Die Mikrobielle Brennstoffzelle in Theorie und Praxis
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<strong>Die</strong> <strong>Mikrobielle</strong> <strong>Brennstoffzelle</strong> <strong>in</strong> <strong>Theorie</strong> <strong>und</strong> <strong>Praxis</strong><br />
Protokoll 10: 60-M<strong>in</strong>uten-Messung nach Fütterung,<br />
am 20.6.08<br />
Nach Beendigung der 24-St<strong>und</strong>en-Messung fügte ich 1ml Glucoselösung zur Anode h<strong>in</strong>zu <strong>und</strong><br />
führte von 15:15 bis 16:15 e<strong>in</strong>e 60-M<strong>in</strong>uten-Messung durch, um festzustellen, wie die Zelle auf<br />
die Fütterung reagierte.<br />
Abbildung 64: 60-m<strong>in</strong>-Messung der beschriebenen Zelle nach der Fütterung<br />
Obwohl die Spannung aufgr<strong>und</strong> der Fütterung sichtlich wieder anstieg, half die Zugabe von<br />
Glucose nicht viel, da die endgültig erreichte Spannung um 16:45 lediglich bei 0,24V lag. <strong>Die</strong>s<br />
entsprach dem Punkt, ab dem die Spannung bei der 24-St<strong>und</strong>en-Messung rasch zu s<strong>in</strong>ken<br />
begonnen hatte.<br />
Protokoll 11: Pufferung der Kathode, am 25.6.08<br />
Bei dem Versuch, ob die Zellen stabiler s<strong>in</strong>d, wenn man den Pluspol puffert, wie es Bennetto<br />
beschreibt, fügte ich zur Kaliumhexacyanoferrat-Lösung 1g Puffersalze pH=7 h<strong>in</strong>zu <strong>und</strong> befüllte<br />
vier Zellen wie folgt.<br />
Zellen Nr. Inhalt Konzentration Menge<br />
Pluspol: Kaliumhexacyanoferrat 0,02 molar + Puffer (pH=7) 12ml<br />
Membran: Haut e<strong>in</strong>er Schwe<strong>in</strong>sblase / Nafion<br />
1-4<br />
M<strong>in</strong>uspol:<br />
Traubenzuckerlösung<br />
Hefe-Suspension<br />
1 molar (9g auf 50ml)<br />
25ml H2O + 25ml Puffer pH=7<br />
+ 3g Germ<br />
4ml<br />
4ml<br />
Methylenblau 5 mmolar (0,16g auf 100ml) 4ml<br />
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