Revista Newslab Edição 161

VIROLOGIA
O diagnóstico laboratorial padrão é a reação
em cadeia da polimerase-transcriptase
reversa (RT-PCR) por meio da coleta de
amostras como líquido amniótico, sangue e
tecidos (cérebro, fígado, baço, rim, pulmão
e coração). Os testes sorológicos para detectar
IgM ou IgG específica contra o vírus
Zika são ELISA, Imunofluorescência e teste
de neutralização por redução de placas
(PRNT). Entretanto, recomenda-se a coleta
de material até cinco dias após a infecção
(período de viremia) e pode haver reatividade
cruzada com outros flavivírus (Simões
& Barth, 2016). Por meio de testes de PRNT,
do inglês plaque-reduction neutralization
test, foram realizados ensaios de neutralização
viral para avaliar o potencial de
infectividade em neutralizar o vírus Zika a
partir de amostras de soro de primatas que
receberam ou não os anticorpos monoclonais
(Magnani et al., 2017).
Tem sido pesquisado um fármaco com
atividade anti-ZIKV como a droga anti-helmíntica
Nitazoxanida aprovada pela Food
and Drug Administration (FDA) e classificada
como categoria B para administração em
gestantes. Em uma coorte de 75 milhões de
adultos e crianças o fármaco apresentou,
após comercialização, extensa seguridade.
Pesquisadores implementaram o cultivo in
vitro de células primárias de placenta humana
para avaliação da infecção pelo ZIKV
e terapia antiviral. Inicialmente, foi avaliado
o efeito antiviral do fármaco Nitazoxanida
em cultura de células coriônicas infectadas
pelo ZIKV. Além disso, foi investigado o
efeito antiviral de partículas infecciosas por
ensaios de plaque e redução de cópias de
RNA viral por RT-qPCR (reação em cadeia
da polimerase em tempo real-transcriptase
reversa). Como resultado da pesquisa,
a droga Nitazoxanida foi capaz de inibir a
liberação de partículas infecciosas no sobrenadante
das culturas tratadas em baixas
concentrações. Entretanto, apesar do estudo
ser preliminar, o efeito antiviral do fármaco
parece ser eficiente quando realizado
em explantes da membrana fetal, uma vez
que é o microambiente tecidual que melhor
se assemelha as condições no organismo
vivo (Souza et al., 2019). Diversas vacinas
estão em desenvolvimento incluindo partículas
de vírus inativo purificado, vacina
de vírus vivo atenuado, vacina quimérica,
vetores virais e partículas semelhantes a
vírus (VLPs).
Chikungunya
O vírus foi isolado pela primeira vez na
Tanzânia. No dialeto Makonde, a doença
recebeu o nome proveniente do termo
verbal kungunyala que significa “aqueles
que se dobram ou se contorcem” devido a
fortes dores nas articulações e dores musculares.
Refere-se à aparência curvada dos
pacientes que foram atendidos na primeira
epidemia documentada, na Tanzânia,
localizada no leste da África, entre 1952 e
1953 (Barth & Simões, 2019).
Em 2004 foram registrados surtos no
Quênia. Em 2005 casos foram documentados
na Indonésia, Taiwan, Singapura,
Malásia, Sri Lanka, Ilhas Maldivas, Comores,
Mayotte, Seychelles, Maurício. No ano
seguinte, em 2006, houve a propagação
da epidemia do Oceano Índico à Índia e
casos na Itália, Guiana Francesa e EUA. Um
ano mais tarde, em 2007 foi registrada a
introdução do vírus no Norte da Itália após
o vírus ter sido detectado em viajante recém-chegado
da Índia. Em 2010, o vírus
circulante infectou mais de 1,39 milhões
de pessoas por meio de casos importados
trazidos de viajantes da Indonésia, Índia e
Sudoeste Asiático afetando Taiwan, França,
EUA e Brasil. Em agosto do mesmo ano
(2010), foram registrados os primeiros casos
em São Paulo de dois homens 41 e 55
anos, respectivamente, e uma mulher de
25 anos após uma viagem à Indonésia que
apresentaram sintomas da febre Chikungunya.
Em 2013, foram registrados novos
casos nas Ilhas do Caribe. Em junho de
2014 novos casos foram confirmados em
militares após retornarem de uma missão
no Haiti. Em outubro de 2014, foram
confirmados ao total 337 casos no Brasil
sendo 274 na cidade Feira de Santana, na
Bahia. Novos casos foram registrados nos
EUA de viajantes retornando de áreas afetadas
detectadas em Porto Rico, em 2017
(Barth & Simões, 2019).
Devido a distribuição dos vetores pelas
Américas toda a região é suscetível à introdução
e à propagação do vírus, de modo
que o mosquito Aedes aegypti intitula-se
como o vetor principal na transmissão na
África e predominante nas áreas urbanas,
enquanto o Aedes albopictus prevalece
nas áreas silvestres. Foi descrita a transmissão
intrauterina quando a mãe apresentava
viremia. Até o momento, estudos
não detectaram o vírus no leite materno.
Casos de profissionais de laboratórios que
manipularam sangue infectado já foram
registrados (Barth & Simões, 2019).
O diagnóstico viral deve ser realizado nos
três primeiros dias de infecção por meio do
isolamento viral em cultura de células. Até
oito dias pós-infecção, o RNA viral pode ser
detectado no soro pela RT-PCR. Em testes
de análises clínicas laboratoriais, os altos
níveis de creatinina e transaminases hepáticas
elevadas são alterações encontradas
características da infecção viral. O teste sorológico
é realizado utilizando captura IgM
e IgG para pesquisa de anticorpos específicos
anti-CHIKV. Sabe-se que é possível o
paciente positivo para o vírus CHIKV estar
co-infectado por outras arboviroses (Simões
& Barth, 2019).
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Revista NewsLab | Ago/Set 2020