9. Schlussfolgerung und Ausblick 87 zeigte ebenfalls eine negative Korrelation mit Pflanzen-N. Hoher Faser- und niedriger N-Gehalt im Futter führten zu einem Anstieg des Pilzanteils im Kot. Der Zusammen- hang zwischen pflanzlicher N-Aufnahme und <strong>mikrobielle</strong>n Parametern im Kot war größer als mit denen im Boden. Die angewandten Methoden eignen sich deshalb für die Analyse <strong>von</strong> Fütterungseffekten auf <strong>mikrobielle</strong> Parameter in <strong>Rinderkot</strong> sowie deren Verhalten im Boden. Das Forschungsprojekt sollte mit 15 N- and 13 C-markiertem Kot fortgesetzt zu werden, um die genauen Nährstoffquellen für Mikroorganismen und Pflanzen herauszufinden (Sørensen and Jensen, 1998; Jensen et al., 1999; Bosshard et al, 2011; Wachendorf and Joergensen, 2011). Die luminometrische Bestimmung des ATP-Gehaltes bleibt viel versprechend. Durch Vorinkubation der Extrakte nach Enzymzugabe wurde inzwischen eine Messwertstabilität erreicht, die nur noch geringe Abweichungen zeigt. Die Methode sollte mit dem letzten Versuchsansatz nach Redmile-Gordon (2011) und mit in Stickstoff konservierten Proben fortgesetzt werden. Für weitere Versuche mit <strong>Rinderkot</strong> ist außerdem eine Konservierung in Flüssigstickstoff ratsam.
10. Literatur 88 10. Literatur Amelung, W., 2001. Methods using amino sugars as markers for microbial residues in soil. In: Lal, J.M., Follett, R.F., Stewart, B.A. (Eds.), Assessment Methods for Soil Carbon. Lewis Publishers, Boca Raton, pp. 233-272. Amelung, W., Brodowski, S., Sandhage-Hofmann, A., Bol, R., 2008. Combining biomarker with stable isotope analyses for assessing the transformation and turnover of soil organic matter. Advance in Agronomy 100, 155-250. Anderson, J.P.E., Domsch, K.H., 1978. A physiological method for quantitative measurement of microbial biomass in soils. Soil Biol. Biochem. 10, 519-525 Appuhn, A., Joergensen, R.G., Raubuch, M., Scheller, E., Wilke, B., 2004. The automated determination of glucosamine, galactosamine, muramic acid and mannosamine in soil and root hydrolysates by HPLC. J Plant Nutr Soil Sci 167, 17- 21. Bosshard, C., Oberson, A., Leinweber, P., Jandl, G., Knicker, H., Wettstein, H.-R., Kreuzer, M., Frossard, E., 2011. Characterization of fecal nitrogen forms produced by a sheep fed with 15 N labeled ryegrass. Nutr. Cycl. Agroecosyst. 90, 355-368. Brookes, P.C., Landman, A., Pruden, G., Jenkinson, D.S., 1985. Chloroform fumigation and the release of soil nitrogen: A rapid direct extraction method for measuring microbial biomass nitrogen in soil. Soil Biol. Biochem. 17, 837-842 Brookes, P.C., Newcombe, A.D., Jenkinson, D.S., 1987. Adenylate energy charge measurements in soil. Soil Biol. Biochem. 19, 211-217. Van Bruchem, J., Verstegen, M. W., Tamminga, S. 2000. From nutrient fluxes in animals in nutrient dynamics and health in animal production systems. EAAP-Publ. 97, 28-48. Diez-Gonzales, F., Callaway, T. R., Kizoulis M. G., Russel J., B., 1998. Grain feeding and the dissemination of acid-resistant Escherichia coli from cattle. Science 281, 1666-1669. Djajakirana, G., Joergensen, R., Meyer, B., 1996. Ergosterol and microbial biomass relationship in soil. Biol. Fertil. Soils 22, 299–304. Dyckmans, J., Raubuch, M., 1997. A modification of a method to determine adenosine nucleotides in forest organic layers and mineral soils by ion-paired reversed-phase high-performance liquid chromatography. J. Microbiol. Methods 30, 13-20.