Die Mikrobielle Brennstoffzelle in Theorie und Praxis
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6.3. Membranen<br />
<strong>Die</strong> <strong>Mikrobielle</strong> <strong>Brennstoffzelle</strong> <strong>in</strong> <strong>Theorie</strong> <strong>und</strong> <strong>Praxis</strong><br />
Bei den Versuchen am 5. März 08 mit der Agar-Agar-Zelle (Abb. 19) <strong>und</strong> am 14. mit der<br />
Serienschaltung von zwei MFCs mit der Haut e<strong>in</strong>er Schwe<strong>in</strong>sblase als Membran, zwei Zellen<br />
mit e<strong>in</strong>er Cellophan-Folie als Membran <strong>und</strong> e<strong>in</strong>er Zelle mit der Nafion-Membran (Abb. 21)<br />
konnte ich feststellen, dass die Diffusionsvorgänge bei den Zellen mit der Haut e<strong>in</strong>er<br />
Schwe<strong>in</strong>sblase als Membran <strong>und</strong> der Nafion-Membran am ger<strong>in</strong>gsten waren. Deshalb<br />
verwendete ich nach dieser Versuchsreihe ausschließlich diese beiden Membranmaterialien.<br />
6.4. Konzentrationen<br />
Abbildung 21: Serienschaltung der oben beschriebenen Zellen<br />
<strong>Die</strong> meisten Konzentrationen konnte ich aus den Angaben von Bennetto <strong>und</strong> der Beschreibung<br />
für die Zelle im Low-Cost-Verfahren übernehmen:<br />
Somit arbeitete ich mit folgenden Konzentrationen:<br />
• Kaliumhexacyanoferrat(III): 0,02 molar<br />
• Traubenzuckerlösung: 1 molar (= 9g auf 50 ml)<br />
• Hefe–Suspension: 25ml H2O + 25ml Puffer ph=7 + 3g Germ (Dr.Oetker)<br />
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