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com as técnicas de FISH, CMA, DAPI - IAC

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18S-5.8S-26S e um <strong>de</strong> rDNA 5S. A coloração <strong>com</strong> prata revelou band<strong>as</strong> coinci<strong>de</strong>ntes<br />

<strong>com</strong> alguns dos sítios <strong>de</strong> rDNA.<br />

As técnic<strong>as</strong> <strong>de</strong> coloração <strong>com</strong> os fluorocromos <strong>CMA</strong> e <strong>DAPI</strong> foram usad<strong>as</strong> por<br />

KOEHLER et al. (2008) para rever a <strong>de</strong>limitação e propor uma cl<strong>as</strong>sificação mais<br />

estável para o gênero Christensonella (Orchidaceae). Os dados citogenéticos indicaram<br />

o número <strong>de</strong> cromossomos variando <strong>de</strong> 2n = 36, 38 e 76. Embora estudos<br />

<strong>com</strong>plementares sejam ainda necessários para uma melhor <strong>com</strong>preensão do gênero<br />

Christensonella, os padrões <strong>de</strong> band<strong>as</strong> e a contagem cromossômica sugerem a<br />

ocorrência <strong>de</strong> fusão cêntrica e/ou fissão, especialmente para C. ferdinandiana; os<br />

resultados sugerem também que <strong>as</strong> espécies <strong>com</strong> número cromossômico igual a 2n = 36<br />

evoluíram d<strong>as</strong> espécies <strong>com</strong> número cromossômico igual a 2n = 38. Portanto, os<br />

padrões <strong>de</strong> heterocromatina e outros dados cariotípicos, provaram ser <strong>de</strong> gran<strong>de</strong><br />

importância para enten<strong>de</strong>r os padrões evolutivos <strong>de</strong>ntro do gênero.<br />

Em alguns dos estudos acima ficou claro que a utilização do bandamento <strong>com</strong><br />

fluorocromos é uma ferramenta importante para a diferenciação, caracterização e até<br />

mesmo uma visualização dos processos evolutivos d<strong>as</strong> espécies.<br />

Para o gênero Alstroemeria não existem dados publicados sobre a caracterização<br />

cromossômica através <strong>de</strong> bandamento <strong>com</strong> os fluorocromos <strong>CMA</strong>3 e <strong>DAPI</strong>. No presente<br />

trabalho os resultados da aplicação d<strong>as</strong> técnic<strong>as</strong> <strong>de</strong> bandamento <strong>com</strong> <strong>CMA</strong> e <strong>DAPI</strong> são<br />

originais, e são aqui relatados pela primeira vez. Assim, apesar <strong>de</strong> BAEZA et al. (2006;<br />

2007) terem usado fluorocromo <strong>DAPI</strong> para caracterizar os cromossomos d<strong>as</strong> espécies<br />

chilen<strong>as</strong> A. ligtu subsp. ligtu e A. ligtu subsp. samsii, A. aurea, A. hookeri e A presliana<br />

não foram <strong>de</strong>scritos padrões <strong>de</strong> band<strong>as</strong> para <strong>as</strong> referid<strong>as</strong> espécies.<br />

2.7 Hibridação in situ<br />

A hibridação in situ (HIS) é uma técnica empregada para a visualização <strong>de</strong><br />

sequênci<strong>as</strong> <strong>de</strong>finid<strong>as</strong> <strong>de</strong> ácidos nucléicos, DNA alvo (DNA ou RNA), em preparações<br />

celulares, através da hibridação <strong>com</strong> sequênci<strong>as</strong> <strong>com</strong>plementares conhecid<strong>as</strong> (DNA<br />

sonda). O objetivo final da hibridação in situ, consiste b<strong>as</strong>icamente na verificação se a<br />

célula, tecido ou cromossomos possuem sequênci<strong>as</strong> <strong>de</strong> nucleotí<strong>de</strong>os do DNA utilizado<br />

<strong>com</strong>o sonda. Esse método foi <strong>de</strong>scrito pela primeira vez por GALL & PARDUE (1969).<br />

A técnica proporciona a interação entre conhecimento da biologia celular, citogenética<br />

clássica e genética molecular.<br />

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