Untersuchungen zum Vorkommen und zur gesundheitlichen ...

Weitere Magazine

Empfehlungen

Info

Tab. 25: Chemotaxonomische Gattungsmerkmale der identifizierten Isolate Taxon Familie Zellwand Myc* 1 Menachinon-Hauptkomponenten FS* 2 Phospholipid G+C* 3 Lentzea Actinosynnemataceae meso-DAP - MK-9(H4) ND PE, DPG, PG, PI 70-76 Brevibacterium Brevibacteriaceae meso-DAP - MK-8(H2), MK-7(H2) S,A,I DPG,PG,GL,DMDG, PI 60-67 Oerskovia Cellulomonadaceae L-Lys - MK-9(H4) A,I DPG,PI,PG,PL 70-76 Corynebacterium Corynebacteriaceae meso-DAP + MK-9(H2), MK-8(H2) S,U,A,I,T DPG,PI,PIM,(PG,GL,PE) 51-67 Brachybacterium Dermabacteraceae meso-DAP - MK-7 S,A,I DPG,PG,GL,(PGL) 68-72 Kytococcus Dermatophilaceae Lys-DCA - MK-8, MK-9, MK-10 A,I,(S) DPG,PG,PI 68-69 Arsenicicoccus Intrasporangiaceae LL-DAP - MK-8(H4) S,U,I,A ND Janibacter Intrasporangiaceae meso-DAP - MK-8(H4) S,I,U DPG,PG,PI 70 Ornithinicoccus Intrasporangiaceae L-Orn - MK-8(H4) S,A,I PI,PG,DPG,PL 72 Agrococcus Microbacteriaceae L-DAB - MK-12, MK-11 S,A,I PG, DPG, GL 74 Leucobacter Microbacteriaceae L-DAB, - MK-11, (MK-10, MK-9, MK-12) S,A,I DPG,PG,GL 66 Microbacterium Microbacteriaceae L-Lys/D-Orn - MK-12, MK-11, MK-13, MK-14 S,A,I DPG,PG,GL,DMDG 65-72 Arthrobacter Micrococcaceae L-Lys - MK-9(H2) / [MK-8 <strong>und</strong>/oder MK-9] S,A,I DPG,PG,GL,DMDG 61-66 Citricoccus Micrococcaceae L-Lys-Gly-Glu MK-9(H(2)) A,I, DPG, PG, PI, PL 68 Kocuria Micrococcaceae Lys-MCA - MK-7(H2), MK-8(H2) S,A,I DPG,PG,(PI,PL,GL) 66-75 Micrococcus Micrococcaceae Lys - MK-8, MK-8(H2) S,A,I DPG,PI,PG,PL,GL 69-76 Micromonospora Micromonosporaceae meso-DAP - MK-9(H4), MK-10(H4), MK-10(H6), MK- 9(H6) A,I,(U) PE,PI,PIM 71-73 Mycobacterium Mycobacteriaceae meso-DAP + MK-9(H2) S,U,T PI,PIM,PE 70-72 Nocardia Nocardiaceae meso-DAP + MK-8(H4)cyclo, MK-9(H2), MK-8(H6)cyclo S,U,T PE,DPG,PI,PIM 64-72 Rhodococcus Nocardiaceae meso-DAP + MK-8(H2), MK-9(H2) S,U,T DPG,PE,PI,PIM,(G) 63-73 Jiangella Nocardioidaceae LL-DAP(meso-DAP) - MK-9(H4) A,I,T PIM, PI, DPG 70 Kribbella Nocardioidaceae LL-DAP - MK-9(H4) A,I PC 68-70 Nocardioides Nocardioidaceae LL-DAP - MK-8(H4), MK-9(H4) S,A,I,U,T PG,DPG,PL,PG-OH 66-72 Nocardiopsis Nocardiopsaceae meso-DAP - MK-10(H4), MK-10(H6), MK-10(H2) (U),T,I,A PC,PG,APG,PM,DPG 64-69 Isoptericola Promicromonosporaceae Lys-D-Asp - MK-9(H4) A,I,S PG, DPG, PI, PL 70-72 Promicromonospora Promicromonosporaceae Lys - MK-9(H4) I,A PG,PL 70-75 Microlunatus Propionibacteriaceae LL-DAP - MK-9(H4) S,A,I PI,PG,DPG,PL 68 Propionicicella Propionibacterineae meso-DAP - MK-9 S,I,A 69.9 Amycolatopsis Pseudonocardiaceae meso-DAP - MK-9(H2), MK-9(H4), [MK-9(H6)] S,U,I,T PI,DPG,PG,(PE,PM) 66-69 Prauserella Pseudonocardiaceae meso-DAP - MK-9(H4), MK-9(H2), I,A,S,U PI, PG, DPG, PE, PME 67-69 157
