ГОСУДАРСТВЕННОЕ МЕДИЦИНСКОЕ УЧЕБНОЕ ЗАВЕДЕНИЕ
ГОСУДАРСТВЕННОЕ МЕДИЦИНСКОЕ УЧЕБНОЕ ЗАВЕДЕНИЕ
ГОСУДАРСТВЕННОЕ МЕДИЦИНСКОЕ УЧЕБНОЕ ЗАВЕДЕНИЕ
- TAGS
- naoh
- ects
- fecl
- cacl
- www.umsa.edu.ua
You also want an ePaper? Increase the reach of your titles
YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.
Ход работы: в две пробирки отмеряют по 0,5 мл раствора глутаминовой кислоты,<br />
0,5 мл раствора ПВК, 1 мл раствора углекислого калия и 0,25 мл раствора<br />
монобромуксусной кислоты.<br />
В 1 пробирку (опыт) добавляют 0,5 мл свежей мышечной кашки, во вторую<br />
пробирку - мышечную кашку, которая предварительно прокипячена на протяжении<br />
1-2 минут. Обе пробирки ставят в термостат при t = 37 о С на 15 минут. Потом в каждую<br />
добавляют по 0,25 мл уксусной кислоты и кипятят 2-3 минуты до полного осаждения<br />
белков. Содержимое пробирок фильтруют.<br />
Фильтраты хроматографируют. С этой целью на линии старта двух полосок<br />
фильтровальной бумаги (опыт и контроль) наносят по капле фильтратов из пробирок,<br />
каждый раз подсушивая на воздухе. Полоски бумаги опускают в пробирки, на дне<br />
которых находится фенол, насыщенный водой. Пробирки в штативе помещают в<br />
термостат на 1 час при 35-40 о С. После этого полоски бумаги вынимают, отмечают<br />
линию фронта (финиш) растворителя, подсушивают 10-15 минут при 100 о С, а затем<br />
проявляют раствором нингидрина. Снова подсушивают.<br />
Для каждого определенного пятна вычисляют коэффициент Rf по формуле:<br />
Rf = 1/h<br />
где, 1- это расстояние от старта к центру пятна,<br />
h- расстояние от старта к финишу ( расстояние, которое прошел<br />
растворитель).<br />
На основе полученных данных делают вывод, хроматограму подклевывают к<br />
протоколу.<br />
Rf аминокислот (для фенола):<br />
Аспарагиновая к-та – 0,07 Аргинин – 0,41<br />
Глутаминовая к-та – 0,16 Тирозин – 0,52<br />
Цистеин – 0,19 Аланин – 0,55<br />
Глицин (гликокол) – 0,30 Фенилаланин – 0,78<br />
Метионин – 0,39 Лейцин – 0,79<br />
2. Определение активности аминотрансфераз.<br />
Принцип метода. Аминотрансферазы – ферменты которые содержат в качестве<br />
коферментов фосфопиридоксамин, катализируют обратный перенос аминогрупп с<br />
α-аминокислот на α-кетокислоты. Определение концентраци α-кетокислот, которые<br />
образуются при трансаминирование лежит в основе динитрофенилгидразинового<br />
метода определения активности трансаминаз.<br />
Ход работы. Определение аспартатаминотрансферазы (АсАТ).<br />
В пробирку вносят 0,5 мл субстратно-буферной смеси для определения АсАТ,<br />
выдерживают в термостате при t =37 о С в течении 5 минут, добавляют 0,1 мл<br />
сыворотки и инкубируют при t =37 о С 60 минут. Потом добавляют 0,5 мл раствора<br />
динитрофенилгидразина и выдерживают в течении 20 минут при комнатной<br />
температуре. Добавляют 5 мл 0,4 М раствору NaOH, перемешивают и оставляют на<br />
10 минут.<br />
Измеряют оптическую плотность проб, которая исследуются при λ = 560 нм.<br />
Определение активности аланинаминотрансферазы (АлАТ). В пробирку вносят<br />
0,5 мл субстратно-буферной смеси для определения АлАТ, выдерживают в<br />
термостате при t =37 о С в течении 5 минут, добавляют 0,1 мл сыворотки и инкубируют<br />
при t =37 о С 30 минут. Потом добавляют 0,5 мл раствора динитрофенилгидрозина и<br />
выдерживают в течении 20 минут при комнатной температуре. Добавляют 5 мл 0,4 М<br />
раствору NaOH, перемешивают и оставляют на 10 минут. Измеряют оптическую<br />
38