12.06.2015 Views

Pseudomonas syringae DC3000 levaansukraasi Lsc3 katalüütilise ...

Pseudomonas syringae DC3000 levaansukraasi Lsc3 katalüütilise ...

Pseudomonas syringae DC3000 levaansukraasi Lsc3 katalüütilise ...

SHOW MORE
SHOW LESS

Create successful ePaper yourself

Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.

vastavalt kas päripraimer T7 (5’ TAATACGACTCACTATAGGG 3’) ja vastupraimer<br />

D62ARev (5’ CATGGTGGCCCAGATGAAT 3’) või päripraimer E303AFw (5’<br />

TGATCAGACCGCGCGCC 3’) ja vastupraimer Ampsaba (5’ CTGAGATAGGTGCCTCAC<br />

3’). Muteerimispraimerid D62ARev ja E303AFw sisaldavad selliseid lämmastikaluse<br />

vahetusi (praimeri järjestuses alla joonitud), et Asp62 ja Glu303 asendatakse koodoni<br />

muutuse kaudu alaniiniga (vt. Tabel 2). PCR-i produktid (megapraimerid) lahutati<br />

elektroforeesiga (vt. pt. 2.2.7). Vastavalt 320 ap ja 555 ap pikkused DNA fragmendid lõigati<br />

geelist välja ning puhastati Mo Bio (USA) Ultra Clean TM 15 DNA puhastamise komplektiga<br />

tootjapoolse protokolli järgi. Seejärel tehti megapraimerite pikendamiseks uus PCR.<br />

Reaktsioonisegu sisaldas vastavat megapraimerit, matriits-DNA-d (pURI3-lsc3), 1x Pfu<br />

puhvrit, 0.04 mM dNTP, 4 mM MgSO 4, 0.05 U/μl Pfu DNA polümeraasi ning programm oli<br />

järgmine:<br />

1. DNA ahelate denatureerimine 96°C 2 minutit;<br />

2. Megapraimeri paardumine DNA ahelaga 60°C 2 minutit;<br />

3. DNA süntees 72°C 5 minutit;<br />

Tsüklite arv: 10.<br />

Proove inkubeeriti restriktaasiga DpnI (lõppkonts. 0.2 U/µl) 90 min 37°C, et lagundada segus<br />

algne metüleeritud matriits-DNA. Mutatsiooni sisaldav lsc3 fragment (1369 ap) paljundati<br />

segust praimeritepaariga <strong>Lsc3</strong>pURI3Fw (5’<br />

CATCATGGTGACGATGACGATAAGATGTACAATAGCAACTCTGCTGTAA 3’) ja<br />

<strong>Lsc3</strong>pURI3Rev (5’<br />

AAGCTTAGTTAGCTATTATGCGTAGTTCTTCAGGTATGGGAACGGCGTG 3’).<br />

Kaldkirjas on pURI3 vektoriga komplementaarne järjestus ning ülejäänud osa praimerist<br />

seondub lsc3 geeni otstele. Produkti olemasolu kontrolliti 1% agaroosgeelil ning puhastati<br />

geelist Mo Bio Ultra Clean TM 15 komplektiga.<br />

Mutatsiooni sisaldava lsc3 geeni liitmiseks pURI3 vektorisse kasutasime restriktaasi- ja<br />

ligeerimisvaba PCR-i põhist kloneerimist (Geiser et al., 2001; Rivas et al., 2007). pURI3<br />

vektoriga komplementaarsete otstega lsc3 geen paljundati plasmiididelt pHIPMalpromlsc3D219A,<br />

pHIPMalprom-lsc3D219N, pHIPMalprom-lsc3D225A, pHIPMalpromlsc3D225N<br />

praimeritega <strong>Lsc3</strong>pURI3Fw ja <strong>Lsc3</strong>pURI3Rev või saadi suunatud muteerimisega,<br />

nagu on kirjeldatud eespool. Saadud mutantsed lsc3 fragmendid lahutati agaroosgeelis,<br />

puhastati ja tehti ekstensioonietapp, kus lsc3 geen kloneerub pURI3 vektorisse.<br />

Reaktsioonisegu sisaldas puhastatud lsc3 fragmenti, vektorit pURI3, 0.1 mM dNTP, 1x Pfu<br />

puhvrit, 4 mM MgSO 4 , 0.05 U/μl Pfu DNA polümeraasi ning programm oli järgmine:<br />

1. DNA ahelate denatureerimine 95°C 1 minut;<br />

15

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!