«Эффективное животноводство» № 3 (178) июль 2022
«Эффективное животноводство» № 3 (178) июль 2022
«Эффективное животноводство» № 3 (178) июль 2022
Create successful ePaper yourself
Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.
ГЕНЕРАЛЬНЫЙ
ЭФФЕКТИВНОЕ
ПАРТНЕР ВЫПУСКА
ЖИВОТНОВОДСТВО 91
У доноров, проходящих повторный цикл OPU,
терапия MSC может быть эффективной стратегией
для уменьшения пагубного воздействия
воспаления и последующего фиброза на функцию
яичников. Показано, что терапия стволовыми
клетками улучшает функцию яичников на моделях
лабораторных животных, у которых искусственно
индуцировалось бесплодие [6].
Тем не менее, клиническое применение у крупных
сельскохозяйственных животных все еще
обсуждается [7].
Материал и методы исследований. Научно-хозяйственный
опыт проводили в осенний период
2021 года на базе АО «Ваганово» (Кемеровская
обл., Промышленновский р-н).
Поголовье крупного рогатого скота в хозяйстве
составляет 2105 голов голштинской породы, из
которых коров – 1168 голов. Средний годовой
надой на корову 10603 кг.
Опыт проходил в один этап. Было сформировано
по принципу аналогов две группы коров (опытная и
аналоговая) по 5 голов 2-4 лактации. Подопытные
животные представлены голштинcкой породой скота
120-270 дней после отела со средним годовым
надоем 12000-13374 кг молока. Животные находились
в одинаковых привязных условиях содержания.
Исследования проводили на коровах донорах
in vitro, подобранных по принципу аналогов с
учетом физиологического состояния, возраста,
живой массы, уровня продуктивности. Данных
животных подвергли 8 кратной серии OPU с интервалом
7 дней с последующей морфологической
оценкой качества полученных ооцитов,
визуальной оценки регенерации тканей яичников
под контролем ультразвукового исследования.
Четырёхкратному биохимическому исследованию
крови, иммуноферментному анализу
на концентрацию гормона щитовидной железы
Тироксина (Т4).
Оценку гематологических и гормональных
показателей проводили 4-кратно перед началом,
после 5 дневной серии инъекций BOVISTEM, через
один и два – месяца после начала опыта. Морфологическую
оценку качества ооцитов проводили
четырехкратно, перед началом опыта и далее
каждую неделю в течение двух месяцев.
В ходе исследования было установлено, что
применение препарата BOVISTEM коровам – донорам
голштинской породы в восьмикратной серии
OPU in vitro позволяет повысить число качественных
ооцитов на 24,8% не прибегая к гормональному
протоколу обработки доноров in vitro уже ко второй
серии аспираций, за счет улучшения метаболических
процессов в организме, которые отражены в
картине морфологических и биохимических показателей
крови. Уже ко второй серии повысился уровень
каротина с 23,9 мкМ/л до 43.7 мкМ/л на 45,4%
при норме 32,5 мкМ/л, уровень йода с 11,7 мкМ/л до
31,4 мкМ/л на 62,7% при норме 32,5 мкМ/л. Применение
препарата BOVISTEM также положительно
отразилось на состоянии щитовидной железы
повышением концентрации уровня Тироксина в
сыворотки крови до физиологической нормы с 31,9
нМ/л при норме 40-50 нМ/л до 43,8 нМ/л на 27,1%.
Опытным животным препарат BOVISTEM вводился
5 дневной серией по 5 мл согласно схеме
опыта (табл. 1).
Результаты и обсуждение. В эксперименте
лечение MSC благоприятно повлияло на качество
фолликулогенеза, на что указывают данные, приведенные
в (таблице 2).
Таблица 1.
Схема опыта.
Группа Кол-во Особенности
Опыт на коровах донорах in vitro
Контроль 5 Опыт 5
День 1.
Биохимическое исследование крови № 1.
Визуальная оценка тканей яичников под контролем
ультразвукового исследования перед началом
OPU № 1. Морфологическая оценка качества ооцитов
после OPU № 1. Иммуноферментный анализ на
концентрацию Т4 №1.
День 2.
Внутримышечная инъекция BoviStem 5 мл № 1.
День 3.
Внутримышечная инъекция BoviStem 5 мл № 2.
День 4.
Внутримышечная инъекция BoviStem 5 мл № 3.
День 5.
Внутримышечная инъекция BoviStem 5 мл № 4.
День 6.
Внутримышечная инъекция BoviStem 5 мл № 5.
День 7.
Биохимическое исследование крови № 2.
Иммуноферментный анализ на концентрацию Т4 №1.
День 8.
Визуальная оценка тканей яичников под контролем
ультразвукового исследования перед началом
OPU № 2. Морфологическая оценка качества ооцитов
после OPU № 2.
День 15.
Визуальная оценка тканей яичников под контролем
ультразвукового исследования перед началом
OPU № 3. Морфологическая оценка качества ооцитов
после OPU № 3.
День 22.
Визуальная оценка тканей яичников под контролем
ультразвукового исследования перед началом
OPU № 4. Морфологическая оценка качества ооцитов
после OPU № 4.
День 29.
Биохимическое исследование крови № 3.
Иммуноферментный анализ на концентрацию Т4 №3.
Визуальная оценка тканей яичников под контролем
ультразвукового исследования перед началом
OPU № 5. Морфологическая оценка качества ооцитов
после OPU № 5.
День 36.
Визуальная оценка тканей яичников под контролем
ультразвукового исследования перед началом
OPU № 6. Морфологическая оценка качества ооцитов
после OPU № 6.
День 43.
Визуальная оценка тканей яичников под контролем
ультразвукового исследования перед началом
OPU № 7. Морфологическая оценка качества ооцитов
после OPU № 7.
День 50.
Биохимическое исследование крови № 4.
Иммуноферментный анализ на концентрацию Т4
№ 4. Визуальная оценка тканей яичников под
контролем ультразвукового исследования перед
началом OPU № 3. Морфологическая оценка
качества ооцитов после OPU № 3.
День 57.
Визуальная оценка тканей яичников под контролем
ультразвукового исследования на 7 дней после
OPU № 8.