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Les phlébotomes de la région éthiopienne (Diptera, Psychodidae)

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14 us pHLÉ~0T0ïkfEs DELA RÉOION ÉTHIOPIENNE<br />

2.2. TECHNIQUE DE MANIPULATION, DE CONSERVATION,<br />

DISSECTION ET MONTAGE<br />

2.2.1. MANIPULATION ET ISOLEMENT DES PHLÉBOTOMES VIVANTS<br />

Lorsque les Phlébotomes sont prisonniers dans un tube à essai, ils ont tendance à se diriger vers <strong>la</strong><br />

lumière. Il est avantageux d’utiliser ce tactisme à <strong>de</strong>s f& <strong>de</strong> manipu<strong>la</strong>tion.<br />

On pourra, par exemple, faire passer un Phlébotome d’un tube dans un autre en dirigeant d’abord<br />

le fond <strong>de</strong> celui qui contient l’insecte, vers <strong>la</strong> lumière. Le Phlébotome s’éloignera du bouchon pour aller<br />

vers <strong>la</strong> source lumineuse. Le coton sera enlevé et le tube ouvert sera alors abouché à un second tube ;<br />

on retourne le tout et l’insecte, toujours attiré par <strong>la</strong> lumière, passera dans le nouveau contenant.<br />

<strong>Les</strong> femelles ayant terminé un repas <strong>de</strong> sang cherchent au contraire les endroits obscurs ; en prati-<br />

quant <strong>la</strong> manipu<strong>la</strong>tion inverse, on pourra, par exemple, isoler une femelle repue, du tube où elle se trouvait<br />

pour effectuer son repas.<br />

Pour isoler et transporter <strong>de</strong>s Phlébotomes vivants on peut réunir d’abord plusieurs dizaines d’indi-<br />

vidus dans <strong>de</strong>s pots en carton paraffink (type pot à miel). Ces pots seront fermés à l’ai<strong>de</strong> d’un morceau<br />

<strong>de</strong> voile en nylon tenu par un bracelet é<strong>la</strong>stique ; dans le tissu une boutonnière sera aménagée et bouchée<br />

au coton (fig. 3). <strong>Les</strong> Phlébotomes capturés à l’ai<strong>de</strong> d’un aspirateur à bouche sont introduits, au fur et à<br />

mesure <strong>de</strong> leur capture, en souff<strong>la</strong>nt dans le pot en carton.<br />

Pour isoler <strong>de</strong>s femelles <strong>de</strong>stinées à être nourries pour <strong>la</strong> reproduction ou pour <strong>de</strong>s essais d’infection<br />

expérimentale, il suffit <strong>de</strong> faire pénétrer l’extrémité libre du tube <strong>de</strong> l’aspirateur, entre le coton et le tissu<br />

<strong>de</strong> nylon et, par transparence, choisir dans le pot <strong>la</strong> ou les femelles que l’on veut isoler.<br />

2.2.2. CONSERVATION<br />

On peut tuer les Phlébotomes contenus dans le captu-<br />

rateur-nasse en projetant dans ce <strong>de</strong>rnier <strong>de</strong> <strong>la</strong> fumée <strong>de</strong> tabac.<br />

<strong>Les</strong> insectes sont ensuite répartis dans <strong>de</strong> petits tubes conte-<br />

nant <strong>de</strong> l’alcool à 700 ; on y introduit une étiquette portant,<br />

au crayon, <strong>la</strong> date et le lieu <strong>de</strong> capture et on bouche au<br />

coton (fig. 1 F). <strong>Les</strong> tubes sont alors réunis, baignant dans<br />

l’alcool, dans un bocal hermétiquement clos. On. peut égale-<br />

ment conserver les Phlébotomes à sec, dans <strong>de</strong>s boîtes<br />

d’allumettes garnies d’une légère couche <strong>de</strong> coton sous<br />

<strong>la</strong>quelle on aura glissé quelques cristaux <strong>de</strong> paradichloro-<br />

benzène (fig. 1 E).<br />

2.2.3. MANIPULATION, DISSECTION ET<br />

MONTAGE DES INSECTES MORTS<br />

<strong>Les</strong> Phlébotomes sont <strong>de</strong>s insectes extrêmement fragiles ;<br />

en les manipu<strong>la</strong>nt avec un objet quelconque : pointe &ne, vaccinostyle,<br />

fragment <strong>de</strong> bristol, on risque <strong>de</strong> léser certains<br />

organes ou <strong>de</strong> faire disparaître <strong>de</strong>s soies ou <strong>de</strong>s poils très<br />

utiles à <strong>la</strong> diagnose. Pour éviter ces inconvénients on s’abstiendra<br />

<strong>de</strong> les toucher. II faudra :<br />

FIGURE 3<br />

Pot en carton pour conserver et transporter<br />

les Phlébotomes vivants.<br />

1) Vi<strong>de</strong>r directement dans une capsule le contenu du tube : alcool et Phlébotomes.<br />

2) Vi<strong>de</strong>r l’alcool <strong>de</strong> <strong>la</strong> capsule, d’abord en le versant délicatement sans <strong>la</strong>isser passer les insectes,<br />

6puiser ensuite ce qui reste <strong>de</strong> liqui<strong>de</strong> à l’ai<strong>de</strong> d’un compte-gouttes.<br />

3) Remp<strong>la</strong>cer l’alcool par le liqui<strong>de</strong> choisi : solution <strong>de</strong> potasse, solution <strong>de</strong> Marc André, <strong>la</strong>cto-<br />

phénol, etc.<br />

4) Pour chaque nouveau bain, répéter l’opération d’épuisement à l’ai<strong>de</strong> du compte-gouttes sans<br />

jamais toucher aux insectes.

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