1 - EUR-Lex
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21.8.2001 L 225/249<br />
Journal officiel des Communautés européennes<br />
FR<br />
1.8. MODE OPÉRATOIRE<br />
1.8.1. Conditions d'exposition<br />
1.8.1.1. Durée<br />
1.8.1.2. Charge<br />
L'essai dure 21 jours.<br />
Les animaux parents sont répartis individuellement dans les récipients d'essai contenant chacun 50-100 ml de<br />
milieu.<br />
Il est parfois nécessaire d'avoir recours à des volumes plus importants afin de pouvoir appliquer la méthode<br />
d'analyse utilisée pour déterminer la concentration de la substance d'essai, bien qu'il soit aussi possible de<br />
mélanger les récipients de même concentration aux fins de l'analyse chimique. Si des volumes supérieurs à<br />
100 ml sont employés, il faudra peut-être augmenter la ration distribuée aux Daphnia, afin que la nourriture<br />
disponible soit suffisante et que les critères de validité soient satisfaits. S'agissant des essais dynamiques,<br />
d'autres protocoles peuvent être envisagés pour des raisons techniques (par exemple, 4 groupes de 10 animaux<br />
dans des volumes expérimentaux plus élevés), mais toute modification du mode opératoire doit être<br />
signalée.<br />
1.8.1.3. Nombre d'animaux<br />
Pour les essais semi-statiques, on utilisera au moins 10 animaux répartis individuellement à chaque concentration<br />
d'essai et au moins 10 animaux répartis individuellement dans la série de témoins.<br />
Pour les essais dynamiques, il s'avère approprié d'utiliser 40 animaux répartis en 4 groupes de 10 à chaque<br />
concentration d'essai (1). Un plus petit nombre d'animaux d'expérience peut être utilisé, mais on recommande<br />
d'employer au moins 20 animaux par concentration, répartis dans au moins 2 récipients contenant le même<br />
nombre d'animaux (par exemple, 4 récipients contenant 5 daphnies chacun). Notons que pour les essais où<br />
les animaux sont maintenus en groupe, il ne sera pas possible d'exprimer la capacité reproductrice en fonction<br />
du nombre total de descendants vivants produits par animal parent survivant à la fin de l'essai, si des animaux<br />
parents meurent. Auquel cas, il faudra exprimer la capacité reproductrice par «le nombre total de descendants<br />
vivants produits par parent présent au début de l'essai».<br />
1.8.1.4. Alimentation<br />
1.8.1.5. Lumière<br />
Dans les essais semi-statiques, on préconise d'administrer une ration quotidienne, ou au moins tri-hebdomadaire<br />
(ce qui correspond au renouvellement du milieu). Les écarts par rapport à cette fréquence (par exemple,<br />
dans les essais dynamiques) doivent être signalés.<br />
Au cours de l'essai, le régime alimentaire des animaux parents devrait, de préférence, se composer d'algues<br />
unicellulaires vivantes appartenant à une ou plusieurs des espèces suivantes: Chlorella sp., Selenastrum capricornutum<br />
[renommée Pseudokirchneriella subcapitata (11)] et Scenedesmus subspicatus. La nourriture devrait être dispensée<br />
en fonction de la teneur en carbone organique (C) fournie à chaque animal parent. La recherche (12) a<br />
montré que pour Daphnia magna, des teneurs comprises entre 0,1 et 0,2 mg de C/Daphnia/jour dans la ration<br />
alimentaire suffisaient pour produire le nombre de descendants requis selon les critères de validité. On peut<br />
fournir des rations à teneur constante tout au long de l'essai ou utiliser des teneurs plus faibles au début, que<br />
l'on augmentera afin de tenir compte de la croissance des animaux parents. Dans ce cas, la ration devrait toujours<br />
contenir entre 0,1 et 0,2 mg de C/Daphnia/jour, qui est la teneur recommandée.<br />
Si des paramètres de remplacement, comme le nombre de cellules d'algues ou l'absorbance de la lumière, sont<br />
utilisés pour doser la teneur en carbone requise dans la ration alimentaire (pour des raisons pratiques, car la<br />
mesure de la teneur en carbone prend beaucoup de temps), chaque laboratoire est tenu de produire son<br />
propre nomogramme mettant en relation le paramètre de remplacement et la teneur en carbone de la culture<br />
d'algues (des conseils concernant l'établissement d'un nomogramme sont donnés à l'appendice 2). Les nomogrammes<br />
devraient être vérifiés au moins une fois par an, et plus souvent si les conditions de culture des<br />
algues ont changé. Il a été démontré que l'absorbance de la lumière donne une meilleure indication de la<br />
teneur en carbone que le nombre de cellules (13).<br />
Il convient d'administrer une suspension d'algues concentrée aux Daphnia, afin de réduire au minimum le<br />
volume du milieu de culture des algues transféré dans les récipients d'essai. On peut concentrer les algues par<br />
centrifugation, puis remise en suspension dans de l'eau distillée, de l'eau désionisée ou le milieu de culture des<br />
Daphnia.<br />
16 heures de lumière à une intensité ne dépassant pas 15-20 lE ·m -2 ·s -1 .