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HerdChek* BSE-Scrapie Antigen BOVINE SPONGIFORM ... - Defra

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Protocolli per l’esame<br />

Procedura del test<br />

Protocollo<br />

Breve<br />

Protocollo<br />

Ultra-Breve<br />

Protocollo milza/<br />

linfonodi di piccoli<br />

ruminanti<br />

Passaggio<br />

1<br />

2<br />

3<br />

4<br />

5<br />

6<br />

7<br />

8<br />

9<br />

10<br />

11<br />

Attività<br />

Aggiunta del<br />

campione<br />

alla piastra di<br />

diluizione<br />

Aggiunta del<br />

campione alla<br />

piastra di cattura<br />

dell’antigene<br />

Incubazione<br />

della piastra di<br />

cattura<br />

Lavare con<br />

soluzione 1 di<br />

lavaggio 1X<br />

Conditioner:<br />

Aggiunta/<br />

Incubazione<br />

Lavare con<br />

soluzione 2 di<br />

lavaggio 1X<br />

Aggiunta del<br />

coniugato<br />

Incubazione del<br />

coniugato<br />

Lavare con<br />

soluzione 2 di<br />

lavaggio 1X<br />

Aggiunta/<br />

Incubazione del<br />

substrato<br />

Aggiunta della<br />

soluzione di<br />

arresto/Lettura<br />

della piastra<br />

18–26°C<br />

Tutti i passaggi<br />

32–37°C 1 : Solo<br />

per l’incubazione<br />

(passaggi 3, 5, 8, 10)<br />

18–26°C: Tutti gli altri<br />

passaggi, inclusi i<br />

passaggi di lavaggio<br />

Tessuto cerebrale: 120 μl di campione con<br />

30 μl di diluente per piastra da lavoro.<br />

18–26°C<br />

Tutti i passaggi<br />

Linfonodi e milza:<br />

100 μl di campione<br />

con 50 μl di diluente<br />

per piastra da lavoro.<br />

MESCOLARE BENE: consultare il capitolo “Diluizione di un<br />

campione in un diluente per piastra da lavoro”.<br />

Pipettare 100 µl di campione diluito sulla piastra per l’esame;<br />

mescolare i controlli, aggiungere 100 µl in duplicato; coprire la<br />

piastra con un coperchio per piastre.<br />

45–60 minuti;<br />

agitare lentamente a<br />

200 ±100 rpm<br />

20–25 minuti;<br />

agitare lentamente<br />

a 200±100 rpm<br />

2–3 ore fermo<br />

Lavare i pozzetti 6 volte con ~350 µl di soluzione 1<br />

di lavaggio 1X<br />

Aggiungere 100 µl di tampone di condizionamento a ciascun<br />

pozzetto; coprire la piastra; incubare per 10 ±1 minuti.<br />

Lavare i pozzetti 3 volte con ~350 µl di soluzione 2<br />

di lavaggio 1X.<br />

Aggiungere 100 µl di coniugato diluito (per tessuto cerebrale<br />

bovino e linfonodi /milza di piccoli ruminanti usare CC; per tessuto<br />

cerebrale di piccoli ruminanti usare SRBCC) e coprire la piastra con<br />

l’apposito coperchio.<br />

45–50 minuti 25–30 minuti 60–75 minuti<br />

Lavare i pozzetti 5 volte con ~350 µl di soluzione 2<br />

di lavaggio 1X<br />

Aggiungere 100 µl di substrato a ciascun pozzetto;<br />

coprire la piastra; incubare per 15 ±1 minuti. Evitare l’esposizione<br />

diretta alla luce.<br />

(non usare coperture adesive)<br />

Aggiungere 100 µl di soluzione di arresto acido; la piastra può<br />

essere tenuta fino ad un massimo di 30 minuti al buio prima della<br />

lettura della densità ottica (450 nm) con una lunghezza d’onda di<br />

riferimento di (A REF<br />

) 620 nm–650 nm.<br />

1. L’incubazione a 32–37 °C viene eseguita posizionando la piastra di analisi in un incubatore preriscaldato a 32–37°C<br />

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