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universita - Clinica pediatrica - Università degli Studi di Trieste

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2° Giorno<br />

1. Centrifugare a 7000-8000 rpm per 20' a 10°C.<br />

2. Aggiungere a 40 ml del sopranatante 10 ml <strong>di</strong> PEG-NaCl sterile.<br />

3. Lasciar precipitare in ghiaccio per 45', agitando ogni tanto.<br />

4. Centrifugare a 5000 rpm per 20'.<br />

5. Eliminare il sopranatante e risospendere il pellet in 1 ml <strong>di</strong> PBS 1X; trasferire in<br />

un'Eppendorf da 1,5 ml.<br />

6. Centrifugare a 13000 rpm per 5' e recuperare 900 μl <strong>di</strong> fagi presenti nel<br />

sopranatante.<br />

7. Saturare i fagi 1:1 in latte 4% per 45'-1h a T ambiente; contemporaneamente<br />

svuotare l’immunotubo e saturarlo completamente con latte 2%.<br />

8. Inoculare 1 colonia <strong>di</strong> DH5αF' da piastra fresca in 5 ml <strong>di</strong> 2xYT (DO600 iniziale =<br />

0.05). Far crescere in agitazione a 37°C fino a DO600 = 0.5.<br />

9. Al termine della saturazione svuotare l'immunotubo e aggiungere 500 µl - 1 ml<br />

(pari al volume usato per il coating) dei fagi saturati in latte.<br />

10. Incubare in rotazione per 30' e fermo 1h 30' a T ambiente.<br />

11. Svuotare l’immunotubo e fare 5 lavaggi con PBS 1X - Tween 0.1% e 5 con PBS<br />

1X.<br />

12. Svuotare l’immunotubo e mettere 500 µl - 1 ml <strong>di</strong> DH5αF' a DO600 = 0.5.<br />

13. Lasciare infettare per 45' a 37°C.<br />

14. Piastrare su piastre 2xYT + Amp 1% + glucosio 1%: 200 μl <strong>di</strong> DH5αF' per<br />

controllare l’assenza <strong>di</strong> contaminazioni; 500 µl - 1 ml delle cellule DH5αF'<br />

infettate coi fagi (1° output); una <strong>di</strong>luizione per calcolare la titolazione della 1°<br />

selezione.<br />

15. Far crescere le piastre O/N a 37°C.<br />

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