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- Seite 64 und 65: 4.3. Aufbau und Durchführung der F
- Seite 66 und 67: 4.5. Aufarbeitung von Metaboliten d
- Seite 68 und 69: 4.5. Aufarbeitung von Metaboliten d
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5. Analytische Methoden 5.1. Biomas
- Seite 72 und 73:
5.3. Extrazelluläre Analytik Tabel
- Seite 74 und 75:
Glukose [g/L] Tabelle 5.4.: Enzymat
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5.4. Intrazelluläre Analytik Tabel
- Seite 78 und 79:
5.4. Intrazelluläre Analytik Tabel
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Abbildung 5.3.: Foto der Ionenfalle
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Tabelle 5.10.: Methodenparameter de
- Seite 84 und 85:
5.4.6. Durchführung der Standard-A
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6. Ergebnisse und Diskussion 6.1. E
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Nachweisgrenze [mM] 16 12 8 4 6.1.
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L-Phe [mM] Acetat [mM] Shikimat [mM
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6.1. Entwicklung und Etablierung de
- Seite 94 und 95:
MS Peakfläche [-] MS Peakfläche [
- Seite 96 und 97:
H HO H H CHO OH H OH OH CH 2 O P Gl
- Seite 98 und 99:
6.1. Entwicklung und Etablierung de
- Seite 100 und 101:
MS-Peakfläche [-] 1,0x10 8 8,0x10
- Seite 102 und 103:
6.1. Entwicklung und Etablierung de
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HO O 6.2. Darstellung und Isolierun
- Seite 106 und 107:
6.2. Darstellung und Isolierung der
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6.2. Darstellung und Isolierung der
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RT: 10,00 - 35,00 SM: 9B 100 95 90
- Seite 112 und 113:
6.3. Einsatz der 1 H-NMR Metabolit
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6.3. Einsatz der 1 H-NMR Metabolit
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6.3. Einsatz der 1 H-NMR Metabolit
- Seite 118 und 119:
6.3. Einsatz der 1 H-NMR Metabolit
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C-mol [%] Glucose 6.3. Einsatz der
- Seite 122 und 123:
Isolierung HPLC Peak Fraktion HPLC-
- Seite 124 und 125:
Peak16_9_50bis2000_nucleodex RT: 6,
- Seite 126 und 127:
6.5. Untersuchungen zu Methanol-Que
- Seite 128 und 129:
Wiederfindung der Zellen [%] 100 80
- Seite 130 und 131:
6.6. Entwicklung eines Fed-Batch Fe
- Seite 132 und 133:
O OH OH OH O P O OH E4P O aroF/G/H
- Seite 134 und 135:
DAH(P) / BTM [mmol/g] DAH(P) / BTM
- Seite 136 und 137:
DHS / BTM [mmol/g] 8 7 6 5 4 3 2 1
- Seite 138 und 139:
S3P / BTM [mmol/g] 1,4 1,2 1,0 0,8
- Seite 140 und 141:
E4P PEP 6.6. Entwicklung eines Fed-
- Seite 142 und 143:
OD 650 [-], Glukose [mM] 120 100 80
- Seite 144 und 145:
6.6. Entwicklung eines Fed-Batch Fe
- Seite 146 und 147:
G6P [mM] PEP [mM] 1,0 0,8 0,6 0,4 0
- Seite 148 und 149:
6.7. Glukosepulsexperimente mit L-P
- Seite 150 und 151:
AMP [�M] ATP [�M] 2PG / 3PG [
- Seite 152 und 153:
6.7. Glukosepulsexperimente mit L-P
- Seite 154 und 155:
G6P [mM] DHAP [mM] PEP [mM] 4 3 2 1
- Seite 156 und 157:
6.7. Glukosepulsexperimente mit L-P
- Seite 158 und 159:
G6P/F6P[µM] FBP [µM] DHAP/GAP[µM
- Seite 160 und 161:
DAHP MS Peakfläche [-] 8,0x10 6 6,
- Seite 162 und 163:
6.7. Glukosepulsexperimente mit L-P
- Seite 164 und 165:
G6P/F6P[µM] FBP [µM] DHAP / GAP [
- Seite 166 und 167:
[-] 1 PEP + E4P DAHP DHQ DHS SHIK S
- Seite 168 und 169:
6.8. Analyse des Produktstoffwechse
- Seite 170 und 171:
6.8. Analyse des Produktstoffwechse
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6.8. Analyse des Produktstoffwechse
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6.8. Analyse des Produktstoffwechse
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6.8. Analyse des Produktstoffwechse
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6.8. Analyse des Produktstoffwechse
- Seite 180 und 181:
7. Zusammenfassung Am Beispiel der
- Seite 182 und 183:
(10 mM) im Vergleich zum 3-Dehydroq
- Seite 184 und 185:
8. Ausblick • Basierend auf den g
- Seite 186 und 187:
A. Fermentationsmedien A.1. Luria-B
- Seite 188 und 189:
A.5. Hauptkulturmedium Nr. I Bis au
- Seite 190 und 191:
A.8. Chemikalienverzeichnis Für di
- Seite 192 und 193:
Literaturverzeichnis [1] Adachi, O.
- Seite 194 und 195:
Literaturverzeichnis [26] Budzinski
- Seite 196 und 197:
Literaturverzeichnis [53] Duke, C.C
- Seite 198 und 199:
Literaturverzeichnis [79] Harvey, D
- Seite 200 und 201:
Literaturverzeichnis [105] Leuchten
- Seite 202 und 203:
Literaturverzeichnis [130] Paiva,A.
- Seite 204 und 205:
Literaturverzeichnis [156] Soga, T.
- Seite 206:
Literaturverzeichnis [182] Weuster-
- Seite 209:
Schriften des Forschungszentrums J
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