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Interaktion von Masernviren mit Dendritischen Zellen - OPUS ...

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Methoden 51<br />

Gradienten wurden für 30 Minuten bei 400 x g, Raumtemperatur (RT) <strong>mit</strong><br />

zweiminütigem An- und Ablauf zentrifugiert. Die entstandenen Interphasen<br />

wurden geerntet und in 50-ml-Röhrchen überführt; die Röhrchen wurden <strong>mit</strong><br />

Ca 2+ /Mg 2+ -freiem PBS aufgefüllt und für 10 Minuten bei 300 x g (RT)<br />

zentrifugiert. Die pelletierten <strong>Zellen</strong> wurden weitere zwei- bis drei Mal<br />

gewaschen. Zur Zellzahlbestimmung (3.1.3) und durchflusszytometrischen<br />

Charakterisierung wurden vor dem letzten Waschen 200 Mikroliter der<br />

Zellsuspension abgenommen. Die verschiedenen Interphasen wurden <strong>mit</strong><br />

einem Gemisch verschiedener monoklonaler Antikörper (CD3-FITC, CD14-<br />

FITC, CD19-FITC, CD16-PE, CD56-PE und HLA-DR-PerCP) gefärbt (3.7.1)<br />

und im Durchflusszytometer untersucht. Abschließend wurde die Fraktion der<br />

Monozyten (CD14 + ) <strong>mit</strong> Einfriermedium gemischt, in Kryoröhrchen alitquotiert<br />

und eingefroren (3.1.4).<br />

CD16/CD56-PE<br />

SSC<br />

FSC<br />

CD3/CD14/<br />

CD19-FITC<br />

HLA-DR-PerCP<br />

CD3/CD14/<br />

CD19-FITC<br />

HLA-DR-PerCP<br />

Abbildung 3—3 Durchflusszytometrische Charakterisierung der Monozytenpopulation (Monozyten:<br />

R5 bzw. R6)<br />

CD16/CD56-PE

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