12.06.2015 Views

Pseudomonas syringae DC3000 levaansukraasi Lsc3 katalüütilise ...

Pseudomonas syringae DC3000 levaansukraasi Lsc3 katalüütilise ...

Pseudomonas syringae DC3000 levaansukraasi Lsc3 katalüütilise ...

SHOW MORE
SHOW LESS

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.

sahharoosi (puhastatud valkude puhul vastavalt 400 mM rafinoosi või sahharoosi) ning<br />

<strong>levaansukraasi</strong> sisaldava rakuekstrakti või valgupreparaadi lahjendust. Erinevates<br />

ajapunktides eemaldati 200 μl reaktsioonisegu ning lisati see 400 μl DNSA reaktiivile.<br />

Reaktsiooni peatamiseks kuumutati proove 100°C 5 min ning jahutati jääl. Lisati 800 μl<br />

destilleeritud vett ning mõõdeti lahuse optiline tihedus (OD 540 ) (Visnapuu et al., 2008).<br />

Ensüümiaktiivsus väljendati sahharoosist või rafinoosist 1 min jooksul moodustunud<br />

redutseerivate suhkrute kogusena mikromoolides mg valgu kohta (U/mg).<br />

K m -i ja V max -i määramiseks rafinoosile mõõdeti mutantsetel <strong>levaansukraasi</strong>del redutseerivate<br />

suhkrute teket järgmistel rafinoosi kontsentratsioonidel: 25, 50, 100, 200 ja 300 mM.<br />

Vastavad kineetilised parameetrid rafinoosile arvutati, nagu on kirjeldatud eespool sahharoosi<br />

korral.<br />

Transfruktosüleeriv aktiivsus<br />

Levaansukraasi polümeriseeriv ehk transfruktosüleeriv aktiivsus (TA) määrati ensümaatilisel<br />

meetodil, mõõtes reaktsioonisegus vaba glükoosi ja fruktoosi hulka, mille vahe kaudu saab<br />

välja arvutada, kui suur osa reageerinud sahharoosis sisalduvast fruktoosist<br />

polümeriseeritakse (van Hijum et al., 2001; Yanase et al., 2002; Toomemaa, 2007).<br />

Inkubatsioonisegu sisaldas 0.02% Na-asiidiga McIllvaine’i puhvrit (pH 6.0), 1200 mM<br />

sahharoosi ja 2.7 U/ml puhastatud <strong>levaansukraasi</strong> või 50 µl rakulüsaati mutantide puhul,<br />

millel koguaktiivsus praktiliselt puudus. Valkude aktiivsuse arvutusteks kasutati 100 mM<br />

sahharoosist glükoosi tekke järgi aktiivsuse määramisel saadud tulemusi. Reaktsioon toimus<br />

temperatuuril 37°C 20 h jooksul ja lõpetati proovide kuumutamisega 5 min 96°C. Segudest<br />

tehti destilleeritud vette sobivad lahjendused ning pipeteeriti 10 µl proovi küvetti, mis sisaldas<br />

970 μl reaktsioonipuhvrit (5 mM MgCl 2 , 2 mM β-NAD, 1.1 mM ATP, glükoos-6-fosfaadi<br />

dehüdrogenaas 2.8 U, 200 mM imidasoolpuhver; pH 6.9). Määrati optilist tihedust (OD 340 )<br />

heksokinaasi (1.5 U) ning fosfoglükoisomeraasi (1.4 U) lisamisel ja polümeriseeriv aktiivsus<br />

arvutati valemiga ([Glc]-[Fru v ])/[Glc])*100, kus [Glc] näitab glükoosi ja [Fru v ] vaba<br />

polümeriseerimata fruktoosi kontsentratsiooni reaktsioonisegus. TA väljendati protsendina,<br />

mis näitab polümeriseerimisproduktidesse lülitatud fruktoosi osakaalu.<br />

Valgu kontsentratsiooni määramiseks kasutati Lowry meetodit (Lowry et al., 1951).<br />

2.2.6 Mutantsete <strong>levaansukraasi</strong>de puhastamine Ni +2 -afiinsuskromatograafiaga<br />

E. coli BL21(DE3) transformante, mis sisaldasid ekspressioonikonstrukte pURI3-lsc3P222L,<br />

pURI3-lsc3D225A või pURI3-lsc3D225N, kasvatati, mutantse <strong>levaansukraasi</strong> ekspressioon<br />

indutseeriti ning rakuekstrakt valmistati, nagu on näidatud peatükis 2.2.4. Valkude<br />

19

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!