HerdChek* BSE-Scrapie Antigen BOVINE SPONGIFORM ... - Defra
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Amostragem de Tecidos e Preparação<br />
A. Tecido Cerebral (Bovinos e Pequenos<br />
Ruminantes)<br />
1. Amostragem e testes de laboratório deve seguir<br />
o regulamento (CE) n º 999/2001, anexo X,<br />
capítulo C, que se refere em termos de coleta<br />
de amostras para a última edição do Manual de<br />
Normas para Testes de Diagnóstico e Vacinas do<br />
Instituto Internacional de doenças e Epizootias<br />
(OIE) afirmando: “A amostra preferida para<br />
imunoensaio deverá ser o, ou mais próximo<br />
possível do obex, mas não mais do que 1,5 cm<br />
anterior ao obex”. Recolher 0,30 g (±0,05 g) de<br />
tecido nervoso do lado esquerdo ou direito do<br />
tronco cerebral ao nível do óbex (sempre que<br />
possível) com instrumentos de dissecção, e<br />
pesando a amostra em balança de precisão para<br />
garantir a quantidade correcta. Em alternativa,<br />
o dispositivo de colheita de amostras IDEXX pode ser utilizado para colheita de óbex<br />
de bovinos, conforme descrito no Apêndice. O pessoal que realiza a colheita o óbex<br />
deve ter formação sobre o método de amostragem.<br />
A figura à direita indica a área correcta de amostragem.<br />
Área de<br />
amostra (óbex)<br />
Cérebro<br />
Medula espinhal<br />
Figura 1. Tronco cerebral bovino.<br />
© British Crown Copyright (Fevereiro<br />
2005), reproduzido com a autorização<br />
e cortesia da Agência de Laboratórios<br />
Veterinários.<br />
NOTA: Após a colheita de amostras, uma hemissecção completa do tronco cerebral<br />
com uma região intacta do óbex e cerebelo (se incluído) deve continuar disponível<br />
para testes de confirmação.<br />
2. Colocar o tecido num tubo de ruptura de tecidos e fechar bem. Os tubos são<br />
fornecidos com rebordos de cerâmica e tampão.<br />
3. Quatro dispositivos de ruptura de tecidos foram validados para utilizar com o IDEXX<br />
EEB-<strong>Scrapie</strong> EIA. Disponha os tubos no instrumento e proceda à disrupção, conforme<br />
indicado para o instrumento aplicável. Se a trituração for insuficiente, repita um ciclo.<br />
• Programa do instrumento FastPrep*: Triturar as amostras durante 40 segundos à<br />
velocidade máxima (6,5 m/s). Se for necessário um segundo ciclo, o instrumento deve<br />
arrefecer durante 5 a 10 minutos entre ciclos.<br />
• Programa para os intrumentos Precess 48*, Precess 24* and Precellys 24*: Triture as<br />
amostras 2 vezes por 20 a 25 segundos a 650nm, com 5 segundos de intervalo entre os<br />
ciclos.<br />
4. Os homogeneizados (frescos ou descongelados) podem ser conservados à 18–26°C<br />
até 4 horas antes de iniciar o ensaio.<br />
O número de amostras a serem preparadas numa única sessão é flexível. Os<br />
homogeneizados podem ser conservados até 24 horas a 2–8°C ou mantidos a<br />
≤-20°C até 6 meses. Os homogeneizados congelados devem ser descongelados e<br />
completamente misturados por inversão antes da utilização. As amostras de tecidos<br />
podem ser conservadas a -80°C.<br />
B. Gânglio Linfático ou Tecido Esplénico (Pequenos Ruminantes)<br />
1. Recolher 0,30 g (±0,05 g) de tecido do nódulo linfático ou tecido esplénico. No caso<br />
dos nódulos linfáticos, o tecido deve ser preparado para amostra de forma a maximizar<br />
a presença de células centro germinais. Cortar o tecido em 8–10 pequenas partes.<br />
2. Proceder com o processamento e armazenamento da amostra, conforme descrito para<br />
o tecido cerebral.<br />
NOTA: Linfonodo ou tecido do baço não podem ser utilizados no contexto da amostragem<br />
oficial e testes no âmbito do Regulamento (CE) n º 999/2001.<br />
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