y. Li [et all] // Archives of Virology. – 2021. – 166(2). – P. 439-449.
5. Huynh L.T.M., Nguyen G.V., Do L.D., Dao T.D., Le T.V., Vu N.T.,
& Cao P.T.B. Chicken infectious anemia virus infections in chickens
in northern Vietnam: epidemiological features and genetic
characterization of the causative agent / L.T. Huynh [et all] // Avian
Pathology. – 2019. – №3. – P. 1-40.
6. Джавадов Э.Д. Инфекционная патология в промышленном
птицеводстве: реалии и перспективы / Э.Д. Джавадов [и др.]
// Ветеринария и кормление. – 2016. – №2. – С. 24-27.