Biochemiepraktikum
Biochemiepraktikum
Biochemiepraktikum
Sie wollen auch ein ePaper? Erhöhen Sie die Reichweite Ihrer Titel.
YUMPU macht aus Druck-PDFs automatisch weboptimierte ePaper, die Google liebt.
8<br />
Biochemie Praktikum: Proteinchemie<br />
I. Homogenisierung<br />
Die Schweineherzen werden von Fettgewebe, Haut und Sehnen befreit und in kleine<br />
Stückchen zerteilt.<br />
Zum Homogenisieren der Herzen wird zuerst Wasser und Eis (jeweils etwa gleiches Volumen<br />
wie zerkleinerte Herzen) im Mixer homogenisiert. Danach wird das Herz in kleinen Portionen<br />
zugegeben und auf höchster Stufe gemixt (max. je 1 min am Stück). Das homogenisierte Herz<br />
wird auf Zentrifugenbecher verteilt, tariert und bei 8000 U / min und 4°C 15 min lang<br />
abzentrifugiert. Der Überstand wird über Glaswolle von Fett und Zellfragmenten in eine<br />
gekühlte Vorlage abfiltriert. Mit dem Filtrat wird weitergearbeitet:<br />
Bestimmung von Gesamtvolumen, Proteinkonz., Volumenakt., spez. Akt. und Gesamtaktivität.<br />
1 ml Probe für SDS-Versuch in beschriftetes Eppi füllen und auf Eis lagern.<br />
II.<br />
Adsorption an Diethylaminoethyl(DEAE)-Cellulose und nachfolgende<br />
Desorption<br />
Unter Kühlung werden Portionsweise unter Rühren 20 g DEAE-Cellulose zum Filtrat<br />
gegeben. Nach Zugabe wird noch ca. 5 Minuten weitergerührt und zum vollständigen Binden<br />
mind. 45 Minuten inkubiert. Danach wird die Suspension abgenutscht und mit wenig dest.<br />
Wasser (10 ml) gewaschen.<br />
Das Filtrat wird einem Aktivitätstest und einer Volumenbestimmung unterzogen. Falls die<br />
Gesamtaktivität des Filtrats 5 % der Gesamtaktivität nach der Homogenisierung übersteigt,<br />
muss zum Filtrat weitere DEAE-Cellulose (4 g) zum Binden der verbliebenen LDH<br />
zugegeben werden. Diese Schritte werden solange wiederholt, bis das Filtrat eine<br />
Gesamtaktivität kleiner gleich 5 % der Gesamtaktivität nach der Homogenisierung erreicht<br />
hat.<br />
Die Cellulose wird mit 50 ml gekühltem 30 mM Phosphatpuffer pH 7.2 gewaschen, um<br />
schwach gebundene Proteine zu entfernen.<br />
Zur Desorption wird die Cellulose in einem Becherglas unter Kühlung mit 80 ml<br />
eisgekühltem 250 mM Phosphatpuffer pH 7.2 versetzt und unter intensivem Rühren<br />
aufgeschlämmt. Diese Aufschlämmung wird abgenutscht (Filter vorher anfeuchten, notfalls<br />
mehrmals wechseln) und mit wenig Puffer gespült.<br />
Das Filtrat wird einem Aktivitätstest unterzogen. Falls die bestimmte Gesamtaktivität unter<br />
70 % der Gesamtaktivität nach der Homogenisierung liegt, muss ein weiteres Mal mit 40 ml<br />
gekühltem 250 mM Phosphatpuffer pH 7.2 desorbiert werden.<br />
Bestimmung von Gesamtvolumen, Proteinkonz., Volumenakt., spez. Akt. und Gesamtaktivität.<br />
1 ml Probe für SDS-Versuch in beschriftetes Eppi füllen und auf Eis lagern.