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Arrestin hetero/oge Expression/l Mutagenese und biophy,sikalische Untersuchungen

Arrestin ~ hetero/oge Expression/l Mutagenese und biophy ... - JuSER

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56 ERGEBNISSE<br />

3. Ergebnisse<br />

Ziel del' Arbeit ist, durch <strong>hetero</strong>l<strong>oge</strong> <strong>Expression</strong> ein hom<strong>oge</strong>nes, wildtypisches <strong>Arrestin</strong> zu<br />

erzeugen. Funktionalitat <strong>und</strong> Faltung des rekombinanten Proteins werden durch bioehemisehe<br />

<strong>und</strong> <strong>biophy</strong>sikalisehe Analysen kontrolliert, Dieses Protein ist die Basis fur die Erzeugung<br />

von Mutanten, die in Anlehnung an die Rontgenstruktur entwickelt werden.<br />

In del' vorliegenden Arbeit wurde das wt <strong>Arrestin</strong> am N- <strong>und</strong> C-Terminus verschieden<br />

modifiziert <strong>und</strong> exprimiert, Diese <strong>Arrestin</strong>e wurden nicht wie <strong>Arrestin</strong> aus dem Rinderauge<br />

durch Bindung an Rhodopsin, sondern dureh Bindung tiber ihre Modifikation<br />

affinitatschromatographisch gereinigt.<br />

3.1. Uberexpresslon von <strong>Arrestin</strong> in Escherichia coli<br />

AIs Wirtsorganismus ftlr <strong>hetero</strong>l<strong>oge</strong> Proteinexpression hat E. coli Vorteile wie z.B. sehneIIes<br />

ZeIIwaehstum <strong>und</strong> sehr hohe <strong>Expression</strong>sraten. Die kommerziell erhaltlichen<br />

<strong>Expression</strong>ssysteme bieten die Moglichkeit <strong>Arrestin</strong> als Fusion an versehiedene<br />

Affinitatspeptide oder Fusionspartncr zu erzeugen. Vorteil diesel' Art del' rekornbinanten<br />

Proteinexpression ist die vereinfaehte Reinigung von <strong>Arrestin</strong> tiber Affinitatschromatographic.<br />

Zusatzlich wird eine indirekte Detektion des <strong>hetero</strong>log exprimierten<br />

Proteins im Westernblot tlber Antikorper bzw. spezifisehe Konjugate gegen den<br />

Fusionspartner moglich, Ein weiterer Vorteil dieser Art del' <strong>Expression</strong> ist die Beeinflussung<br />

del' Loslichkeit durch den Fusionspartner (La Vallie et aI., 1993).<br />

Nachteile sind, daB einige Proteine nicht-bakteriellen Ursprungs nach <strong>Expression</strong> in E. coli<br />

unlosliche Einschlulikorper, bestehend aus aggregiertem Protein, bilden. Viele eukaryotisehe<br />

Proteine wie <strong>Arrestin</strong> werden in ihrem nattirlichen Witt post-translational prozessiert oder<br />

modifiziert, nicht aber in E. coli. Diese Modifikationen beeinflussen oft die<br />

Faltungsaktivitaten <strong>und</strong> die biologisehe Funktion del' Proteine. Ein EinfluB del' N-terruinalen<br />

Aeetylierung von <strong>Arrestin</strong> auf die Faltung oder Funktion ist bislang unbekannt. FUr die<br />

Erzeugung von nativ-eukaryotischen Proteinen ist aueh die Entfernung des N-terminalen<br />

Methionins wichtig. In E. coli ist dies jedoeh abhangig von del' darauf folgenden Aminosaure<br />

in der Polypeptidkette. Proteine wie <strong>Arrestin</strong>, mit Lysin an zweiter Position, behalten das<br />

N-terminale Methionin (Sherman et aI., 1985). Zur Bildung von Proteinaggregaten kann aueh<br />

die Tatsaehe beitragen, daB das Wirtseytosol keine geeignete Umgebung fur das Zielprotein<br />

darsteIIt, Cysteinbrucken z.B, nieht moglich sind. Ebenso kann durch extreme<br />

Uberproduktion die Loslichkeitsgrcnze JUr das jeweilige Protein tiberschtitten worden<br />

(Mitraki & King, 1989).<br />

<strong>Expression</strong>sbedingungcn haben entseheidenden EinfluB auf die Loslichkeit des Zielproteins,<br />

wobei Waehstumsrate, <strong>Expression</strong>srate <strong>und</strong> VOl' alIem die Temperatur wiehtige Faktoren sind

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