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29 News & Confuse · Treffen<br />
Metagenomanalysen. Hierunter versteht man<br />
die Herstellung und Analyse von Umwelt-Genbibliotheken.<br />
Der weitaus größte Teil der Bakterienspezies<br />
eines Habitats entzieht sich einer<br />
systematischen Analyse, da die Bakterien nicht in<br />
Reinkultur angezogen werden können. Mittels<br />
direkter Extraktion der DNA aus Umweltproben<br />
und ihrer Klonierung in Wirtsstämmen wie zum<br />
Beispiel Escherichia coli gelingt es, Umwelt-Genbibliotheken<br />
zu erstellen, die anschließend im<br />
Hochdurchsatzverfahren auf interessante Aktivitäten<br />
hin überprüft werden können.<br />
Das Würzburger Netzwerk «Pathogenomik»<br />
berichtete über den Stand der Genomanalysen<br />
an pathogenen Bakterien (siehe Tabelle). Durch<br />
Vergleich der Genomsequenzen pathogener und<br />
eng verwandter apathogener Bakterien wird die<br />
Identifizierung neuer Pathogenitäts-spezifischer<br />
Gene erwartet. Auf der Grundlage des Verständnisses<br />
der komplexen Regulation von Pathogenitätsgenen<br />
und der Aufklärung ihrer Funktion<br />
können neue diagnostische Werkzeuge entwickelt<br />
und neue Therapieansätze entworfen<br />
werden. Angegliedert an das Würzburger Netzwerk<br />
ist das Netzwerk Stuttgart, das sich mit der<br />
Entwicklung von diagnostischen DNA-Mikroarrays<br />
für klinische Routineuntersuchungen beschäftigt.<br />
Ziel ist es, DNA Mikroarrays herzustellen,<br />
mit denen pathogene Bakterien rasch auf<br />
Speziesebene identifiziert werden können.<br />
Daneben soll mit Hilfe von Microarray-Analysen<br />
auch das Antibiotika-Resistenzspektrum pathogener<br />
Keime ermittelt werden, um so rasch eine<br />
effektive Therapie einleiten zu können.<br />
Teil der Bielefelder Tagung war auch eine Podiumsdiskussion,<br />
an der Prof. Bärbel Friedrich<br />
(Humboldt-Universität Berlin und Vizepräsidentin<br />
der DFG), Prof. Michael Hecker (Universität<br />
Greifswald) und Dr. Frank Laplace (BMBF, Bonn)<br />
sowie die drei Netzwerkkoordinatoren teilnahmen.<br />
Dabei wurde auch die neuartige Förderstruktur<br />
hervorgehoben, die das BMBF mit der<br />
Einrichtung von Netzwerken verfolgt. Die Verankerung<br />
von Kompetenzzentren an Universitäten<br />
wurde übereinstimmend als zukunftsweisend<br />
angesehen, da die damit verbundene Etablierung<br />
von Spitzenforschung auch die Qualität der<br />
universitären Lehre positiv beeinflusse. Als überaus<br />
wichtiges Gebiet für die zukünftige Entwicklung<br />
der GenoMik Netzwerke wurde der Bioinformatiksektor<br />
genannt.<br />
Informationen zu den Netzwerken:<br />
Prof. Dr. W. Goebel<br />
Universität Würzburg,<br />
Lehrstuhl für Mikrobiologie<br />
Biozentrum, Am Hubland,<br />
D-97074 Würzburg<br />
Tel:0931-888-4400 Fax: 0931-888-4402<br />
goebel@biozentrum.uni-wuerzburg.de<br />
Prof. Dr. G. Gottschalk<br />
Georg-August-Universität Göttingen,<br />
Institut für Mikrobiologie und Genetik<br />
Grisebachstr. 8, D-37077 Göttingen<br />
Tel.: 0551-39-3781, Fax: 0551-39-3808<br />
ggottsc@gwdg.de<br />
Prof. Dr. A. Pühler<br />
Universität Bielefeld, Lehrstuhl für Genetik, Postfach<br />
100 131, D-33501 Bielefeld<br />
Tel.: 0521-106-5607, Fax: 0521-106-5626<br />
puehler@genetik.uni-bielefeld.de<br />
Prof. Dr. R.D. Schmid<br />
Universität Stuttgart,<br />
Institut für Technische Biochemie<br />
Allmandring 31 D-70569 Stuttgart<br />
Tel.:0711-685-3192, Fax: 0711-685-3196<br />
Rolf.D.Schmid@rus.uni-stuttgart.de<br />
Bakterium Genomgröße Status des Genomprojekts<br />
(in Mb)<br />
Netzwerk Bielefeld<br />
Alcanivorax borkumensis 3,1 Finishing-/Polishingphase(*)<br />
Azoarcus sp. 4,5 Finishing-/Polishingphase<br />
Clavibacter michiganensis<br />
subsp. michiganensis 3,4 Shotgunphase(§)<br />
Sorangium cellulosum 12,0 Shotgunphase<br />
Xanthomonas campestris<br />
pv. vesicatoria 5,4 Finishing-/Polishingphase<br />
Netzwerk Göttingen<br />
Bacillus amyloliquefaciens 4,0 Finishing-/Polishingphase<br />
Bacillus licheniformis 3,9 Shotgunphase<br />
Gluconobacter oxydans 3,5 Finishing-/Polishingphase<br />
Picrophilus torridus 1,6 abgeschlossen<br />
Ralstonia eutropha 7,8 Shotgunphase<br />
Netzwerk Würzburg<br />
Bordetella petrii (apathogen) 5,2 Annotationsphase(#)<br />
Listeria ivanovii (pathogen) 3,0 Annotationsphase<br />
Listeria welshimeri (apathogen) 2,7 Annotationsphase<br />
Neisseria meningitidis 2,2 Annotationsphase (2 Genome)<br />
(6 pathogene Isolate) Finishing-/Polishingphase (4 Genome)<br />
Staphylococcus carnosus (apathogen) 2,4<br />
abgeschlossen<br />
Streptococcus mitis (apathogen) 1,9 abgeschlossen<br />
Streptococcus pyogenes (pathogen) 1,9 abgeschlossen<br />
Tabelle: Gegenwärtiger Stand der Genomprojekte<br />
der drei GenoMik Kompetenznetzwerke<br />
(§)Shotgunphase: Sequenzierung von kurzen genomischen<br />
DNA-Fragmenten im Hochdurchsatzverfahren<br />
(*)Finishing-/Polishingphase: Schließen noch vorhandener<br />
Lücken in der Genomsequenz/Verbesserung der<br />
Sequenzqualität in unsicheren Bereichen<br />
(#)Annotation: Zuweisung von Funktionsvorschlägen<br />
für Gene