12.06.2015 Views

Pseudomonas syringae DC3000 levaansukraasi Lsc3 katalüütilise ...

Pseudomonas syringae DC3000 levaansukraasi Lsc3 katalüütilise ...

Pseudomonas syringae DC3000 levaansukraasi Lsc3 katalüütilise ...

SHOW MORE
SHOW LESS

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.

puhastamisel lähtuti E. Kallase kasutatud metoodikast, mida kohandati <strong>Lsc3</strong> valgule (Kallas,<br />

2010). Saadud 10 ml rakulüsaadile lisati 400 μl Ni 2+ -NTA agaroosi (Hispanagar, Hispaania)<br />

ja inkubeeriti 2 h 4°C end-over-end segajal (Bio RS-24, BioSan, Läti), et levaansukraas<br />

seonduks maatriksile. Ni 2+ -maatriks tsentrifuugiti põhja (380 g, 1 min, 4°C) ning pesti kaks<br />

korda 5 ml sonikeerimispuhvriga. Ni 2+ -maatriks suspendeeriti 2 ml sonikeerimispuhvris ja<br />

kanti ilma membraanita RNA minikolonnidele ning tsentrifuugiti (380 g, 1 min, 4°C).<br />

Seejärel <strong>levaansukraasi</strong> valgud elueeriti maatriksilt 1 ml elueerimispuhvriga (500 mM<br />

imidasool, 50 mM NaH 2 PO 4 , 300 mM NaCl, 10% glütserool; pH 6.0). Levaansukraasi<br />

sisaldavad eluaadid viidi Spectra/Por 3 dialüüsimembraani, mis ei lase läbi suuremaid<br />

molekule kui 3500 daltonit (Da) (Mw cut-off 3.5 kDa; Spectrum Laboratories, Holland).<br />

Valgulahust dialüüsiti 4°C 24 h Na-asiidi sisaldavas McIllvaine’i puhvris (pH 6.0). Seejärel<br />

kaeti membraanid polüetüleenglükooliga, mille molekulmass on 8000 Da (PEG8000;<br />

SIGMA, USA), ning kontsentreeriti 4°C, kuni lahuse maht vähenes ligi kaks korda. Saadud<br />

<strong>levaansukraasi</strong> lahust kasutati puhta valgupreparaadina. Kõikidest valgu puhastamise<br />

etappidest võeti proovid ning neid analüüsiti denatureerival polüakrüülamiidgeelil (SDS-<br />

PAGE) (pt. 2.2.7).<br />

2.2.7 Geelelektroforees<br />

DNA fragmentide lahutamiseks ja plasmiidse DNA kontrolliks kasutati elektroforeesi 1%<br />

agaroosgeelil 0.5 x TAE puhvris (40 mM Tris-atsetaatpuhver, 1 mM EDTA; pH 8.2).<br />

Agaroosgeel sisaldas etiidiumbromiidi (0.35 μg/ml). Geelile kantavatele segudele lisati<br />

glütserooli sisaldavat geelivärvi (1x DNA Loading Dye, Fermentas) ja geelelektroforees<br />

toimus toatemperatuuril 0.5 x TAE puhvris ning pingel 10 V/cm. DNA fragmendid tehti<br />

nähtavaks ultraviolettvalguses UV Transillumnator-iga (UVP, USA). Produktide suuruse<br />

määramiseks kasutati GeneRuler 1 kb DNA markerit (Fermentas).<br />

Rakulüsaatides sisalduvad valgud lahutati nii denatureeriva (SDS) kui ka natiivse<br />

(mittedenatureeriva) polüakrüülamiidgeelelektroforeesiga (PAGE). Natiivne 7.5% PAGE geel<br />

valmistati standardprotokolli järgi (Sambrook et al., 1989; Visnapuu et al., 2008). Geeli rajale<br />

kanti 20 μg rakuekstrakti, mis oli suspendeeritud 50% glütserooliga broomfenoolsinise<br />

lahuses. Geel voolutati Hoefer-i (USA) geelelektroforeesi süsteemiga madalal temperatuuril<br />

(4°C) 10 V/cm ja voolutuspuhvrina kasutati 0.5 x TBE puhvrit (pH 8.3). Tehti paralleelleselt<br />

2 natiivset PAGE geeli – üks ilmutati aktiivsuse järgi toatemperatuuril 10% sahharoosiga<br />

McIllvaine’i puhvris (pH 6.0) ligi 20 h ning teine geel värviti valgule Coomassie Brilliant<br />

Blue G250 (Serva, Saksamaa) lahusega.<br />

20

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!