Evaluación de la inmunogenicidad y la capacidad protectora de la ...
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Materiales y métodossecar al aire en cámara oscura y se le aplicó glicerina fosfatada. La lectura fue realizada enun microscopio <strong>de</strong> fluorescencia Leitz mo<strong>de</strong>lo Dialux con un ocu<strong>la</strong>r <strong>de</strong> 20 X. Se contaron30 parásitos por área <strong>de</strong> reacción y se consi<strong>de</strong>ró fluorescencia alta (+++) cuando más <strong>de</strong> 70% <strong>de</strong> los parásitos estaban marcados, fluorescencia media (++) cuando entre 40 y 70 % <strong>de</strong>los parásitos fluorescían, baja cuando entre 10 y 40 % (+) mostraban reacción y noreconocimiento cuando menos <strong>de</strong> 10 % fluorescían.3.5.2 Reconocimiento molecu<strong>la</strong>r por inmunotransferencia.La electroforesis (SDS-PAGE) fue realizada según el procedimiento <strong>de</strong> Laemmli(Laemmli, 1970) <strong>de</strong>scrito en el acápite 3.3.2. Las proteinasas <strong>de</strong> 60 (donada por el DrGarber, Hospital <strong>de</strong> Ottawa, Canadá), 62 kDa (purificada en nuestro <strong>la</strong>boratorio), cada unaa <strong>la</strong> comcentraciòn <strong>de</strong> 1 mg/mL, y <strong>la</strong> mezc<strong>la</strong> <strong>de</strong> proteínas patrones, en un rango <strong>de</strong> pesomolecu<strong>la</strong>r entre 53 y 212 kDa (Pharmacia LKB Biotecnology, Suecia), fueron mezc<strong>la</strong>doscon el tampón muestra y aplicados sobre dos geles <strong>de</strong> poliacri<strong>la</strong>mida. Una vez finalizada <strong>la</strong>corrida, uno <strong>de</strong> los geles fue teñido con azul <strong>de</strong> Coomassie 0,25 % disuelto en una mezc<strong>la</strong><strong>de</strong> metanol-ácido acético- agua (5:1:5), durante 30 minutos y <strong>de</strong>colorado posteriormente enesta mezc<strong>la</strong>. El otro gel fue <strong>la</strong>vado durante 15 minutos a temperatura ambiente y enagitación constante con una solución compuesta por Tris 0,025 mol/L-glicina 0,1 mol/Lmetanol20 % pH 8,3. Posteriormente, este último, fue colocado en un equipo <strong>de</strong>inmunotransferencia (LKB 2117- 250 Novablot electroforetic transfer kit, Suecia) y elpatrón electroforético fue transferido a una membrana <strong>de</strong> nitrocelulosa <strong>de</strong> 0,2 m según elprocedimiento <strong>de</strong>scrito por Tsang y co<strong>la</strong>boradores (Tsang et al, 1986).Una vez concluida <strong>la</strong> transferencia, <strong>la</strong> membrana <strong>de</strong> nitrocelulosa fue <strong>la</strong>vada con TFSdurante 10 minutos y luego sumergida durante una hora a temperatura ambiente en unasolución al 5 % <strong>de</strong> leche <strong>de</strong>scremada disuelta en TFS. Posteriormente, <strong>la</strong> nitrocelulosa fuecortada en tiras <strong>la</strong>s cuales se sumergieron en una solución <strong>de</strong> 500 g/mL <strong>de</strong> cada AcM antiproteinasa<strong>de</strong> 62 kDa y se incubaron toda <strong>la</strong> noche a 4 º C con agitación constante. Luego <strong>de</strong>tres <strong>la</strong>vados <strong>de</strong> 10 minutos cada uno con TFS-T, <strong>la</strong>s tiras se incubaron durante 2 horas a50