19.10.2014 Views

ГОСУДАРСТВЕННОЕ МЕДИЦИНСКОЕ УЧЕБНОЕ ЗАВЕДЕНИЕ

ГОСУДАРСТВЕННОЕ МЕДИЦИНСКОЕ УЧЕБНОЕ ЗАВЕДЕНИЕ

ГОСУДАРСТВЕННОЕ МЕДИЦИНСКОЕ УЧЕБНОЕ ЗАВЕДЕНИЕ

SHOW MORE
SHOW LESS

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.

Ход работы: в две пробирки отмеряют по 0,5 мл раствора глутаминовой кислоты,<br />

0,5 мл раствора ПВК, 1 мл раствора углекислого калия и 0,25 мл раствора<br />

монобромуксусной кислоты.<br />

В 1 пробирку (опыт) добавляют 0,5 мл свежей мышечной кашки, во вторую<br />

пробирку - мышечную кашку, которая предварительно прокипячена на протяжении<br />

1-2 минут. Обе пробирки ставят в термостат при t = 37 о С на 15 минут. Потом в каждую<br />

добавляют по 0,25 мл уксусной кислоты и кипятят 2-3 минуты до полного осаждения<br />

белков. Содержимое пробирок фильтруют.<br />

Фильтраты хроматографируют. С этой целью на линии старта двух полосок<br />

фильтровальной бумаги (опыт и контроль) наносят по капле фильтратов из пробирок,<br />

каждый раз подсушивая на воздухе. Полоски бумаги опускают в пробирки, на дне<br />

которых находится фенол, насыщенный водой. Пробирки в штативе помещают в<br />

термостат на 1 час при 35-40 о С. После этого полоски бумаги вынимают, отмечают<br />

линию фронта (финиш) растворителя, подсушивают 10-15 минут при 100 о С, а затем<br />

проявляют раствором нингидрина. Снова подсушивают.<br />

Для каждого определенного пятна вычисляют коэффициент Rf по формуле:<br />

Rf = 1/h<br />

где, 1- это расстояние от старта к центру пятна,<br />

h- расстояние от старта к финишу ( расстояние, которое прошел<br />

растворитель).<br />

На основе полученных данных делают вывод, хроматограму подклевывают к<br />

протоколу.<br />

Rf аминокислот (для фенола):<br />

Аспарагиновая к-та – 0,07 Аргинин – 0,41<br />

Глутаминовая к-та – 0,16 Тирозин – 0,52<br />

Цистеин – 0,19 Аланин – 0,55<br />

Глицин (гликокол) – 0,30 Фенилаланин – 0,78<br />

Метионин – 0,39 Лейцин – 0,79<br />

2. Определение активности аминотрансфераз.<br />

Принцип метода. Аминотрансферазы – ферменты которые содержат в качестве<br />

коферментов фосфопиридоксамин, катализируют обратный перенос аминогрупп с<br />

α-аминокислот на α-кетокислоты. Определение концентраци α-кетокислот, которые<br />

образуются при трансаминирование лежит в основе динитрофенилгидразинового<br />

метода определения активности трансаминаз.<br />

Ход работы. Определение аспартатаминотрансферазы (АсАТ).<br />

В пробирку вносят 0,5 мл субстратно-буферной смеси для определения АсАТ,<br />

выдерживают в термостате при t =37 о С в течении 5 минут, добавляют 0,1 мл<br />

сыворотки и инкубируют при t =37 о С 60 минут. Потом добавляют 0,5 мл раствора<br />

динитрофенилгидразина и выдерживают в течении 20 минут при комнатной<br />

температуре. Добавляют 5 мл 0,4 М раствору NaOH, перемешивают и оставляют на<br />

10 минут.<br />

Измеряют оптическую плотность проб, которая исследуются при λ = 560 нм.<br />

Определение активности аланинаминотрансферазы (АлАТ). В пробирку вносят<br />

0,5 мл субстратно-буферной смеси для определения АлАТ, выдерживают в<br />

термостате при t =37 о С в течении 5 минут, добавляют 0,1 мл сыворотки и инкубируют<br />

при t =37 о С 30 минут. Потом добавляют 0,5 мл раствора динитрофенилгидрозина и<br />

выдерживают в течении 20 минут при комнатной температуре. Добавляют 5 мл 0,4 М<br />

раствору NaOH, перемешивают и оставляют на 10 минут. Измеряют оптическую<br />

38

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!