pep-2 - Lehrstuhl für Ernährungsphysiologie - TUM

Inhaltsverzeichnis
1Einleitung...................................................................................................................................5
1.1 Allgemeines zum in vivo-Modell Caenorhabditis elegans .................................................. 5
1.2 Auswirkung des pep-2 Knockouts auf ausgewählte Signaltransduktionswege (TOR,
DAF-2/Insulin/IGF) ............................................................................................................. 7
1.2.1 Das C. elegans Gen pep-2 ................................................................................................. 7
1.2.2 TOR (target of rapamycin)-Signaltransduktionsweg ........................................................ 8
1.2.3 DAF-2/Insulin/IGF-Signaltransduktionsweg .................................................................. 10
1.2.4 Zusammenhang zwischen Aminosäuremetabolismus, TOR-Signaltransduktionsweg
und DAF-2/Insulin/IGF-Signaltransduktionsweg ........................................................... 12
1.3 Hintergrundinformationen zu den untersuchten Genen...................................................... 14
1.3.1 Allgemeiner Hintergrund ................................................................................................. 14
1.3.2 Heteromere Aminosäuretransporter in C. elegans und deren Säugetierhomologe ........ 16
1.3.2.1 Das LAT1 System ........................................................................................................ 18
1.3.2.2 Der Vertreter des y + L Systems: y + LAT2 ...................................................................... 18
1.3.2.3 Der Vertreter des asc Systems: ASC1 .......................................................................... 19
1.3.2.4 Das x - c System .............................................................................................................. 20
1.3.2.5 Der Aminosäuretransporter AAT-1 .............................................................................. 20
1.3.2.6 Der Aminosäuretransporter AAT-3 .............................................................................. 21
1.3.2.7 Der Aminosäuretransporter AAT-9 .............................................................................. 21
1.3.3 Lysosomale Aminosäuretransporterhomologe ................................................................ 22
1.3.4 GCS-1 (γ-Glutamyl-Cystein Synthetase) ........................................................................ 23
1.3.5 NHX-2 ............................................................................................................................. 25
1.4 Zielsetzung ......................................................................................................................... 25
2 Material und Methoden..........................................................................................................27
2.1 Material ............................................................................................................................... 27
2.1.1 Chemikalien ..................................................................................................................... 27
2.1.2 Zusammensetzung der Medien, Medienzusätze, Versuchspuffer und Arbeitslösungen . 28
2.1.3 Geräte............................................................................................................................... 31
2.1.4 Informationen zu den untersuchten C. elegans Stämmen ............................................... 32
2.1.4.1 N2 Bristol ..................................................................................................................... 32
2.1.4.2 BR2742 ......................................................................................................................... 32
2.1.4.3 BR2688 ......................................................................................................................... 32
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