370 Abdelaziz Benyounes, Farida Lamrani, Jose Sulon, Ali Tahar and Jean-François Beckers Par conséquent, si la thèse indiquant qu’au début, la présence de la progestérone dans le sang n’est pas spécifique à la présence d’embryon dans l’utérus est valable à cause des anomalies qui peuvent surgir et qui justifient les limites répertoriées de la méthode de la progestérone, dans notre cas, nous pouvons possiblement émettre l’hypothèse que l’insuffisance aussi de la progestérone par rapport au seuil de 1 ng/ml n’est pas forcément synonyme ou spécifique à l’absence d’embryon dans l’utérus. En revanche, l’inverse est vrai au seuil de 1,2 ng/ml à partir du 21 ème j et surtout du 28 ème j de gestation pour la méthode de la PAG; confortant de ce fait l’exactitude, la précision et la fiabilité de cette dernière face à celles de la progestérone. En effet, cette glycoprotéine appartenant à la famille des protéines aspartiques est sécrétée par les cellules binucléées du trophoblaste quelques jours après la fécondation [38]. Bien qu’irrégulière et faible au départ, elle est plus importante à partir du 28 ème j. Ce qui permet par dosage de RIA, de discriminer sans difficultés ni confusion aucune entre les deux groupes de femelles. Dans le même sens, si l’évolution progressive et continue de la PAG chez les femelles gestantes est synonyme de l’existence d’embryon et d’une placentation bien établie et fonctionnelle, il n’en est pas de même pour les femelles vides. Pour ces dernières, aucune trace de cette glycoprotéine n’est détectée depuis le début jusqu’à la fin. Ce qui rend alors le diagnostic négatif exact (spécificité) pour ce groupe de femelles très élevé (100%). La même tendance est observée dans le cas de la progestérone pour les mêmes femelles ayant subi la lutéolyse ou se trouvaient en période anovulatoire. Ceci ne corrobore pas certains résultats annoncés [20], affirmant la supériorité de la spécificité (p
Éfficacité Comparée de Deux Méthodes de Diagnostic Précoce de Gravidité Chez la Brebis Ouled Djellal 371 References [1] Beckers, J.F., Dewulf, M., Verstegen, I., Wouters-Ballman, P., Ectors, F., 1988. Isolation <strong>of</strong> bovine chorionic gonadotrophin (bCG). Theriogenology, 29 (1): 218 (abstract). [2] Benitez-Ortiz, W., 1992. Diagnostic de gestation et étude de la mortalité embryonnaire chez les ruminants par dosage de la pregnancy associated glycoprotein (PAG). IMTA, Thèse de PhD, Institut de Médecine Tropicale Antwerpen, Belgique, 139 p. [3] Cognié, Y., 1988. Nouvelles méthodes utilisées pour améliorer les performances de reproduction chez les ovins. INRA. Prod. Anim. 1(2): 83-92. [4] Derivaux J, and Ectores F., 1980. Physiopathologie de la gestation et obstétrique vétérinaire. Les Editions du point vétérinaire, Maisons-Alfort, France, 31-45. [5] Dubois S., 2002. Mise au point d’une méthode directe de dosage de la progestérone plasmatique par radio-immunologie. Développement d’un outil complémentaire au diagnostic de gestation chez les bovins. Travail de fin d’étude, Haute école de la Province de Liège, Belgique. [6] Duquesnel, R., Parisot, D., Pirot, G., Mialot, J.P., Saboureau, L., Etienne, P., Delaval, J., Guéraud, J.M., Prengere, E., De Montigny, G., Guerrault, P., Humblot, P., De Fontaubert, Y., and Chemineau P., 1992. La pseudogestation chez la chèvre. Ann. Zootech., 41: 407- 415. [7] Ectors, F.J., Schmidt, M., Sulon, J., Delval, A., Remy, B., Avery, B and Beckers J.F., 1996. BPAG pr<strong>of</strong>iles in recipient heifers after transfer <strong>of</strong> IVF and nuclear transfer embryos. Theriogenology, 45: 283. [8] El Amiri, B., Karen, A., Cognie, Y., Sousa, N.M., Hornick, J.L, Szenci, O and Beckers J.F., 2003a. Diagnostic et suivi de gestation chez la brebis: réalités et perspectives. INRA Prod. Anim., 16 (2): 79-90. [9] El Amiri, B., Remy, B., Sousa, N.M., Joris, B., Otthiers, N.G., Perenyi, Z., Mboko, H.B., Beckers, J.F., 2003b. Isolation and partial characterization <strong>of</strong> three pregnancy-associated glycoproteins from the ewe placenta. Mol. Reprod. Dev., 64: 199-206. [10] Faye, D., Sulon, J., Kane, Y., Beckers, J.F., Leak, S., Kaboret, Y., Sousa, N.M., Losson, B., Geerts, S., 2004. Effects <strong>of</strong> an experimental trypanosoma congolence infection on the reproductive performance <strong>of</strong> West African Dwarf goats. Theriogenology, 62: 1438-1451. [11] Folch, J., Benitez-Ortiz, W., Alabart, J.L. and Beckers J.F., 1993. Determinación de la concentración plasmatica de PAG (Pregnancy-Associated Glycoprotein) en cabras blanca celtiberica y su utilización como diagnostico de gestación. V Jornadas sobre Producción Animal, Vol. Extra N° 12, Tome II: 364-366. [12] Gajewski, Z., Beckers, J.F., Sousa, N.M., Thun, R., Sulon, J. and Faundez R., 1999. Determination <strong>of</strong> pregnancy-associated glycoprotein concentrations in sheep: a retrospective study. Adv. Cell. Biol., 26: 89-96. [13] Garbayo, M.J., Alabart, J.L., Folch, J. and Beckers J.F., 1994. Concentración de PAG (Pregnancy-Associated Glycoprotein) a lo largo de la gestación en ovejas Manchegas immunizadas con fecundin A o contra una mezcla de esteroides. 7a Jornadas Internacionales de Reproducción Animal. Murcia, España, p. 306. [14] Gonzalez, F., Cabrera, F., Batista, M.., Rodriguez, N., Alamo, D., Sulon, J., Beckers, J.F. and Gracia, A., 2004. A comparison <strong>of</strong> diagnosis <strong>of</strong> pregnancy in the goat via tranrectal ultrasound scanning, progesterone, and pregnancy-associated glycoprotein assays., Theriogenology, 62: 1108-1115. [15] Greenwood, F.C., Hunter, W.M. and Glover, J.S., 1963. The preparation <strong>of</strong> 131-l labeled human growth hormone <strong>of</strong> high specific radioactivity. Biochimistry, 89. 114-123. [16] Humblot, P., 1986. La mortalité embryonnaire chez les bovins. In: Henry-Suchet J., Mintz M. et Spira A (eds). Recherches récentes sur l’Épidémiologie de la Fertilité, Société Française pour l’Étude de la Fertilité, Masson, Paris, 213-242.
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