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Diapositive 1 - de l'Université libre de Bruxelles

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Introduction générale1992, Albeck et al 1996, Ameye et al 2001, Farre & Dauphin 2009). Ces macromoléculesreprésentent généralement une faible proportion du poids sec du squelette, variant <strong>de</strong> 0,1 à5 % <strong>de</strong> ce <strong>de</strong>rnier selon l’organisme considéré, mais peuvent représenter jusqu’à 45 % dupoids sec du squelette chez certains Crustacés (Swift et al 1986, Welin<strong>de</strong>r 1974). Malgréleur faible abondance relative, ces macromolécules jouent un rôle essentiel dans labiominéralisation, exerçant un contrôle direct sur la nucléation, la croissance, lapolymorphe et la morphologie du minéral déposé (Simkiss & Wilbur 1989). Cesmolécules peuvent être extraites par décalcification du minéral (dans l’EDTA parexemple), et sont séparées en fractions soluble et insoluble dans l’EDTA. Que ce soitchez les échino<strong>de</strong>rmes, les foraminifères ou dans la couche calcitique <strong>de</strong> la coquille <strong>de</strong>smollusques, la fraction soluble est principalement constituée <strong>de</strong> protéines présentant uncaractère aci<strong>de</strong>, lié à leur richesse en aci<strong>de</strong>s aspartique et glutamique (Weiner 1979).Même si elles présentent <strong>de</strong>s caractéristiques chimiques communes entre les différentsgroupes calcifiants (Weiner & Addadi 1997), les protéines <strong>de</strong> la matrice <strong>de</strong>biominéralisation ont <strong>de</strong>s compositions en aci<strong>de</strong>s aminés spécifiques (Albeck et al 1993).Ces protéines, et dans certains cas les polysacchari<strong>de</strong>s sulfatés qui leur sont associés,peuvent interagir avec le calcium, grâce à leurs groupements carboxyles présentant <strong>de</strong>fortes affinités pour cet ion, <strong>de</strong> manière à initier une nucléation orientée (Wilbur &Bernhardt 1984, Addadi et al 1987, Addadi & Weiner 1985, 1992).Les molécules <strong>de</strong> la matrice interviennent dans la détermination du type <strong>de</strong> polymorpheformée (Falini et al 1996, Levi et al 1998, Feng et al 2000, Takeuchi et al 2008). Lesmacromolécules extraites <strong>de</strong> la couche <strong>de</strong> calcite <strong>de</strong> la coquille <strong>de</strong> mollusque induisent laformation <strong>de</strong> calcite tandis que celles extraites <strong>de</strong> la couche aragonitique induisent laformation d’aragonite (Falini et al 1996, Feng et al 2000). Dans <strong>de</strong>s expériences <strong>de</strong>cristallisations en présence <strong>de</strong> magnésium, les additifs organiques (tels que lespolysacchari<strong>de</strong>s et les polymères d’aci<strong>de</strong>s carboxylique et aspartique) favorisent laformation <strong>de</strong> calcite par rapport à celle d’aragonite (Kitano & Kanamori 1966, Wada et al1999, Meldrum & Hy<strong>de</strong> 2001, Takeuchi et al 2008).En plus <strong>de</strong> contrôler la polymorphe déposée, les molécules <strong>de</strong> la matrice organiquesemblent aussi hautement impliquées dans l’incorporation <strong>de</strong> hautes quantités <strong>de</strong>magnésium dans les calcites biogéniques. Robach et al (2006) ont en effet mis enévi<strong>de</strong>nce un parallélisme entre les distributions spatiales du magnésium et <strong>de</strong>s protéines<strong>de</strong> la matrice riches en aci<strong>de</strong>s aspartiques dans la calcite très hautement magnésienne <strong>de</strong>la <strong>de</strong>nt d’oursin (contenant jusqu’à 43,5 mol% <strong>de</strong> MgCO 3 ). De plus, la présence <strong>de</strong>15

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