14 ed Revista Completa
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Trabalho em laboratório<br />
O estudo iniciou-se no começo de 2017, com a coleta<br />
de reprodutores adultos de marisco branco na praia<br />
do Mar Grosso no município de São José do Norte, Rio<br />
Grande do Sul (2°3’10”S 51°59’26”O), onde foram armazenados<br />
e transportados ao LMM/UFSC. A partir disso,<br />
os organismos passaram por processos de aclimatação<br />
e condicionamento em laboratório, visando manter<br />
e ou maturar as gônadas para fins reprodutivos, informações<br />
estas até então desconhecidos para esta espécie.<br />
Esta etapa foi realizada com baldes contendo areia,<br />
temperatura controlada, fluxo contínuo de água e mix<br />
de microalgas para alimentação dos animais (Figura 3).<br />
Figura 3. Estruturas de condicionamento e aclimatação de<br />
reprodutores de marisco branco em laboratório. © Juan Jethro<br />
Silva Santos<br />
Acompanhou-se todo o desenvolvimento embrionário<br />
e larval nesta pesquisa, observando alterações<br />
morfológicas e biométricas, como: divisões celulares e<br />
metamorfoses para larvas trocóforas (Figura 5A), assim<br />
como, m<strong>ed</strong>idas de altura e comprimento, com registros<br />
de imagens ao longo deste período. Desta maneira foi<br />
possível descrever as alterações embrionárias até o estágio<br />
de larva véliger D (Figura 5B), e posteriormente,<br />
com observações estruturais diárias até as larvas estarem<br />
prontas para o assentamento, caracterizando as larvas<br />
p<strong>ed</strong>ivéligers (Figura 5C), finalizando esta primeira larvicultura<br />
desta espécie em 27 dias.<br />
Figura 5. Larva trocófoca (A), larva véliger D (B) e larvas<br />
umbonadas de M. mactroides. © Juan Jethro Silva Santos<br />
A<br />
B<br />
C<br />
Após o período de aclimatação, tentou-se realizar a<br />
desova por meio de indução por temperatura e a técnica<br />
de overnight, no entanto, foi possível apenas pela<br />
técnica de stripping (Helm et al.,2004) (Figura 4). Posteriormente<br />
a larvicultura seguiu-se utilizando adaptações<br />
aos manejos padrões já estabelecidos pelo LMM,<br />
para larvicultura de outras espécies comerciais (exóticas<br />
e nativas), como: Crassostrea gigas, Crassostrea gasar,<br />
Perna perna e Nodipecten Nodosus, com ajustes no sistema<br />
de aeração e alimentação, por exemplo, devido a<br />
falta de informações para o M. mactroides.<br />
Figura 4. Espécimes de M. mactroides maduros, pós<br />
condicionamento e aclimatação, utilizados para desova pela<br />
técnica de “stripping”. Seta indicando o tecido gonadal da<br />
espécie.© Juan Jethro Silva Santos<br />
Larvicultura<br />
A partir deste estudo inicial, foram realizados experimentos<br />
visando o efeito de diferentes variáveis, como:<br />
temperatura, salinidade e dieta, na larvicultura do marisco<br />
branco. Com estas informações tornou-se possível<br />
o estabelecimento dos pontos ótimos de cada variável<br />
analisada para o desenvolvimento embrionário e larval,<br />
contribuindo para o melhor assentamento e desenvolvimento<br />
de sementes desta espécie em laboratório. As sementes,<br />
pós assentamento, foram colocadas em sistemas<br />
adaptados (cilindros e cestos com areia) de downwelling<br />
em laboratório (Figura 6), recebendo alimentação diária<br />
de microalgas, demonstrando adaptação e crescimento<br />
positivos no período de 5 meses que permaneceram<br />
nestas estruturas (Figura 7).<br />
Atualmente estudos estão sendo desenvolvidos com<br />
as sementes proveniente destas etapas de produção, no<br />
qual, foram transportadas e alocadas em estruturas adaptadas<br />
no mar. Processo este que pode diminuir o custo<br />
de produção de manter as sementes em laboratório, visto<br />
que, a produção de microalgas é onerosa e trabalhosa,<br />
podendo custar cerca de 30% da produção de sementes<br />
de bivalves (Rivero-Rodriguez et al., 2007).<br />
SET/OUT 2018<br />
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