Pseudonocardia Pseudonocardiaceae meso-DAP - MK-8(H4) MK-9(H4) I,(A,S) PM,PE,PC 68-79 Saccharopolyspora Pseudonocardiaceae meso-DAP - MK-9(H4), MK-9(H6) U,A,I PC,PI,PM 66-77 Streptomyces Streptomycetaceae LL-DAP(meso-DAP) - MK-9(H6), MK-9(H8), MK-9(H4) S,I,A DPG,PE,PI,PIM 69-73 Actinomadura Thermomonosporaceae meso-DAP - MK-9(H6), MK-9(H8) T,U,(I,A) PIM,PI,DPG,(PE,GluNu) 65-69 Tsukamurella Tsukamurellaceae meso-DAP + MK-9 S,U,T PE,PI,PIM 67-68 Myc* 1 ° - Mycolsäuren: + vorhanden, – keine Mycolsäuren vorhanden, FS* 2 ° - Fettsäuren: Abkürzungen: S - gradkettig, gesättigt, U – einfach ungesättigt, A - anteiso-methyl-verzweigt, I - iso-methyl-verzweigt, T - 10-methyl-verzweigt (Tuberculostearinsäure), 2OH - 2 hydroxyliert; Abkürzungen Phospholipide: APG - Acylphosphatidylglycerol, DMDG - Dimannosyldiglycerid, DPG - Diphosphatidylglycerol, GL - Glycolipid, GluNu - Phospholipid unbekannter Struktur mit Glucosamin, PC - Phosphatidylcholin, PE - Phosphatedylethanolamine, PG - Phosphatidylglycerol, PGL - Phosphoglycolipid, PI - Phosphatedylinositol, PIM - Phosphatedylinositolmannosid, PL - Phospholipid unbekannter Struktur, PM – Phosphatidylmethylethanolamin; G+C* 3 – mol% G+C der DNA 158
Seite 1 und 2:
Texte 02 09 ISSN 1862-4804 Untersuc
Seite 3 und 4:
Diese Publikation ist ausschließli
Seite 5 und 6:
1. Report No. UBA-FB 001229 4. Repo
Seite 7 und 8:
Umweltmykologie GbR Berlin) 2.3.6.2
Seite 9 und 10:
3.3.3.1 Vorversuche zur Freisetzung
Seite 11 und 12:
• Festlegung der morphologischen
Seite 13 und 14:
Seitens des Umweltbundesamtes wurde
Seite 15 und 16:
Mikroorganismen, wie z.B. Saccharop
Seite 17 und 18:
Weiterhin wurde im Staub einer Kind
Seite 19 und 20:
eines gemeinsamen Trainings wurde s
Seite 21 und 22:
auswählt. In der Vorphase (bis zur
Seite 23 und 24:
auf wissenschaftlichen Tagungen üb
Seite 25 und 26:
Die Auswahl der Parameter entsprich
Seite 27 und 28:
2.2 Beschreibung der Probenahmestel
Seite 29 und 30:
Es sollten auch mittels Datenlogger
Seite 31 und 32:
Farbe ist zum einen für die Gewinn
Seite 33 und 34:
2.3.2 Nährmedien zur Kultivierung
Seite 35 und 36:
2.3.4 Festlegung der Dominanz einze
Seite 37 und 38:
2.3.5.3 Gram-Färbung Die Gram-Fär
Seite 39 und 40:
Die DC-Platte wurde anschließend i
Seite 41 und 42:
Für die Analyse der Fettsäuren er
Seite 43 und 44:
2.3.6 Konservierung Die Konservieru
Seite 45 und 46:
eingewogen und etwas Zellmateriall
Seite 47 und 48:
2.4.1.3 DNA-Extraktion aus Kolonien
Seite 49 und 50:
Plasmid-Primer M13 Primer 616 V / 1
Seite 51 und 52:
Universelle 16S rRNA Primer (EUB-Pr
Seite 53 und 54:
2.4.2.2 Agarosegelelektrophorese Di
Seite 55 und 56:
gemischt. Das Gemisch wurde zwei mi
Seite 57 und 58:
Alle Schritte der Silbernitratfärb
Seite 59 und 60:
Fragmente mit einem A-Überhang rel
Seite 61 und 62:
