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Impact des métaux lourds sur les interactions plante/ver de terre ...

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Partie B : Matériel et Métho<strong><strong>de</strong>s</strong>culture, un dénombrement <strong><strong>de</strong>s</strong> colonies et une numération <strong><strong>de</strong>s</strong> types morphologiques observéssont effectués. La distinction morphologique <strong><strong>de</strong>s</strong> colonies est basée <strong>sur</strong> <strong><strong>de</strong>s</strong> critèresmacroscopiques <strong>de</strong> taille, forme, <strong>sur</strong>face, contour, couleur <strong>de</strong> colonie, formation <strong>de</strong> spores(forme et couleur), diffusion <strong>de</strong> pigments dans le milieu, couleur <strong>de</strong> l'en<strong>ver</strong>s <strong>de</strong> la culture. Cesdonnées morphologiques sont présentées en annexe 2. Les souches intéressantes sont ensuiterepiquées <strong>sur</strong> milieu <strong>de</strong> Sabouraud pour obtenir <strong><strong>de</strong>s</strong> isolats.V.2.3 Profil physiologique - BIOLOGtel-00486649, <strong>ver</strong>sion 1 - 26 May 2010Afin d’acti<strong>ver</strong> <strong>les</strong> communautés bactériennes, 5g <strong>de</strong> chaque échantillon sontpréalablement incubés avec 750 µl d’eau distillée dans une étuve à 25°C pendant 48h. Puis,100 ml d’eau physiologique stérile (9 g <strong>de</strong> NaCl/l d’eau distillée) sont ajoutés et l’ensembleest mis en suspension à l’ai<strong>de</strong> d’un agitateur magnétique pendant 30 min à 500 rpm. Lessuspensions sont ensuite centrifugées à 800 rpm à température ambiante pendant 30 min. Les<strong>sur</strong>nageants obtenus sont transférés dans <strong>de</strong> nouveaux flacons et centrifugés encore une fois àla vitesse <strong>de</strong> 3000 rpm pendant 3 min. Les <strong>sur</strong>nageants finaux sont récupérés.Des plaques BIOLOG GN2 MicroPlate TM (AES laboratoire, France) sont inoculées àraison <strong>de</strong> 150 µl <strong>de</strong> <strong>sur</strong>nageant dans chacun <strong><strong>de</strong>s</strong> 96 puits à l’ai<strong>de</strong> d’une pipette multicanaux etsous faible agitation. Les plaques GN2 favorisent le développement <strong><strong>de</strong>s</strong> bactéries Gramnégatives. Chaque puits contient une source <strong>de</strong> carbone différente et du chlore <strong>de</strong> tetrazoliumqui va être réduit en un composé violet absorbant à 595 nm, le formazon, lorsque la source <strong>de</strong>carbone est métabolisée. Les microplaques sont incubées à 25ºC. Les lectures à 595 nm sonteffectuées à l’ai<strong>de</strong> d’un lecteur <strong>de</strong> microplaque (EL800-PC, BioTek) toutes <strong>les</strong> 24 h pendant150 h.VI/ TECHNIQUES MOLECULAIRESVI.1 Extraction ADN à partir <strong>de</strong> souches fongiques puresL’extraction <strong>de</strong> l’ADN <strong><strong>de</strong>s</strong> souches pures a été effectuée selon une métho<strong>de</strong>d’extraction directe qui consiste en une lyse physique et chimique suivie <strong>de</strong> phasesd’extraction au phénol et <strong>de</strong> précipitation à l’Isopropanol. Une seule colonie <strong>de</strong> chaquechampignon (culture <strong>de</strong> 7 jours) est prélevée à la <strong>sur</strong>face du milieu <strong>de</strong> culture soli<strong>de</strong> avec une42

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