12.06.2015 Views

Pseudomonas syringae DC3000 levaansukraasi Lsc3 katalüütilise ...

Pseudomonas syringae DC3000 levaansukraasi Lsc3 katalüütilise ...

Pseudomonas syringae DC3000 levaansukraasi Lsc3 katalüütilise ...

SHOW MORE
SHOW LESS

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.

lõik. Levaansukraasi geeni teise poole 938 ap pikkune fragment amplifitseeriti praimeritega<br />

Lsc1ja3Fw1 (5’ GCGATCGCCAAAGTACG 3’) ning Ampsaba. Seejärel tehti proovidele<br />

ExoI-SAP töötlus 15 min 37°C, kus reaktsioonisegusse lisati aluseline fosfataas (Shrimp Acid<br />

Phosphatase – SAP; Fermentas; lõppkonts. 0.2 U/µl) ja eksonukleaas ExoI (Fermentas; 0.4<br />

U/µl), et lagundada segusse allesjäänud praimerid ja algne DNA. Järgnevalt DNA sadestati<br />

96° etanooliga ja proovid valmistati vastavalt tootjapoolsele soovitusele. Sekveneeriti ABI<br />

3130xl Cenetic Analyser või ABI 3730xl DNA Analyzer sekvenaatoriga (Applied<br />

Biosystems, Kanada).<br />

2.2.4 Transformantide kasvatus, <strong>levaansukraasi</strong>de ekspresseerimine ja<br />

rakuekstraktide tegemine<br />

Levaansukraaside ekspresseerimiseks viidi mutantset või algset <strong>levaansukraasi</strong> geeni<br />

sisaldavad pURI3 plasmiidid ja ilma inserdita pURI3 vektor elektroporatsiooniga E. coli<br />

ekspressioonitüvesse BL21(DE3) (pt. 2.2.3). Transformante kasvatati ampitsilliini (lõppkonts.<br />

0.15 mg/ml) sisaldavas LB tard- või vedelsöötmes 37°C. Vedelkultuure aereeriti loksutil.<br />

Fenotüüpide uurimiseks külvati transformandid 10% sahharoosiga LB Amp söötmetassidele,<br />

kasvatati 37°C üleöö ja seejärel inkubeeriti tasse kuni 7 p toatemperatuuril (~23°C).<br />

Rakuekstraktide tegemiseks külvati muteeritud või algset <strong>levaansukraasi</strong> geeniga plasmiidi<br />

sisaldavad E. coli BL21(DE3) kolooniad 5 ml LB Amp vedelsöötmesse, kasvatati üleöö ning<br />

kultuurid külvati 30 ml LB Amp söötmesse algtihedusega 0.05 (OD 600 ) ja kasvatati opilise<br />

tiheduse väärtuseni ~0.5. Levaansukraaside ekspressiooni aktiveerimiseks lisati söötmesse<br />

IPTG-d (isopropüül-β-D-1-tiogalaktopüranosiid) (lõppkonts. 0.5 mM) ja transformante<br />

kasvatati madalama temperatuuriga (22°C) loksutil 20 h. Bakterirakud sadestati<br />

tsentrifuugimisega (2400 g, 10 min, 4°C), neid pesti kaks korda 50 mM K-fosfaatpuhvriga<br />

(pH 7.0), suspendeeriti 0.02% Na-asiidiga McIllvaine’i puhvris (130 mM Na 2 HPO 4 ja 40 mM<br />

sidrunhape; pH 6.0) ning purustati ultraheliga (Ultrasonic Homogenizer 4710, Cole-Parmer<br />

Instrument Co., USA). Tahke fraktsioon sadestati tsentrifuugimisega (13700 g, 4°C) 20<br />

minuti jooksul ning supernatanti kasutati rakuekstraktina. Rakuekstrakte hoiti jääl või<br />

külmutati -20°C.<br />

Mutantsete <strong>levaansukraasi</strong>de puhastamiseks külvati E. coli BL21(DE3) transformandid 200<br />

ml LB Amp vedelsöötmesse ning neid kasvatati ja <strong>levaansukraasi</strong>de ekspressioon algatati,<br />

nagu on kirjeldatud eespool. Bakterikultuuri tsentrifuugiti 2400 g (5 min, 4°C) ja pesti kaks<br />

korda 25 ml K-fosfaatpuhvriga (50 mM; pH 7.0). Rakud suspendeeriti 10 ml<br />

sonikeerimispuhvris (10 mM imidasool, 50 mM NaH 2 PO 4 , 300 mM NaCl, 10% glütserool;<br />

pH 6.0), külmutati 3x vedelas lämmastikus ning sulatati leiges vees, et suurendada valgu<br />

17

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!