2.4.5 Sequenzierung durch Kettenabb
Seite 63 und 64:
Der MTT-Zellkulturtest zeichnet sic
Seite 65 und 66:
Probenmaterials sicher ausgeschloss
Seite 67 und 68:
Untersuchungsobjekte isoliert worde
Seite 69 und 70:
3 Ergebnisse 3.1 Kultivierungsabhä
Seite 71 und 72:
Tab. 9: Koloniebildende Einheiten (
Seite 73 und 74:
Tab. 10: Gattungszuordung der gewon
Seite 75 und 76:
3.1.2.2 Übersicht über die häufi
Seite 77 und 78:
In den Proben wurden jeweils 4 bzw.
Seite 79 und 80:
in den 24 untersuchten Proben (die
Seite 81 und 82:
In der Abb. 3 sind die Anteile der
Seite 83 und 84:
[Σ Gattungen] 25 20 15 10 5 0 WP 0
Seite 85 und 86:
Weiterhin bildeten einige Referenzi
Seite 87 und 88:
ähnliches Spektrum unterschiedlich
Seite 89 und 90:
Abb. 6: Referenzisolate der Gattung
Seite 91 und 92:
auf Hafermehl-, Gauze- und CASO-Aga
Seite 93 und 94:
Abb. 8: Koloniemorphologie der Refe
Seite 95 und 96:
3.1.2.5.2 Micromonospora Aus der Ga
Seite 97 und 98:
Abb. 15: Koloniemorphologien von 14
Seite 99 und 100:
3.1.2.5.5 Nocardiopsis Die Mehrzahl
Seite 101 und 102:
Abb. 25: 21 Tage alte Referenzisola
Seite 103 und 104:
Abb. 28: Abb. 29: Kleine Kulturen v
Seite 105 und 106:
Abb. 31: Kolonien (von unten aufgen
Seite 107 und 108:
Abb. 33: Abbildung der Luftmyzelien
Seite 109 und 110: 3.1.2.5.8 Saccharopolyspora Die Meh
Seite 111 und 112: Abb. 39: Abb. 40: Streptomycetes-Ko
Seite 113 und 114: Eine sichere Bestimmung auf der Pri
Seite 115 und 116: 3.1.4 Chemotaxonomische Untersuchun
Seite 117 und 118: Die Identifizierung eines dieser 4
Seite 119 und 120: Tab18: Chemotaxonomische Merkmale d
Seite 121 und 122: Tab. 19: Chemotaxonomische Merkmale
Seite 123 und 124: Tab. 20: Chemotaxonomische Merkmale
Seite 125 und 126: Saccharothrix, Propionibacterium, P
Seite 127 und 128: 3.2.2 SSCP (Singel Strand Conformat
Seite 129 und 130: Korrelation mit Hilfe einer Cluster
Seite 131 und 132: Tab. 22: Referenzkonzentrationen vo
Seite 133 und 134: angenommen (das gesamte Wachstum au
Seite 135 und 136: Freisetzung von TNF-α in Abhängig
Seite 137 und 138: ml. Dies deutet an, dass die Interl
Seite 139 und 140: dieser Probe wurden nicht untersuch
Seite 141 und 142: Erhöhung der TNF-alpha Freisetzung
Seite 143 und 144: 4 Diskussion 4.1 Ergebnisse und Sch
Seite 145 und 146: Anzüchtung einzelner Isolate auf v
Seite 147 und 148: molekularbiologischen Methoden für
Seite 149 und 150: Nocardioidaceae detektiert werden.
Seite 151 und 152: 4.3.1 Molekularbiologische Identifi
Seite 153 und 154: In der vorliegenden Studie wurden n
Seite 155 und 156: Eine weitere Gattung, deren Vertret
Seite 157 und 158: Actinomycetales besitzen L-Lysin, L
Seite 159: PII PIM, PI, (PG), PE, DPG PIII (PI
Seite 163 und 164: durchgeführt. Auch wenn mit beiden
Seite 165 und 166: 4.5 Diskussion der toxikologischen
