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HerdChek* BSE-Scrapie Antigen BOVINE SPONGIFORM ... - Defra

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Amostragem de Tecidos e Preparação<br />

A. Tecido Cerebral (Bovinos e Pequenos<br />

Ruminantes)<br />

1. Amostragem e testes de laboratório deve seguir<br />

o regulamento (CE) n º 999/2001, anexo X,<br />

capítulo C, que se refere em termos de coleta<br />

de amostras para a última edição do Manual de<br />

Normas para Testes de Diagnóstico e Vacinas do<br />

Instituto Internacional de doenças e Epizootias<br />

(OIE) afirmando: “A amostra preferida para<br />

imunoensaio deverá ser o, ou mais próximo<br />

possível do obex, mas não mais do que 1,5 cm<br />

anterior ao obex”. Recolher 0,30 g (±0,05 g) de<br />

tecido nervoso do lado esquerdo ou direito do<br />

tronco cerebral ao nível do óbex (sempre que<br />

possível) com instrumentos de dissecção, e<br />

pesando a amostra em balança de precisão para<br />

garantir a quantidade correcta. Em alternativa,<br />

o dispositivo de colheita de amostras IDEXX pode ser utilizado para colheita de óbex<br />

de bovinos, conforme descrito no Apêndice. O pessoal que realiza a colheita o óbex<br />

deve ter formação sobre o método de amostragem.<br />

A figura à direita indica a área correcta de amostragem.<br />

Área de<br />

amostra (óbex)<br />

Cérebro<br />

Medula espinhal<br />

Figura 1. Tronco cerebral bovino.<br />

© British Crown Copyright (Fevereiro<br />

2005), reproduzido com a autorização<br />

e cortesia da Agência de Laboratórios<br />

Veterinários.<br />

NOTA: Após a colheita de amostras, uma hemissecção completa do tronco cerebral<br />

com uma região intacta do óbex e cerebelo (se incluído) deve continuar disponível<br />

para testes de confirmação.<br />

2. Colocar o tecido num tubo de ruptura de tecidos e fechar bem. Os tubos são<br />

fornecidos com rebordos de cerâmica e tampão.<br />

3. Quatro dispositivos de ruptura de tecidos foram validados para utilizar com o IDEXX<br />

EEB-<strong>Scrapie</strong> EIA. Disponha os tubos no instrumento e proceda à disrupção, conforme<br />

indicado para o instrumento aplicável. Se a trituração for insuficiente, repita um ciclo.<br />

• Programa do instrumento FastPrep*: Triturar as amostras durante 40 segundos à<br />

velocidade máxima (6,5 m/s). Se for necessário um segundo ciclo, o instrumento deve<br />

arrefecer durante 5 a 10 minutos entre ciclos.<br />

• Programa para os intrumentos Precess 48*, Precess 24* and Precellys 24*: Triture as<br />

amostras 2 vezes por 20 a 25 segundos a 650nm, com 5 segundos de intervalo entre os<br />

ciclos.<br />

4. Os homogeneizados (frescos ou descongelados) podem ser conservados à 18–26°C<br />

até 4 horas antes de iniciar o ensaio.<br />

O número de amostras a serem preparadas numa única sessão é flexível. Os<br />

homogeneizados podem ser conservados até 24 horas a 2–8°C ou mantidos a<br />

≤-20°C até 6 meses. Os homogeneizados congelados devem ser descongelados e<br />

completamente misturados por inversão antes da utilização. As amostras de tecidos<br />

podem ser conservadas a -80°C.<br />

B. Gânglio Linfático ou Tecido Esplénico (Pequenos Ruminantes)<br />

1. Recolher 0,30 g (±0,05 g) de tecido do nódulo linfático ou tecido esplénico. No caso<br />

dos nódulos linfáticos, o tecido deve ser preparado para amostra de forma a maximizar<br />

a presença de células centro germinais. Cortar o tecido em 8–10 pequenas partes.<br />

2. Proceder com o processamento e armazenamento da amostra, conforme descrito para<br />

o tecido cerebral.<br />

NOTA: Linfonodo ou tecido do baço não podem ser utilizados no contexto da amostragem<br />

oficial e testes no âmbito do Regulamento (CE) n º 999/2001.<br />

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