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Evaluación de la inmunogenicidad y la capacidad protectora de la ...

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Materiales y métodossolución <strong>de</strong> BSA en TFS al 2,5 %, por una hora a 37 o C. Luego <strong>de</strong> eliminada <strong>la</strong> solución <strong>de</strong>bloqueo, se añadió <strong>la</strong> proteinasa purificada a una concentración <strong>de</strong> 5 g/mL <strong>la</strong> cual seincubó por una hora a 37 o C. Al finalizar <strong>la</strong> incubación, se realizaron seis <strong>la</strong>vados con TFS-T y se añadieron los conjugados AcMs anti-proteinasa marcados con peroxidasa a <strong>la</strong>dilución <strong>de</strong> 1/1000 preparados en TFS-T. Para el AcM anti P-30 como recubrimiento seutilizó como conjugado una mezc<strong>la</strong> <strong>de</strong> los AcMs anti-proteinasa. Después <strong>de</strong> una hora <strong>de</strong>incubación a 37 o C y <strong>de</strong> seis <strong>la</strong>vados con TFS-T se adicionó el sustrato (ver <strong>de</strong>talles en e<strong>la</strong>cápite 3.4.1.2) con el cual se incubó por 15 minutos en <strong>la</strong> oscuridad. La reacción fue<strong>de</strong>tenida con ácido sulfúrico al 12,5% y <strong>la</strong> absorbancia obtenida se leyó a 492 nm.3.9.3 I<strong>de</strong>ntificación <strong>de</strong> <strong>la</strong>s molécu<strong>la</strong>s reconocidas por los anticuerpos monoclonales enlos antígenos <strong>de</strong> secreción <strong>de</strong> T. vaginalis.Para i<strong>de</strong>ntificar los componentes polipeptídicos que reconocen los AcMs en los antígenos<strong>de</strong> secreción <strong>de</strong> T. vaginalis, se utilizó una combinación <strong>de</strong> electroforesis en gel <strong>de</strong>poliacri<strong>la</strong>mida e inmunotransferencia. El procedimiento seguido fue <strong>de</strong>scrito en el acápite3.3.2 y 3.5.2. Se utilizó una mezc<strong>la</strong> <strong>de</strong> proteínas patrones en un rango entre 53 y 212 kDa(Pharmacia LKB Biotecnology, Suecia).3.9.4 Determinación <strong>de</strong>l efecto que producen los tratamientos con calor, químicos yenzimáticos en los antígenos purificados.3.9.4.1 Purificación <strong>de</strong> los antígenos por cromatografía <strong>de</strong> afinidad.Se procedió a purificar los antígenos <strong>de</strong> secreción <strong>de</strong> T. vaginalis reconocidos por uno <strong>de</strong>los AcM anti- T. vaginalis empleando para ello <strong>la</strong> cromatografía <strong>de</strong> afinidad. Dos gramos<strong>de</strong> Sefarosa 4B activada con bromuro <strong>de</strong> cianógeno fueron hidratados con HCl 1 mmol/L,según <strong>la</strong>s recomendaciones <strong>de</strong>l fabricante (Amersham-Biosciences, EE UU), antes <strong>de</strong>proce<strong>de</strong>r al acop<strong>la</strong>miento covalente <strong>de</strong>l AcM a <strong>la</strong> matriz, en una proporción <strong>de</strong> 3-4 mg <strong>de</strong><strong>la</strong>nticuerpo por mililitro <strong>de</strong> gel. Luego <strong>de</strong>l acop<strong>la</strong>miento y <strong>de</strong> bloquearse los sitios libres, seprocedió a eliminar el anticuerpo que no quedó acop<strong>la</strong>do a <strong>la</strong> matriz y a equilibrar <strong>la</strong>58

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