Seite 167 und 168: Nocardiopsis. Dies zeigt, dass man
Seite 169 und 170: 4.5.3 Diskussion - Gesundheitliche
Seite 171 und 172: 4.6 Zusammenfassung Diversität: Di
Seite 173 und 174: Allein anhand koloniemorphologische
Seite 175 und 176: 4.6 Summary Diversity The results o
Seite 177 und 178: cell wall, these methods are time-c
Seite 179 und 180: Verzeichnis der Abbildungen Abb. 1:
Seite 181 und 182: Verzeichnis der Tabellen Tab. 1: De
Seite 183 und 184: Ensign, J.C. (1992): Introduction t
Seite 185 und 186: Kutzner, H. J, Kempf, A. (1996): Vo
Seite 187 und 188: Rintala, H., Pitkäranta, M., Toivo
Seite 189 und 190: Anhang: Probendatenblätter Probend
Seite 191 und 192: Objektbeschreibung Probendatenblatt
Seite 201 und 202: Objekt 05 (Bad) Ergebnisse Feuchtig
Seite 207 und 208: Probe 09 02-07/02 1 Filter 09.03.06
Seite 209 und 210: Ergebnisse Feuchtigkeits- und Tempe
Seite 211 und 212:
pH-Wert Probe Nr. Material elektron
Seite 213 und 214:
Probe 12 06-07/02 (je 80 g) LGA 18.
Seite 215 und 216:
Ergebnisse Feuchtigkeits- und Tempe
Seite 217 und 218:
Versand an Probe 14 08-07/01 22.08.
Seite 219 und 220:
Versand an Probe 15 08-07/01 22.08.
Seite 221 und 222:
Probenahme Nr. Material Datum/Bearb
Seite 223 und 224:
Mikroskopie Zellform Stäb.-Kokken-
Seite 225 und 226:
7 Agar 15,0 g 8 Aqua dest. 1000 ml
Seite 227 und 228:
Glucose-Yeast-Malt-Agar (GYM STREPT
Seite 229 und 230:
Tab. A 1: API-ZYM-Test Isolat Agar
Seite 231 und 232:
Agrococcus ca. 1200 bp 0.01 53 228
Seite 233 und 234:
Arthrobacter, ca. 1260 bp, outgroup
Seite 235 und 236:
Brevibacterium ca. 1330 bp 0.01 84
Seite 237 und 238:
Corynebacterium Teil des phylogenet
Seite 239 und 240:
Janibacter ca. 1400 bp outgroup Orn
Seite 241 und 242:
Kocuria, ca. 1330 bp, outgroup Arth
Seite 243 und 244:
Kytococcus, ca. 1340 bp outgroup Br
Seite 245 und 246:
Leucobacter ca. 1360 bp 0.005 64 93
Seite 247 und 248:
Micrococcus, ca. 1350 bp, outgroup
Seite 249 und 250:
Micromonospora, ca. 1320 bp, outgro
Seite 251 und 252:
Nocardia, ca. 1280 bp, outgroup Mic
Seite 253 und 254:
Nocardiopsis, ca1300 bp, outgroup A
Seite 255 und 256:
Ornithinimicrobium /Arsenicicoccus,
Seite 257 und 258:
Promicomonospora, 1230 bp (14 Isola
Seite 259 und 260:
Rhodococcus, ca. 1230 bp, outgroup
Seite 261 und 262:
Tsukamurella, ca. 1400 bp, outgroup
Seite 263 und 264:
Nährmedium Dominanzklasse Putzprob
Seite 265 und 266:
Nährmedium Dominanz Styroporprobe
Seite 267 und 268:
Nährmedium Dominanzklasse Lehmputz
Seite 269 und 270:
Stammnummer KBE/g bzw. m 3 DAP Iden
Seite 271 und 272:
Seite 273 und 274:
Seite 275 und 276:
Seite 277 und 278:
Seite 279:
Alle anzeigen

Untersuchungen zum Vorkommen und zur gesundheitlichen ...

Erfolgreiche ePaper selbst erstellen

Template löschen?

Als Template speichern?