30.10.2014 Views

TUBERKULOOSI DIAGNOSTIKA, RAVI JA RAVI JÄLGIMISE ...

TUBERKULOOSI DIAGNOSTIKA, RAVI JA RAVI JÄLGIMISE ...

TUBERKULOOSI DIAGNOSTIKA, RAVI JA RAVI JÄLGIMISE ...

SHOW MORE
SHOW LESS

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.

26<br />

Tuberkuloosi diagnostika, ravi ja ravi jälgimise juhised<br />

2.4. Mükobakterite mikrobioloogilised määramise meetodid<br />

Bakterioskoopia<br />

Bakterioskoopia on kiire ja lihtne meetod happekindlate mikroobide kindlakstegemiseks<br />

bioloogilises materjalis. Selle meetodi puhul peab arvestama järgmisi<br />

asjaolusid:<br />

• Meetodi efektiivsus sõltub laborandi kompetentsusest ja kvalifikatsioonist.<br />

• Madal tundlikkus. Tavaliselt on positiivseks tulemuseks vajalik vähemalt<br />

>100 bakterirakku/ml kohta. Seetõttu tuleb alati kahtluse korral<br />

mükobakteritest põhjustatud infektsioonil teha ka külv vastavatele söötmetele.<br />

• Pole võimalik eristada tuberkuloositekitajaid teistest mükobakteritest.<br />

• Oht materjali saastumisele keskkonnast pärinevate mükobakteritega. Nende<br />

allikateks võivad olla kraanivesi, saastunud värvained, mükobakterite<br />

ülekanne immersioonõli vahendusel jms.<br />

Enamlevinud on kaks meetodit happekindlate mikroobide värvimisel: Ziehl-Neelsen<br />

meetod (ZN) ja fluorokroomidega värvimine (FM). ZN meetodil värvitud preparaate<br />

uuritakse tavalise valgusmikroskoobi abil, FM meetodil aga luminestsents-mikroskoobi<br />

abil.<br />

Mükobakterite kiirdiagnostika otse uuritavast bioloogilisest materjalist<br />

Nukleiinhapete amplifitseerimistehnikate ( nii RNA kui ka DNA amplifitseerimise<br />

süsteemid) kiire areng on oluliselt kiirendanud mükabakterite kindlakstegemist<br />

algmaterjalist. Meetodi eelis on see, et tulemuse saab ühe päeva jooksul, kuid probleemiks<br />

on meetodi kõrge hind ning ka meetodi tundlikkus. Amplifitseerimismeetodite<br />

tundlikkus on ligikaudu 95% ning spetsiifilisus 98% juhul, kui uuritava materjali<br />

bakterioskoopilisel uuringul on leitud happekindlaid baktereid. Juhul kui uuritavas<br />

materjalis on vähem baktereid ja algmaterjali bakterioskoopia on happekindlate<br />

bakterite suhtes negatiivne, on nukleiinhapete amplifitseerimistehnikad positiivsed<br />

48–53% külv-positiivsetel patsientidel ning spetsiifilisuseks jääb 95%.<br />

Kiirmeetodid ei asenda klassikalisi bakterioskoopilisi ning külvi meetodeid, eriti siis,<br />

kui on vajadus määrata haigustekitaja ravimiresistentsust.<br />

Metoodika puudusteks on kontaminatsioonioht (valepositiivne vastus) ja inhibeerivate<br />

substraatide esinemine bioloogilises materjalis (valenegatiivne vastus).<br />

Uurimustulemus on positiivne ka juhul, kui haige eritab surnud baktereid. Seetõttu<br />

saab neid tehnikaid kasutada üksnes esialgse diagnoosi kinnitamiseks, kuid mitte<br />

patsiendile rakendatud ravi efektiivsuse hindamiseks.<br />

Külv mükobakterite isoleerimiseks<br />

Kõik kliinilised materjalid, kus kahtlustatakse mükobakterite olemasolu, tuleb külvata<br />

järgmistel põhjustel: (1) külv on palju tundlikum kui bakterioskoopia, olles võimeline<br />

määrama isegi 10 bakterit/ml olemasolu; (2) välja kasvanud mükobakterid saab

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!