Experimentelle Untersuchungen zur Transgenese bei Nutztieren

esistent gegen die bovine spongiforme Enzephalitis (BSE) sein, erste Ergebnisse aus in vitro
Versuchen scheinen diese Resistenz zu bestätigen (Richt et al., 2007). BSE-resistente Rinder
sind insbesondere für das Pharming von Interesse, da hier alle Produktionsschritte nach Good
Manufacturing Practices (GMP) durchgeführt werden müssen, und Freiheit von möglichen
Pathogenen gewährleistet sein muss.
Bisher sind keine transgenen Tiere für die landwirtschaftliche Produktion zugelassen.
Mittlerweile werden transgene Zierfische kommerziell in den USA, Hong Kong, Taiwan und
Malaysia gehandelt (Niemann und Kues, 2007). Bei den Medaka (Oryzias latipes) und
Zebrabärblingen (Danio rerio) werden verschiedene fluoreszente Proteine im Muskelgewebe
exprimiert (Chou et al., 2003; Gong et al., 2003), die die Eigenfärbung der Fische
überstrahlen. Ein Bericht der Food and Drug Administration der USA (FDA, 2003) stellte
fest, dass diese transgenen Fische unbedenklich sind. Die transgenen Zierfische können
möglicherweise zu einer veränderten Einstellung der Öffenlichkeit gegenüber gentechnisch
veränderten Tieren beitragen.
2.6 Neuere Methoden der Transgenese
2.6.1 Klonen durch somatischen Kerntransfer
1997 wurde erstmals das erfolgreiche Klonen eines Säugers über den Kerntransfer einer
somatischen Zelle in eine entkernte Oozyte beschrieben (Wilmut et al., 1997). Damit wurde
gezeigt, dass somatische Zellen grundsätzlich reprogrammierbar sind und nach
Reprogrammierung eine komplette Ontogenese durchlaufen können. In der Folge wurde das
somatische Klonen zu einer Schlüsseltechnik für die Grundlagenforschung, um Prozesse der
Reprogrammierung, der Pluripotenz und der zellulären Differenzierung untersuchen zu
können. Daneben wird das Klonen von genetisch wertvollen Tieren durch somatischen
Kerntransfer mittlerweile kommerziell angeboten (Panarace et al., 2006).
Ein weiterer wichtiger Aspekt ist, dass über das Klonen auch transgene Ansätze ermöglicht
wurden, die zuvor im Nutztier nicht verfügbar waren (Cibelli et al., 1998). So können in der
Maus über etablierte ES-Zellen Gene knock-out-Mutanten erhalten werden. Für Nutztiere sind
bis heute keine echten ES-Zellen isoliert worden, und die klassische Knock-out-Technik ist
daher nicht verfügbar. Mit dem somatischen Klonen eröffnet sich die Möglichkeit, zunächst
einen Gene knock-out in primären somatischen Zellen durchzuführen (Schnieke et al., 1997;
Dai et al., 2002; Lai et al., 2002), und vorselektionierte Zellen mit Knock-out dann als
Kernspenderzellen einzusetzen (Kolber-Simonds et al., 2004; Abb. 4).
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